Name: SDF-1α-キトサン硫酸デキストランナノ粒子の調製とキャラクタリゼーション (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-01-22T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min
Description: 学ぶSDF-1αをデキストラン硫酸-キトサンナノ粒子に封入する方法。粒子サイズ、ゼータ電位、SDF-1α活性を測定し、幹細胞ホーミング因子の機能を評価する。

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HL671795、HL048743、およびHL108630：この作品は、NIHの助成金によってサポートされていました。

SDF-1αグリカンナノ粒子の作製 インビボ送達の目的のために、調製に使用される全ての容器、ピペット、とヒントを滅菌する。 <ol><li>超純水で、次のストック溶液の準備：1％硫酸デキストランを。 1 MのNaOH（滅菌PES膜で濾過したもの）; 0.2％の氷酢酸中の0.1％キトサン（連続して、0.8〜0.22μmのフィルターを通して濾過し、その後NaOHでpHを5.5に調整する）; 0.1 MのZnSO 4。 15％マンニトール。 0.92 mg / mlのSDF-1α（80℃でアリコートで保存し、4℃で維持を一旦解凍C）。 </li><li> 0.22μmのフィルター膜を通すストック溶液を滅菌する。カブトガニ変形細胞溶解物（LAL）ゲルクロットアッセイと調製した溶液中のエンドトキシンレベルを評価。レベルは&lt;0.06 EU / mlであることを確認します。 </li><li>磁気撹拌棒を含む1.5 mlのガラスバイアルに0.18ミリリットルの超純水を加える。 800rpmで撹拌速度を設定します。 0.1ミリリットルの1％を追加します。硫酸デキストラン、2分間撹拌した。 0.08 mgのSDF-1α（0.92 mg / mlのSDF-1α溶液を0.087ミリリットル）を追加し、20分間攪拌。 </li><li> 0.33ミリリットルの0.1％キトサンを滴下して添加し、5分間撹拌した。最大に変更し、撹拌速度をと（1分以上）0.1ミリリットルの注射器でゆっくりと0.1ミリリットルの0.1MのZnSO 4を追加します。 </li><li>を800rpmに攪拌速度を戻し、30分間撹拌した。 0.4ミリリットルの15％のマンニトールを加え、5分間攪拌する。 1.5mlマイクロチューブに反応混合物を転送します。 10分間4℃で16000×gで遠心し。 注意：マンニトールの存在は、遠心分離後の粒子の再懸濁を容易にします。ペレットの小型化に応じて、マンニトールの濃度は、0％から5％に変化させることができる。各遠心分離後の粒子の完全な再懸濁は、最終懸濁液中の凝集を回避することが重要です。 </li><li>上清を吸引し、ゆっくりと液体の最後の一滴を削除するには、ピペットを使用しています。 0.2ミリリットルの5％マンニトールを追加します。 0.5ミリリットルとのペレットを中断し、29 G旧姓DLE注射器。 1ミリリットルの5％マンニトールを追加します。 15分間16000×gで遠心分離する。 </li><li>手順を繰り返し1.6。 </li><li>上清を吸引除去する。 0.2ミリリットルの5％マンニトールでペレットを再懸濁。 4℃で粒子懸濁液に保管してください。 注：粒子懸濁液は、-80℃で凍結または凍結乾燥することができる。懸濁液中を含む5％のマンニトールを凍結融解した後、凍結乾燥及び再水和の後、粒子の凝集を防止することが必須である。マンニトールは、保存後の懸濁液の遠心分離により除去することができる。 </li></ol>粒子径およびゼータ電位の2.測定粒径およびゼータ電位を素材リストに示され、粒子分析器を用いて、それぞれ、動的光散乱法、電気泳動光散乱によって分析される。 <ol><li>積算回数：以下の粒子サイズ測定のためのパラメータを設定する70。リピート回数：4;温度：25°C。希釈液：水;強度調整：オート。 </li><li>水（10倍希釈）とSDF-1α-DS-CSサンプルを希釈する。そのようなエッペンドルフキュベットのような使い捨てのUVキュベットに100μlの試料をロードします。セルホルダーにキュベットを挿入します。 「最適」（〜万CPS）に到達するために強度調整を待ちます。データ収集を開始します。 </li><li>測定が完了した後、直径（nm）であり、多分散性指数のキュムラントの結果を記録する。 4繰り返し測定値のそれぞれから得られた結果を平均し、標準偏差を計算する。 </li><li>負荷ゼータ電位測定用のフローセルに10倍希釈された粒子試料を500μl。