Name: パッチクランプ技術を用いたダーク適応、マウス網膜スライス標本におけるニューロンにおける記録光誘発シナプス後応答 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-02-11T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 30 s
Description: 学ぶパッチクランプ技術によるマウス網膜スライス標本の暗適応ニューロンからの光誘発シナプス後応答記録法。この手法は網膜生理学と神経科学研究に応用可能です。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

この作業は、NIH R01 EY020533、WSU Startup Fund、およびRPB助成金によって支援されました。

倫理声明：動物を対象とする手順は、ウェイン州立大学の施設内動物管理使用委員会（IACUC）によって承認された。 実験ソリューションの調製<ol><li>実際の実験の前に1週間に解剖ソリューション1日を準備します。なぜなら、より低い温度16でのその強力な緩衝能の網膜解剖のためのHEPES緩衝液を使用してください。 115のNaCl、2.5のKCl、2.5のCaCl 2、1.0のMgCl 2、10 HEPES、28グルコース：（mm）を次のようにすべての化学物質を混ぜる。 NaOHでpHを7.4に調整します。 1週間に冷蔵庫までに解決してください。 </li><li>記録液は、網膜の準備17用に設計された人工脳脊髄液（aCSFの）であるエイムズ」媒体である。実験の日では、チューブ内のエイムズ「粉末（500ミリリットルソリューションの4.4グラム）を秤量。また、 炭酸水素ナトリウム（500ミリリットルソリューションの0.95グラム）を秤量し、Aと混合MES」粉末。 </li><li>実験日によってパッチクランプ記録のための細胞内ピペット溶液を準備します。 111 K-グルコン酸、1.0のCaCl 2、10 HEPES、1.1 EGTA、10のNaCl、1.0のMgCl 2、5 ATP-Mgおよび1.0 GTP-のNaを：（mm）を次のようにすべての化学物質を混ぜる。 KOHでpHを7.2に調整します。従来のシリンジフィルター付きピペット溶液を濾過する。 〜500μlのアリコートを作成し、冷凍庫またはディープフリーザーに保管してください。 </li></ol>実験の日のために2。準備<ol><li> O / N暗順応のために暗い空間に - （雄、8週齢4 C57BL / 6Jまたは類似の背景、）実験前の夜は、ケージにマウスを置く。 </li><li>解剖のための準備： <ol><li>少なくとも10分間、酸素を、ガラスビーカー中 - （200mlの100）の氷の上に置き、気泡液解剖埋める。 </li><li>網膜の準備ストレージ用暗箱の酸素化を開始します。 </li><li>再用グリースレールとプラスチックのカバースリップを準備tinalスライス標本を35mmプラスチックディッシュにそれらの各々を置き。 </li><li>チョッパー（組織スライサー）に新しいカミソリの刃を取り付けます。 </li><li>半分にフィルター膜をカット。これは、網膜スライス用です。 </li><li>解剖顕微鏡の近くに解剖ツールと転送ピペットを合わせます。各ツールは簡単に​​暗闇の中でアクセスできるように作業領域がよく組織されなければならない。 </li></ol></li><li>パッチクランプ記録のための準備： <ol><li>エイムズ&#39;粉末および蒸留水中のNaHCO 3（エイムス4.4グラムおよびNaHCO 3 0.95グラム/ 500ミリリットルのddH 2 O）に溶解する。バブル少なくとも30分間混合酸素（95％O 2および5％CO 2）エイムス「媒体記録温度レベルまで加熱しながら（〜35℃）。まだ吹き込みながらNaHCO 3でpHを7.4に調整します。 </li><li>解剖時の内部ピペット溶液を解凍する。それが解凍された後、細胞内染色のための0.01％のローダミンBを追加します。 </li></ol></li></ol> 3.網膜解剖<ol><li>暗い部屋では、二酸化炭素との二国間気胸を使用して、マウスを安楽死させる。 2の後 - 二酸化炭素を使用しての3分、マウスは意識を失うことになる。 </li><li>マウスは、もは​​やテールピンチに応答しない場合には、すぐに目を脱核、プラスチック皿中の冷たい解剖ソリューションに配置します。動物の死を確実にするために二国間気胸を実行します。すばやく暗箱中皿に目を保​​管。暗闇の中で手続きを行うために赤外線ビューアを使用してください。 注：あるいは、イソフルラン、断頭、または頸椎脱臼は安楽死のために使用することができます。安楽死の方法は、国立衛生研究所（NIH）および/または施設の動物実験委員会のガイドラインに従ってください。 </li><li>暗い部屋では、解剖顕微鏡と赤外線照明を調整します。顕微鏡下で、10cmのプラスチックシャーレWにその皿から目を移す冷却された解剖ソリューション番目。プラスチック皿の底に置かれ、チューブを介して連続的に気泡酸素。それが低すぎないように流量を調節し、それは解剖を乱すのに十分高くないことを確認してください。 </li><li>角膜および水晶体除去： <ol><li>マイクロメスで角膜の上に切開を行います。眼球のもう一方の端にある視神経を保持することは動くから目を防ぐことができます。外科ハサミを使ってカットを拡張します。その周りにいくつかの強膜で角膜を切り取る。 </li><li>細かい鉗子でレンズをつかみ、ゆっくりとレンズを引き出します。硝子レンズを外しすぎて粘着性である場合は、ハサミで硝子体をカット。 </li><li>アイカップが行われると、そっと小さなトランスファーピペットとアイカップに冷たい、酸素解剖ソリューションを注ぐ。 注：切開が角膜に行われた後、眼球を素早く収縮。これは、プロ中の目を変形として、眼の形状を維持することが重要であるcedureは、網膜を損傷し、網膜剥離の原因になります。 </li></ol></li><li>網膜の背側と腹側の識別： 注：緑、紫外線（UV）の不均一な分布は、特定の網膜の領域を識別し、18が円錐ので光応答記録のために重要である。 <ol><li>視神経乳頭近傍を通過網膜アイカップ全体に行くの行を特定します。