Name: マウスの胚感覚軸索投影のホールマウントイメージング (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-12-09T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 37 s
Description: 学ぶ マウス胚の感覚軸索成長を評価するホールマウントイメージング法。固定・染色・透明化により、深部の傷害受容軸索投影を可視化し、遺伝子改変マウスの発達神経生物学研究に活用できます。

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著者は、洞察力に富んだ議論や提案のためのTrkA taulacZマウスと博士アネットマルクス博士ルイライハルトに感謝したいと思います。この作品はバーク財団だけでなく、ホワイトホール財団研究助成金2010-08-61、ライフ財団（WFL-US-028/14）のための翼から研究助成金からスタートアップ資金によってサポートされていましたから、ZB1-1102-1を付与クリストファー＆ダナ·リーブ財団、国立眼研究所から、JZへの助成金1R01EY022409と3R01EY022409-01S1。 KJOはゴールドスミスの仲間です。

注：すべての手順は、実験動物の使用とケアのためのNIHガイドに準拠しています。動物プロトコルは、ワイルコーネル医科大学のIACUCによって承認された。 1.組織調製<ol><li>頸椎脱臼15によって時限妊娠女性を安楽死させる。冷リン酸緩衝生理食塩水（PBS）を充填した6ウェルディッシュのウェルで個々に時限妊娠雌場所胚からE18胚 - 胚E16を解剖。 </li><li>冷PBSで胚を洗浄します。 </li><li>その後の遺伝子型判定のための事前準備されたプロテイナーゼK溶液中で胚と場所の羊膜のわずかな部分を削除します。羊膜が失われた場合あるいは、胚の尾の先端の一部を除去し、プロテイナーゼK溶液に入れ</li><li>虫ピン（側面当たり少なくとも100）を使用して、すべての胚の周りの皮膚に穴を突く。 </li><li> PBSを除去し、ゆっくりと新鮮な2％パラホルムアルデヒド（PFA）を追加し、ウェルにpHが7.4、。 </li><li>ゆっくりと4℃で2時間振る。 </li><li> PBSで2回胚をすすぎ、染色まで4℃でPBS中に保管してください。 </li></ol> 2.ジェノタイピング<ol><li>製造業者の説明書に従って、プロテイナーゼK混合物中の羊膜または胚の尾部を浸す。 </li><li> 10分間56℃でインキュベートする。 </li><li>市販のDNA精製キットを用いてDNAを抽出する。 </li><li>遺伝子特異的なセンスおよびアンチセンスプライマー（10μM）の各0.5μlの、2μLのdNTPミックスとそれを組み合わせる、ゲノムDNA溶液に精製合計200μLの0.5μLを取る（のdATP 2.5mMの、dCTP、dGTPおよびdTTP） 、0.2μlのTaqポリメラーゼ（5U /μL）と2μlのPCR緩衝液（10倍）は、20μlの総体積にH 2 Oを追加します。 注：プライマー配列は以下のとおりである（ 表1）： のTrkA：TrkA_F：GCG GGC GCC GCC、GCG ATG、TrkA_R：GAA GCC GCC TGC GCG GCT CTG CCA GGG TG。 PCRのFRAGメントの長さ：400塩基対（bp）の。 バックス：In5R：GTT GAC CAG AGT GGC GTA GG、Ex5F：TGA TCA GAA CCA TCA TG、のNeoR：CCG CTT CCA TTG CTC AGC GG。 PCR断片の長さ：野生型、304塩基対;のBaxヌル、507 bpの。 TauLacZ：lacZup：ACA ACG TCG TGA GTG GGA AAA、lacZdown：ATC AAC ATT AAA TGT GAG CGA G。 PCR断片の長さ：360塩基対。 </li><li> TrkAのための以下のプログラムでPCRを実行します。72℃で30秒：68℃、ステップ4で20秒：ステップ3 95℃、10秒：ステップ1：ステップ2 95℃、1分。 40サイクル4 - を繰り返して、2を繰り返します。 <ol><li> LacZおよびBaxのために、以下のプログラムを用いてPCRを実行します。