Name: 代償肺の成長のマウス肺モデル (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-12-17T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 22 s
Description: 学ぶマウス肺切除モデルによる代償的肺成長の誘導法。左開胸術と肺動脈結紮を用いて残存肺の再生メカニズムを解明し、肺発生と組織修復の重要な細胞プロセスを研究します。

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著者は、シンシナティ小児病院獣医サービス部門の支援に感謝したいと思います。この原稿は、国立衛生研究所(NIH)のK12 HD028827の支援を受けたものです。アンナ・パール博士は、この外科的処置を著者に教えました。

注：動物use文：本研究におけるすべての手順を承認し、シンシナティ小児病院での動物実験使用とケア委員会（IACUC）のガイドラインに従って行った。 8週齢のC57BL / 6J雄マウスをジャクソン·ラボラトリーズ（バーハーバー、ME）から入手し、使用前に一週間順応させた。手術まで、動物を、無病原体バリア施設で飼育し、オートクレーブした食餌及びろ過水広告libdiumを与えた。各マウスのケージは、専用の空気と水を供給し、客室は、12時間の昼夜サイクルで維持した。手術からの回復に続いて、マウスは、濾過トップとのケージに維持し、オートクレーブ処理飼料適宜該ギプスを提供し、水のボトルからの水を濾過して設けられた。 楽器の調製<ol><li>ペーパークリップやピンを使用して6スキンリトラクターを作る。ツイストがl、紙·ピンのシャンク上のペーパークリップを伸ばした一端の5センチメートルストレート鋼線を庇ワイヤの端部にフック状の単0.5センチメートル &quot;U&quot;を作る。 </li><li>プラスチック製のラップを使用して、いくつかの15×15四方の手術用ドレープを作る。マウス当たり1ドレッシングを準備します。各ラップの間に紙塔を置く。 </li><li> 12×12インチのコル​​クタイル、ガーゼ、および綿棒のスタックと一緒にすべての手術器具を滅菌する。 </li></ol> 2.マウスの準備<ol><li> 2％イソフルランで麻酔を誘導する。動物を計量。 </li><li>専用の外科準備領域では、電気シェーバーと左胸部と首の領域を剃る。 </li><li>マウスの目に人工涙軟膏の低下を適用します。 </li><li>クロルヘキシジン、イソプロピルアルコールで首と左胸部を除染。さらに2回繰り返します。 </li></ol> 3.マウスオロ気管挿管および機械的人工換気<ol><li>予め温めておいた手術領域における非滅菌外科技術者の場所でマウス仰臥位を持っている。</li><li>足のピンチに応答がないことを文書化することにより、麻酔の深さを確認してください。 </li><li>手を洗うと手術衣装、マスク、帽子を着用した後、無菌手術用手袋を着用。 </li><li>ドレープと無菌技術を使用した後、喉頭を露出させ、前方半ば首オーバー1センチメートル垂直切開する。軽く湾曲し、鋸歯状の10cmの鉗子でストラップの筋肉を撤回し、ストレートハサミの先端でストラップの筋肉を広げることによって喉頭と気管を公開。 </li><li>経口半ば気管（ 図1A）に22 G鈍先端の血管カテーテルを挿入し、視覚的に配置します（ 図1B）を確認します。麻酔を維持し、げっ歯類の人工呼吸器を介して1〜3％イソフルランを使用して換気（;毎分200ストークスストロークあたり225μL）。 15cmのH 2 Oの圧力限界を採用</li></ol> 4.マウスの肺<ol><li>マウスの背中を向けた状態で、右側臥位でマウスを置き演算子（左側上）。無菌ドレープのように自己シールプラスチックラップを使用してください。ドレープを切断、4 番目と5 番目の肋間で肋骨に2cmの長さのカット並列を作るために鈍い傾いて湾曲したハサミを使用しています。鈍先端湾曲したハサミを挿入し、根底にある肋骨と肋間筋から離れて皮膚を解剖。 </li><li>正方形の1.5×1.5センチメートル外科ウィンドウ（ 図2A）を露出するために4つのリトラクターで皮膚を撤回。コルクボードにリトラクターを固定します。 </li><li>湾曲した鉗子を用いてリブまで細かく分析し、胸腔を入力するように湾曲した鉗子の1チップを使用しています。 </li><li>丸い先端マイクロはさみを使用して、胸腔を入力するように下刃を使用しています。反対方向にリブを繰り返し間で0.5cmの切開を行います。 </li><li>残りの2つのリトラクターを使用して、前後軸に胸部を開き、コルクボード（ 図2B）に開創を確保。 </li> &lt;LI&gt;左肺をつかみ、左肺動脈と気管支が（ 図3A、B）が露出するまで開胸を通って横方向及び下方に左肺の上部を変位、左手に湾曲した鈍先端が鉗子を使用。 </li><li>手のひらでアプリケーターとパーム（ 図3C）からポインティング曲がった先端の本体と右手にロードされたチタン血管をマイクロアプリケーターを持ち、左の後面の曲率に沿って胸部にアプリケータ先端部をスライドさせ左気管支及び肺動脈（ 図3D）の肺およびクリップ。 </li><li>アプリケーターを取り外しますが後退し左肺を保つ。右手で鈍先端マイクロハサミを握り、クリップに気管支及び肺動脈遠位をカットし、左肺（ 図3E）を削除。 </li><li>リブリトラクターを削除します。 </li><li> incisiに劣る皮膚から1cmを挟まないように湾曲した鈍鉗子を使用してくださいではなく、振動板のレベルを超えて、皮膚を通して、左胸腔（ 図4A、B）への24のG血管カテーテルを挿入します。 </li><li>胸腔を閉じるには、4 番目と5 番目の肋骨の周りに2結節縫合を配置する5-0プロレン縫合糸を使用してください。 </li><li>肌のリトラクターを削除します。切開の長さに沿って皮膚を近似し、肌が閉じ接着する鉗子の二組を使用してください。 </li><li>血管カテーテルに3ミリリットルルアーロックシリンジを接続し、穏やかな吸引を適用し、血管カテーテルを引き出すことにより、残留空気を除去する。 </li><li>首の切開が以前鉗子の二組を使用して閉じた接着。 </li></ol> 5.マウスシャム肺全摘術<ol><li> 「マウス肺」プロトコルに記載されているように左肺を公開します。左胸腔内に空気を可能にするために湾曲した鈍鉗子を用いて胸郭を持ち上げて（ 図5A、B）。 </li><li>左カントーに24のG血管カテーテルを配置左肺を傷つけないように注意しながら、上記のようにracic空洞。 </li><li> 5-0プロレン縫合糸を使用し、肺（ 図5C）を穿刺しないように注意しながら、 第 3 / 第 4に縫合材料の2つの長さと5 番目 / 6 番目の肋骨隙間（ 図5D）を配置。左肺ヘルニアのリスクを軽減するために抱き合わせ前に縫合材料の両方の長さを置きます。 2、中断ステッチ（ 図5E）を作るために縫合材料を結ぶ。 </li><li>胸部切開上の皮膚を接着、血管カテーテルで残留空気を除去し、上記のように首の切開を接着。 </li></ol> 6.蘇生、鎮痛、および回復<ol><li>イソフルランの電源を切り、ブプレノルフィンの0.1 mg / kgを投与し、生理食塩水を皮下の0.5ミリリットル。 </li><li>自発呼吸が再開すると、気管内チューブを取り外します。 </li><li>それが再び歩行になるまでマウスを観察します。通常resumウォーキング気管内チューブを除去した後、数分、ES。 </li><li> O / Nを回復するために27℃のインキュベーター（加湿され、25％の酸素）でマウスを置きます。 注：我々は、手術後の最初の24時間、ケージの床に水で湿らせた固形飼料のいくつかのペレットを配置。 </li><li>手術後3日間、一日二回腹腔内注射によりブプレノルフィンの0.1 mg / kgをを管理します。動物を扱うときに手術部位をオープンしないように注意してください。 </li></ol> 7.マウスの監視<ol><li>手術後1、3、5、および7日目にマウスを秤量する。 </li></ol>