蓄積時間：以下の測定のためのパラメータを設定し10と、リピート回数：5;温度：25°C。希釈液：水;強度調整：オート。ゼータ電位（MV）の結果を記録します。平均の結果は、5を繰り返し測定値のそれぞれから得られ、標準deviatioを計算N。 </li></ol>粒子におけるSDF-1αの3定量<ol><li> 1.3倍Laemmliサンプルバッファーで0.01、0.02、0.03、0.04、および0.05 mg / mlの濃度に自由形式のSDF-1αを希釈する。 40μlの1.3倍Laemmliサンプルバッファーで6μlのSDF-1α-DS-CSサンプルを希釈する。 （0.05ミリグラム/ブロモフェノールブルーミリリットル、8％2-メルカプトエタノール0.25 Mトリス塩酸、pHが7.5、8％SDS、40％グリセロールを含む4倍レムリストック緩衝を準備します。小さなアリコートに原液を分割し、-20℃で保つ単回使用のためにCを°。） </li><li> 10分間100℃で試料を加熱する。渦完全に粒子を解離するために、10分の加熱時間の間、二倍のサンプル（最大速度で10秒間ずつ）。 2分間RTにサンプルをクールダウン。凝縮水をダウンさせるために30秒〜1分間万×gで遠心し。もう一度よく混ぜるする渦。 注：この時点では、試料液が目に見える沈殿物が存在すると明確にする必要があります。 </li><li>負荷10＆＃181; Lサンプル/ウェルに4〜20％SDSゲル。 20分間200Vで電気泳動を実行します。クマシーブルータンパク質染色でゲルを染色。 </li><li>分子イメージャとトメ解析ソフトウェアを使用して、SDF-1αのタンパク質バンドの密度を調べます。無料のSDF-1α基準に作成した標準曲線に対して粒子中のSDF-1αの量を計算します。 </li></ol> インビトロ放出アッセイ4. <ol><li> 1でカルシウムとマグネシウム（D-PBS）なしのダルベッコのリン酸緩衝生理食塩水でSDF-1αグリカン粒子を混ぜる：1の比（v / v）である。 </li><li> 1.5ミリリットルチューブ内の0.05ミリリットルのアリコートに粒子懸濁液を分割します。チューブの底にサンプルをロードします。気泡を導入するか、液体の表面を乱さない。パラフィルムを有する管の上部をシール。 注：その際、液体がチューブミキサーに後続の上から下への回転時に底に残る。 </li><li> 37でチューブを回転させて＃176; C回転マイクロ​​チューブミキサーで。指定された時間にチューブからアリコートを取り出し、すぐに4℃で10分間16000×gでサンプルを遠心する。 </li><li>上清およびペレットを分離し、0.05ミリリットルD-PBSでペレットを再構成。 -20℃でサンプルを保管してください。全てのサンプルが収集された後、上述したように、SDSゲル上で上清およびペレットを調べる。 </li></ol> 5.移動アッセイこのアッセイは、SDF-1αの走化性活性を測定します。細胞表面上のその受容体（CXCR4）とSDF-1αの相互作用は、SDF-1αの勾配に向かって細胞の遊走を引き起こす。このアッセイでは、細胞が低くウェルに及びSDF-1α溶液（下井戸から半透膜で区切られた）上部のウェルにロードされます。 <ol><li> SDF-1αを希釈（遊離または粒子に結合した形）3-foのマイグレーションバッファー（0.5％ウシ血清アルブミンを含むRPMI-1640培地）と100、33、11、3.7、1.2、0.41、0.14、および0.05 ng / mlの最終濃度にLDの連続希釈。 </li><li> 24ウェルプレート中のウェルに希釈したSDF-1αソリューションや移行バッファーのみ（陰性対照）の0.6ミリリットルを追加します。ウェル（入力セル制御）に0.57ミリリットルの移行バッファを追加します。 30分間37℃でインキュベートする。そのような低いウェルの上にトランスウェル（孔径5μmの、直径6.5ミリメートル）のような透過性細胞培養インサートを置きます。トランスウェルインサートにロード0.1ミリリットルジャーカット細胞（5×10 5）。よく直接入力セルコントロールに0.03ミリリットルの細胞をロードします。 5％CO 2インキュベーター中で2時間、37℃でプレートをインキュベート。 </li><li>トランスウェルインサートを取り外します。 4ミリリットルポリスチレンチューブに下のウェルに移動した細胞を転送します。フローサイトメーターで移動した細胞を数える。 </li><li> negat内の数字を引いた後の入力セル数（ウェル100/30入力xセル制御中の細胞数）の割合としての移行を計算するコントロール（のみ泳動緩衝液を含むウェルに遊走した細胞）をアイブ。 </li></ol>