手順1：1分95℃​​で、ステップ2：10秒95℃、ステップ3：1分54℃、ステップ4：72で1分35サイクル4 - °Cを繰り返し、2を繰り返します。 </li></ol></li><li> DNAラダーのレーンで20分間、1×トリス - 酢酸-EDTA緩衝液中、100Vで2％アガロースゲル上で実行PCRサンプルフラグメントの長さを評価する。 </li><li>野生型のTrkA、Tの存在のための胚を分析RKA-tauLacZおよびBaxヌル対立遺伝子。実験的な胚の遺伝子型は、TrkAのtaulacZ / WTです：バックス- / -およびTrkAのtaulacZ / taulacZ：バックス- / - 、実験的な質問に応じて。 tauLacZレポーターを欠いている胚は軸索染色について陰性であることになるので、染色プロセスを較正するために陰性対照として役立つことができる。 </li></ol> 3.胚染色<ol><li> 3.8 -セクション3.2で下記のようにいくつかの変更を加えてLacZ染色のための市販のキットを使用してください。ここでは、ミリポアキットを使用。 </li><li>室温で穏やかに揺れ、少なくとも1時間緩衝液A中の胚を浸し。 </li><li>直接室温で静かに揺れ、少なくとも15分間、緩衝液Bで胚を浸す。 </li><li> 37℃での胚がバッファーA / Bであるが、前加温組織ベースのソリューション。胚あたりの組織塩基溶液の5ミリリットルを使用してください。 </li><li>胚は緩衝液A / Bにある間、新鮮な5-BRを準備100％のジメチルスルホキシド（DMSO）中に40mg / mlの濃度でomo-が4-クロロ-3-インドリルα-D-ガラクトピラノシド（X-galで）。 </li><li> 1 mg / mlの濃度で予め温め組織ベース溶液中にX-galで希釈し、ガラスシンチレーションバイアルにX-galを/組織ベース混合物を5ml加える。 </li><li> X-galを/組織ベースの混合物を含むガラスシンチレーションバイアルに胚を移す。パラフィルムで蓋を密封し、37℃で一晩インキュベート、ブルーステインの存在をチェックする。 </li><li>新鮮な4％PFA、pHが7.4とPostfixの胚。静かに、4℃で4時間振る。 </li><li>冷たいPBSで2回の胚をすすぐ。 </li></ol> 4.組織脱水とクリア<ol><li>ガラスバイアル中で振盪し、室温で30分間、50％メタノール/ 50％PBS混合物中の場所胚。 </li><li>ガラスバイアル中で振盪し、室温で30分間、75％メタノール/ 25％PBSで脱水し続ける。 </li><li> P 10パーセント/ 90％メタノール中で脱水し続けるガラスバイアル中で振盪し、室温で30分間、BS、。 </li><li>ガラスバイアル中で振盪し、室温で30分間（2×）、100％メタノール中で脱水し続ける。 </li><li> 1（V：V）ベンゾイルアルコール及びベンゾイル安息香酸の混合胚は、脱水されていますが、1を準備します。 注：ベンゾイルアルコール、ベンゾイル安息香酸は有毒である。 </li><li> 1：1で胚を浸す（v：v）によって精製した100％メタノールの混合物：15分間、100％BABB。 BABBはプラスチックを溶解するので、唯一のガラスを使用しています。 </li><li>完全に組織をクリアするとクリア胚におけるX-gal染色を視覚化するために100パーセントBABBで胚を浸し。 注：できるだけ早く画像のX-gal染色は、時間をかけてフェードインしますので。 </li></ol> 5.ホールマウントイメージング<ol><li>金属ピンセットを用いて写真撮影のために適切な角度で、100パーセントBABBに浸漬胚を、安定化させる。ライトアップアンダー光光源の組み合わせを用いて照明する。 </li><li>解剖顕微鏡で画像を取得するデジタルカメラを装備。 0.5ミリメートル離れてZ軸に沿って連続する5つの焦点面に複数の明視野エクスポージャーを取る。露光時間とFストップは、照明とカメラのスペックに応じて変化し、それぞれのセットアップのために最適化する必要があるかもしれません。 </li><li>オーバーレイ画像を処理し、フォトモンタージュを生成するために、標準的な画像処理ソフトウェアを使用してください。 </li></ol>

