Name: 神経細胞型の表面のためのフローサイトメトリーのプロトコルおよび細胞内抗原解析 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-12-18T15:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 5 s
Description: 学ぶ神経細胞の表面抗原と細胞内抗原をフローサイトメトリーで解析する方法。固定・透過処理を用いた多色ラベリングにより、神経細胞サブ集団の共発現を詳細に分析できます。

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私たちの研究プログラムは、ドイツ研究財団（DFG）のエミー・ネータープログラム、助成金PR1132/3-1を通じて資金提供を受けています。フライブルク大学のミュラー・ファーネンベルク財団によるさらなる支援に感謝します。この研究は、ドイツ研究財団(GSC-4、シュペーマン大学院)のエクセレンスイニシアチブによって部分的に支援されました。

1.神経細胞の回収<ol><li>顕微鏡による評価： <ol><li>実験を開始する前に、明視野または位相差顕微鏡による培養物の状態を確認。 注：解剖から得られた一次神経組織ではあるが、原則的に、均等に影響を受けやすいサイトメトリー分析14,28を流れるように、プロトコルの焦点はインビトロ神経細胞システムから得られた細胞であることに注意してください。 </li></ol></li><li>収穫細胞7： <ol><li> RT（ 例えば 、T75フラスコに5 mlの6ウェルプレートにウェル当たり3ミリリットル、または10 mlの優しく/ Ca 2+のMgを有する接着細胞の皿/フラスコを洗浄2+を含まないリン酸緩衝生理食塩水（PBS） 10cmディッシュ）。 注：PBSをプロトコル全体で使用さは、Mg 2+ / Ca 2+の自由である。 <ol><li>ビデオ例えば、80％のコンフルエンシーでSH-SY5Y神経芽細胞腫細胞のT75フラスコを使用する。例ここで追加の洗浄工程を適用しますかなりの破片が皿の中の存在である。 </li><li>血清アルブミンを含むPBS 48を 、パーコール、またはフィコール49遠心分離勾配および/ ​​または市販のビーズ50,51との洗浄を考慮してください。ミエリンおよび他の脂質または他の汚染物質の除去は、成人原発組織源が使用されている場合は特に重要である。 </li></ol></li><li>組織培養容器の表面全体を覆​​って適切な音量で予め温めておいた（37℃）トリプシン置換を加える。 注：あるいは、のAccutaseまたは他の酵素消化のオプションを検討してください。この重要な工程は、負（7参照）表面エピトープの発現に影響を及ぼし得る。 </li><li>細胞は切り離すことができるように（細胞型に応じて）を5分間2 - 37℃で皿/フラスコをインキュベートする。静かに細胞を取り除くために、血清学的ピペットで組織培養容器またはフラッシュをタップします。 （このように、後の工程での細胞の損失および凝固を引き起こす可能性があります）消化の上は避けてください。 </li><li> Q二回フローバッファー（PBS中の2％FBS）の体積を添加することによりトリプシン交換uenchし、15mlコニカルチューブ中で細胞を集める。 </li><li>単一細胞懸濁液を調製するために - （1,000μlの100）または5ミリリットルの血清学的ピペットを穏やかにマイクロピペットを用いて細胞懸濁液を粉砕する。 </li><li> 25℃で5分間、220×gで細胞を集める。慎重に後ろにペレットを残して上清を吸引除去する。 </li><li>フローバッファの適切な体積でペレットを再懸濁ペレット（ 例えば、サイズに応じて、SH-SY5Y細胞の一つコンフルエントT75フラスコのための典型的な収率は、少なくとも10×10 6個の細胞を、ケース内のセルであるフロー緩衝液5ml）中に再懸濁する。 注： - 100μmのメッシュ大きなチャンクまたは凝固が認められた場合、30を介してフィルタリングする。 </li></ol></li><li> 52を数えるセル： <ol><li> trは、体積で定義された比率で微量遠心管に細胞懸濁液の少量のアリコートを移し、希釈血球計または自動細胞計数システムへの転送前にypan青または代替可能性染料。 </li><li> （CFSE標識に進む場合）0.1％BSAでフローバッファーまたはPBSの適切な体積を添加することによって、1×10 6生細胞/ mlの濃度の細胞懸濁液を希釈する。 NOTE：ヨウ化プロピジウム、7-アミノD、アネキシンV及び市販の固定可能な生存率アッセイキットは、細胞の生存率を評価するための代替オプションを表す。また、先に記載53のようにカスパーゼ3蛍光を用いてアポトーシスアッセイを使用することができる。蛍光チャネルは、すべてのサンプルに含まれている場合、後続のステップのためのオプションが制限される場合があり、これらの試薬により「占有」されます。 </li></ol></li></ol> CFSEを使用して2細胞内の色素の標識（図3） <ol><li>容易に使用することができ、所望のストック濃度にCFSE希釈する。 注：これらの実験のためのストック濃度0.01ミリモルを用いた。経験的にCFSEの最適な使用濃度を決定します。 </li><li> 0.1μMの最終濃度のために細胞（ セクション1.3.2、PBS + 0.1％BSA中1×10 6細胞/ mlの濃度）の1mlあたり0.01 mMのCFSE溶液10μlを追加します。簡単に言えば渦はよく混合する。 注：ここで使用CFSE濃度は、一般的に増殖アッセイに適用されるものよりも約10倍低い、染料のため、細胞毒性は最小限に抑えられます。我々は、細胞の生存率にマイナスの効果を観察しないでください。 </li><li>絶えず振盪（200rpm）しながら室温で5分間インキュベートする。光から保護します。 </li><li>チューブに流れバッファの5ボリュームを追加することで染料を消光。 RTで5分間94×gで遠心分離する。 </li><li>背後にペレットを残して上澄みを捨てる。フロー·バッファの5ボリュームで細胞を再懸濁する。 </li><li> RTで5分間94×gで遠心分離する。 / 1×10 6細胞の濃度で上清を、フロー緩衝液中の再懸濁細胞を捨てる<html>ミリリットル。 </li><li>染色された細胞懸濁液に興味のある非染色細胞の数と同じ数を追加します。抗原染色プロトコル（ 第3節 ） を表面に進みます。 </li></ol><img alt="図3" src="/files/ftp_upload/52241/52241fig3highres.jpg" width="700" /> CFSE色素標識を介して2つの細胞株の間の差動CD表面抗原発現の図3の検出。SH-SY5Y神経芽腫細胞を非標識BJ線維芽細胞と比較して、後続の識別のためCFSEで予め標識されている。表面マーカーCD24またはCD54（APCへの結合の両方）との混合試料（右パネル）の共染色は、細胞株によりCFSE染色（;矢頭= BJ線維芽細胞の矢印= SH-SY5Y）に容易に識別可能であることを示している。 SH-SY5Y細胞の大多数は、CD24ではないCD54（ICAM-1）を発現する。これとは対照的に、BJ線維芽細胞（CFSE陰性）は、CD54陽性であるが、CD24のための大部分はネガティブ。「https://www.jove.com/files/ftp_upload/52241/52241fig3highres.jpg &quot;ターゲット=&quot; _空白 &quot;&gt;この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。 3.細胞表面染色<ol><li>サンプルおよびクリティカルコントロールを含むラベルチューブ（ 表1参照）。 </li></ol><table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td>チューブなし。 </td><td>サンプル名</td><td>抗原フォア</td><td>希釈</td></tr><tr><td> 1 </td><td>非染色細胞</td><td> - </td><td></td></tr><tr><td> 2 </td><td>シングルステンド</td><td> CD24-APC </td><td>午前1時50分</td></tr><tr><td> 3 </td><td>シングルステンド</td><td> TUJ1-アレクサフルオロ488 </td><td> 1：2000 </td></tr><tr><td> 4 </td><td>ステンドダブル</td><td> CD24-APC </td><td>午前1時50分</td></tr><tr><td></td><td></td><td> TUJ1-アレクサフルオロ488 </td><td> 1：2000 </td></tr><tr><td> 5 </td><td>シングルステンド</td><td>セカンダリのみ：アレクサフルオロ488 </td><td> 1：2000 </td></tr></tbody></table> 典型的なフローサイトメトリー実験に含まれるチューブの表1. Lイスト。表には、このビデオの記事で説明した共染色実験に必要なサンプル管の最小セットを示しています。理想的な実験は、得られた結果の正確な解釈のために必要なすべての（正、負、ならびに補償制御）の制御を含む必要がある。 <ol start="2"><li> （ セクション2.7または1.3.2からの）各1.5ミリリットルマイクロ遠心チューブに100μlの細胞懸濁液を追加します。 注：必ず、0.1×10 6細胞の最小値は、細胞懸濁液100μlあたり存在していることを確認します。 </li><li>適切な希釈でサンプルにフォアコンジュゲートした抗体を追加します。 注：実験前に各抗体の作業希釈を決定します。リストOについては、表2を参照してくださいF神経表面抗原。 </li></ol><table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td>抗原</td><td>細胞型</td><td>リファレンス</td></tr><tr><td> CD15 </td><td>神経幹細胞</td><td> [28、67] </td></tr><tr><td> CD24 </td><td>神経細胞</td><td> [28、68] </td></tr><tr><td> CD29 </td><td>神経幹細胞</td><td> [28、69、70] </td></tr><tr><td> CD44 </td><td>グリア細胞</td><td> [25] </td></tr><tr><td>たCD49f </td><td>神経幹細胞</td><td> [38] </td></tr><tr><td> CD56（NCAM） </td><td>神経細胞</td><td> [71] </td></tr><tr><td> CD133 </td><td>神経幹細胞</td><td> [27] </td></tr><tr><td> CD184 </td><td>神経幹細胞およびグリア細胞</td><td> [25] </td></tr><tr><td> CD200 </td><td>神経細胞</td><td> [38] </td></tr><tr><td> CD271 </td><td>神経堤幹細胞</td><tD&gt; [25] </td></tr><tr><td> A2B5 </td><td>グリア細胞</td><td> [31] </td></tr><tr><td>コリン</td><td>ドーパミン作動性前駆体</td><td> [35、36] </td></tr><tr><td> FORSE1 </td><td>神経幹細胞（NSC） </td><td> [72] </td></tr><tr><td> GLAST </td><td>グリア細胞</td><td> [33] </td></tr><tr><td> NG2 </td><td>グリア細胞</td><td> [32] </td></tr></tbody></table> 神経表面抗原の表2の選択。この表は、神経系統を特徴づけるために使用される表面抗原の増加パネルを例示するために、様々な神経細胞タイプによって発現されることが見出され、表面エピトープのリストを提供する。この選択が完了し、これらのマーカーのほとんどは、他の神経および非神経細胞の範囲で表現されていることをほど遠いであることに注意してください。したがって、いくつかのマーカーの組み合わせは、より良い示さ神経サブセットを定義し、単離するために必要とされる。 <ol stアート= &quot;4&quot;&gt; <li>暗闇の中でオービタルシェーカー（200 rpm）で30分間インキュベートする。 </li><li>フロー緩衝液洗浄<ol><li>チューブに流れ緩衝液1mlを追加します。 4℃で4分間380×gで遠心し。 </li><li>背後にペレットを残して上澄みを捨てる。 </li></ol></li><li>再び洗浄ステップを繰り返します。 </li><li> 2回目の洗浄の後、上清をデカントし、100μlの最終容量に流れバッファー中で細胞を再懸濁する。 </li><li>フローサイトメトリー分析のためのサンプルを使用してください。また、 第4節と5に進みます。 注：細胞が選別し、培養後のFACSに戻されるべきである場合（ つまり、固定または透過処理せずに実行可能な細胞懸濁液）は、収穫、染色および分析ステップの間に無菌技術を適用します。 </li></ol> 4.固定および透過38 <ol><li>パラホルムアルデヒド（PFA）を使用して固定。 <ol><li> PBS中の2％PFAを含む固定バッファを準備します。 <br/&gt;注：PFAは人間や環境に有害である。適切な個人保護具を使用して、地域の規制に従って廃棄物を捨てる。 </li><li>細胞懸濁液100μlに固定緩衝液500μlを追加。 </li><li>暗闇の中でオービタルシェーカー（100 rpm）の上で室温で15分間チューブをインキュベートします。 </li></ol></li><li> PBS洗浄。 <ol><li>チューブに1mlのPBSを追加します。 4℃で3分間380×gで遠心し。 </li><li>チューブに約100μlのを残して上清をデカント/捨てる。 </li></ol></li><li> Tween-20を持つ透過化： <ol><li> PBS中の0.7％のTween-20を含む透過化バッファを準備します。 </li><li>細胞懸濁液100μlに透過化緩衝液500μlを追加。 </li><li>暗闇の中でオービタルシェーカー（100 rpm）の上で室温で15分間チューブをインキュベートします。 </li></ol></li><li> （4.2節で説明したように）をPBSで細胞を1回洗浄し、チューブのcoから上清を除去mpletely、背後にある唯一のペレットを残す。 </li></ol> 5.細胞内抗原染色38（図4） <ol><li>一次抗体溶液の調製： <ol><li> 1％ウシ血清アルブミン、10％血清（ 例えば、正常ロバ又はヤギ血清）および0.5％Tween-20をPBS中に含有する希釈緩衝液中の一次抗体を希釈する。 注：二次抗体がで提起された種に応じて、使用する血清を選択してください。 </li><li>また、メーカーの指示に従って、一次抗体のゼノンフルオレセイン標識を使用しています。 <ol><li>適切な希釈（20μlの≤総量）でPBS中に一次抗体1μgのを準備します。 </li><li>抗体溶液にゼノンフルオレセインのIgG標識試薬（成分A）の5μlを添加する。 </li><li> RTで5分間混合物をインキュベートする。 </li><li>反応混合物にゼノンブロッキング試薬（成分B）の5μlを添加する。 </li><li>インキュベートRTで5分間混合。 30分以内にサンプルに抗体を適用します。 </li></ol></li></ol></li><li>一次抗体染色： <ol><li>細胞ペレットに一次抗体溶液100μlを加え、穏やかに混合するために粉砕する。 </li><li>また、適切な希釈で細胞懸濁液にゼノンのフルオレセイン標識抗体を追加。 </li><li>光から保護し、オービタルシェーカー（200rpm）し、上で室温で30分間チューブをインキュベートします。 （セクション4.2で説明したように）、PBSで細胞を1回洗浄し背後にある唯一のペレットを残して、完全にチューブから上清を除去。 </li></ol></li><li> （ゼノンフルオレセイン標識抗体には必要ありません）二次抗体染色： <ol><li>適切な濃度でPBS中に二次抗体を希釈する。 </li><li>細胞ペレットに二次抗体溶液100μlを加え、穏やかに混合するために粉砕する。暗闇の中でシェーカー（200 rpm）の上で、室温で30分間チューブをインキュベートします。 </li></ol></li><li> （4.2節で説明したように）PBSでサンプルを2回洗浄します。 </li><li>フロー緩衝液で1回洗浄する（3.5節を参照）。 </li><li>フロー·バッファの約150μlの細胞を再懸濁し、フローサイトメーターで分析する。 </li></ol><img alt="図4" src="/files/ftp_upload/52241/52241fig4highres.jpg" width="700" /> 表面および細胞内タンパク質の、図4の共染色。フローサイトメトリーのデータの一次+二次抗体ベースの表面染色と組み合わせたゼノンフルオレセインベースの細胞内染色の対の間の比較を例示する。 y軸（左上象限）及びx軸（右下象限）の排他的陽性はそれぞれ、MAP2およびCD24について染色した細胞を示す。共染色した後、共有MAP2及びCD24の発現は、右上象限（右パネル）に見ることができる。使用しての比較アレクサフルオロ488。MAP2標識利回り同様の結果のためのゼノンフルオレセイン（下）対（上AF488） <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52241/52241fig4highres.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> 6.フローサイトメトリー分析<ol><li>信号検出のための適切なフィルターを、フローサイトメーターを用いて染色プロトコルの完了直後にフローサイトメトリー分析を行う。 FL-1（30分の533）、FL-2（40分の585）、およびFL-4（25分の675）バンドパスフィルタと488nmの青と640nmの赤色レーザーを使用してください。 </li><li>破片および死細胞を除く前方および側方散乱に基づいて主ゲートを設定します。 </li><li>未染色標本とシングルステンドコントロールを使用して、スペクトルの重複のための補償に基づく≤0.5％に表面と細胞内抗原のための蛍光ゲートを設定します。 </li></ol>