この行は、主に視神経の腹側を通過する。他の19の腹側であるが、視神経を含む側面は、背側である。赤外線視聴者の下で明確にこのランドマークを参照してください。 </li><li>実験の目的に応じて、不要な側のカットを作る。これは、アイカップから網膜を単離した後に有用であろう。 </li></ol></li><li>硝子体除去： <ol><li>必要に応じて、15分間、ヒアルロニダーゼ（0.5mg / ml）を有するアイカップをインキュベートする。 </li><li>極細ピンセットで硝子体を除去します。硝子体は主であるボトムと目をカップの外縁に取り付ける。そっと触れたり、網膜を突っついせずにそれを削除します。硝子体がしっかりアイカップに添付さかもしれませんが、アイカップから網膜剥離を避けるために、静かに取り除く。全く緊張が感じられなくなるまで引っ張って続けます。 注：この手順は、マウスの網膜を切開するために特に重要である。しかしながら、そのようなラットまたはサンショウウオなどの他の種の網膜は問題ではない。 </li></ol></li><li>アイカップから網膜を分離します。強膜をつかみ、静かに鉗子の裏側を使用して網膜をはがす。 注：ホールマウント網膜の準備が孤立した網膜から作ることができる。縁で三から四カットを作成し、網膜を平らに、またはいくつかの部分に網膜をカット。 </li><li>網膜トリムと網膜（ ステップ3.5）の不必要な半分を捨てる。同じプラスチック皿の中で、二つに残りの網膜をカット。網膜の各部分については、作るために縁を断つ網膜のスラブ、および折りたたみエッジをトリム。 </li><li>大ホールピペット（〜2ミリリットル）を使用して、ガラス板上に網膜のスラブを転送します。小さなピペットで過剰の溶液を吸い取り、スラブを平らに濾紙を使用し、迅速に組織の上にフィルター膜の断片を置き。 <ol><li>小さなトランスファーピペットを使用して、フィルター膜上に溶液を解剖の低下を置く。液が膜に広がるまで〜15秒待ってください。この時間の間に、網膜組織は、フィルター膜に付着するであろう。 </li><li>フィルターの下や周りに、より冷たい解剖ソリューションを注ぐ。フィルター膜と網膜組織がフロートします。鉗子でフィルター膜をつかみ、スライシング室に配置します。組織上の解剖ソリューションを注ぎ、そして暗箱で準備を格納する。 注：ここで説明する手順は非常に重要です。これは、網膜組織は、フィルタMEMにこだわっていることを確認するために迅速にこれらのステップを実行することが重要ですブレーンと乾燥しない。 </li></ol></li><li>チョッパーを用いて、スライスに網膜組織を切断する。約200μmの厚さは、パッチクランプ研究のために可能である。 </li><li>スライスチャンバ内のグリースレールにプラスチック製のカバースリップを置きます。プラスチックカバースリップ上グリースレールの上に網膜スライスを転送します。横断面が見えるようにスライスを90°回転させます。押し下げてカバースリップ上にフィルタ膜が、その後、グリースをろ紙の側面を覆う。 <ol><li>スライスはプラスチック製カバースリップ上に固定化された後、カバースリップをつかみ、35ミリメートルのプラスチックの皿に移す。網膜の準備に冷たい解剖ソリューションを注ぎ、準備を水没。継続的に酸素化されるべきである暗箱で各皿を、保管してください。 注：すべての手順は、フィルター膜が変形しないように慎重に行う必要がある。そうでない場合は、網膜のスライスが簡単にフィルター膜から離れる。 </li></ol></li></ol><ol><li>録音の準備： <ol><li>首相エイムズ」媒体との灌流チューブが。チューブを充填するとき、すべての気泡が通過できるように。 </li><li>プラーでパッチクランプ記録ピペットを作る。ピペットチップが埋め戻されるまで1分間ピペットの裏側でピペット溶液、ディップピペットを充填する。次に、マイクロピペットフィラーを使用してピペットの〜1月3日を記入してください。湿ったピペットボックスの各ピペットを保管してください。 </li><li>パッチクランプ記録のための機器の電源を入れ、コンピュータ、増幅器、CCDカメラ、顕微鏡を含む。 </li></ol></li><li>室内光を遮断してください。赤外線ビューアを使用して顕微鏡ステージ室への網膜スライス標本を置きます。それが固定化された後、連続灌流を開始する。 33から37℃での灌流温度を設定します。 </li><li> CCDカメラでスライス面を表示します。ターゲットCEターゲットの場所に焦点を当てるLLタイプが存在する。 （ すなわち、それは滑らかに見える表面と良好な細胞形状を持つべき）記録パッチクランプのための健康そうなセルを選択します。 </li><li>ピペットホルダーに記録ピペットを置きます。スライス標本にピペットを進める。それはスライス標本（上〜2ミリメートル）に近い場合、顕微鏡でピペットの先端を見つける。ピペットチップは、顕微鏡下で可視になると、標的細胞に向かって下に先端を移動させる。 </li><li>アンプを設定します。 0 MV / 0 PA（ゼロ）でピペットを調整し、〜10Hzで〜5 mVのの連続電気パルスを開始します。ピペット抵抗をチェックします。理想的な抵抗はほとんどの網膜神経細胞のために、5〜10MΩです。 </li><li>先端から吹き出す開始します。マウスピースを使用するか、またはピペットは、浴溶液に浸漬する際に正圧を適用するために、注射器を使用しています。先端は、標的細胞の表面上にあるまで、連続的に内部液を吹き飛ばす。 <ol><li>正圧が目の上の小さなディンプルを行うとE細胞表面、少し先端を進め、吹き出し停止。増加するはずであるピペット抵抗を、確認してください。それが継続的に増加している場合、それを残して、それが&gt; 1GΩ（ギガシール）に達するまで抵抗を監視します。抵抗が自然に増加しない場合は、ギガシールになるまで、穏やかに負圧を加える。 </li></ol></li><li>ギガシールが達成された後、mVのを-70する保持電位を変更する。その後、断続的に、ピペットチップの内部に膜を破裂する負圧を適用する。全細胞構成が行われると、ピペット抵抗は500MΩと1GΩ、容量性電流が見られるの間とすることができる。時々自発性シナプス後電流を観察することができる。 </li><li> -80から+ 40mVまでのIV関係を記録。電位依存性チャネルの異なる種類の細胞型に依存して活性化される。 </li><li>レコード·光誘発シナプス電流または電圧。 </li></ol>