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</ol>

著者らは開示するものは何もない。

我々はこれまでに報告マウスPNXとマウス偽PNX手順のほとんどの詳細な説明を提供してきました。私たちは、手順を学ぶ研究者は、一般的に遭遇する、と​​我々はこれらの落とし穴を軽減するために私たちの研究室が開発したいくつかの技術を概説している共通の落とし穴のいくつかの読者は意識してきた。このモデルを利用する他の研究所は、他の技術の変更を開発したか、別の商品を利用している場合があります。テクニックの違いを評価する際に、個々の研究者らは、これらの違いが大幅に実験結果に影響を与えるかどうかを決定する必要があります。 代償性肺成長のマウスPNXモデルは、肺の修復および再生の他の動物モデルよりも多くの利点を有している。ほとんどの研究室16について達成標的遺伝子欠失実験のメイク系統のトレース、過剰発現遺伝子、および一般的なトランスジェニックマウスの多数が利用可能。第二に、MOR歯槽再成長を定量するためphometric技術は、上述した17である。第三に、このモデルを採用するコストは中程度である。これらの手順が必要とする唯一の特殊な装置は、血管クリップアプ...

肺の主な機能は、生物と大気の酸素と二酸化炭素の交換を提供することである。ヒトでは、先天性および後天条件のホストが損なわれた肺機能をもたらす減少、肺の表面積をも​​たらす。 すなわち、肺-そのような吸入コルチコステロイド、気管支拡張薬、酸素補給、および慢性の機械的換気などの治療のホストが損なわれた肺機能1-3の影響を緩和するために使用されているが、これらの状態のための理想的な治療は、機能的な肺組織の再生を促進する再生。 哺乳動物の組織再生は十分に立証されている。アフリカのトゲマウスは瘢痕形成4なく、皮膚の大部分を再生することができる。ヒトでの末節骨は、以下の傷害または切断5-7を再生成することができます。以下の肺（PNX）、代償肺の成長が行い、9ラット、マウス8で発生gsは10、およびヒト11。定義により、代償肺の成長は既存の空域の拡大が、関連した微小循環12の拡大にこれらの拡大空域の再隔壁形成だけではないが含まれます。遺伝子発現解析は、このモデルが肺の発達13のシグナル伝達事象の多くを再現することを示した。四週間マウスPNXた後、肺胞の表面積は、偽手術動物14と同等である。本稿では、我々は、マウスPNXおよび偽PNX手順を説明します。

<table><tbody><tr><td>6インチ 血管クリップ アプリケーター</td><td>テレフレックス メディカル (WECK)</td><td>137062</td><td></td></tr><tr><td>ホライゾン スモール チタン レッド クリップ</td><td>テレフレックス メディカル (WECK)</td><td>1201</td><td></td></tr><tr><td>ナロー パターン 12 cm 湾曲した鉗子</td><td>ファイン サイエンス ツール</td><td>11003-12</td><td></td></tr><tr><td>湾曲した鋸歯状 10 cm グレーフ鉗子</td><td>ファイン サイエンス ツール</td><td>11052-10</td><td></td></tr><tr><td>カストロビエホ ニードルホルダー</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>12565-14</td><td></td></tr>ストレート<tr><td>9cm斜視ハサミ(鈍い先端)</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>14075-09</td><td></td></tr>ストレート<tr><td>8.5cm硬化ファインハサミ</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>14090-09</td><td></td></tr><tr><td>ストレート、鈍い先端Cohan-Vannas春のはさみ</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>15000-12</td><td></td></tr><tr><td>スキングル</td><td>ーグルチャー32046</td><td></td><td></td></tr><tr><td>22 G血管カテーテル</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>24 G 血管カテーテル</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>3 ml ルアーロックシリンジ</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>4 ショートリトラクター</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>2 ロングリトラクター</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>5-0 プロレン オン カーブ カッティング ニードル</td><td>エチコン</td><td>8698G</td><td></td></tr><tr><td>0.5 ml シリンジ 27 G ニードル</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>通常の生理食塩水</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Buprenorphine</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Press-n-Sealラップ</td>グラ<td>ッドプロダクツカンパニー12</td><td></td><td></td></tr><tr><td>x 12インチコルクボードスタック</td><td>オフィスデポ</td><td></td><td></td></tr><tr><td>70%エタノール</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ベタジン</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>マウスベンチレーター</td><td>ヒューゴサックスElektronnik</td><td>Miniventタイプ845</td><td></td></tr><tr><td>イソフルラン気化器</td><td>オーメダ</td><td>エクセル210 SE</td><td></td></tr><tr><td>人工涙液軟膏</td><td>Puralube</td><td>NDC:17033-211-38</td><td></td></tr></tbody></table>

