Name: デジタルマイクロフルイディクスにBioanalytesの輸送を最適化するための縮小液滴表面相互作用の活用 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-11-10T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 57 s
Description: 学ぶ デジタルマイクロフルイディクスにおける液滴輸送技術。ろうそくのすす被覆導電性基板と液体フルオロポリマーを用いた電場デウェッティングデバイスの作製法と、バイオアナライトの添加剤不要輸送を実現する手法を解説します。

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私たちは、財政支援のためのLindback財団、博士アレクサンダー·シドレンコとエルザチュー実り議論や技術支援のために、そしてCと支援のための教授のロバート·スミスに感謝虫アッセイ 。

注：以下の手順では、実験室の安全ガイドラインは、必ず従わなければなりません。特に重要なのは、高電圧（&gt; 500 V）および取り扱い化学物質を扱う安全である。 キャンドルすすと導電性基板の1.コーティング<ol><li>長方形に切断の銅金属（0.5mm厚75×43ミリメートル）。約20秒間水道水で洗って、約30秒間銅エッチング液に浸漬することにより、各銅基板をきれいにし、紙で乾燥させます。 注：以下の方法1を使用する場合は、マシンに収まるように75×25 mmの寸法を変更します。 </li><li>ほぼ均一なすすコーティングを得るために、30〜45秒間、銅基板の下に点灯してパラフィンろうそくをスイープ（約40μm厚）。火炎内部〜1センチメートルで基板を保管してください。脆弱なすす面に触れないでください。 </li></ol> 2.コーティングでスート層の保護注：スート層は非常に脆弱である、および保護のために被覆しなければならない。つの単純な代替案（メソッド1及び2）は、ここで提案されているが、より堅牢なプロトコルが現在開発中である。 <ol><li>方法1 <ol><li>金属蒸発器またはスパッタリング装置内に試料をロードします。システムの操作手順に従って、チャンバを排気し、スート層（150〜200ナノメートル）の上に金の制御された堆積を開始します。デバイスは、室温まで冷却してみましょう。 </li><li>化学フード内部10分間1-ドデカンチオール溶液（1％v / v、95％エタノール中で、ACS / USPグレード）、ディップコート金属化基板。その後、60°に近い角度でデバイスを保持し、静かにエタノールのみの数滴で表面を洗う。一晩、デバイスは、乾燥してみましょう。 </li></ol></li><li>方法2 <ol><li>基板はまだろうそくの炎から温かいうちに化学フード内で、すぐに煤を基板上に塗布した後、のいずれかの側にフッ素化された液体の一部の液滴を堆積し基板、および90°に近い角度に基板を傾けます。より多くの液滴を堆積し、それらが全体のすす表面上を転がるましょう。 注：液滴がスポットに当たるときは、煤がその領域から洗い流される。フッ素化された液体の液滴の広がりを可能な限りう。 </li><li>化学フード内部のホットプレート（15分間160℃）上の基板焼く。 </li><li>基板は、使用前に室温で一晩放置します。無期限に保管してください。 </li></ol></li></ol> 3.上部電極の作製（Abdelgawad らから適応。12） <ol><li>グラフィックデザインソフトウェアを使用して電極を描画します。各電極は、幅0.3mm、長さ2mmであり、電極間のギャップは0.3mmである。接点（下記参照、コネクタにスナップするため）との間のギャップは2.3ミリメートルです（ 図1）。 </li><li>モナーク形式に柔軟な銅積層（厚さ35μm）（3.87×7.5インチ）トリム。他のサイズを使用してIプリンタと互換性fを。カラープリンタの手差しトレイに積層体をロードします。 </li><li>銅板に印刷する場合、エッチング中に印刷されたパターンを保護する、銅基板上のブラックインクの密度の高い層を可能にするために「リッチブラック」、または「登録黒&quot;を使用してください（詳細についてはAbdelgawad ら 12を参照）ことを確認してください。プリント基板に完全に乾燥させ、一晩。 </li><li>化学フード内では、（40°C）、銅エッチング液を50 mlのビーカーを温める。ビーカー内の印刷された積層体を浸し、ゆっくり約10分間溶液中にそれを振る。エッチング時間は、銅エッチング溶液によって異なります。数分ごとには、腐食を確認し、パターンが無傷であるかどうかを確認。 </li><li>慎重に水で積層体を洗って、化学フード内でアセトン、エタノールでコーティングを除去。もう一度洗って、優しくペーパータオルで積層体を乾燥させます。 </li><li>慎重にGLAに電極を積層板を取り付けるSSスライド（75×25ミリメートル、厚さの〜1ミリメートル）、両面テープを使用した。エアポケットを避けてください。 </li><li>テープを使用して、電極にパーフルオロアルコキシPFAのフィルムを取り付けます。これは、液滴と電極の偶発的な接触を防止するのに役立つによる短絡の損傷上部電極。 </li></ol> 4.（図2の回路）電子インターフェース<ol><li>ユニバーサル回路基板にリレーやコンデンサCを半田付けします。 </li><li>電子回路用のブレッドボード上で10のリレードライバの残りの部分を組み立てます。 </li><li>各ワイヤは、制御基板内のチャネルに、運転者の入力をリレー。 </li><li>慎重にコネクタ（ 図3）に上部電極をスナップ。図に示すように、ワイヤそれぞれは、上部電極にドライバの出力を中継する。電気ノイズを最小化するために、リレーからの一対のワイヤ間に接地されたコネクタ接点があることに留意されたい。 注：コネクターは、Tを制御するために調節可能なプラットフォーム上に座っ彼は距離頂部と底部との間（0.1〜0.5ミリメートル）（スートコーティングされた）基板。 </li><li>その後2345年、3456 など ; 0.8秒、作動させるために1234年、すなわち運動（の方向に1電極をずらし、同時に4電極に高電圧（HV）アプリケーション（約0.8秒）のタイミングを制御するプログラムを使用してください。0.8グループごとに秒、その後、後方に、反対方向に移動するので、液滴も同様）。 </li></ol> 5.液滴可視化と取扱い<ol><li> CCDカメラと組み合わせ96X倍率アセンブリ - 液滴の動きを記録するために、24Xで構成されている可視化システムを使用する。 Sビデオを使用してカメラにビデオレコーダーを接続します。 </li><li> Cを含む4μlの滴をピペットですす被覆基板の底部にあるメディアでエレガンス 。 </li><li>液滴上記〜0.3ミリメートルに上部電極を持参してください。液滴がより簡単に操作のための、ちょうど第五電極直下の、真ん中に近くなければなりません。 </li><li>電子インターフェースと高電圧（500 V RMS）の電源をオンにし、それが移動を開始するまでの液滴に上部電極の距離を調整する。上部電極は、液滴を接触させてはいけません。 </li><li>電気パルスに応答したデバイス上で成功した液滴転送回数を記録することによって、データを収集する。成功した実験は、少なくとも700滴転送、 すなわち 、各電気パルスの後1転送することを特徴とする。 </li><li>滴が5から10パルスに応答して、もはや動かないまで、継続的にデータを収集する。 注：表面が劣化し始めると、動きが近い液滴に上部電極にすることによって回復することができた。 </li></ol>