<ol><li>Verze, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cutaneous+innervation+in+hereditary+sensory+and+autonomic+neuropathy+type+IV%5BTitle%5D)+AND+%22Neurology%22%5BJournal%5D)">Cutaneous innervation in hereditary sensory and autonomic neuropathy type IV.</a> Neurology. 55, 126-128 (2000).</li>
<li>Sethna, N. F., Meier, P. M., Zurakowski, D., Berde, C. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cutaneous+sensory+abnormalities+in+children+and+adolescents+with+complex+regional+pain+syndromes%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Cutaneous sensory abnormalities in children and adolescents with complex regional pain syndromes.</a> Pain. 131, 153-161 (2007).</li>
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<li>Knudson, C. M., Tung, K. S., Tourtellotte, W. G., Brown, G. A., Korsmeyer, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bax-deficient+mice+with+lymphoid+hyperplasia+and+male+germ+cell+death%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Bax-deficient mice with lymphoid hyperplasia and male germ cell death.</a> Science. 270 (5233), 96-99 (1995).</li>
<li>Lentz, S. I., Knudson, C. M., Korsmeyer, S. J., Snider, W. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neurotrophins+support+the+development+of+diverse+sensory+axon+morphologies%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Neurotrophins support the development of diverse sensory axon morphologies.</a> J. Neurosci. 19, 1038-1048 (1999).</li>
<li>Patel, T. D., Jackman, A., Rice, F. L., Kucera, J., Snider, W. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+sensory+neurons+in+the+absence+of+NGF%2FTrkA+signaling+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Development of sensory neurons in the absence of NGF/TrkA signaling in vivo.</a> Neuron. 25, 345-357 (2000).</li>
<li>Donovan, K. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((B-RAF+kinase+drives+developmental+axon+growth+and+promotes+axon+regeneration+in+the+injured+mature+CNS%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+experimental+medicine%22%5BJournal%5D)">B-RAF kinase drives developmental axon growth and promotes axon regeneration in the injured mature CNS.</a> The Journal of experimental medicine. 211, 801-814 (2014).</li>
<li>Mercer, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+endogenous+oncogenic+V600EB-raf+induces+proliferation+and+developmental+defects+in+mice+and+transformation+of+primary+fibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+research%22%5BJournal%5D)">Expression of endogenous oncogenic V600EB-raf induces proliferation and developmental defects in mice and transformation of primary fibroblasts.</a> Cancer research. 65, 11493-11500 (2005).</li>
<li>Tronche, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disruption+of+the+glucocorticoid+receptor+gene+in+the+nervous+system+results+in+reduced+anxiety%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+genetics%22%5BJournal%5D)">Disruption of the glucocorticoid receptor gene in the nervous system results in reduced anxiety.</a> Nature genetics. 23, 99-103 (1999).</li>
<li>Madisen, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+toolbox+of+Cre-dependent+optogenetic+transgenic+mice+for+light-induced+activation+and+silencing%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">A toolbox of Cre-dependent optogenetic transgenic mice for light-induced activation and silencing.</a> Nat Neurosci. 15, 793-802 (2012).</li>
<li>Feng, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+Neuronal+Subsets+in+Transgenic+Mice+Expressing+Multiple+Spectral+Variants+of+GFP%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Imaging Neuronal Subsets in Transgenic Mice Expressing Multiple Spectral Variants of GFP.</a> Neuron. 28, 41-51 (2000).</li>
<li>Schmidt, H., Rathjen, F. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DiI-labeling+of+DRG+neurons+to+study+axonal+branching+in+a+whole+mount+preparation+of+mouse+embryonic+spinal+cord%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">DiI-labeling of DRG neurons to study axonal branching in a whole mount preparation of mouse embryonic spinal cord.</a> J Vis Exp. , (2011).</li>
</ol>