代償肺の成長のマウス肺モデル

Mouse Pneumonectomy Model of Compensatory Lung Growth

人間では、損傷した肺の修復とリモデリングが乱れると、多くの急性および慢性の肺障害を引き起こし、最終的には障害や死につながる可能性があります。肺の修復と再生の損傷ベースの動物モデルは、損傷特異的な応答によって制限されているため、損傷反応と損傷の解決に関連する変化を肺修復と肺再生に関連する変化と区別することは困難です。しかし、これらの修復および再生シグナル伝達経路を特定するための動物モデルの使用は、肺損傷後の肺機能の改善を目的とした新しい治療法の開発にとって重要です。マウス肺切除モデルは、代償性肺の成長を利用して、これらの修復および再生シグナルを分離し、肺胞再敗血症のメカニズムをより明確に定義します。ここでは、マウス肺摘出術と偽肺摘出術の手技についてご説明します。この技術は、系統追跡または他のトランスジェニックマウスモデルと組み合わせて使用 され、肺の修復および再生の分子的および細胞的メカニズムを定義することができます。

。PNXと偽肺の両方のための100％ - PNXと偽手術マウスの体重のプロットを図6に提供されている我々の手では、生存率は一貫して95です。右肺がこのモデルと予想される時間経過に再成長する方法の詳細については、我々はギブニーら 15及びWang らの原稿を読者に参照してください。14 いくつかの一般的な落とし穴が正常マウスPNXとマウス偽肺手順を実行するに避けなければならない。 気管内挿管 ：マウスPNXテクニックを学ぶ多くの研究者は、気管内挿管との難しさを持っている。マウスの喉頭を前方および気管内カテーテルが声帯を通過する必要がありますされると、カテーテルが食道に合格するために、それは簡単です。 図1Aに示したように、鈍い先端がカテーテルをCURVA以下のできるだけ前方ように傾斜する必要があります正中線に沿って舌のトゥーレ、その後静かに圧力...

マウス肺摘出術は、一般的に採用されている代償性肺成長モデルです。この手順は、系統追跡またはトランスジェニックマウスモデルと組み合わせて使用 し、根本的なメカニズムを解明することができます。

In humans, disrupted repair and remodeling of injured lung contributes to a host of acute and chronic lung disorders which may ultimately lead to ...

本手順の目的は、左肺全摘術を行い、右肺の代償性成長を誘導することです。まず、左開胸術を行い、左肺門を露出させます。次に、左肺門および左肺動脈を結紮します。3番目のステップは左肺を摘出することです。最後のステップは胸腔切開部を閉鎖することです。代償性肺成長のマウス肺摘出モデルは、他のバイオメトリクスまたは生化学的手法と併用することで、肺胞の成長と再生のメカニズムを解明するために利用できます。この手法は、肺の発達および再生分野におけるいくつかの重要な疑問、例えば、中隔形成に関与する主要な細胞プロセスは何か、また中隔形成を再開させるために必要な決定的な細胞分子プロセスは何か、といった問いに答えることができます。一般的に、この技術に不慣れな研究者は、いくつかの重要なステップのいずれかで困難に直面することがあります。特に、気管カニュレーションに苦労する場合があるでしょう。適切な手術野の確保に苦慮する場合があるほか、肺門の同定と結紮に困難を伴う可能性があり、また、偽手術（sham thoracotomy）の際に左肺への損傷を避けることが難しい場合もあります。本手順のデモンストレーションは、私の研究室のシニアラボアシスタントであるShang Luが行います。まず、2% isof fluorineでマウスを麻酔し、電気シェーバーで左胸部および頸部を除毛します。次に、マウスの眼に人工涙液軟膏を塗布し、クロルヘキシジンで3回、続いてイソプロピルアルコールで3回、最後に再びクロルヘキシジンで拭き取り、術野を消毒します。3回行います。喉頭を露出させるため、頸部前方中央に1cmの垂直切開を加えた後、強いつまみ刺激に対する反応がないことを確認して麻酔深度を判定します。その後、10cmのセレーション付き鉗子を用いてストラップ筋を軽く牽引し、直剪刀の先端でストラップ筋を広げます。次に、22ゲージの鈍端アンギオカテーテルを口経由で気管中部に挿入し、切開部位を通して配置を視覚的に確認します。マウスを齧歯類用人工呼吸器に接続し、2% isof fluorineで麻酔を維持し、圧力制限を15 centimeters.Waterに設定します。麻酔状態のマウスを、左側を操作者側に向けて右側臥位に配置します。滅菌ドレープとして、マウスの体に自己粘着性プラスチックラップを被せます。先端が丸い曲剪刀を用い、第4および第5肋間において、肋骨に平行に2 cmの切開を加えます。次に、剪刀の先端を挿入し、皮膚を下の肋骨および肋間筋から剥離します。皮膚に4つのリトラクターを配置し、1.5 by 1.5 centimeterの術野を形成します。各リトラクターをコルクボードに固定します。曲線鉗子を用いて肋骨まで剥離し、その後、肋間を鈍的に剥離します。第4肋骨と第5肋骨を露出させるため、曲がったピンセットの先端を用いて、胸