<ol><li>Fair, R. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Digital+microfluidics%3A+is+a+true+lab-on-a-chip+possible%5BTitle%5D)+AND+%22Microfluid+Nanofluid%22%5BJournal%5D)">Digital microfluidics: is a true lab-on-a-chip possible.</a> Microfluid Nanofluid. 3 (3), 245-281 (2007).</li>
<li>Gupta, S., Alargova, R. G., Kilpatrick, P. K., Velev, O. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((On-Chip+Dielectrophoretic+Coassembly+of+Live+Cells+and+Particles+into+Responsive+Biomaterials%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">On-Chip Dielectrophoretic Coassembly of Live Cells and Particles into Responsive Biomaterials.</a> Langmuir. 26 (5), 3441-3452 (2009).</li>
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<li>Deng, X., Mammen, L., Butt, H. -J., Vollmer, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Candle+Soot+as+a+Template+for+a+Transparent+Robust+Superamphiphobic+Coating%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Candle Soot as a Template for a Transparent Robust Superamphiphobic Coating.</a> Science. 335, 67-70 (2011).</li>
<li>Kang, K. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((How+Electrostatic+Fields+Change+Contact+Angle+in+Electrowetting%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">How Electrostatic Fields Change Contact Angle in Electrowetting.</a> Langmuir. 18 (26), 10318-10322 (2002).</li>
<li>Abdelgawad, M., Watson, M. W. L., Young, E. W. K., Mudrik, J. M., Ungrin, M. D., Wheeler, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Soft+lithography%3A+masters+on+demand%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Soft lithography: masters on demand.</a> Lab Chip. 8 (8), 1379-1385 (2008).</li>
<li>Barbulovic-Nad, I., Yang, H., Park, P. S., Wheeler, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Digital+microfluidics+for+cell-based+assays%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Digital microfluidics for cell-based assays.</a> Lab Chip. 8 (4), 519-526 (2008).</li>
<li>Brenner, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+genetics+of+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">The genetics of Caenorhabditis elegans.</a> Genetics. 77 (1), 71-94 (1974).</li>
</ol>