著者らは、競合する利害関係は存在しないと宣言している。

胚のTrkA taulacZマウスの上述のX-gal染色手順はそのまま固定胚における長距離軸索突起の迅速で詳細な視覚化を可能にする。 Baxのヌルバックグラウンドのため、これらのマウスは軸索成長とニューロンの生存の両方に寄与し得るシグナル伝達機構のプロービングが可能になります。興味のあるトランスジェニックまたはノックアウトマウスと交配すると、軸索の表現型の総合的な評価を可能にすると、より詳細な方法で軸索成長のシグナル伝達を調べるために将来の実験のためとして有用な指針を提供することができます。in vivoでの軸索成長の研究のための主要な課題は、組織を準備する時間であるセクションとは、いずれかの遺伝子操作によって複数の方法で影響を受ける可能性が増大する軸索の複雑な表現型を評価する。 TrkAのtaulacZ / taulacZ：バックス- / -ラインは、遺伝子の完全な効果を評価することができる末梢侵害受容器軸索の開発に興味のある。 <p class="j...

正確な神経回路網の確立は、神経系の機能性に不可欠な複雑な発達過程である。このプロセスの乱れは、ヒトの神経系疾患1-3に関与している神経細胞の機能障害を引き起こす。哺乳動物における軸索成長および標的神経支配の下にある分子メカニズムを研究するために、我々は2つ​​の遺伝的に改変されたマウス系統の組み合わせを使用して感覚ニューロンのTrkA発現の軸索の軌道を視覚化するためのプロトコルを開発した。 のTrkAは、神経成長因子NGFに対する受容体であり、侵害受容感覚ニューロン4の機能的マーカーである。 TrkAのは非常に初期の開発中に侵害受容ニューロンに発現し、NGF依存ニューロンの生存、軸索成長、樹枝状分岐とターゲット神経支配5-9を媒介する。 TrkAのtaulacZマウスでは、野生型のTrkA遺伝子taulacZ式 cで置換されている推定上のTrkA陽性ニューロンの軸索の形態11染色のβ-gal（X-galで）によって可視化することができるようassette 10、。ヘテロ接合のTrkA taulacZ / WTラインを使用して、我々は調節またはin vivoでの感覚求心性突出部の発展を妨害する可能性のある要因を調べることができます。 また、TrkAの発現は、したがって、NGF / TrkAのシグナル伝達の非存在下でのメカニズムを促進する軸索成長を評価するために使用することができるホモ接合性のTrkA taulacZ / taulacZのマウスには存在しない。侵害受容ニューロンは、NGF / TrkAのだけでなく、軸索成長のためのシグナリングに依存するためではなく、生存のために、我々は、それ以外の細胞死からそれらを救出、胚DRGニューロンにおけるアポトーシスを阻害するために、プロアポトーシスBax遺伝子を欠いている、別のマウス系統を使用するTrkAレセプターシグナル伝達の非存在下で観察。 バックス- / -バックグラウンド12は、このように molecuが可能に特に軸索成長7-9,13-15に影響を与えるシグナル伝達経路のLAR解剖。 TrkAのでは- / - ：バックス- / -マウスは、DRGニューロンは生き残るが、皮膚の感覚求心性神経支配は完全14,15を廃止している。私たちは、選択的に軸索投射の発展にそれぞれの貢献を決定するシグナル伝達経路を活性化することができる。 バックス- / -背景： - - /またはTrkA taulacZ / WTバックス：この方法の有用性は、異なる遺伝的改変はTrkAのtaulacZ / taulacZに飼育されているときに、軸索成長表現型の変化の評価を可能にすることである。