<ol><li>Delair, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Colloidal+polyelectrolyte+complexes+of+chitosan+and+dextran+sulfate+towards+versatile+nanocarriers+of+bioactive+molecules%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Pharm+Biopharm%22%5BJournal%5D)">Colloidal polyelectrolyte complexes of chitosan and dextran sulfate towards versatile nanocarriers of bioactive molecules.</a> Eur J Pharm Biopharm. 78 (1), 10-18 (2011).</li>
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<li>Amara, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stromal+cell-derived+factor-1alpha+associates+with+heparan+sulfates+through+the+first+beta-strand+of+the+chemokine%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Stromal cell-derived factor-1alpha associates with heparan sulfates through the first beta-strand of the chemokine.</a> J Biol Chem. 274 (34), 23916-23925 (1999).</li>
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<li>Yin, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SDF-1alpha+in+glycan+nanoparticles+exhibits+full+activity+and+reduces+pulmonary+hypertension+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Biomacromolecules%22%5BJournal%5D)">SDF-1alpha in glycan nanoparticles exhibits full activity and reduces pulmonary hypertension in rats.</a> Biomacromolecules. 14 (11), 4009-4020 (2013).</li>
<li>Huang, M., Vitharana, S. N., Peek, L. J., Coop, T., Berkland, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polyelectrolyte+complexes+stabilize+and+controllably+release+vascular+endothelial+growth+factor%5BTitle%5D)+AND+%22Biomacromolecules%22%5BJournal%5D)">Polyelectrolyte complexes stabilize and controllably release vascular endothelial growth factor.</a> Biomacromolecules. 8 (5), 1607-1614 (2007).</li>
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<li>Carrillo-Conde, B. R., Roychoudhury, R., Chavez-Santoscoy, A. V., Narasimhan, B., Pohl, N. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+synthesis+of+carbohydrates+and+functionalization+of+polyanhydride+nanoparticles%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">High-throughput synthesis of carbohydrates and functionalization of polyanhydride nanoparticles.</a> J Vis Exp. (65), 3967(2012).</li>
<li>Xu, J., Amiji, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Therapeutic+gene+delivery+and+transfection+in+human+pancreatic+cancer+cells+using+epidermal+growth+factor+receptor-targeted+gelatin+nanoparticles%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Therapeutic gene delivery and transfection in human pancreatic cancer cells using epidermal growth factor receptor-targeted gelatin nanoparticles.</a> J Vis Exp. (59), e3612(2012).</li>
<li>Lauten, E. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanoglycan+complex+formulation+extends+VEGF+retention+time+in+the+lung%5BTitle%5D)+AND+%22Biomacromolecules%22%5BJournal%5D)">Nanoglycan complex formulation extends VEGF retention time in the lung.</a> Biomacromolecules. 11 (7), 1863-1872 (2010).</li>
<li>Schatz, C., Domard, A., Viton, C., Pichot, C., Delair, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Versatile+and+efficient+formation+of+colloids+of+biopolymer-based+polyelectrolyte+complexes%5BTitle%5D)+AND+%22Biomacromolecules%22%5BJournal%5D)">Versatile and efficient formation of colloids of biopolymer-based polyelectrolyte complexes.</a> Biomacromolecules. 5 (5), 1882-1892 (2004).</li>
</ol>