著者らは、潜在的な利益相反はないと宣言している。

ここに提示されたプロトコルがよくヒト幹細胞由来の神経細胞培養のために確立されているが、同様の一次組織または神経細胞株を含む他の神経細胞供給源に適用することができる。胚のソースに加えて、神経幹細胞または前駆細胞は、成人の脳27の神経原性領域から抽出することができる。また、フローサイトメトリーおよびFACSが成熟ニューロン54、アストロ33、ミクログリア55、オリゴデンドロサイト56、または出生後の脳組織からの内皮細胞57を含む様々な細胞集団を定量分析し、単離するために利用することができる。 手順のいずれかの過剰なフローサイトメトリーの読み出しに影響を与える散乱特性の大規模な変化につながる可能性に関係なく、ソースの、固定および透過化のための最適条件は、実験的に各細胞型について決定される必要がある。プロトコルの効率もSTABILに依存表面分子のityが透過処理を投稿。これは、異なる表面エピトープは、種々の程度の手順の一部として細胞操作によって影響され得ること...

フローサイトメトリーを広範囲に固有の散乱特性、細胞表面抗原の発現、および他の蛍光パラメーター1-3を介して細胞集団を定義するために、免疫学、血液学および腫瘍学に ​​おいて利用されてきた。血液系統の開発および疾患に私達の洞察は、その初期の実装4,5の後にこの方法論の連続洗練の有意な程度の結果である。フローサイトメトリーの定量的および全体的な分析的な潜在意識の高まりは、最近、幹細胞研究におけるそのより広範な使用を奨励している短い時間枠6と同様に深い進歩を可能にすることができる。しかし、特に神経集団を分析し、単離するためのフローサイトメトリーの適用は、長い挑戦として認識されている。当然、懸濁液中に存在する造血細胞とは対照的に、神経細胞型は、典型的には、グリアおよび様々Oを含んでいてもよい過度に複雑なソースから収穫するTHER周囲の細胞ならびにプロセス有利子ニューロンの複雑なネットワーク。したがって、神経生物学、毎日研究ルーチンでの完全な電位にフローサイトメトリーの多様性を実現するために至っていない。しかし、神経生物学における分析レパートリーの貴重な要素とみなすことができる限り、生存単一細胞懸濁液を生成することができる（およびプロトコルは、その目的の7のために考案し、最適化されている）として、フローサイトメトリーおよび蛍光活性化細胞選別（FACS） 8-11。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/52241/52241fig1highres.jpg" width="600" /> 。流体工学、光学、エレクトロニクス： フローサイトメトリー分析フローサイトメーターの構成要素の、図1の原理フローサイトメーターは、3つの主要な系を含む。 （一次組織から、またはインビトロ培養中で調製）懸濁液中の細胞の層流をシースfluiによって達成される流体力学経由dは、その中心コアにサンプルを限定フォーカシング。光学部品は、適切な検出器に信号を導く細胞および光学フィルタのストリームを照らすレーザーで構成されている。検出された光信号は、電気信号に変換し、その後、コンピュータで処理し、データ分析とゲーティングのためのモニター上で可視化されている<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52241/52241fig1highres.jpg" target="_blank">。この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> サイトメーターのビルディングブロックを含む根本的なファンダメンタルズの少なくとも基本的な理解から、フローサイトメトリー法利益のユーザーは、（レビューのために12,13を参照してください。また、 図1を参照）。レーザビームは、次に、「単一のファイル」次々レーザビームを通過懸濁液中の細胞を含み、流体力学的に集束流体の流れと交差する。 interceptiこの呼掛け点からの光の散乱レーザ結果と細胞（またはそのことについては、他の粒子）の上。散乱光は、レーザー方向（粒の大きさに関連付けられた前方散乱）、ならびにその方向に垂直な（;粒子/細胞のgranulosityを反映する側方散乱）を連続して検出することができる。これらの前述の散乱特性は、（またまたは細胞破片、空気の泡、 など ）、非標識試料は、一般的に最初のゲーティングのために使用される側方散乱プロット変量前方散乱の信号（イベント）が生成されますなぜ特異的標識を必要としない。適切なレーザ及び対応する励起および発光スペクトルのために特定のフィルタを使用することにより、細胞は、その陽性、強度のレベル、または蛍光マーカーの非存在について分析することができる。フローサイトメトリー用途の大部分は、細胞表面抗原を介して特性評価に焦点を当てている。造血lineagとは異なり、eは、神経系統は、表面エピトープの発現パターン5によれば以下広く定義されて残っている。表面抗原を利用することの利点の一つは、生きている細胞は、FACSなどのパラダイムを選別細胞を施すことができることである。これとは対照的に、細胞内抗原の染色は、生細胞を必要とする下流の適用を排除する、エピトープ - 抗体相互作用を媒介するために固定および透過手順が必要です。注目すべきは、このようなアプローチは、まだ数多くの定量的アッセイ14だけでなく、RNAとタンパク質発現の15のための下流の分析を可能にします。血液学、免疫学および腫瘍学は、多くの場合、特定の部分集団16を定義するために連携してダース以上のマーカーを使用してきた。さらに、質量フローサイトメトリーまたはCyTOFは現在30のパラメータを同時に17,18まで分析することができる。 神経幹細胞の用途、ならびに初代培養物における細胞の不均一性のために14,19,20体外は一般的な現象で21-23です。興味のある標的集団を代表していない細胞は、実験的な読み出し24,25のための潜在的交絡因子を具現化。好都合には、不均一な細胞懸濁液中に存在する異なる細胞のサブセットは、これらの様々な集団を定義するために利用することができる抗原の発現プロファイル、（既知の、またはまだ解読する）別個に耐える。したがって、細胞の不均一性を解決する際に重要な役割を果たし、それによって、（in vitroアッセイ 、細胞療法における ）生物医学的適用を容易にし、最も関連性のサブセット24,26に着目して定量的な読み出しを最適化することができるフローサイトメトリー。種々の表面抗原の組み合わせは、特定の神経細胞型の定量および単離を可能にするために、過去数年にわたって確認されている。これは、神経幹細胞27、NSCの単離のためのCD15 / CD24 / CD29表面抗原の組み合わせの濃縮にCD133を含み、差異他の署名29,30の中で、神経およびグリアサブセット25を分離するためのテッドニューロンと神経堤細胞28またはCD15 / CD24 / CD44 / CD184 / CD271。ニューロンを超えて、グリアマーカーは、A2B5 31、CD44 25、NG2 32とGLAST 33が含まれています。最近の出版物は、パーキンソン細胞移植におけるドーパミン作動性前駆体を濃縮するために、中脳底板前駆体マーカーコリン34,35を36パラダイムに利用している。 CD分子は、マーカーが、細胞-細胞相互作用および細胞外マトリックス分子および成長因子37からの合図に応答する細胞の能力の機能的に関連するメディエーターだけではない。さらに、神経系統の発達を特徴づけるために、コンビナトリアルCD抗原の武器を強化する一つの戦略は、目的の特定の細胞型のためのCD抗原の組み合わせをスクリーニングし、定義することが知られている細胞内マーカーを使用することである。我々は最近、このようなアプローチを悪用し、CD4を特定した9F - / CD200神経に分化誘導された多能性幹細胞培養系38からのニューロンのサブセットを豊かにするための新しいアプローチとして高い組合せ発現パターン。ここでは、表面染色および細胞内染色は、フローサイトメトリーにより神経細胞の亜集団を定義するために同時に使用することができる後者のプロトコル（およびその任意の変形）を議論する。 <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/52241/52241fig2highres.jpg" width="300" /> 実験プロトコルオプションの図2のフロー図は図は、プロトコルに関与する主要な工程の概略図を示している。任意の工程（CFSE色素または細胞内抗原の標識は）ライトグレーのボックスで示されます。収穫後、細胞表面染色の前に、神経細胞懸濁液の生存度および細胞数を評価することが不可欠である。陽性と同様にネガティブコントロールは、対象のサンプルに加えて、含まれる必要がある。サンプルは、フローサイトメトリー分析によって分析および/ ​​または細胞ソーティングパラダイムで使用することができる。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52241/52241fig2highres.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> 我々は以前に細胞内染色38二次抗体と組み合わせて一次抗体を使用しているが、我々は今、それによって細胞操作39のステップを減らす、わずかな変化などの蛍光Fab断片（Zenon標識）を介して一次抗体の非共有結合標識を導入する。また、プロトコルの汎用性のさらなる例としては、抗原染色表面の前スクシンイミジルエステル（CFSE）のカルボキシフルオレセインずつの実験のサブセットの任意の標識を使用する。このようなCFSEプレ標識は（2つの細胞株または実験条件の即時の直接比較を可能にする対 CFSE標識。分散またはインキュベーション時間の微妙な違いを削減し、抗体を保存する、単一のサンプルチューブ内で）標識されていない。 CFSEは、一般的に増殖41,42及びバーコード実験43,44において、細胞追跡40のために使用される確立された蛍光色素である。最後に、ここで説明収穫とラベル付けの手順は実行し、実際のソート·ステップ（FACS、免疫磁気細胞分離またはイムノ）は原則的に、このプロトコルの一部ではありませんが、降伏抗原表面受けることができるサンプルまたは細胞内のラベルベースの​​並べ替えのアプリケーション15 25,28。 この記事では、我々はを目指し：として細胞内のCFSE色素標識工程41,45を提示し 、細胞内の標的の検出のためのプロトコルとしてだけでなく、組み合わせた表面と細胞内の抗原解析38をまとめ、実行可能な表面抗原染色プロトコル25,28をまとめるcomのための実験的なオプションparativeは、神経細胞集団の解析、およびサイトメトリー分析を（適切なコントロール13,46、戦略およびデータプレゼンテーション47をゲート制御）流れるようにアプローチをまとめる。