<ol><li>Werblin, F. S., Dowling, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organization+of+the+retina+of+the+mudpuppy%2C+Necturus+maculosus+II.+Intracellular+recording%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Organization of the retina of the mudpuppy, Necturus maculosus II. Intracellular recording.</a> J Neurophysiol. 32 (3), 339-355 (1969).</li>
<li>Sakmann, B., Neher, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patch+clamp+techniques+for+studying+ionic+channels+in+excitable+membranes%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Physiol%22%5BJournal%5D)">Patch clamp techniques for studying ionic channels in excitable membranes.</a> Annu Rev Physiol. 46, 455-472 (1984).</li>
<li>Lukasiewicz, P., Werblin, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+slowly+inactivating+potassium+current+truncates+spike+activity+in+ganglion+cells+of+the+tiger+salamander+retina%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">A slowly inactivating potassium current truncates spike activity in ganglion cells of the tiger salamander retina.</a> J Neurosci. 8 (12), 4470-4481 (1988).</li>
<li>Kaneko, A., Tachibana, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+L-glutamate+on+the+anomalous+rectifier+potassium+current+in+horizontal+cells+of+Carassius+auratus+retina%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Effects of L-glutamate on the anomalous rectifier potassium current in horizontal cells of Carassius auratus retina.</a> J Physiol. 358, 169-182 (1985).</li>
<li>Kamermans, M., Werblin, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((GABA-mediated+positive+autofeedback+loop+controls+horizontal+cell+kinetics+in+tiger+salamander+retina%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">GABA-mediated positive autofeedback loop controls horizontal cell kinetics in tiger salamander retina.</a> J Neurosci. 12 (7), 2451-2463 (1992).</li>
<li>Cook, P. B., McReynolds, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lateral+inhibition+in+the+inner+retina+is+important+for+spatial+tuning+of+ganglion+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Lateral inhibition in the inner retina is important for spatial tuning of ganglion cells.</a> Nat Neurosci. 1 (8), 714-719 (1998).</li>
<li>Pang, J. J., Gao, F., Wu , J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Light-evoked+current+responses+in+rod+bipolar+cells%2C+cone+depolarizing+bipolar+cells+and+AII+amacrine+cells+in+dark-adapted+mouse+retina%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol.+558+%28Pt%22%5BJournal%5D)">Light-evoked current responses in rod bipolar cells, cone depolarizing bipolar cells and AII amacrine cells in dark-adapted mouse retina.</a> J Physiol. 558 (Pt. 558 (Pt 3), 897-912 (2004).</li>