<table><tbody><tr><td>PFA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P6418</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Life Tech</td><td>10010-023</td><td></td></tr><tr><td>ティッシュリンス液 A</td><td>ミリポア</td><td>BG-6-B</td><td></td></tr><tr><td>ティッシュリンス液 B</td><td>ミリポア</td><td>BG-7-B</td><td></td></tr><tr><td>ティッシュステインベース液</td><td>ミリポア</td><td>BG-8-C</td><td></td></tr><tr><td>X-gal</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>B4252</td><td></td></tr><tr><td>ガラスシンチアレーションバイアル</td><td>キンブルチェイス</td><td>74500-20</td><td></td></tr><tr><td>インキュベーター</td><td>ラブライン</td><td>モデル 120</td><td></td></tr><tr><td>昆虫ピン</td><td>FST</td><td>26000-30</td><td></td></tr><tr><td>DMSO</td><td>シグマ-アルドリッチ</td><td>D8418</td><td></td></tr><tr><td>6ウェルディッシュ</td><td>USA Scientific</td><td>CC7672-7506</td><td></td></tr><tr><td>プライマー</td><td>IDT</td><td>カスタムDNAプライマー</td><td></td></tr><tr><td>タカラdNTP混合物</td><td>タカラ</td><td>4030</td><td></td></tr><tr><td>タカラLAバッファー</td><td>タカラ</td><td>RR002A</td><td></td></tr><tr><td>タカラLAタク</td><td>タカラ</td><td>RR002A</td><td></td></tr><tr><td>PCRマシン</td><td>バイオ・ラッド</td><td>DNAエンジン ダイアド</td><td></td></tr><tr><td>ベンジルアルコール</td><td>Σ-Aldrich</td><td>B-1042</td><td></td></tr><tr><td>安息香酸ベンジル</td><td>Σ-Aldrich</td><td>B-6630</td><td></td></tr><tr><td>解剖顕微鏡</td><td>ライカ</td><td>M205A</td><td></td></tr><tr><td>カメラ</td><td>ライカ</td><td>DFC310FX</td><td></td></tr><tr><td>リングライト</td><td>ライカ&nbsp;</td><td>MEB110</td><td></td></tr><tr><td>Photoshop</td>の<td>Adobe</td><td>Photoshop 4.0</td><td></td></tr></tbody></table>

マウスの胚感覚軸索投影のホールマウントイメージング

Whole-mount Imaging of Mouse Embryo Sensory Axon Projections

胚における完全長の神経突起を可視化は、神経回路網の開発方法哺乳類の理解を得ることが不可欠である。ここでは、 その場でいくつかの遺伝子操作されたマウス系統を使用してそれらの表現型特性を評価するために、後根神経節（DRG）軸索突起のサブセットを標識するための方法を記載する。 TrkAの陽性ニューロンは、疼痛信号の送信専用の侵害受容ニューロンである。私たちは、そのままマウス胚内のすべてのTrkAの陽性末梢軸索の軌跡にラベルを付けるのTrkA taulacZマウスラインを利用しています。私たちは、さらに独立してニューロンの生存上の遺伝子操作の可能性のある影響の成長関連の質問を評価するために、本 ​​質的に神経細胞アポトーシスを廃止Baxのヌルバックグラウンド上にあるTrkA taulacZラインを繁殖。その後、関心の遺伝子改変マウスをTrkAのtaulと交配させるACZ / Baxの空行、その後、本明細書に記載の技術を用いた研究の準備ができている。このプレゼンテーションでは、マウスの繁殖計画の詳細については、解剖時のジェノタイピング、組織調製、染色および全体のマウント準備の完全長軸索軌道の可視化を可能にするためにクリアが含まれています。

TrkAのWT / taulacZの遺伝子型：たBax - / -およびTrkAのtaulacZ / taulacZ：たBax - / -胚は、明確に、標準的なPCR遺伝子型同定（ 図1）によって決定することができる。 X-gal染色ディスプレイは、従来、染色された胚（ 図2、図3a）に皮下末梢軸索アーバーを詳述し、そして組織のクリア後の胚全体（ 図3b、4）。 私たちは、TrkAのWT / taulacZを交配させています：バックス- / -ニューロン特異的ネスチンプロモーター17の制御下構成的キナーゼ活性化B-RAF（V600E）突然変異（LSL-kaBraf 16）を有するマウスを持つ行が、取得しLSL- kaBraf：TrkAのtaulacZ / taulacZ：バックス<su...

