2014年10月7日
小腸は、しばしば、血流に影響を与える負栄養吸収に影響を与える可能性が毒素に暴露される。 multimyographおよび腸間膜動脈および静脈の分離株を使用して、目的の化合物または毒素は、血管作用についてスクリーニングすることができる。
この手順の全体的な目標は、ウシ腸間膜動脈と静脈の断面をマルチメートルグラフで分離して、実験化合物の血管活性のスクリーニングを可能にすることです。これは、最初に動物から腸間膜組織サンプルを収集することによって達成されます。2番目のステップでは、サンプルを洗浄し、容器を切片化します。
次に、切片をmyoグラフトにマウントし、平衡化します。最終ステップでは、単離された容器を目的の化合物に曝露します。最終的に、この動脈および静脈バイオアッセイは、化合物の血管活性とそれらが牛腸間膜血管内の血流に及ぼす影響を評価するために使用できます。
この技術の主な利点は、in vivoでの血流測定などの既存の方法と比較すると、この技術を使用すると、1匹の動物の組織を複数の化合物に同時にさらすことができることです。この方法は、フェスク、中毒症、エルゴティズムなどの血管収縮を引き起こす可能性のある非常に特殊な動物症候群に関する洞察を提供できますが、開発中の医薬品や天然物など、研究者が関心を持つ可能性のある他のシナリオにも適用できます。さらに、それはまた、牛の血管系だけでなく、実際には他の哺乳類の種からの血管系にも適用することができます。
腸間膜組織から血管を切除した後、一対の鉗子を使用して組織サンプルを切断面に置き、氷のように冷たいクレブスヘンツェルヘンズアイテバッファーに部分的に浸します。次に、5番の宝石、鉗子、ノイズを使用して、アイリスハサミは血管の周囲の脂肪と結合組織を慎重に解剖します。動脈と静脈を分離した後、セクションの一方の端にある血管の開口部を特定し、鉗子で血管を囲む筋膜を慎重につかみます。
次に、はさみの先端を隆起した筋膜の下にスライドさせて、はさみを容器と平行にして切り込みを入れます。最初の切開後、血管の両側を切り取り、脂肪と結合組織をさらに剥離し、血管を洗浄します。洗浄した血管を新しいクレブスヘンツェルライトバッファーのチューブに入れ、チューブを摂氏4度で最大24時間保存します。
準備ができたら、ティッシュスライサーを使用して、目的の血管の一貫した断面を目的の2ミリメートルセクションに取得し、各セクションを12.5倍の倍率で検査して、各サンプルに解剖および洗浄プロセス中に獲得した異常、分岐、バルブ、または表面的な損傷がないことを確認します。許容可能なスライスされた容器切片をKrebs Henzelライトバッファーに4°Cで最大30分間浸して保管します。次に、各サンプルの内腔にサポートをそっと挿入し、マイオグラフトのマイクロポジショナーを使用して張力を徐々に上げ、血管をマイオグラフトに取り付けます。
血管を2〜3グラムの読み取り値を超えて伸ばさないように注意してください。すべてのチャンバーが覆われたら、各チャンバーからバッファーを真空にし、5ミリリットルの新鮮なバッファーを補充します。すべての容器セクションが容器を入浴させた後、1.32モルの塩化カリウムの500マイクロリットルで1グラムの安定した休息張力を達成するために1.5時間平衡化しました。
塩化カリウムに対する最大反応が治療データの正規化に使用されるため、張力を手動で調整しないでください、張力がベースライン値の1グラムに戻るまで、15分間隔で溶液を新しいクレブスヘンツェルライトバッファーに交換します。.張力がベースラインに戻ったら、実験プロトコルに従って各チャンバーに25マイクロリットルのアリコートで標準液を追加します。最後の標準が追加されたら、9分間のタイマーを開始します。
インキュベーションの終わりに、処理を含む緩衝液をチャンバーから取り出し、各チャンバーに5ミリリットルの新鮮な緩衝液を追加します。次に、完了後に2.5分のタイマーを開始し、この2.5分のすすぎを繰り返します。2回目のすすぎの終わりにもう一度、チャンバーを吸引します。
次に、新しいバッファをもう一度追加した後、1分間のタイマーを開始して、2番目の標準エディションの開始までカウントダウンします。ここに示されている9分間のインキュベーション期間で観察されたように、治療の濃度が増加すると、組織の生存率を確認するため、実験終了時の塩化カリウムの添加が不可欠であるという基準に対する反応が徐々に増加します。このバイオアッセイは、小腸に栄養素を供給する血管や、吸収された栄養素を運び去る血管上の実験化合物の血管活性を評価するために使用できます。
例えば、この実験では、5回のヒドロキシトリプタミン治療後の動脈または静脈の収縮反応に差は見られませんでした。逆に、ノルエピネフリンの濃度の増加に対する腸間膜静脈の収縮反応は、腸間膜動脈の収縮反応よりも大きかった。この手順に続いて、研究者にとって特定の関心を有するアゴニストまたはアンタゴニストをバッファーに含めるように、メソッドをさらに変更することができる。
これにより、研究者は、非常に特異的な受容体の関与と、myo実験中に観察された血管応答の背後にあるメカニズムをよりよく理解することができます。このビデオを見れば、血管の収集、処理、分離の方法についてよく理解できるはずです。私の実験のために。
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本研究では、さまざまな化合物の血管活性を評価するために、ウシの腸間膜動脈および静脈の単離に焦点を当てています。マルチマイオグラフを用いることで、これらの化合物が血流や栄養吸収にどのように影響するかを評価することが可能です。
このin vitroバイオアッセイにより、ウシの腸間膜動脈および静脈における血管緊張に対する化合物の影響を早期段階で評価することが可能となり、胃腸薬理学におけるターゲットバリデーションおよびメカニズムのデリスキングを支援します。単一の個体から血管系を単離し、複数の化合物を同時にテストすることで、予測の信頼性を高め、リード化合物同定時におけるin vivoモデルへの依存度を低減します。このアプローチは、腸管血流や栄養吸収に影響を及ぼす血管活性の懸念事項や治療候補物質を評価する上で、トランスレーショナルな価値を提供します。
このバイオアッセイは、標的結合からリード化合物同定に至る創薬の連続的なプロセスに組み込まれており、生理学的に適切な状況下で、分子活性と組織レベルの血管反応を橋渡しする機能的リードアウトを提供します。