Name: 胚様体の異なるサイズによって人工多能性幹（iPS）細胞から網膜色素上皮（RPE）の導出 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-02-04T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 18 s
Description: 学ぶ胚様体サイズがiPS細胞から網膜色素上皮（RPE）への分化効率に与える影響について。マイクロウェル技術を用いて均一な胚様体を作製し、RPE細胞の収率を向上させる最適化プロトコルを確立する方法です。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

ここに含まれる意見や主張は著者の個人的な見解であり、公式のものとして解釈されるべきではなく、陸軍省や国防総省の見解を反映したものとして解釈されるべきではありません。この研究は、著者のAlberto Muñiz氏、Ramesh R Kaini氏、Whitney A Greene氏、Jae-Hyek Choi氏がUSAISRでNational Research Councilの博士研究員を務めている間に行われました。この研究は、米国陸軍臨床リハビリテーション医学研究プログラム(CRMRP)および軍事運用医学研究プログラム(MOMRP)の支援を受けました。

培養試薬および培養プレートの調製<ol><li>幹細胞基礎培地400 mlに5倍の無血清補充を100mlを添加することにより無フィーダー幹細胞培養培地を準備する。培地は、最大2週間と6ヶ月間、-20℃で、4℃で安定である。 </li><li>市販の胚様体（EB）形成培地にRho関連、コイルドコイル含有タンパク質キナーゼ（ROCK）阻害剤（Y-27362）の10μMの溶液を加える。 </li><li> （ダルベッコ改変イーグル培地/栄養混合物F-12に0.1 mMのβメルカプトエタノール、0.1mMの非必​​須アミノ酸、2mM L-グルタミン、10％ノックアウト血清代替物（KSR）および10μg/ mlのゲンタマイシンを添加することによりDMEMを分化培地を調製/ F12）。 </li><li> 1×N1サプリメント、0.1mMの非必​​須アミノ酸、250 / mlのタウリン、13 / mlのトリヨードLチロニンナトリウム塩、を20ng / mlのヒドロコルチゾン、5μg/ mlのゲンタマイシン、および15％添加したiPS-RPEの培地を調製ウシ胎児血清（FBS）&lt;SUP&gt;最小必須培地イーグル（MEM）に21。 7.4にpHを調整する。 </li><li>トリヨード-L-チロニンナトリウム塩ストック溶液を準備します。穏やかに回転させることによって1 N水酸化ナトリウムでトリヨード-L-チロニンナトリウム塩1mgを溶解させる。トリヨード-L-チロニンナトリウム塩20μgの/ mlの50ミリリットルを作るために、MEMの49ミリリットルを追加します。アリコートを準備し、必要になるまで-20℃で凍結する。最終培養培地中の所望の濃度を達成するために適切な容量を使用する。 </li><li>ヒドロコルチゾンストック溶液を準備します。穏やかに撹拌し、100％エタノール1ml中ヒドロコルチゾン1mgを可溶化する。 50μg/ mlのヒドロコルチゾンストック溶液20ミリリットルを作るために、MEMの19ミリリットルを追加します。必要になるまで-20℃で小分けして凍結。最終培養培地中の所望の濃度を達成するために適切な容量を使用する。 </li><li> DMEM / F12中1mg / mLのディスパーゼのワーキング溶液を準備します。 </li><li>マトリックスコーティングされたプレートの調製<ol><li> MOUエンゲルブレス·ホルム - スウォーム（EHS）から抽出したタンパク質基質を準備0.08 mg / mlでのDMEM / F12中でそれ自体肉腫細胞。コー​​トマトリックス溶液1mlを6ウェルプレートの各ウェル。室温で1時間コーティングしたプレートをインキュベートします。 </li><li> 1時間のインキュベーション後、過剰のDMEM / F12を吸引する。ウェルの乾燥を防ぐために無フィーダー幹細胞培養培地0.5mlを加える。マトリックスでコーティングしたプレートを使用する準備ができている。 </li></ol></li><li> DMEM / F12の2ミリリットルで、各ウェルをすすぐことによって、マイクロウェルプレートを準備します。 DMEM / F12を除去し、各ウェルにROCK阻害剤を補充したEB形成培地の0.5ミリリットルを追加します。 5分間の気泡を除去するために2,000×gでプレートを遠心する。 </li><li>リン酸緩衝生理食塩水（PBS）中でアジ化ナトリウムを2％FBSを混合することによって、FACS染色緩衝液を調製し、0.09％。 pH7.4にバッファを調整します。 </li><li> DMEM / F12に10％FBSを添加することによりトリプシン中和溶液を調製する。 </li></ol> 2.のiPS文化<ol><li> iPS細胞播種、3​​7°C​​まで暖かい無フィーダー幹細胞培地に先立ち、及びミリアンペアを持つ準備がコーティングされたプレートをTRIX。 </li><li>すぐに37℃の水浴中でIMR90-1 iPS細胞を解凍する。水浴からクリオバイアルを除去し、70％エタノールでバイアルを拭く。細胞塊の破壊を最小限にするために2ミリリットルピペットを用いて15ミリリットルコニカルチューブに細胞を移す。 </li><li>滴下細胞に暖かい無フィーダー幹細胞培養培地5mlを加え、穏やかに混合する。 RTで5分間300×gで細胞を遠心し、上清を除去します。 </li><li>慎重に無フィーダー幹細胞培地2mlの細胞塊を再懸濁し、基質でコーティングされたプレートのウェル中の細胞塊をシード。 5％CO 2、湿度95％で37℃のインキュベーターにプレートを置きます。 </li><li>毎日のiPS細胞培養培地を変更します。五から七日播種後の未分化コロニーを観察します。光学顕微鏡下で通過させるための準備ができている未分化コロニー（密集中心としたコロニー）を確認してください。 </li></ol> iPS細胞の3継代<ol><li>通路の開始前に、iPS細胞、ディスパーゼ溶液を、DMEM / F12、水浴中で37℃に無フィーダー幹細胞培養培地を温める。 </li><li> iPS細胞を継代する前に、領域をこすると培地を吸引することによって分化のいずれかの領域を除去する。慎重に2ミリリットルのDMEM / F12でiPS細胞をすすいでください。 </li><li> / mlのディスパーゼ各ウェルに1 MGの1ミリリットルを加え、7分間37℃でインキュベートする。吸引しディスパーゼ、ゆっくりとDMEM / F12の2ミリリットルで2回細胞コロニーをすすぐ。すすいだ後、各ウェルに無フィーダー幹細胞培養培地2mlを加える。 </li><li>を5mlのピペットを使用して、穏やかに細胞塊を形成するために、プレートのコロニーをこすり。 15ミリリットルコニカルチューブに取り外した細胞塊を転送します。細胞の次の継代をシードするのに十分な無フィーダー幹細胞培養培地を加える。 </li></ol>マイクロウェルプレートを使用したEBの4世代<ol><li> iPS細胞の単一細胞懸濁液の調製<ol><li> mediuを削除iPS細胞からmおよびDMEM / F12の2mlでiPS細胞をすすぐ。 6ウェルプレートの各ウェルでのiPS細胞にACCUTASE750μlのを追加します。細胞がプレート（約5〜10分）から分離することを可能にするために37℃、5％CO 2で細胞をインキュベートする。 </li><li>優しく残りの細胞を解離するために、プレート表面に残った細胞を剥離するためにピペットを使用してください。 50ミリリットルコニカルチューブに細胞を移す。 DMEM / F12の5ミリリットルでプレートをすすぎ、コニカルチューブ内の細胞ですすぎDMEM / F12を兼ね備えています。すべての可能な残余の細胞塊を除去するために40μmのセルストレーナーを通して細胞懸濁液を渡します。 </li><li> ACCUTASEを削除するには、室温で5分間300×gで細胞を遠心します。細胞濃度が約0.5〜1.0×10 7細胞/ mlになるようにEB形成培地中で細胞ペレットを再懸濁する。 </li><li>トリパンブルーと血球計数器を用いて細胞を計数することにより生存細胞の数を決定します。 </li></ol></li><li> Adjustin整粒したEBを形成するためのマイクロウェル内gの細胞密度<ol><li>所望のEBのサイズを生成するためにマイクロウェルプレートの各ウェルに細胞数を調整する。均等に優しく細胞を数回ピペッティングして細胞を配布、ステップ1.9で作成プレートのマイクロウェルに細胞を追加します。 注：ウェル当たりマイクロウェルのEBのx個当たりのセルのウェルあたり必要な細胞の数=所望の数。 </li><li> 2.0ミリリットルの最終容量にウェル中のROCK阻害剤を補充したEB形成培地を調整します。静かに各ウェルにピペッティングして細胞を再配布。遠心分離機3分間100×gでマイクロウェルプレートは24時間、5％CO 2、95％湿度で37℃のインキュベーターでプレートを置きます。 </li></ol></li><li>マイクロウェルプレートから収穫したEB <ol><li>よくEBの大部分を除去するための1ミリリットルピペットで上下に培地をピペットによってマイクロウェルから収穫したEB。反転した40μmのセルを介してのEBサスペンションを渡す単一細胞を除去するために50mlコニカルチューブの上にストレーナー。 </li><li>すべてのEBを削除するにはDMEM / F12 1mlのマイクロウェルプレートを5回洗浄する。回の洗浄を収集し、反転したセルストレーナーを通過。新しい50ミリリットルコニカルチューブにアップセルストレーナー右サイドに回します。 EB形成培地で洗浄することによりEBを収集します。収量を決定するために、EBをカウント。 </li></ol></li></ol> 5.めっきしたEBと開始分化<ol><li>タンパク質マトリックス上にプレートEBは、EB形成培地+10μMのROCK阻害剤で千のEB /ウェル&lt;の密度で（ステップ1.8.1のように）6ウェルプレートをコーティングした。 24時間、5％CO 2、95％湿度、37℃でのEBをインキュベートする。 </li><li> 24時間のEBめっき後、分化を開始するために分化培地と交換してください。細胞は、さらなる分析のために収集されるまで、一日おきに分化培地の半分を変更します。 </li><li> RT-PCR、immにを実施する日にサンプル6、17、29及び60を収集特徴的なRPE遺伝子およびタンパク質の発現を検証するunocytochemistryおよびFACS。 </li></ol> 6. RNA抽出およびPCR <ol><li>市販のキットで提供される指示に従って、EBサンプルからRNAを抽出します。分光光度計を使用してRNA濃度を決定します。 </li><li> cDNAを逆転写キットに市販のRNAによると、全RNA 100ngのに逆転写を行います。 </li><li> cDNAの10マイクロモル/ 10 NGの濃度でのcDNAの10 ngの以下のプライマーを用いた（ 表1）を用いてPCRを行います。次のようにPCRを設定：72℃での最終サイクルに続いて、1分間、30秒間、72℃で、5分間、95℃でDNAを変性15秒間95℃、35サイクルで増幅し、60°C 10分間、C。 1％アガロースゲルでPCR産物を実行します。 </li></ol> 7.免疫細胞化学<ol><li> RTでPBSで2回のEBを洗ってください。 4％paraformaldにRTでのEBを修正10分間ehyde。 RTでPBSで一度すすぐ。 PBSで保管してサンプルを4℃で染色に使用するまで。 </li><li>染色日には、固定および透過試薬で固定した細胞を扱う。 RTで1時間（透過処理溶液中の10％ヤギ血清）をブロッキング溶液でサンプルをインキュベートする。 </li><li>抗Pax6の（1:10）、抗RX（1：200）で示される希釈度以下の一次抗体を使用して透過処理溶液中の10％ヤギ血清で免疫化学を実行し、抗MITF（1:30）、および抗ZO1（1：100）。 4℃で対応する抗体O / Nを有するサンプルをインキュベートする。 </li><li>翌日、細胞からの一次抗体を除去し、PBSでサンプルを3回すすいでください。 RTで1時間フォア結合二次抗体とサンプルをインキュベートする。 </li><li>細胞から二次抗体を除去し、PBS中のサンプルを3回すすいでください。カバーが封入剤を含むDAPIをガラススライド上にスリップマウントサンプルは暗室でO / Nを設定することを可能にする。染色を可視化する蛍光顕微鏡を使用してください。 </li></ol> FACS分析のために8染色<ol><li> PBS中で培養したEBを2回洗浄します。単一細胞懸濁液を作製するために5〜10分間0.25％トリプシンを0.5mlとしたEBをインキュベートする。トリプシン中和溶液（1ml /ウェル）でトリプシンを中和する。 </li><li> 10分間、600×gでの15mlコニカルチューブと遠心分離機に単一細胞懸濁液を移す。 </li><li>上清を捨て、チューブ中の細胞にDMEM / F12の10ミリリットルを追加します。穏やかに細胞を混合することが反転。 600×gで遠心分離する。遠心分離後、上清を廃棄し、FACS染色緩衝液中で細胞を再懸濁する。 </li><li>細胞の総数を数えます。 10分間600×gで遠心分離する。遠心分離廃棄上清の後。すぐに4％パラホルムアルデヒドの0.5ミリリットルを添加して細胞を固定します。穏やかにボルテックスでよく混ぜる。 20分間、4℃で細胞をインキュベート。 </li><li> 10分間600×gで遠心分離し、削除する上清。渦穏やかに細胞ペレットを破壊する。冷却された透過化溶液1mlを添加して細胞を透過性。ボルテックスは穏やかに混合し、30分間氷上でインキュベートする。 </li><li> 10分間600×gで遠心分離し、上清を除去します。 FACS染色バッファーに再懸濁の3ミリリットルを追加します。 1より多くの時間のために、この手順を繰り返します。 5×10 6細胞/ mlの最終濃度でFACS染色緩衝液中で細胞を再懸濁。 </li><li>各マイクロチューブに100μlの細胞懸濁液（0.5×10 6細胞）を転送し、一次抗体の推奨されるボリュームを追加。 Pax6のために、細胞懸濁液を100μlのPE抗Pax6のの5μlを添加する。 MITFのために、細胞懸濁液を100μlの抗MITFの5μlを添加する。 </li><li>混合し、60分間RTでインキュベートする。 FACS染色バッファーの3ミリリットルを追加します。 10分間600×gで混合し、遠心。上清を除去し、さらに2回のために8.16を繰り返します。 </li><li> MITF染色のために、二次antiboで細胞をインキュベートdyは、1の希釈でヤギ抗マウスアレクサフルオロ488：4°Cで1時間、2000。 Pax6の染色のために、このステップを回避する。 </li><li> 10分間600×gでのFACS染色バッファーと遠心機の5ミリリットルで細胞を洗浄。 2回以上のプロセスを繰り返します。 </li><li>細胞ペレットを破壊する優しくFACS染色バッファーと渦の500μlの細胞を再懸濁。サンプルは、フローサイトメトリー分析のために準備ができている。 </li></ol> 9. IPS-RPEの単離および培養<ol><li> 29日目に、慎重に200μlのピペットチップを用いて培養プレートから選択着色されたコロニーの周囲に切断した。 15ミリリットルコニカルチューブに浮動コロニーを転送します。 RTで10分間600×gでコロニーを遠心し、上清を除去します。 </li><li> 10分間600×gでDMEM / F12と遠心機の10ミリリットルで細胞コロニーを懸濁します。上清を取り除きます。 </li><li> 7-10分間37℃で0.25％トリプシン2mlを有するコロニーをインキュベートすることによって、単一細胞懸濁液を調製。穏やかにコロニーを解離細胞懸濁液をボルテックス。 </li><li>のiPS-RPE培地2mlを添加することによりトリプシンを中和する。 10分間600×gで遠心分離し、上清を捨てる。のiPS-RPE培地2ml中で単一細胞を再懸濁する。 37℃、5％CO 2および湿度95％のインキュベーター内タンパク質マトリックスコートした6ウェルプレートを所定の位置に細胞を移す。 </li></ol>