著者らは、競合する金銭的利益はないと宣言している。

プロトコルの最も重要なステップは、直接、液滴を動かすの成功に関連付けられている、スート層の保護である。スート層（上記の方法1）を金属化することは、製造の成功の100％に近いことができる。しかし、最大動作時間は約10分である。おそらく、小滴のフラクションは、金属層の貫通孔煤湿潤される。フッ素化液体とのスート層をコーティングすることは、最も簡単かつ最速の代替であり、最小のリソースを必要とするが、製造された基板の作業（20分以内）のわずか40-50％ - とコーティングが均一ではない。実際には、スート層は、それは非常に脆弱であり、粘性フッ素系液体を容易に損害。現在、デバイスの動作時間を増加させるスート層を保護するために、より堅牢な代替案に取り組んでいる。しかしながら、一つの重要な側面は、表面への液滴の内容物の吸着である。以前は、9我々 は ATTタンパク質の量を定量化デバイスの動作中に表面に痛いと相関が継続運動およびウシ血清アルブミン（BSA）の減少した表面吸着の間に発見された。それにもかかわらず、生物付着は、複雑な問題であり、何人かの著者も、それが完全に効果を抑制することは不可能かもしれないことを...

液体を扱う装置の小型化は、「ラボオンチップ」のプラットフォームの開発のために最も重要である。この方向では、最後の二十年は、様々なアプリケーションで、マイクロフルイディクスの分野で大きな進歩を目撃した。1-5同封チャンネル（チャンネルマイクロフルイディクス）内の流体の輸送に対照的な、DMFは、電極のアレイ上の液滴を操作する。この技術の最も魅力的なメリットの一つは、流体を輸送するための可動部がないことで、動きを瞬時に電気信号をオフにすることによって停止される。 しかし、液滴の運動は、液滴の内容、ユニバーサル」ラボオンチップ」プラットフォームの確かに望ましくない特性に依存する。タンパク質や他の検体を含む液滴が移動不能になって、デバイス表面に固執する。間違いなく、これをDMFアプリケーションの適用範囲を広げるための主要な制限されている; 6-8不要な表面の汚れを最小にする選択肢は、潜在的に液滴コンテンツに影響を与える可能性が液滴またはその周囲に余分な化学種の添加を含む。 以前、我々のグループは、追加の添加剤（電界DW装置）なしで、DMF中の細胞およびタンパク質の輸送を可能にする装置を開発し9これは、液滴圧延を優先するデバイス·ジオメトリを有するキャンドルすす、10に基づいて、面を組み合わせることによって達成されたさらに、液滴表面相互作用を減少させる、液滴に上向きの力をもたらす。このアプローチでは、液滴の運動は、表面の濡れに関連付けられていない。11 以下に説明する詳細な方法の目的は、余分な添加剤を含まない、タンパク質、細胞、および生物全体を含む液滴を輸送することができるDMFデバイスを製造することである。フィールド-DWデバイスは、大部分が独立して液滴化学者の作業完全に制御プラットフォームへの道を開くRY。 ここでは、それを示す、本シミュレーションでは、デバイスの動作に必要な高電圧にもかかわらず、液滴の両端の電圧降下は、液滴内部bioanalytesにほとんど影響を示し、印加電圧のごく一部である。実際には、 線虫（C.エレガンス ）、生物学の研究のさまざまな目的で使用線虫を用いた予備試験では、電圧が印加されるとワームが乱さ泳ぐことを示している。