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閉塞性細気管支炎は、肺移植の長期生存に重要な障害と堅牢な前臨床モデルの欠如である閉塞性細気管支炎の免疫病原性を調べて排除します。他の固形臓器移植とは異なり、血管新生マウス肺移植は、ごく最近開発されました。ここでは、マウス同所性単肺移植後に独自に開発した閉塞性細気管支炎モデルを示しています。...

同所性肺移植のマウスモデルにおける閉塞性細気管支炎の開発

ここでは、マウスの肺圧-体積曲線を簡単かつ確実に測定するためのプロトコルを提示し、それが2つの一般的な肺の病状、肺線維症と肺気腫の表現型実質変化を検出するのに十分な感度を持つことを示しています。この指標は、病状の進行に伴う肺の構造変化を定量化する手段を提供します。...

マウス肺における圧力 - 容積曲線の測定

本研究では、オゾンの高濃度にマウスを繰り返しさらすことによって新しい慢性閉塞性肺疾患 (COPD)...

繰り返しオゾン暴露によるマウスの慢性閉塞性肺疾患モデルの生成

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マウス肺切除術および義歯移植による内臓肺表面積の標準化法

齧歯動物左肺全摘術は、肺高血圧症研究の貴重な手法です。ここでは、ラット肺全摘術の手順と最小限の罹患率と死亡率を確保するため術後のケアについて説明するためのプロトコルを提案する.

組み合わせてモノクロまたは Sugen 肺高血圧ラットのモデルとして左肺全摘

ここでは、転帰の改善に役立つラット肺移植モデルの最適化を提示します。体重に基づくカフのサイズガイド、4番目の...

温虚血/再灌流損傷のラット肺移植モデル:転帰を改善するための最適化

我々は、教育目的で肺の力学と歯槽の動員操作のデモンストレーションのために ex vivo...

Ex Vivo(エクス・ビボ )肺力学の研究と教育のためのブタ実験モデル

このプロトコルは、気管支肺異形成の分子トリガーの理解を促進し、治療翻訳を強化するために、不十分な界面活性剤量、高酸素、高圧換気、炎症など、早産肺で発生する初期の病原性事象をモデル化する急性肺損傷の新生児子豚モデルの開発について説明しています。...

早産児肺の初期環境を再現した新生児子豚急性肺損傷モデルの開発

本論文では、マウスが回復することを可能にし、それ以降の回で学んだことが肺機能測定や肺点滴用のマウスを挿管のstriaghforwardかつ効率的な方法を説明します。手続きは、直接気管を照らす安価な光ファイバ光源を必要とする。...

マウス肺挿管の簡単な方法

診断用超音波イメージングは​​、ヒトおよび動物対象の様々な呼吸器疾患の診断に有効であることが証明されている。我々は、特異的マウスモデルにおいて振動板動態を分析するためにZuoの博士の研究室によって利用される総合的な超音波プロトコルを示す。これはまた、マウス呼吸筋機能に関する定量的情報を提供することができる非侵襲的な研究技術である。...

マウス絞り機能の診断用超音波イメージング

学ぶマウス肺切除モデルによる代償的肺成長の誘導法。左開胸術と肺動脈結紮を用いて残存肺の再生メカニズムを解明し、肺発生と組織修復の重要な細胞プロセスを研究します。

代償肺の成長のマウス肺モデル

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