<ol><li>Takahashi, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+pluripotent+stem+cells+from+fibroblast+cultures%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Induction of pluripotent stem cells from fibroblast cultures.</a> Nat Protoc. 2 (12), 3081-3089 (2007).</li>
<li>Reubinoff, B. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Embryonic+stem+cell+lines+from+human+blastocysts%3A+somatic+differentiation+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Embryonic stem cell lines from human blastocysts: somatic differentiation in vitro.</a> Nat Biotechnol. 18 (4), 399-404 (2000).</li>
<li>Thomson, J. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Embryonic+stem+cell+lines+derived+from+human+blastocysts%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts.</a> Science. 282 (5391), 1145-1147 (1998).</li>
<li>Takahashi, K., Yamanaka, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+pluripotent+stem+cells+from+mouse+embryonic+and+adult+fibroblast+cultures+by+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors.</a> Cell. 126 (4), 663-676 (2006).</li>
<li>Yu, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induced+pluripotent+stem+cell+lines+derived+from+human+somatic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Induced pluripotent stem cell lines derived from human somatic cells.</a> Science. 318 (5858), 1917-1920 (2007).</li>
<li>Buchholz, D. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Derivation+of+functional+retinal+pigmented+epithelium+from+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Derivation of functional retinal pigmented epithelium from induced pluripotent stem cells.</a> Stem Cells. 27 (10), 2427-2434 (2009).</li>
<li>Ukrohne, T. U., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+retinal+pigment+epithelial+cells+from+small+molecules+and+OCT4+reprogrammed+human+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells+Transl+Med%22%5BJournal%5D)">Generation of retinal pigment epithelial cells from small molecules and OCT4 reprogrammed human induced pluripotent stem cells.</a> Stem Cells Transl Med. 1 (2), 96-109 (2012).</li>
<li>Subba, R. M., Sasikala, M., Nageshwar, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thinking+outside+the+liver%3A+induced+pluripotent+stem+cells+for+hepatic+applications%5BTitle%5D)+AND+%22World+J+Gastroenterol%22%5BJournal%5D)">Thinking outside the liver: induced pluripotent stem cells for hepatic applications.</a> World J Gastroenterol. 19 (22), 3385-3396 (2013).</li>
<li>Yoshida, Y., Yamanaka, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((iPS+cells%3A+a+source+of+cardiac+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22J+Mol+Cell+Cardiol%22%5BJournal%5D)">iPS cells: a source of cardiac regeneration.</a> J Mol Cell Cardiol. 50 (2), 327-332 (2011).</li>
<li>Mak, S. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+molecules+greatly+improve+conversion+of+human-induced+pluripotent+stem+cells+to+the+neuronal+lineage%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells+Int%22%5BJournal%5D)">Small molecules greatly improve conversion of human-induced pluripotent stem cells to the neuronal lineage.</a> Stem Cells Int. 2012, 140427(2012).</li>
<li>Bauwens, C. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Control+of+human+embryonic+stem+cell+colony+and+aggregate+size+heterogeneity+influences+differentiation+trajectories%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Control of human embryonic stem cell colony and aggregate size heterogeneity influences differentiation trajectories.</a> Stem Cells. 26 (9), 2300-2310 (2008).</li>
<li>Cour la, M., Tezel, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Retinal+Pigment+Epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22Advances+in+Organ+Biology%22%5BJournal%5D)">The Retinal Pigment Epithelium.</a> Advances in Organ Biology. 10, 253-273 (2006).</li>
<li>Vaajassari, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Toward+the+defined+and+xeno-free+differentiation+of+functional+human+pluripotent+stem+cell-derived+retinal+pigment+epithelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Vis%22%5BJournal%5D)">Toward the defined and xeno-free differentiation of functional human pluripotent stem cell-derived retinal pigment epithelial cells.</a> Mol Vis. 17, 558-575 (2011).</li>
<li>Carr, A. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protective+effects+of+human+iPS-derived+retinal+pigment+epithelium+cell+transplantation+in+the+retinal+dystrophic+rat%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Protective effects of human iPS-derived retinal pigment epithelium cell transplantation in the retinal dystrophic rat.</a> PLoS One. 4 (12), e8152(2009).</li>
<li>Muniz, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retinoid+uptake%2C+processing%2C+and+secretion+in+human+iPS-RPE+support+the+visual+cycle%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">Retinoid uptake, processing, and secretion in human iPS-RPE support the visual cycle.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 55 (1), 198-209 (2014).</li>
<li>Meyer, J. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modeling+early+retinal+development+with+human+embryonic+and+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Modeling early retinal development with human embryonic and induced pluripotent stem cells.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 106 (39), 16698-16703 (2009).</li>
<li>Bratt-Leal, A. M., Carpenedo, R. L., McDevitt, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineering+the+embryoid+body+microenvironment+to+direct+embryonic+stem+cell+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol+Prog%22%5BJournal%5D)">Engineering the embryoid body microenvironment to direct embryonic stem cell differentiation.</a> Biotechnol Prog. 25 (1), 43-51 (2009).</li>
<li>Kurosawa, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+for+inducing+embryoid+body+formation%3A+in+vitro+differentiation+system+of+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biosci+Bioeng%22%5BJournal%5D)">Methods for inducing embryoid body formation: in vitro differentiation system of embryonic stem cells.</a> J Biosci Bioeng. 103 (5), 389-398 (2007).</li>
<li>Itskovitz-Eldor, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differentiation+of+human+embryonic+stem+cells+into+embryoid+bodies+compromising+the+three+embryonic+germ+layers%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Med%22%5BJournal%5D)">Differentiation of human embryonic stem cells into embryoid bodies compromising the three embryonic germ layers.</a> Mol Med. 6 (2), 88-95 (2000).</li>
<li>Ng, E. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Forced+aggregation+of+defined+numbers+of+human+embryonic+stem+cells+into+embryoid+bodies+fosters+robust%2C+reproducible+hematopoietic+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Forced aggregation of defined numbers of human embryonic stem cells into embryoid bodies fosters robust, reproducible hematopoietic differentiation.</a> Blood. 106 (5), 1601-1603 (2005).</li>
<li>Maminishkis, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Confluent+monolayers+of+cultured+human+fetal+retinal+pigment+epithelium+exhibit+morphology+and+physiology+of+native+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">Confluent monolayers of cultured human fetal retinal pigment epithelium exhibit morphology and physiology of native tissue.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 47 (8), 3612-3624 (2006).</li>
<li>Maintenance of hESCs and hiPSCs. mTESR1 and mTESR2. , Stem Cell Technologies. Available from: 
 