<table><tbody><tr><td>パラフィンキャンドル</td><td></td><td></td><td>任意のパラフィンキャンドル</td></tr><tr><td>スパッタリングシステム</td><td>デントン真空、ムーレスタウン、ニュージャージー州</td><td></td><td>スパッタコーター デスクV Auターゲットを装備。</td></tr><tr><td>1-ドデカンチオール</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>471364</td><td></td></tr><tr><td>テフロン</td><td>デュポン</td><td>AF-1600</td><td></td></tr><tr><td>フッ素 FC-40</td><td>シグマ-アルドリッチ</td><td>F9755</td><td>フッ素化液体: テフロン AF 樹脂を Fluorinert FC-40 で 1:100 (w/w) 調製して、疎水性コーティングを作成します。</td></tr><tr><td>グラフィックデザインソフト - Adobe Illustrator</td><td>Adobe Systems</td><td></td><td>他のソフトウェアも使用される場合があります。</td></tr><tr><td>銅ラミネート</td><td>デュポン</td><td>LF9110</td><td></td></tr><tr><td>レーザープリンター</td><td>ゼロックス</td><td>フェイザー 6360 または類似品</td><td>「リッチブラック」または「レジストレーションブラック」との互換性を確認してください(本文を参照)。</td></tr><tr><td>銅エッチング</td>液<td>、トランセン、</td><td>CE-100</td><td></td></tr><tr><td>、パーフルオロアルコキシ(PFA)、フィルム</td>、<td>McMaster-Carr</td><td>84955K22</td><td></td></tr>、<tr><td>ブレッドボード、</td><td>Allied Electronics</td><td>、70012450、または同様の</td>もの、<td>10個のドライバーを組み立てるのに十分な大きさ。</td></tr><tr><td>ユニバーサル回路基板</td><td>Allied Electronics</td><td>70219535または類似の</td><td></td></tr><tr><td>コネクタ</td><td>Allied Electronics</td><td>5145154-8または類似の</td><td></td></tr><tr><td>制御ボードおよび制御プログラム(LabViewソフトウェア)</td><td>National Instruments</td><td>NI-6229または類似の</td><td></td></tr><tr><td>高電圧アンプ</td><td>Trek</td><td>PZD700</td><td></td></tr><tr><td>コンデンサ CおよびC1、100 nF、60 V</td><td>Allied&nbsp;</td><td></td><td></td>8817183</tr><tr><td>トランジスタT、NPN</td><td>連合&nbsp;</td><td></td><td></td>9350289</tr><tr><td>ダイオードD、1N4007</td><td>連合&nbsp;</td><td></td><td></td>2660007</tr><tr><td>リレー&nbsp;</td><td>連合国&nbsp;</td><td></td><td></td>8862527</tr><tr><td>可視化システム</td><td>エドモンド・オプティクス</td><td>VZM 200i または類似</td><td>システム倍率 24X &#8211; 96X.日立KP-D20B 1/2 in CCDカラーカメラと組み合わされています。</td></tr><tr><td>レコーダー</td><td>Sony</td><td>GV-D1000 NTSCまたは同等品</td><td>カメラとSビデオケーブルで接続します。</td></tr><tr><td>シミュレーション</td><td>COMSOL Multiphysics</td><td>V. 4.4</td><td></td></tr></tbody></table>

デジタルマイクロフルイディクスにbioanalytesの輸送を最適化するための縮小液滴表面相互作用の活用

Taking Advantage of Reduced Droplet-surface Interaction to Optimize Transport of Bioanalytes in Digital Microfluidics

デジタルマイクロ流体工学(DMF)は、液滴を操作する技術であり、「ラボオンチップ」プラットフォームの開発のための有望な代替手段です。多くの場合、液滴の動きは表面の濡れに依存しており、電界の印加に直接関連しています。しかし、表面の相互作用により、動きは液滴の内容に依存するため、この手法の適用範囲は限られます。
この依存性を最小限に抑えるために、いくつかの代替案が提示されています。しかし、液滴やその周辺に化学種を追加することで、液滴部分と相互作用する可能性があります。この課題に対処するために、私たちのグループは最近、追加の添加物なしでDMF内の細胞とタンパク質を輸送できるField-DWデバイスを開発しました。
ここでは、モーションコントロールのための電子インターフェースを含む、デバイスの製造と操作のためのプロトコルが提供されています。また、デバイスを使用した研究も続けており、多細胞の比較的大きなモデル生物も、デバイスの操作に必要な電場の影響を受けずに輸送できることを示しています。