著者らは、競合する金銭的利益はないと宣言している。

上記のように、DS-CSナノ粒子はポリアニオン（DS）及びポリカチオン（CS）分子間の電荷中和により形成される。電荷相互作用は、分子衝突の間に容易に起こるので、混合中のポリマー溶液と撹拌速度の濃度は、得られた粒子のサイズのために重要である。一般的な傾向は、よりDSとCSのソリューション15と、より小さい粒子より高い撹拌速度結果を希釈することである。 SDF-1αグリカンのナノ粒子製剤を変化させることができる。例えば、このプロトコルで使用されるSDF-1α/ DS / CSの量および比はそれぞれ、0.08 / 0.33 / 1（ミリグラム/ミリグラム/ mg）である。 SDF-1αのナノ粒子の使用目的に応じて、これらの比率を変更することができる。 SDF-1αの量を混合物に加えた場合の代わりに0.08ミリグラムの0.04ミリグラム（0.04 / 0.33 / 1、MG / MG / mg）であり、粒子がわずかに小さい、〜650nmであり、SDF-1αの捕捉効率になりますグラムreater 70〜80％9。 インビボで送達...

デキストラン硫酸（DS）及びキトサン（CS）は、（CSを脱アセチル化）（DS）の複数の置換、負に帯電した硫酸基を有する多糖類である、又は正に帯電したアミン基を。水溶液中で混合する場合、2つの多糖類は、静電相互作用を介して高分子電解質複合体を形成する。得られた複合体は、水溶液（沈殿物）からの相分離、または水分散性（コロイド）である小さい粒子となり、大きな凝集体を形成することができる。これらの成果に貢献する具体的な条件は、広く研究されており、最近の総説1にまとめ、詳細に説明してきた。これらの条件の中で、水分散性粒子を製造するための2つの基本的な要件は反対に荷電したポリマーは、1）著しく異なるモル質量を持っている必要がある。 2）非化学量論比で混合する。これらの条件は、電荷によって発生した電荷中立複合化ポリマーセグメントを許可します中和は、分離し、粒子のコアを形成し、過剰なポリマーは、外殻1を形成するためである。このプロトコールに記載されたグリカン粒子は、肺送達のために意図され、負に帯電し、ナノメートル寸法の正味のように設計されている。負の表面電荷は、粒子2,3の細胞取り込みの可能性を低減する。ナノメートル寸法の粒子は、遠位気道の通過を容易にする。この目標を達成するために、この調製に用いられるDSの量は、CSの過剰である（重量比3：1）。及び高分子量DS（重量平均MW50万）および低分子量CS（MW範囲50から190 kDaの、75％〜85％脱アセチル化）が使用されている。 SDF-1αは、その走化性活性を通じてホーミング機能を発揮する幹細胞のホーミング因子である。 SDF-1αは、ホーミングおよび骨髄中の造血幹細胞の維持に重要な役割を果たし、progeの動員傷害の修復4,5のための末梢組織へnitor細胞。 SDF-1αタンパク質は、プロテアーゼ（CD26 / DPPIV）不活性化から保護され、ヘパリン/ヘパラン硫酸、フォームダイマーに結合し、細胞表面受容体を介して標的細胞と相互作用することができ、そのタンパク質配列において、ヘパリン結合部位を有する6-8。 DSはヘパリン/ヘパラン硫酸と同様の構造特性を持つ。このように、DSにSDF-1αの結合は、その天然高分子リガンドのものと同様であろう。 以下のプロトコールでは、SDF-1α-DS-CSナノ粒子の調製を記載する。手順は以前に9を検討されてきた製剤のいずれかを表す。プロトコルは、もともとVEGF-DS-CSナノ粒子10の調査から適合される。小規模調製物は、容易に同一のストック溶液と製造条件をスケールアップすることができ、記載されている。調製の後、粒子がbを特徴とするyは、それらのサイズ、ゼータ電位、SDF-1α取り込みの程度を、in vitroでの放出時間、及び組み込まれたSDF-1αの活性を調べる。