<table ><tbody ><tr ><td >DMEM/F12 (1:1) (Dulbecco's Modified Eagle Medium/Nutrient Mixture F-12)</td><td ><a href="http://www.lifetechnologies.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Life Technologies</a ></td><td >11330057</td><td ></td></tr><tr ><td >DPBS (Ca&lt;sup&gt;2+&lt;/sup&gt; Mg&lt;sup&gt;2+&lt;/sup&gt; 不含)</td><td ><a href="http://www.lifetechnologies.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Life Technologies</a ></td><td >14190169</td><td ></td></tr><tr ><td >ウシ胎児血清、認定品、EU承認、南米産 (FBS)</td><td ><a href="http://www.lifetechnologies.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Life Technologies</a ></td><td >10270-106</td><td ></td></tr><tr ><td >MEM 非必須アミノ酸 (100x)</td><td ><a href="http://www.lifetechnologies.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Life Technologies</a ></td><td >11140035</td><td ></td></tr><tr ><td >TrypLE Express</td><td ><a href="http://www.lifetechnologies.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Life Technologies</a ></td><td >12604013</td><td ></td></tr><tr ><td >トリパンブルー溶液、0.4%</td><td ><a href="http://www.lifetechnologies.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Life Technologies</a ></td><td >15250061</td><td ></td></tr><tr ><td >パラホルムアルデヒド</td><td ><a href="http://www.carlroth.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Carl Roth</a ></td><td >335.3</td><td ></td></tr><tr ><td >ウシ血清アルブミン (BSA) 分画 V</td><td ><a href="http://www.gelifesciences.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> PAA Laboratories, Coelbe</a ></td><td >K41-001</td><td ></td></tr><tr ><td >Tween-20 洗浄剤</td><td ><a href="http://www.merckmillipore.de" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Calbiochem</a ></td><td >655205</td><td ></td></tr><tr ><td >カルボキシフルオレセイン・スクシンイミジルエステル (CFSE)</td><td ><a href="http://www.ebioscience.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> eBioscience</a ></td><td >65-0850-84</td><td ></td></tr><tr ><td >DMSO</td><td ><a href="http://www.applichem.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> AppliChem</a ></td><td >A1584</td><td ></td></tr><tr ><td >ボトルトップフィルター express plus 0.22 &amp;micro;m, 250 ml</td><td ><a href="http://www.millipore.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Millipore</a ></td><td >SCGPU02RE</td><td ></td></tr><tr ><td >細胞培養処理済みフラスコ (T 25)</td><td ><a href="http://www.thermoscientific.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> NUNC</a ></td><td >156367</td><td ></td></tr><tr ><td >細胞培養処理済みフラスコ (T 75)</td><td ><a href="http://www.thermoscientific.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> NUNC</a ></td><td >156499</td><td ></td></tr><tr ><td >コニカルチューブ (15 ml)</td><td ><a href="http://www.greinerbioone.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Greiner Bio-One</a ></td><td >188271</td><td ></td></tr><tr ><td >コニカルチューブ (50 ml)</td><td ><a href="http://www.greinerbioone.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Greiner Bio-One</a ></td><td >227261</td><td ></td></tr><tr ><td >パステールピペット、ガラス製 (150 mm)</td><td ><a href="http://www.stein-labortechnik.de" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> STEIN Labortechnik, Remchingen</a ></td><td >S03710150</td><td ></td></tr><tr ><td >ピペットチップ (0.1-10 &amp;micro;l)</td><td ><a href="http://www.corning.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Corning</a ></td><td >4125</td><td ></td></tr><tr ><td >ピペットチップ (1-200 &amp;micro;l)</td><td ><a href="http://www.corning.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Corning</a ></td><td >4126</td><td ></td></tr><tr ><td >ピペットチップ (100-1000 &amp;micro;l)</td><td ><a href="http://www.corning.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Corning</a ></td><td >4129</td><td ></td></tr><tr ><td >セロロジカルピペット, 5 ml</td><td ><a href="http://www.corning.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Corning</a ></td><td >4051</td><td ></td></tr><tr ><td >セロロジカルピペット, 10 ml</td><td ><a href="http://www.corning.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Corning</a ></td><td >4101</td><td ></td></tr><tr ><td >セロロジカルピペット, 25 ml</td><td ><a href="http://www.corning.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Corning</a ></td><td >4251</td><td ></td></tr><tr ><td >マイクロセントリフュージチューブ (0.5 ml)</td><td ><a href="http://www.sarstedt.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Sarstedt</a ></td><td >72,699</td><td ></td></tr><tr ><td >マイクロセントリフュージチューブ (1.5 ml)</td><td ><a href="http://www.greinerbioone.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Greiner Bio-One</a ></td><td >616201</td><td ></td></tr><tr ><td >マイクロセントリフュージチューブ (2.0 ml)</td><td ><a href="http://www.sarstedt.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Sarstedt</a ></td><td >72,695,500</td><td ></td></tr><tr ><td >抗ヒト CD24 APC モノクローナル抗体</td><td ><a href="http://www.ebioscience.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> eBioscience</a ></td><td >17-0247-42</td><td >使用希釈倍率 1:50</td></tr><tr ><td >抗ヒト CD54 PE モノクローナル抗体</td><td ><a href="http://www.ebioscience.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> eBioscience</a ></td><td >12-0549-42</td><td >使用希釈倍率 1:50</td></tr><tr ><td >Neuronal Class III &amp;beta;-Tubulin (Tuj1) ポリクローナル抗体</td><td ><a href="http://www.covance.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Covance</a ></td><td >PRB-435P</td><td >使用希釈倍率 1:2,000</td></tr><tr ><td >Alexa Fluor 488 Donkey anti Rabbit</td><td ><a href="http://www.lifetechnologies.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Life Technologies</a ></td><td >A21206</td><td >使用希釈倍率 1:2,000</td></tr><tr ><td >Zenon&amp;reg; Fluorescein Rabbit IgG Labeling Kit</td><td ><a href="http://www.lifetechnologies.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Life Technologies</a ></td><td >Z-25342</td><td ></td></tr><tr ><td >Neubauer改良型血球計数器</td><td ><a href="http://www.marienfeld-superior.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Marienfeld</a ></td><td >0640010</td><td ></td></tr><tr ><td >ボルテックスミキサー</td><td ><a href="http://www.scientificindustries.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Scientific Industries</a ></td><td >G560E</td><td ></td></tr><tr ><td >Thermomixer comfort</td><td ><a href="http://www.eppendorf.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Eppendorf</a ></td><td >5355 000.001</td><td ></td></tr><tr ><td >Accuri C6 フローサイトメーター</td><td ><a href="http://www.bdbiosciences.com/instruments/accuri" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Becton Dickinson (BD)</a ></td><td >653118</td><td ></td></tr><tr ><td >冷却マイクロセントリフュージ, PerfectSpin 24 R</td><td ><a href="http://www.peqlab.de" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Peqlab</a ></td><td >91-PSPIN-24R</td><td ></td></tr><tr ><td >オービタルシェーカー, Unimax 1010</td><td ><a href="http://www.heidolph-instruments.de" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Heidolph</a ></td><td >543-12310-00</td><td ></td></tr><tr ><td >冷却遠心機, Rotanta 96 RC</td><td ><a href="http://www.hettichlab.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Hettich</a ></td><td >4480-50</td><td ></td></tr><tr ><td >クラスII生物安全キャビネット Safe 2020</td><td ><a href="http://www.thermoscientific.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Thermo Scientific</a ></td><td >51026640</td><td ></td></tr><tr ><td >CO&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt; インキュベーター, Heracell 240i</td><td ><a href="http://www.thermoscientific.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Thermo Scientific</a ></td><td >51026331</td><td ></td></tr><tr ><td >真空システム, Vacusafe comfort</td><td ><a href="http://www.integra-biosciences.de" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Integra Biosciences</a ></td><td >158320</td><td ></td></tr><tr ><td >顕微鏡, Axiovert 40 CFL</td><td ><a href="http://www.zeiss.de" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Zeiss</a ></td><td >451212</td><td ></td></tr><tr ><td >ピペットコントローラー, accu-jet pro</td><td ><a href="http://www.brand.de" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Brand</a ></td><td >26303</td><td ></td></tr><tr ><td >マイクロピペット, Pipetman neo P20N (2-20 &amp;micro;l)</td><td ><a href="http://www.gilson.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Gilson</a ></td><td >F144563</td><td ></td></tr><tr ><td >マイクロピペット, Pipetman neo P200N (20-200 &amp;micro;l)</td><td ><a href="http://www.gilson.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Gilson</a ></td><td >F144565</td><td ></td></tr><tr ><td >マイクロピペット, Pipetman neo P1000N (100-1000 &amp;micro;l)</td><td ><a href="http://www.gilson.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Gilson</a ></td><td >F144566</td><td ></td></tr></tbody></table>