<li>Euler, T., Masland , R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Light-evoked+responses+of+bipolar+cells+in+a+mammalian+retina%29%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Light-evoked responses of bipolar cells in a mammalian retina).</a> J Neurophysiol. 83 (4), 1817-1829 (2000).</li>
<li>Berntson, A., Taylor , W. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Response+characteristics+and+receptive+field+widths+of+on-bipolar+cells+in+the+mouse+retina%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol.+524+Pt%22%5BJournal%5D)">Response characteristics and receptive field widths of on-bipolar cells in the mouse retina.</a> J Physiol. 524 Pt. 524 (Pt 3), 879-889 (2000).</li>
<li>Sterling, P., Smith, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Design+for+a+binary+synapse%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Design for a binary synapse.</a> Neuron. 41 (3), 313-315 (2004).</li>
<li>Borghuis, B. G., Marvin, J. S., Looger, L. L., Demb, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two-photon+imaging+of+nonlinear+glutamate+release+dynamics+at+bipolar+cell+synapses+in+the+mouse+retina%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Two-photon imaging of nonlinear glutamate release dynamics at bipolar cell synapses in the mouse retina.</a> J Neurosci. 33 (27), 10972-10985 (2013).</li>
<li>Dowling, J. E., Sidman, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inherited+retinal+dystrophy+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Inherited retinal dystrophy in the rat.</a> J Cell Biol. 14, 73-109 (1962).</li>
<li>Eggers, E. D., Lukasiewicz, P. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((GABA%28A%29%2C+GABA%28C%29+and+glycine+receptor-mediated+inhibition+differentially+affects+light-evoked+signalling+from+mouse+retinal+rod+bipolar+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">GABA(A), GABA(C) and glycine receptor-mediated inhibition differentially affects light-evoked signalling from mouse retinal rod bipolar cells.</a> J Physiol. 572 (Pt 1), 215-225 (2006).</li>
<li>Ichinose, T., Lukasiewicz, P. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+mode+of+retinal+presynaptic+inhibition+switches+with+light+intensity%29%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">The mode of retinal presynaptic inhibition switches with light intensity).</a> J Neurosci. 32 (13), 4360-4371 (2012).</li>
<li>Ichinose, T., Fyk-Kolodziej, B., Cohn, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Roles+of+ON+cone+bipolar+cell+subtypes+in+temporal+coding+in+the+mouse+retina%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Roles of ON cone bipolar cell subtypes in temporal coding in the mouse retina.</a> J Neurosci. 34 (26), 8761-8771 (2014).</li>