以前、我々は、DMF中のタンパク質の運動を可能にするためにフィールド-DWデバイスを使用している。特に、ウシ血清アルブミン（BSA）を有する液滴が以前に（添加剤なし）、他の著者によって報告されたものより2000倍高い濃度で移動することができる。これは滴と表面との間の相互作用の減少によるものであった; 図4は、蛍光標識したBSAを（。フレイレら参照実験の詳細については、9）を含む液滴を示しています。左側の最初の画像はススでコーティングされた表面の上に座って、液滴を示している。中央の、液滴圧延を生成するだけでなく、さらに表面との相互作用を減少させる、液滴に上向きの力を加える、電界の影響。のみ（ろうそく煤なし）フッ素系液体でコーティングされた表面であるDMF中で使用される一般的な代替案へのせん断コントラストを（右）に注意してください。下部コンタクトaの表面との強力な相互作用ngle、かなり頻繁に運動を妨げる。 ここでは、現在、より大きな生物を含む液滴を輸送する、これらのデバイスでテストを継続する（...

フィールドデウェッティングデバイス（Field-DW)の製造と操作のためのプロトコル、および液滴内容物に対する電界の影響に関する予備的研究について説明します。

デジタルマイクロフルイディクスにBioanalytesの輸送を最適化するための縮小液滴表面相互作用の活用

Digital microfluidics (DMF), a technique for manipulation of droplets, is a promising alternative for the development of &#8220;lab-on-a-chip&#8221; ...

この手順の全体的な目標は、添加剤を使用せずにバイオ分析物を含む液滴を輸送できるフィールドデウェッティングデバイスを製造することです。これは、最初に導電性基板をキャンドルのすすでコーティングすることによって達成されます。基板は、デバイスの底部電極として機能します。2番目のステップは、液体フッ素ポリマーを塗布してすす層を保護することです。次に、デバイスの上部電極を作製します。次に、上部と下部の電極を実験の電子機器に接続します。最後のステップは、電極間にサンプルを配置してデバイスをテストすることです。最終的に、結果は、フィールドデウェッティングデバイスが、少なくとも700パルスの各電気パルスに応答して継続的な液滴移動をサポートできることを示しています。エレクトロウェッティングのような既存の方法に対するこの技術の主な利点は、電界が濡れにつながらないことと、液滴輸送のための追加の添加剤が不要であることです。この技術の意味合いは、液滴の化学的性質に関係なく機能するチッププラットフォーム上の完全に自動化されたラボの開発にまで及び、手順をデモンストレーションするのは、私の研究室のマイケル・コウスキーとセレナの学部生の研究者です。最初のステップは、接地電極用の導電性基板を準備することです。この目的のために、銅板が長方形にカットされています。長方形は 75 mm x 43 mm、厚さは 0.5 mm です。準備ができて、基板を洗浄するための銅エッチングの容器。このビデオでは、1つの基質のみを使用したプロトコルに従います。基板をエッチングに約30秒間浸します。浸漬後、基材を回収し、流して洗浄します。その上に水を水道し、紙で乾かし、先に進む前に、下向きの表面にアクセスできるサポートに水平に置きます。このビデオでは、取り付けられたオープンリングを使用しています。液体フルオロポリマーとスポイトの混合物をアプリケーション用に用意します。適用されるすすを提供するためのパラフィンキャンドルを入手してください。火をつけ、銅基板の下にろうそくを掃いて続けます。炎の上部を基板の底から約1センチメートル下に維持します。キャンドルを30〜45秒間スイープし続けます。すすの表面に触れないように注意してください。基板をすすでコーティングした後、キャンドルをすぐに取り外して消します。ピンセットを使用して基板をつかみ、回転させてすすで覆われた面を露出させます。まだ温かいうちに、スポイトを使用して液体フルオロポリマーの液滴を端に堆積させ、すす層の乱れを特定します。液滴を塗布したら、基板を傾けてほぼ垂直にします。次に、さらに液滴を堆積させ、すすの表面全体に広がって転がらせます。可能な限り。続けて、基板を摂氏160度に保持されたホットプレートに持っていきます。また、ケミカルフードの内側に、基板のすす面を上に向けてホットプレートに置き、15分間焼きます。15分後、基板をホットプレートから取り出し、室温で一晩放置してから、底面電極として使用します。基板は、接地電極が使用できるようになったら無期限に保管できます。次のステップは、上部電極を準備することです。このビデオでは、文献のプロトコルに従って製造された電極を使用しています。電極のデザインは、この点に到達するためにエッチングおよびクリーニングされた薄い銅ラミネートに印刷されました。10個の電極はそれぞれ幅2mm、幅0.3mmです。電極は、75mm×25mm、厚さ約1mmのスライドガラスに取り付けられます。スライドの一方の端に両面テープを貼り、エアポケットが入らないようにします。次に、電極が端に近づくように、ラミネートをスライドに慎重に取り付けます。次に、スライドの幅についてFluor al coyフィルムをカットします。フィルムを電極の上に置いて、偶発的な短絡を防ぎます。テープで貼り付けます。電極は、電子インターフェースで使用できるようになりました。上部と下部の両方の電極を実験装置に持って行き、フィールドデウェッティングデバイスを完成させます。実験装置では、下部電極は電気的に接地されています。その上では、上部の電極が高さ調節可能なコネクタを介してリレーに接続されています。マイクロ流体デバイスは、隣接する電極間で液滴を移動させるコンピュータプログラムで制御します。この実験では、マイクロ流体デバイス内の液滴の動きを可視化します。CCDカメラと組み合わせた24 96倍率のアセンブリを使用してください。Sビデオを使用してビデオレコーダーをカメラに接続します。この時点で、この場合の実験用のサンプル、Cエレガンスと4マイクロリットルの液滴のミディアムピペットを取得します。すすでコーティングされた下部電極に液滴を置き、上部電極の中央にくるようにします。次に、上部電極の位置を調整して、液滴の約0.3ミリメートル上にくるようにします。電子インターフェースと高電圧がオンの状態で、液滴が動き始めるまで上部電極の高さを調整します。電極が液滴に触れないようにしてください。液滴の動きが安定したら、液滴が5〜10パルスに反応して動かなくなるまでカメラで録画を開始します。このビデオは、フィールドデュエットデバイスの電極間でのCエルガンの媒体への転写が成功したことを示しています。蛍光タグ付きウシ血清アルブミンまたはBSAを用いた以前の研究は、サンプルと左の基質との間の相互作用を実証するのに役立ちます。BSAは、フッ素化液体のみを使用して表面の右側とは対照的に、すすでコーティングされた表面にあります。BSAサンプルは、強い表面相互作用を示しています。このビデオを見た後、あなたは結婚式のデバイスを製造する方法、感じる方法をよく理解しているはずです。ラボの安全ガイドラインに従うことを忘れないでください。