神経細胞型の表面のためのフローサイトメトリーのプロトコルおよび細胞内抗原解析

Flow Cytometry Protocols for Surface and Intracellular Antigen Analyses of Neural Cell Types

フローサイトメトリーは、免疫学、血液学、腫瘍学における細胞集団を定義するために広く使用されてきました。ここでは、神経細胞型における分化(CD)表面抗原および細胞内抗原のクラスターのフローサイトメトリー解析のためのプロトコルについて詳しく説明します。方法論的手順の段階的な説明には、神経in vitro培養物の回収、オプションのカルボキシフルオレセインスクシンイミジルエステル(CFSE)標識ステップ、その後の標識CD抗体(CD24、CD54など)による表面抗原染色、その後の一次/二次抗体または蛍光標識Fabフラグメントによる細胞内抗原検出(ゼノン標識)が含まれます。このビデオでは、最も重要な手順を示しています。さらに、実験計画の原則、重要なコントロールの包含、およびフローサイトメトリー解析の基本(ターゲット集団の特定とデブリの排除、ゲーティング戦略、スペクトルオーバーラップの補正)について簡単に説明し、フローサイトメトリーの予備知識が限られている神経生物学者がその有用性を評価し、この強力な方法論をより有効に活用できるようにします。

ここで紹介するプロトコルは、汎用性の実験的アプローチ（ 図2）を可能にします。その短いバージョン（1、3、6ステップ ）においては、表面抗原の単純な染色のためのガイドと考えることができる。そのより複雑な形態において、細胞内抗原の範囲で共標識パラダイムの数は（2および/ ​​または4〜5の任意の工程 ）を追求することができる。また、CFSE標識工程は、細胞-細胞相互作用の研究またはフローサイトメトリーバーコード実験（ ステップ2）における集団の細胞標識/追跡のための有用性を例示する。 （ ステップ2及び/又は3から得られた）、生存細胞集団は、細胞選別パラダイム（FACS）およびポストソート細胞培養を含む下流の分析に適している。一方、組み合わせた細胞表面抗原染色（3〜5ステップ ）独自の権利で、分析読み出しの機会を提供します。例えば、（ <...

神経細胞型の表面抗原および/または細胞内抗原のフローサイトメトリー分析のためのプロトコルの詳細な説明を提供します。実験計画の重要な側面、段階的な方法論的手順、およびフローサイトメトリーの基本原理が説明され、神経生物学者がこの強力な技術を活用できるようになります。

Flow cytometry has been extensively used to define cell populations in immunology, hematology and oncology. Here, we provide a detailed description of ...