ここでは、遺伝子操作マウスの開発における感覚軸索成長表現型を評価する効果的な方法として、全動物の末梢侵害受容器軸索突起のイメージングのために胎児マウスを遺伝子型決定し、染色し、準備するための最適化されたプロトコルを提示します。

The visualization of full-length neuronal projections in embryos is essential to gain an understanding of how mammalian neuronal networks develop. Here we ...

次の実験の全体的な目標は、発育中の胎児マウスにおける感覚軸索成長表現型を効果的に評価することです。これは、まず、タウの緩いレポーターマウスを適切に繁殖させ、ジェノタイピングを行うことで達成され、第2のステップとして下流の染色アッセイを実施することができます。マウスの胚は固定され、染色されているため、動物全体の感覚軸索の投影を視覚化できます。次に、胚を脱水して透明化し、他の方法では見えない深部にある軸索の突起を完全に視覚化します。結果は、これらの方法が胚性侵害受容性軸索成長表現型を迅速に評価する効果的な手段であることを示しています。この方法は、トラックを使用して Tau Lae レポーター、 この方法は、研究者が関心のある遺伝子をトラック a tlac Z の背景に交差させ、感覚軸索の成長表現型の変化をスクリーニングできるようにすることで、感覚軸索成長の分野における重要な質問に答えるのに役立ちます。私たちの技術の意味は、科学者が私たちの技術を使用して、既知の先天性変異が感覚軸索の成長表現型を引き起こす可能性があるかどうかをテストできるという意味で、治療にまで及びます。テキストプロトコルで参照されているように、子宮頸部脱臼によって安楽死させられた時限妊娠女性を開始するには、時限妊娠女性から胚E 16〜E 18胚を解剖し、次に胚を冷たいリン酸緩衝生理食塩水またはPBSで満たされた6ウェル皿のウェルに個別に配置します。胚を冷たいPBSですすいだ後、胚の羊膜のごく一部を取り出し、DNA精製キットまたはその後のジェノタイピングから調製したプロテイナーゼK溶液に入れます。あるいは、羊膜が失われた場合は、胚の尾の先端のごく一部を取り出し、プロテイナーゼK溶液に入れます。次に、昆虫のピンを使用して、片側に約100個の穴を開けて、胚の周りの皮膚全体に突っ込みます。PBSを取り出し、摂氏4度で2時間静かに振とうした後、新鮮な2%パラホルムアルデヒドまたはPFA pH 7.4をウェルにゆっくりと加えます。PBSで胚を2回すすぎ、ジェノタイピングのために染色するまで摂氏4度でPBSに保存します。製造元の指示に従って、羊膜または胚の尾部をプロテイナーゼK混合物に浸します。56°Cで10分間インキュベートします。市販のDNA精製キットを用いてDNAを抽出した後、精製されたゲノムDNA溶液の合計200マイクロリットルのうち0.5マイクロリットルを使用して、テキストプロトコルに記載されているようにPCR反応を調製し、その後、そこに詳述されているようにPCRプログラムを実行する。PCRに続いて、PCRサンプルを2%arosゲルで100ボルトで100ボルトで、1つのエクストラアセテートEDTAバッファーで20分間実行します。DNAラダーを保持するレーンを含めて、フラグメントの長さを評価し、ルーチ

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

Source: Liau, E. S. et al. マウス胚における運動軸索ナビゲーションの可視化とマウス胚における軸索樹状化の定量化 J. Vis. Exp. (2018).