<table><tbody><tr><td>デキストラン硫酸</td><td>フィッシャー</td><td>BP1585-100</td><td></td></tr><tr><td>キトサン 低分子量&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>448869</td><td></td></tr><tr><td>硫酸亜鉛七水和物</td><td>Sigma</td><td>204986</td><td></td></tr><tr><td>D-マンニトール</td><td>Σ</td><td>M9546</td><td></td></tr><tr><td>超純水&nbsp;</td><td>インビトロジェン&nbsp;</td><td>10977-023</td><td></td></tr><tr><td>SDF-1&α;</td><td>参考文献8に従って調製した。</td><td></td><td></td></tr><tr><td>シリンジフィルター、PESメンブレン0.22&nbsp;&#956;m</td><td>ミリポア</td><td>SLGP033RS</td><td></td></tr><tr><td>磁気マイクロ攪拌棒 (2&nbsp;x&nbsp;7&nbsp;mm)</td><td>フィッシャー&nbsp;</td><td>14-513-63</td><td></td></tr><tr><td>ガラスバイアルキット;SUN-SRi</td><td>フィッシャー&nbsp;</td><td>14-823-182</td><td></td></tr><tr><td>Delsa Nano C 粒子分析装置&nbsp;</td><td>バックマンコールター</td><td></td><td></td></tr><tr><td>エッペンドルフUVetteキュベット</td><td>エッペンドルフ</td><td>952010069</td><td></td></tr><tr><td>4&ndash;20% ミニプロティアン TGX ゲル</td><td>バイオ・ラッド</td><td>456-1096</td><td></td></tr><tr><td>GelCode Blue Safe Protein Stain Fisher</td><td>&nbsp;</td><td>PI-24592</td><td></td></tr><tr><td>分子イメージャー VersaDoc MP 4000 システム</td><td>BioRad</td><td>170-8640</td><td></td></tr><tr><td>Corning Transwell 透過性サポート</td><td>Corning</td><td>3421</td><td></td></tr><tr><td>Accuri C6 Flow Cytometer</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco'リン酸緩衝生理食塩水&nbsp;</td><td>シグマ</td><td>D8537</td><td></td></tr><tr><td>パイロジェントプラスキット</td><td>フィッシャー</td><td>NC9753738</td><td></td></tr></tbody></table>

sdf-1α-キトサン硫酸デキストランナノ粒子の調製とキャラクタリゼーション

Preparation and Characterization of SDF-1&#945;-Chitosan-Dextran Sulfate Nanoparticles