 <a target="_blank" href="http://www.stemcell.com">http://www.stemcell.com</a> (2010).</li>
<li>The Analysis of DNA or RNA using its wavelengths: 230 nm. 260 nm. 280nm.. About Biotechnology. 230, Available from: 
 <a target="_blank" href="http://archive.today/0qTh">http://archive.today/0qTh</a> (2013).</li>
</ol>

著者らは開示するものは何もない。

細胞療法のための多能性幹細胞の完全な約束を実現するためには、一貫して再現可能な方法でそれらの分化を調節することが必要である。このレポートでは、マイクロウェルプレート技術を使用してサイズ制御したEBを形成RPEに向かって分化を開始し、RPEのタンパク質と遺伝子マーカーを同定するためのプロトコルについて説明します。 インビトロ分化を同期させるために、EBの均一な大きさは、強制凝集によってマイクロウェルプレート中で遠心iPS細胞の既知の番号を形成した。免疫細胞化学および逆転写ポリメラーゼ連鎖反応（RT-PCR）を説明した表現のRPEタンパク質および遺伝子をモニターするために使用される。最後に、EBの異なるサイズの分化の効率は、FACS分析により分析した。これらの技術は、将来のアプリケーションのためにRPEにiPS細胞の分化を促進することができる。 慎重にEに実行する必要があり、この方法でいくつかの重要なポイントがあります。正確なデータのこのプロトコル及び達成の成功をnsure。最初の重要なステップは、iPS細胞培養の間に発生します。 iPS細胞は、幹細胞性を維持するため...