この手順の全体的な目標は、フローサイトメトリーを使用して神経細胞上の表面および細胞内抗原の発現を解析することです。これは、まずin vitro培養物または初代神経組織から神経細胞を採取することによって達成されます。次に、オプションの非特異的細胞内染色液を細胞に塗布します。その後、目的の表面抗原を直ちに一次抗体で標識しますが、目的の細胞内抗原は細胞の固定と透過後に標識します。最終的には、細胞内標識によって定義される特定の目的の神経亜集団における表面抗原の共発現について、フローサイトメトリー解析を使用することで結果を得ることができます。このプロトコールでは、マルチカラーフローサイトメトリーを使用して表面抗原および細胞内抗原を調べるための組織培養由来神経細胞を調製する方法を示します。採取を開始するには、まず、室温で5ミリリットルのマグネシウムおよびカルシウムを含まないPBSで細胞を1回優しく洗浄することにより、T75フラスコで増殖した付着神経細胞を採取します。次に、3ミリリットルのトリプシン置換を加えてフラスコから細胞を切り離し、摂氏37度で2〜5分間インキュベートします。細胞懸濁液を数回ピペッティングして細胞塊を緩めた後、6ミリリットルのフローバッファーを追加して酵素消化をクエンチし、細胞懸濁液全体を新鮮な15ミリリットルのチューブに移して細胞を分離します。チューブを遠心分離機に入れ、細胞を室温で5分間スピンダウンし、細胞内色素標識の準備としてスナットを吸引します。細胞ペレットを5ミリリットルのPBSと0.1%BSAで再懸濁します。それ以外の場合は、標準的なトライアンブルー染色プロトコルと組み合わせて5ミリリットルのフローバッファーを追加します。ヘモサイトメーターを使用して、有効な生細胞数を推定します。既存の懸濁液の細胞濃度を、前のステップで使用したのと同じバッファーを使用して、1ミリリットルあたり100万個の生細胞に再調整します。これらの細胞は、表面抗原抗体染色、またはカルボキシフルオレセインとそれに続く前述の表面抗原染色によるオプションの蛍光細胞内染色の2つの染色オプションの準備が整いました。カルボキシフルオレセインCINエステル色素で細胞内標識ステップを実行するには、まず10マイクロリットルのCFSEストック溶液を添加します。細胞懸濁液1ミリリットルごとに、チューブを200 RPMのシェーカーに置き、混合物を5分間インキュベートします。室温では、チューブを直接光にさらさないように保護することにより、光退色を防ぎます。フローバッファーを含む5容量の血清を加えてすべての非反応性色素をクエンチし、ピペットで数回ゆっくりと上下させて混合します。次に、室温遠心分離機で細胞を5分間スピンダウンし、上清を吸引して、非反応性色素の残留微量を除去します。細胞ペレットを5容量のフローバッファーで懸濁して洗浄します。次に、細胞を室温遠心分離機で5分間再度スピンダウンしてから、SUPナタントを廃棄します。最後に、細胞ペレットをフローバッファーで再懸濁し、最終的な細胞濃度が1ミリリットルあたり100万個の生存細胞になるようにします。マルチプレックス実験では、異なる実験条件で採取した同数の未染色細胞をCFSC染色細胞懸濁液に加えます。これで、細胞は抗体による表面抗原標識の準備ができ、細胞表面の染色を開始できます。CFSCラベルの有無にかかわらず、100マイクロリットルの細胞懸濁液を新鮮な1.5ミリリットルのチューブに移します。抗体滴定試験で事前に決定した量で、細胞懸濁液に4つの標識抗体を添加します。チューブを100 RPMの室温オービタルシェーカーに置き、混合物を30分間インキュベートします。光が当たらない場合は、1ミリリットルのフローバッファーを加えて抗体混合物を希釈します。静かにピペットで上下させて、あらかじめ冷やした摂氏4度の微量遠心分離機で細胞を混合し、スピンダウンします。穿返酸を吸引して未結合の抗体を除去し、この洗浄遠心分離機と吸引を繰り返します。もう一度一歩踏み出します。Reusは、細胞ペレットを100マイクロリットルにフローバッファーとして、以前に染色した細胞に懸濁します。500マイクロリットルの固定バッファーを細胞懸濁液の100マイクロリットルに加えます。チューブを100 RPMの室温オービタルシェーカーに置き、暗所で15分間インキュベートします。ホルムアルデヒドは、互いに近接しているすべてのタンパク質およびDNA種を架橋し、生存不能な細胞懸濁液を生成します。1ミリリットルのPBSを加えて固定混合物を希釈し、数回ピペットで軽く上下させて混合します。次に、あらかじめ冷却した摂氏4度の遠心分離機で固定細胞を3分間スピンダウンします。100マイクロリットルの液体が細胞ペレットの上に残るように supinate を吸引し、その後の細胞内抗原標識のために細胞膜を透過します。500マイクロリットルの透過緩衝液を100マイクロリットルの細胞懸濁液に加えます。チューブを100 RPMの室温オービタルシェーカーに置き、暗所で15分間インキュベートします。1ミリリットルのPBSを数回ピペットで静かに上下させて、あらかじめ冷やした摂氏4度の遠心分離機で固定細胞を混合し、スピンダウンして、浸透混合物を希釈します。インキュベーション前にSUPナタントを完全に吸引します。一次抗体ワーキングストックを調製するには、抗体をPBSと0.5%tween 20バッファーで希釈します。これは、1%BSA 10%ロバ血清または10%ヤギ血清のいずれかでさらに強化されています。次に、膜透過性細胞ペレットを100マイクロリットルの一次抗体ワーキングストックで再懸濁します。チューブを200 RPMの室温オービタルシェーカーに置き、暗所で30分間インキュベートします。一次抗体混合物を1ミリリットルのフローバッファーを加えて希釈します。数回ピペットで静かに上下させて、あらかじめ冷やした摂氏4度の遠心分離機で細胞を混合し、スピンダウンします。穿孔器を完全に吸引して、結合していない抗体を除去します。次に、ペレットを100マイクロリットルの二次抗体ワーキングストックで再懸濁します。光保護室温インキュベーションを30分間繰り返します。同じシェーカーで、1ミリリットルのフローバッファーを加えて二次抗体混合物を希釈します。同じチューブ反転混合、スピンダウン、上清の除去を繰り返して、結合していないすべての抗体を排除します。同じ1ミリリットルの洗浄遠心分離と上清除去のステップをさらに2回繰り返しますが、洗浄バッファーとして新鮮なPBSを使用します。代わりに、最終結果は、CFSC細胞外または細胞内標的蛍光抗体、または3つの再懸濁抗体の任意の組み合わせで標識されたクリーンな細胞ペレット、つまり150マイクロリットルのフローバッファーに標識された細胞ペレットになります。細胞懸濁液をフローサイトメーターに移し、4つのフロアごとに適切なレーザー励起フィルターと蛍光フィルターの設定で解析を開始します。前方散乱光と側方散乱光のデータをガイドとして、フローサイトメトリー解析ソフトウェア内で初期前方散乱と側方散乱光を設定し、細胞破片や死細胞などの非特異的なデータポイントを除外します。次に、未染色細胞懸濁液の生データをネガティブコントロールとして、細胞外抗原標識と細胞内抗原標識の両方からのポジティブ発光シグナルを選択する複数の蛍光インテグレーションゲートを設定し、マルチカラーのバックグラウンド蛍光を考慮します。スペクトルオーバーラップ効果は、単一の抗体染色コントロールからの生データを使用して蛍光ゲートを再調整します。マルチプレックスFAX実験では、カルボキシフルオレセインタグをベースラインシグナルとして使用でき、抗体を使用せずに2つの異なる系統または実験条件の細胞を区別できます。例えば、不均一な細胞懸濁液では、緑色チャネルの蛍光の有無を見るだけで、CFSCでタグ付けされた神経細胞とタグされていない線維芽細胞を即座に区別することができます。さらに、CFSE Esther標識と併用して、異なる色の蛍光抗体を使用して、混合サンプル内のCFSE標識サブセットと非標識サブセット間の表面抗原の発現差を測定できます。例えば、緑色蛍光チャネルにCFSEで標識されたSHSY 5 Y神経芽腫細胞は、高レベルのCD 24表面抗原を共発現したが、線維芽細胞マーカーCD54は共発現しなかった。対照的に、CFSC陰性のBJ線維芽細胞は、CD 54に対して陽性であり、CD 24のレベルは低い。神経表面抗原の解析は、抗体を用いた細胞内抗原の検出と併せて行うこともできます。表面抗原および細胞内抗原の未染色サンプルおよび単一染色コントロールを含めることは、ここに示す神経マーカーマップ2のような細胞内抗原の一次および二次抗体ベースの標識の代替として重要です。一次抗体の共有結合性蛍光標識は、共発現解析で同等の結果を得ることができ、プロトコールを短縮します。このビデオを見れば、さまざまな代替標識アプローチとその組み合わせを使用して、基本的なフローサイトメトリー解析のために神経細胞を調製する方法を十分に理解できるはずです。