キトサン(CS)とデキストラン硫酸(DS)は荷電多糖類(糖鎖)であり、適切な条件下で混合すると高分子電解質複合体ベースのナノ粒子を形成します。 糖鎖ナノ粒子は、タンパク質の生体内送達を促進し、標的組織での保持を維持するタンパク質因子の有用な担体です。 また、糖鎖高分子電解質複合体は、水溶液中での取り込みが行われ、タンパク質の不活性化の可能性が減少するため、タンパク質の送達にも理想的です。 ヘパリン結合部位を持つタンパク質は、デキストラン硫酸塩に容易に付着し、結合によって安定化されます。また、これらの粒子は、in vivoで送達された場合、炎症性や毒性が低くなります。 以下に述べるプロトコールでは、幹細胞ホーミング因子であるSDF-1α(Stromal cell-derived factor-1α)をまずデキストラン硫酸と混合し、インキュベートします。 キトサンを混合物に添加して高分子電解質錯体を形成し、続いて硫酸亜鉛を添加して亜鉛架橋で錯体を安定化させます。 得られたSDF-1α-DS-CS粒子は、サイズ(直径)と表面電荷(ゼータ電位)を測定します。 取り込まれたSDF-1αの量を決定し、続いてそのin vitro放出速度と粒子結合した走化性活性を測定します。

調製されたSDF-1α-DS-CS粒子のサイズとゼータ電位は、粒子分析器を用いて測定される。1、サイズ測定の分析を示す図 。 4反復測定から得られたキュムラント結果から、SDF-1α-DS-CS粒子の平均流体力学的直径は661±8.2（nm）であり、多分散性は0.23±0.02である。ゼータ電位測定の結果を図2に示されている5つ繰り返し測定から、SDF-1α-DS-CS粒子のゼータ電位は、-24.8±0.5 mVである。 SDF-1α-DS-CS粒子懸濁液を凍結融解プロセスの間に粒子の凝集を防止するために必須である5％のマンニトールの存在は、上述したように、 図3は、水中に懸濁された粒子のサイズ測定を示すとで凍結-80℃。明確な集約のピークは解凍後表示されます。 AMOSDF-1α-DS-CS粒子におけるSDF-1αのUNTは、SDSゲル電気泳動により推定される。 図4Aは、SDF-1αの組み込みなし、SDF-1...

このプロトコルの目的は、幹細胞のホーミング因子であるSDF-1αをデキストラン硫酸-キトサンナノ粒子に組み込むことです。 得られた粒子は、そのサイズとゼータ電位、およびナノ粒子からのSDF-1αの含有量、活性、およびin vitro放出速度について測定されます。

SDF-1α-キトサン硫酸デキストランナノ粒子の調製とキャラクタリゼーション

Chitosan (CS) and dextran sulfate (DS) are charged polysaccharides (glycans), which form polyelectrolyte complex-based nanoparticles when mixed under ...