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この記事では、液滴の細胞のカプセル化効率を提供するために液滴マイクロ流体デバイスへのピペット...

ピペット チップを用いた液滴マイクロ流体プラットフォームに播種細胞メソッド

エレクトロウェッティングベースのデジタルマイクロ流体は、マイクロリットル体積液滴の見かけの接触角の電圧駆動変化を利用して、その操作を容易にする技術です。これを機能化された磁気ビーズと組み合わせることで、酵素結合免疫測定アッセイ(ELISA)を用いた複数の実験ユニット操作を組み合わせて、サンプル調製と病原体の同定を可能にします。...

酵素結合免疫吸着アッセイ用エレクトロウェッティングベースのデジタルマイクロ流体プラットフォーム

デジタルマイクロ流体に関する複数の実験を行い、実践的な経験を得ることができる教育キットを記述します。...

科学教育のためのデジタルマイクロ流体ドロップレット作動に基づく多目的なキット

油中水滴アッセイは、分析化学、酵素進化、単一細胞分析に有用であるが、通常は液滴を形成するためにマイクロ流体が必要である。ここでは、液滴アッセイを行うマイクロ流体フリーアプローチである粒子鋳型乳化について述べている。...

粒子テンプレート化乳化により、マイクロ流体フリーのドロップレットアッセイが可能

ここでは、油中水型エマルジョン(プラグ)でコンビナトリアルライブラリを産生するためのポリジメチルシロキサン(PDMS)ベースの二重層デバイスの作製について説明します。プラグ製造の自動化に必要なハードウェアとソフトウェアがプロトコルに詳述されており、蛍光プラグの定量的ライブラリの製造も実証されています。...

コンビナトリアルプラグ製造のための二層マイクロ流体デバイス

学ぶ デジタルマイクロフルイディクスにおける液滴輸送技術。ろうそくのすす被覆導電性基板と液体フルオロポリマーを用いた電場デウェッティングデバイスの作製法と、バイオアナライトの添加剤不要輸送を実現する手法を解説します。

デジタルマイクロフルイディクスにBioanalytesの輸送を最適化するための縮小液滴表面相互作用の活用

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