人工多能性幹（iPS）細胞は、外因性因子1成体細胞を再プログラミングすることによって誘導される多能性幹細胞の一種である。対照的に、胚性幹細胞（ESC）、多能性幹細胞の別の型は、胚盤2-3の内部細胞塊から生成される。それらの異なる起源にもかかわらず、iPS細胞およびESCをインビトロおよび任意の細胞型4-5に分化する能力において複製するそれらの無制限の容量が同程度である。 iPS細胞のこれらの特徴は、彼らにパーソナライズされた再生医療への応用のための理想的な候補を作る。最近の研究努力は、網膜色素上皮（RPE）6-11を含む特殊な成体細胞を製造するための堅牢な分化プロトコールを開発することに焦点を当てている。 のiPS由来細胞の潜在的な臨床用途のために、その特定の細胞型に向かう分化が不可欠である。様々な方法があるその効率6-7、12-16で大きく変化したRPEに両方のESCとのiPS細胞の監督分化のために公開。我々はまだ開発または分化中の細胞/組織の運命を支配する分子事象の多くは知らない。近年では、努力は、できる限り胎生発育を模倣することができる分化プロトコルを開発する試みがなされてきた。胚盤胞段階の間に、幹細胞のコミットされていない集団の三次元微小環境で一緒にいる。そのように、様々な戦略を組み立てESC / iPS細胞を作成し、三次元でそれらを成長させるために適用した。これらの幹細胞集合体は、胚様体（EB）と呼ばれている。研究は、幹細胞のEBの分化は胚発生の初期段階を模倣し、自発的にその外面に原始内胚葉を生じ得ることを示した。 EBの開発が進むにつれてその後、3つのすべての生殖系列の分化細胞の表現型は17-18が表示されます。目erefore、EBをベース分化プロトコルは、ESC / iPS細胞のin vitroでの分化のために多くの注目を集め多能性幹細胞13からRPE生成のための良い候補であるしている。 EBは、ESC / iPS細胞からのいくつかの方法を用いて製造することができる。最初に、EBを付着コロニーを掻き非接着懸濁培養でそれらを維持することによって作製した。しかし、このアプローチは、低い再現性を引き起こすEBの不均一な集団を生じる。ハンギングドロップ細胞培養およびマイクロウェルベースの​​EB形成が非常に再現性が定義された大きさの均一なEBをを得たEB形成のための他の一般的な技術である。さらに、マイクロ技術は少ない労力で凝集体の大多数を得ることができる。 のEB内の細胞の分化は、細胞外および細胞内微小環境から形態形成の合図の多重によって調節される。月における分化とは対照的にフォーマットolayer、EBは、17を発生する細胞と細胞間シグナル伝達の複雑なアセンブリのためのプラットフォームを提供する。興味深いことに、個々のEBを作製するために使用される多能性幹細胞の数は、細胞の運命に影響を与えることが観察された。 1000セルEBは赤血球系統20に向けてプッシュされ、一方、例えば、ヒトESCの造血分化の研究では、500セルEBは骨髄系統への分化を促進したことが観察された。別の研究では、より小さなEBは、神経外胚葉分化11、17に向けて推進し、より大きなEBを、一方、内胚葉分化を支持した。 これらの過去の研究は強く個々のEBを作製するために使用されるESC / iPS細胞の数は、任意の細胞型への分化に基づいたEBに影響を与えることを示唆している。しかし、我々の知る限り、RPEに分化するために、その傾向にEBをサイズの影響を解明した電流の研究はありません。本研究の目的は、影響を特徴付けることである網膜色素上皮（のiPS-RPE）分化およびRPE系統に向かって方向付け分化したEBを作るための最適な細胞数を識別するために - 人工多能性幹（iPS）細胞へのEBの大きさ。

<table><tbody><tr><td>mTeSR1培地 + 5倍サプリメント</td><td>幹細胞技術</td><td>5850</td><td></td></tr><tr><td>Y-27632 (岩石阻害剤)</td><td>幹細胞技術</td><td>72304</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F12</td><td>ライフテクノロジー</td><td>ズ 11330-032</td><td></td></tr><tr><td>2-メルカプトエタノール</td><td>Sigma</td><td>M-7154</td><td></td></tr><tr><td>非必須アミノ酸</td><td>ハイクロン(フィッシャー)</td><td>SH30853.01</td><td></td></tr><tr><td>ノックアウト血清補充</td><td>ライフテクノロジー</td>ズ <td>10828-028</td><td></td></tr><tr><td>ゲンタマイシン&nbsp;</td><td>ライフテクノロジー</td><td>ズ 15750-060</td><td></td></tr><tr><td>L-グルタミン</td><td>ライフテクノロジー</td><td>ズ 25030-081</td><td></td></tr><tr><td>MEMメディア</td><td>ライフテクノロジー</td><td>ズ 10370-021</td><td></td></tr><tr><td>N1サプリメント</td><td>シグマ</td><td>N-6530-5ML</td><td></td></tr><tr><td>タウリン</td><td>シグマ</td><td>T-8691-25G</td><td></td></tr><tr><td>ヒドロコルチゾン</td><td>シグマ</td><td>H0888-1G</td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎児血清</td><td>Hyclone(Fisher)</td><td>SH3008803HI</td><td></td></tr><tr><td>Triiodo-L-thyronine ナトリウム&nbsp; 塩</td><td>Sigma</td><td>T6397</td><td></td></tr><tr><td>水酸化ナトリウム</td><td></td><td>Σ S5881</td><td></td></tr><tr><td>Dispase</td><td>Life Technologies</td><td>17105-041</td><td></td></tr><tr><td>Matrigel</td><td>BD Biosciences</td><td>354277</td><td></td></tr><tr><td>Phosphate buffered saline</td><td>Hyclone(Fisher)</td><td>10010-023</td><td></td></tr><tr><td>Aggrewell 400 プレート</td><td>幹細胞技術</td><td>27940</td><td></td></tr><tr><td>AggreWell 培地</td><td>幹細胞技術</td><td>5893</td><td></td></tr><tr><td>Accutase</td><td>幹細胞技術</td><td>7920</td><td></td></tr><tr><td>BD Cytofix/Cytoperm Fixation/Permeabilization Kit</td><td>BD Biosciences</td><td>554714</td><td></td></tr><tr><td>Mouse Anti-PAX6 antibody</td><td>Developmental Studiesハイブリドーマバンク</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ウサギ抗RX抗体</td>アブ<td>カム</td><td>Ab23340</td><td></td></tr><tr><td>マウス&nbsp;抗MITF抗体</td><td>Thermo Scientific</td><td>MS-772-P</td><td></td></tr><tr><td>ウサギ 抗ZO-1抗体</td><td>Invitrogen</td><td>40-2200</td><td></td></tr><tr><td>RNeasy plus mini kit</td><td>Qiagen</td><td>74134</td><td></td></tr><tr><td>PCRマスターミックス</td><td>Promega</td><td>M7502</td><td></td></tr><tr><td>大容量RNAからcDNAへのキット</td><td>Life Technologies</td><td>4387406</td><td></td></tr></tbody></table>