本実験の全体的な目的は、SD F1 Alpha Chiasおよびデキストラン硫酸ナノ粒子の調製と特性評価を行うことです。ナノ粒子の調製は、まず幹細胞ホーミング因子であるストローマ細胞由来因子1アルファ（S df one alpha）をデキストラン硫酸と混合し、負に帯電したグリカンへの結合を可能にすることで行われます。第2のステップとして、正に帯電したグリカンであるozanを混合物に添加し、デキストラン硫酸とのポリ電解質複合体を形成させます。次に、亜鉛ブリッジによる複合体を安定化させるために、硫酸亜鉛を添加します。これにより、負に帯電したシェルに囲まれた高密度なコアを持つ粒子が形成されます。続いて、粒子のサイズとゼータ電位、およびナノ粒子中のSDF-1αの含有量と活性を測定します。SDF-1αグリカンナノ粒子の主な利点は、組み込まれたSDF-1αが粒子から放出されることなく、完全に活性を維持していることです。したがって、これらの粒子は幹細胞治療における固定的なヘルミン信号として有用である可能性があります。まず、テキストプロトコルに従ってストック溶液を調製し、0.22 micronのフィルターメンブレンで滅菌します。調製した溶液中のエンドトキシンレベルを、カブトガニ血球抽出物（LAL）ゲル化法を用いて評価します。エンドトキシンレベルが0.06 endotoxin units per milliliter未満であることを確認します。次に、マグネチックスターラーを入れた1.5 milliliterガラスバイアルに、0.18 millilitersの超純水を加えます。撹拌速度を800 RPMに設定し、0.1 millilitersの1%dextran sulfateを加えて2分間撹拌します。SD F1 alphaを0.08 milligrams加え、20分間撹拌します。0.1%tizenを0.33 millilitersずつ滴下し、5分間撹拌します。撹拌速度を最大に変更し、ガスタイトシリンジを用いて硫酸亜鉛を0.1 millilitersゆっくりと加えます。撹拌速度を800 RPMに戻し、30分間撹拌します。次に、15%マンニトールを0.4 milliliters加え、5分後に撹拌します。反応混合物を1.5 milliliterの遠心チューブに移し、16,000 Gs、4 °Cで10分間遠心分離します。遠心分離後、上清を吸引し、ピペットを用いて最後の一滴まで液体を除去します。0.2 millilitersの5%mannitolをゆっくりと加え、0.5 milliliter 29ゲージ針付きシリンジでペレットを懸濁させます。その後、さらに1 milliliterの5%manitolを加えてから、再度遠心分離を行います。次に、16,000 GSで15分間、再度遠心分離を行います。Resus懸濁液の遠心分離工程を繰り返した後、上清を吸引し、ペレットを0.2 millilitersの5%mannitolで再懸濁します。粒子径およびゼータ電位は、それぞれ動的光散乱法および電気泳動光散乱法を用いて分析します。まず、動的光散乱法による粒子径測定のパラメータが含まれているSOPリストから、操作手順を選択します。テキストプロトコルに記載されている通り、SD F1 alpha粒子試料を水で希釈します。次に、Einor Q Vetなどの使い捨てUV Q Vetに、試料を100 µL分ロードします。Q vetをセルホルダーに挿入し、データ収集を開始する前に強度調整が最適になるまで待機します。測定完了後、直径と多分散指数（poly dispersity index）の累積結果を記録します。4回の繰り返し測定から得られた結果の平均値を算出し、電気泳動光散乱法によるゼータ電位測定の標準偏差を計算します。10倍に希釈した粒子試料500 µLをフローセルにロードします。テキストプロトコルに記載されている測定パラメータが含まれているZeta potential SOPリストから、操作手順を選択します。ゼータ電位の結果を記録します。次に、5回の反復測定で得られた結果の平均値を出し、標準偏差を算出します。遊離型および粒子結合型のSD F1 alphaの希釈試料を、Laemmliサンプルバッファー中で100 °Cで10分間加熱します。粒子を完全に解離させるため、10分間の加熱中に2回ボルテックスミキサーで撹拌します。試料を室温で2分間冷却した後、10,000 Gsで0.5〜1分間遠心分離して結露を落とし、再度ボルテックスミキサーでよく混合します。この時点で、試料溶液は透明で、目に見える沈殿物がない状態である必要があります。次に、4〜20%の硫酸ナトリウム（SDS）ゲルまたはSDS-PAGEゲルに、1ウェルあたり10 µLの試料をロードします。200 Vで20分間電気泳動を行い、その後、クマシーブルータンパク質染色液でゲルを染色します。分子イメージャーおよびデンシトメトリー解析ソフトウェアを用いて、SDF-1αのタンパク質バンド密度を測定します。遊離SDF-1α標準品を用いて作成した標準曲線に基づき、粒子中のSDF-1α量を算出することで、in vitro放出試験を実施します。