flow-cytometry-protocols-for-surface-intracellular-antigen-analyses

Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

このビデオプロトコルは、神経幹細胞（NSC）の物理的（サイズと内部の細かさ）に基づいて、フローサイトメトリー技術を用いた蛍光特性の再生可能エネルギー源から神経前駆細胞の生成とその後の精製のための新しい方法を示します。...

神経芽細胞アッセイ：フローサイトメトリーを用いて神経幹細胞の子孫を差別から神経前駆細胞の生成と濃縮のためのアッセイ

出典:Becker-Kojić, Z. A., et al., GM-Free Generation of Blood-Derived Neuronal Cells.J. Vis.

末梢血由来細胞から分化した神経細胞の免疫蛍光顕微鏡法

出典: Hidmark, A. S., 他 フローサイトメトリーを用いた1匹のマウスの単一坐骨神経および後根神経節の免疫細胞の解析。 J. Vis. Exp. (2017).

フローサイトメトリーを用いたマウス神経組織における免疫細胞の解析

近年、生細胞ベースのアッセイは、表面とコンフォメーション抗原に対する抗体を検出するために首尾よく使用されている。ここでは、患者の大規模コホートの分析を可能にするフローサイトメトリーのハイスループット流を用いた方法を記載している。新規な抗体の検出は、免疫媒介性障害の診断および治療を改善する。...

ハイスループットフローサイトメトリー細胞ベースのアッセイN-メチル-D-アスパラギン酸受容体またはヒト血清中のドーパ​​ミン-2受容体に対する抗体を検出する

このプロトコルの目標は、蛍光活性化細胞選別(FACS)技術を使用して、細胞型特異的な遺伝子発現、エピジェネティックマーカー、およびまたはタンパク質発現のその後の解析のために、特定のタイプの神経細胞を選別することです。...

蛍光活性化セルソーティングを用いたラット脳組織における細胞型特異的遺伝子発現の検討

マウスの脳や脊髄から取り出した異なる細胞の種類を同時に同定するためのフローサイトメトリー法を提示する。この方法は、神経変性疾患における純粋な細胞集団を単離または特徴付けたり、ウイルスベクターまたはナノ粒子の生体内投与を標的とする細胞の程度を定量化するために利用され得る。...

異なる均質化法を通じてマウス脳/脊髄から取り出された複数の細胞型の同時フロー細胞特性評価

本稿は、マウスにおける実験的自己免疫性脳脊髄炎(EAE)を誘発するプロトコルを提示する。中枢神経系(CNS)における浸潤リンパ球の単離および特徴付けの方法も提示され、リンパ球がCNS自己免疫疾患の発症にどのように関与しているかを示す。...

実験的自己免疫性脳脊髄炎における中枢神経系におけるリンパ球浸潤のフロー細胞量分析

我々は、下流の分子分析に使用するために、ヒトアストロサイト集団を新鮮凍結組織から濃縮し、単離する方法を開発しました。...

蛍光活性化核選別を用いた新鮮凍結皮質からの成人ヒトアストロサイト集団の単離

このプロトコルは、i)共焦点顕微鏡、ii)強度イメージングを行うための蛍光活性化セルソーター、またはiii)蛍光寿命イメージングを行うための多光子顕微鏡を使用した自家蛍光イメージングにより、初代成体マウス神経幹細胞培養の細胞状態を同定し、濃縮する戦略を説明しています。...

自家蛍光法を用いた in vitro での神経幹細胞の活性化状態の分類

これまでのところ、すべての主要な中枢神経系常在細胞タイプを同じマウスから同時に単離するためのプロトコルは、満たされていない需要です。プロトコルはneuroinflammationの間に複雑な細胞ネットワークを調査し、同時に必須のマウス数を減らすために素朴で、実験的な自己免疫の脳脊髄炎のマウスで適当なプロシージャを示す。...

成体自己免疫性脳脊髄炎マウスからの主要な中枢神経系常在細胞型の同時単離

ここでは、フローサイトメトリーを使用してvGLUT1陽性シナプスとpHRodo...

フローサイトメトリーを用いたシナプス材料のミクログリア包絡の定量化

学ぶ神経細胞の表面抗原と細胞内抗原をフローサイトメトリーで解析する方法。固定・透過処理を用いた多色ラベリングにより、神経細胞サブ集団の共発現を詳細に分析できます。

神経細胞型の表面のためのフローサイトメトリーのプロトコルおよび細胞内抗原解析

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