ライトシート蛍光顕微鏡による運動ニューロンの投射と軸索分岐の可視化

出典:Jeong, S. Visualization of the Axonal projection pattern of the Embryonic motor neurons in Drosophila.J. Vis. Exp.

ショウジョウバエにおける胚性運動ニューロンの軸索投影パターンの可視化

神経前駆有糸分裂は、神経新生の重要なパラメータである。神経前駆糸分裂の我々の理解の多くは、固定された組織の分析に基づいている。胚性脳スライス内のライブイメージングは​​、制御された環境で、高い時間·空間分解能で有糸分裂を評価するための汎用的な手法である。...

発生中のマウス胚性皮質における有糸分裂のライブイメージング

このような毛包と神経終末など -   - 空間構成の特徴的なパターンを示す哺乳動物の皮膚は、構造体の多様な配列が含まれています。フラットマウントとして皮膚を分析して皮膚構造の全層の高解像度画像を生成するためにこの組織の2次元形状を利用する。...

マウス皮膚や毛包パターニングおよび感覚軸索形態の解析への応用のフラットマウントイメージング

この研究は、後期第16段階ショウジョウバエメラノガスター胚の運動ニューロン投影を視覚化するための標準的な免疫組織化学法を詳述している。 FasII抗体で染色された固定胚のフィレット調製物は、神経発達中にモーター軸索経路探索および標的認識に必要とされる遺伝子を特徴付ける強力なツールを提供する。...

胎児運動ニューロンの軸索突起パターンの視覚化<em&gt;ショウジョウバエ</em

ここでは、運動ニューロンの投影と形質転換Hb9::GFPマウス胚における軸索分枝を可視化するためのプロトコルについて述べる。運動ニューロンの免疫染色後は、後続の定量分析のため光シート蛍光顕微鏡画像の胚を使用されます。このプロトコルは、中枢神経系の他のニューロンのナビゲーション...

モーター軸索ナビゲーションと光シート蛍光顕微鏡を用いたマウス胚における軸索分枝の定量化の可視化

ここで組織をクリア、蛍光標識と、それによって、大脳新皮質の細胞型の三次元組織の可視化を可能にするマウスの脳組織の大規模なイメージング手順をについて説明します。...

マウス大脳皮質における細胞組織の大規模三次元イメージング

透過型電子顕微鏡と子宮内で伝達の組み合わせは、開発中に神経系の細かい微細構造の形態学的変化を研究するための強力なアプローチです。これらの併用は、神経可塑性の地形表現に関しての基になる構造の詳細の変更への深い洞察をことができます。...

子宮内開発のマウスの脳および脊髄の伝達の後の微細構造神経可塑性パラメーターの評価

このプロトコルは、DNA/DOTAP混合物を1日齢のXenopus...

キセノプス・レービス胚における眼芽へのDNAのマイクロインジェクションとGFPのイメージングは、無傷で光学軸軸樹園を発現し、生きているキセノプス・タマジャクシ

大脳皮質の発達中、ニューロンとグリア細胞は、心室の内側を覆う心室ゾーンで発生し、脳表面に向かって移動します。このプロセスには多くの遺伝子が関与しています。このプロトコルでは、移動するニューロンとグリア前駆細胞のタイムラプスイメージングの技術を紹介します。...

マウス胚脳切片における移動するニューロンとグリア前駆細胞のタイムラプスイメージング

本研究は、マウスの前足の皮膚における低閾値機械受容体(LTMR)軸索末端の構造を可視化するための 生体内...

マウス皮膚における触覚感覚軸索形態のバイタル2光子イメージング

学ぶ マウス胚の感覚軸索成長を評価するホールマウントイメージング法。固定・染色・透明化により、深部の傷害受容軸索投影を可視化し、遺伝子改変マウスの発達神経生物学研究に活用できます。

マウスの胚感覚軸索投影のホールマウントイメージング

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