SDF-1αグリカン粒子と、カルシウムおよびマグネシウム不含ドゥルベッコPBS（DPBS）を1:1の比率で混合します。この粒子懸濁液を0.05 mLずつ、1.5 mLチューブに分注します。チューブの底にサンプルを分注します。気泡の混入や液面の乱れがないように注意してください。チューブの上部をパラフィルムで密封します。次に、チューブを回転式マイクロチューブミキサーを用いて37 °Cで回転させます。指定の時間にチューブから分注し、直ちに4 °Cで10分間、16,000 Gで遠心分離します。遠心分離後、上清とペレットを分離します。次に、ペレットを0.05 millilitersのDPBSで再懸濁します。すべてのサンプルの回収後、上清とペレットをSDSゲルで解析します。前述の通り、このアッセイではS dfの化学走性活性を測定します。SDF-1αとその受容体の相互作用により、細胞はSDF-1αの濃度勾配に向かって遊走します。まず、遊走バッファーを用いて、遊離型または粒子結合型のSDF-1αを3倍段階希釈し、テキストプロトコルに記載されている最終濃度まで希釈します。陰性対照として、希釈したSDF-1α溶液0.6 millilitersを24ウェルプレートのウェルに加えます。移行バッファーのみについても同様に行い、次に入力細胞コントロール用のウェルに移行バッファーを0.57 milliliters添加します。プレートを37 degrees Celsiusで30分間インキュベートします。その後、Transwellなどの透過性細胞培養インサートを下側のウェルの上に配置し、0.1 millilitersのjerk hat cellsをTranswellインサートにロードします。次に、0.03 millilitersの細胞を入力細胞コントロールウェルに直接注入します。プレートを5%carbon dioxideインキュベーター内で37 degrees Celsiusで2時間インキュベートします。インキュベーション後、細胞培養インサートを取り除きます。下層ウェルに遊走した細胞を4 mLのポリスチレンチューブに移します。遊走した細胞数をフローサイトメーターで計測してください。最後に、ネガティブコントロールの値を差し引いた後、投入細胞数に対する遊走率を割合（%）で算出します。ここでは、SD F1 alpha dextran sulfate ozanの粒子径測定の解析結果を示します。CUMULの結果から、粒子の流体力学的直径は671 nanometersであり、多分散度は0.24であることがわかります。このスクリーンショットは、SD F1 alpha DExT strand sulfate ozan粒子のゼータ電位を5回繰り返し測定したうちの1回分を示しています。ゼータ電位は-24.7 mVです。S df one alpha dextran sulfate ozan粒子のなかのS df one alphaの量は、SDS-PAGEによって推定されます。ここでは、S df one alpha標準品、dextran sulfate kaizanコントロールナノ粒子、およびS df one alpha dextran sulfate kaizanナノ粒子サンプルをロードし、クマシー染色したSDSゲルを示しています。SD F1 Alpha Standardバンドの密度解析から標準曲線を作成します。標準曲線による算出の結果、SDF one alphaナノ粒子サンプル中のS DF one alpha濃度は0.03 mg/mLであることが示されました。ナノ粒子からのS DF one alphaのin vitro放出率を決定するため、上清中の放出S DF one alpha量およびペレット中の粒子結合型sdf one alpha量を、SDSゲルでのクマシー染色およびそれに続くサイトメトリー解析により定量しました。粒子結合型S DF one alphaの活性は、ここに示すように遊離SDF one alphaと比較して、遊走アッセイにより測定されます。粒子結合型SDF-1αは、測定したすべての濃度において、遊離SDF-1αと同程度の遊走を誘導しました。この手順を行う際は、糖タンパク質粒子の組成を変更可能であることを念頭に置くことが重要です。具体的な用途に応じて、他のタンパク質を組み込んだり、異なる組成を用いて粒子径を変化させたりすることができます。このビデオでは、ナノ粒子の調製の基礎技術と、それに組み込まれたSDF-1αの機能解析について解説しています。

preparation-characterization-sdf-1-chitosan-dextran-sulfate

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学ぶSDF-1αをデキストラン硫酸-キトサンナノ粒子に封入する方法。粒子サイズ、ゼータ電位、SDF-1α活性を測定し、幹細胞ホーミング因子の機能を評価する。

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