胚様体の異なるサイズによって人工多能性幹（ips）細胞から網膜色素上皮（rpe）の導出

Deriving Retinal Pigment Epithelium (RPE) from Induced Pluripotent Stem (iPS) Cells by Different Sizes of Embryoid Bodies

多能性幹細胞は、無限に増殖し、ほぼすべての細胞タイプに分化する能力を持っています。また、体細胞を人工多能性幹細胞(iPS細胞)にリプログラミングする技術の開発は、カスタマイズされたパーソナル再生医療の可能性に対する関心と興奮を呼び起こしています。しかし、幹細胞が目的の系統に分化するための効率は低いままです。この研究の目的は、組織工学的アプローチを適用して、in vitro分化中の一般的な中間体である胚様体 (EB) の均質な集団を生成することにより、iPS 細胞 (iPS-RPE) から網膜色素上皮 (RPE) を誘導するプロトコルを説明することです。このプロトコルは、マイクロウェルプレート技術を使用して特定のサイズのEBの形成を適用します。また、免疫細胞化学や逆転写ポリメラーゼ連鎖反応(RT-PCR)によりRPEのタンパク質マーカーや遺伝子マーカーを同定する方法についても説明します。最後に、RPEマーカーの蛍光活性化セルソーティング(FACS)分析によってモニターされるさまざまなサイズのEBにおける分化の効率について説明します。これらの技術により、iPS細胞のRPEへの分化が促進され、将来の応用が可能になります。

この実験では、iPS細胞を培養したEBからRPE細胞系統に分化した。制御されたサイズのEBをマイクロウェルプレートを用いて形成された。 図1 EBの形成に見られるように、マイクロウェルプレート中で均質であった。これらのEBは、次いで（ 図2）を回収し、6ウェルプレート上にプレーティングした。 RPEは、古典的な六角形の形態、色素沈着、およびRPEマーカーの発現によって同定することができる。培養12週間後、200細胞EBは、アストロサイトおよび線維芽細胞の形態を開発していた。無色素沈着は、これらの細胞（ 図3A）に観察されなかった。大きなEBを古典RPE形態および色素沈着の単層を開発した（ 図3B及びC）免疫細胞化学は、RPEのマーカーを検出するために、MITFとZO1 500細胞および3000細胞EBから誘導されたこれらのタンパク質の同時発現を明らかにした（ 図4） 。 ...

このレポートの目的は、胚様体の異なるサイズを使用して人工多能性幹（iPS）細胞から網膜色素上皮（RPE）を導出するためのプロトコルを記述することである。

胚様体の異なるサイズによって人工多能性幹（iPS）細胞から網膜色素上皮（RPE）の導出

Pluripotent stem cells possess the ability to proliferate indefinitely and to differentiate into almost any cell type. Additionally, the development of ...

この手順の全体的な目標は、IPS細胞からのRPE分化に対する胚体サイズの影響を特徴付け、胚体の分化をRPE系統に向けることです。これは、最初にマイクロウェル技術を使用して、定義されたサイズの均質な胚体を生成することによって達成されます。第2のステップでは、IPS細胞の指向性分化が網膜系統に向けて開始され、次にI-P-S-R-P-E細胞が同定され、単離されます。最終ステップでは、I-P-S-R-P-E細胞が濃縮され、増殖します。最終的に、I-P-S-R-P-E細胞は、I-P-S-R-P-E特異的マーカーの発現について分析することができます。この手法が自発的な分化などの既存の方法よりも優れている点は、この手法がRPを高くする結果になることです。この問題は、IPS細胞のRP系統への直接的な分化を最適化するのに役立ちます。この技術の意味は、黄斑変性症、網膜炎、またはスターガルト病などの網膜変性疾患の治療にまで及びます。罹患したRPEをIPS細胞由来の健康なRPEに置き換えることが視力喪失を防ぐための最良の選択肢である可能性があるため、幹細胞は非常に繊細で、そのハンドルの微妙な変化が分化プロセスに影響を与える可能性があるため、一般的にこの方法に不慣れな個人は苦労します。この方法の視覚的なデモンストレーションは、マイクロ波の場所からの胚体採取ステップが難しいため、非常に重要です。播種する前に、フィーダーフリー幹細胞培養培地を摂氏37度まで温め、その後、IMR 90ダッシュワンIPS細胞を摂氏37度の水浴で迅速に温めます。細胞が解凍されたら、5ミリリットルの温かいフィーダーフリー幹細胞培養物を細胞に加え、培地を細胞に滴下し、穏やかに混合します。次に、細胞をスピンダウンし、細胞塊を2ミリリットルのフィーダーフリー幹細胞培養液に慎重に再懸濁します。マトリックスコーティングされたプレートの個々のウェルに塊を培地播種し、次に細胞を摂氏37度の細胞培養インキュベーターに置き、5%の二酸化炭素と95%の湿度で毎日培地を交換します。5〜7日後、中心が密集した未分化のコロニーを光学顕微鏡で観察します。細胞の準備ができたら、37°Cのウォームディススペースで各ウェルに1ミリグラムあたり1ミリグラムを追加し、プレートを37°Cで7分間インキュベートします。次に、DYSスペースを吸引し、2ミリリットルの予熱DM MF 12で細胞コロニーを穏やかにすすぎます。二度。すすぎ後、各ウェルに2ミリリットルのフィーダーフリー幹細胞培養培地を加え、5ミリリットルのピペットを使用してコロニーを穏やかにこすり落とし、細胞の塊を放出します。次に、分離した塊を15ミリリットルの円錐管に移し、十分なフィーダーフリー幹細胞培養培地を追加して、次の細胞の継代に播種して胚体を生成します。まず、IPS細胞を2ミリリットルの

deriving-retinal-pigment-epithelium-rpe-from-induced-pluripotent-stem

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

発生生物学

マイクロRNA（miRNAを）人為-多能性幹（IPS）細胞（IPS-RPE）、および胎児RPE由来のヒト誘起多能性幹（IPS）細胞、網膜色素上皮（RPE）のプロファイルは、比較した。...

ヒトiPS細胞のマイクロRNA発現プロファイル、IPから派生網膜色素上皮、および胎児の網膜色素上皮

幹細胞由来の網膜色素上皮(RPE)細胞は、網膜変性のための細胞ベースの治療、疾患モデリング、薬物研究など、複数の用途に使用することができます。ここでは、幹細胞からRPEを再現性よく導出するための簡単なプロトコールを紹介します。...

幹細胞から網膜色素上皮細胞の効率的な導出

ここでは、ラットとマウスにRPE細胞のボーラスを網膜下注射するためのマルチメディア形式でコミュニティが受け入れたプロトコルを紹介します。このアプローチは、網膜変性の動物モデルに移植された移植されたRPE細胞のレスキューの可能性、安全性プロファイル、および生存能力を決定するために使用できます。...

懸濁液中の網膜色素上皮細胞を送達するげっ歯類における網膜下注射の実行

このプロトコルでは、多能性幹細胞からの網膜色素上皮細胞 (RPE) を生成する方法について説明します。メソッドは、分化誘導細胞の未熟な網膜色素上皮に 14 日で成熟し、機能的な RPE 3...

人間の胚または誘導多能性幹細胞からの網膜色素上皮細胞の急速な監督の分化

患者由来の変異ひと多能性幹細胞からの網膜色素上皮 (RPE) を区別するためにプロトコルをご紹介します。変異細胞は、免疫ブロット、蛍光抗体法、パッチク...

差別化、保守、および人間の網膜色素上皮細胞の解析: BEST1変異の皿での疾患モデル

多能性幹細胞から特殊な網膜細胞の生産は、網膜疾患の幹細胞を用いた治療法の開発のターニング...

Xeno 無料の定義された、人間の世代の iPSC 由来網膜細胞モデル フィーダー フリー培養条件

人間の羊膜と動物モデルにおける組織移植のための準備の上に培養したひと多能性幹細胞由来網膜色素上皮細胞から成る網膜組織を設計する手法を提案します。...

ヒト胚性幹細胞に由来する移植適切な網膜色素上皮組織をエンジニア リング

自己組織化法を用いて、光受容体の生成を大幅に増加させる可能性のあるCOCOを添加したプロトコルを開発します。...

ヒト多能性幹細胞からの網膜オルガノイドの誘導

ここでは、ヒトの多能性幹細胞株が再現性と効率の高い人工組織を生成するのに適した最適化されたレチナルオルガノイド誘導システムについて説明します。...

ヒト多能性幹細胞からの3Dレチナル組織の導出のためのレチナルオガノイド誘導システム

このプロトコルは、接着培養システムと浮遊培養システムの両方を含む簡略化された培養条件を使用して、hiPS細胞を眼野クラスターに分化させ、神経網膜オルガノイドを生成する効率的な方法について説明しています。RPEや角膜上皮などの他の眼細胞タイプも、網膜培養の成熟眼野から単離することができます。...

健常および網膜疾患特異的ヒト誘起多能性幹細胞からの網膜オルガノイドの作製

本プロトコルは、高い再現性と効率で網膜オルガノイドの接着と融合を減少させる最適化された3D神経網膜誘導システムについて説明しています。...

ヒト多能性幹細胞からの神経網膜の生成

学ぶ胚様体サイズがiPS細胞から網膜色素上皮（RPE）への分化効率に与える影響について。マイクロウェル技術を用いて均一な胚様体を作製し、RPE細胞の収率を向上させる最適化プロトコルを確立する方法です。

胚様体の異なるサイズによって人工多能性幹（iPS）細胞から網膜色素上皮（RPE）の導出

さらに動画を探す