<li>Baicu, S. C., Taylor, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acid-base+buffering+in+organ+preservation+solutions+as+a+function+of+temperature%3A+new+parameters+for+comparing+buffer+capacity+and+efficiency%5BTitle%5D)+AND+%22Cryobiology%22%5BJournal%5D)">Acid-base buffering in organ preservation solutions as a function of temperature: new parameters for comparing buffer capacity and efficiency.</a> Cryobiology. 45 (1), 33-48 (2002).</li>
<li>Ames, A. 3rd, Nesbett, F. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+retina+as+an+experimental+model+of+the+central+nervous+system%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurochem%22%5BJournal%5D)">In vitro retina as an experimental model of the central nervous system.</a> J Neurochem. 37 (4), 867-877 (1981).</li>
<li>Haverkamp, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+primordial%2C+blue-cone+color+system+of+the+mouse+retina%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">The primordial, blue-cone color system of the mouse retina.</a> J Neurosci. 25 (22), 5438-5445 (2005).</li>
<li>Wei, W., Elstrott, J., Feller, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two-photon+targeted+recording+of+GFP-expressing+neurons+for+light+responses+and+live-cell+imaging+in+the+mouse+retina%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Two-photon targeted recording of GFP-expressing neurons for light responses and live-cell imaging in the mouse retina.</a> Nat Protoc. 5 (7), 1347-1352 (2010).</li>
<li>Farre, C. G., M Bruggemann, A., Fertig, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ion+channel+screening+-+automated+patch+clamp+on+the+rise%5BTitle%5D)+AND+%22Drug+discovery+today.+Technologies%22%5BJournal%5D)">Ion channel screening - automated patch clamp on the rise.</a> Drug discovery today. Technologies. 5 (1), e1-e34 (2008).</li>
</ol>

著者らは開示するものは何もない。

優れた記録は、適切な網膜準備と適切に設計されたパッチクランプのセットアップによってのみ達成できます。上記のすべての手順は重要ですが、この説明では、解剖と記録の両方に関するいくつかの重要な手順を強調しています。 
解剖では、冷却と酸素化の2つが特に重要です。眼を摘出した後、酸素を泡立て、冷却した解剖液を入れた解剖チャンバーで目の前部をすばやく取り出し、冷たい溶液をアイカップに注ぎます。網膜組織が解剖チャンバーにある場合は、10分ごとに冷たい溶液を組織に注ぐ必要があります。組織は、解剖中に網膜組織を引っ張ったり突いたりすることなく、迅速にスライスする必要があります。優れた解剖ツール (鋭利な鉗子やはさみ) を使用することも重要です。チョッパーは、素早い操作を可能にするため、ビブラトームと同じくらい効果的です。組織をスライスするときに残留硝子体が網膜構造に損傷を与えるため、硝子体物質をできるだけ効率的に除去するには、極細鉗子を使用する必要があります。
初心者はレンズを外すときに網膜を損傷する傾向があります。網膜はアイカップから剥がれ...

網膜は神経系のユニークな部分の一つです。脳のアクセス可能な部分として、そのシナプス構造はよく特徴付けられています。さらに、このニューラルネットワークの機能は、生理学的刺激である光で調べることができます。網膜組織が適切な手順で暗い部屋で隔離されている場合、組織内のニューロンは光に反応します。この調製物は、視覚信号処理の研究や、様々なシナプス機構や神経回路機能、さらには疾患機構の解明に用いられています。
網膜ニューロンの光応答は何十年にもわたって記録されてきました。初期の研究では、鋭利な電極を使用して、マッドパピーの網膜ニューロンから細胞内記録を行いました1。1980年代には、パッチクランプ技術が発明され2、すぐに視覚研究者の間で人気のある方法になりました3,4。マッドパピーや魚の網膜ニューロンを含む下等脊椎動物からの単一細胞記録は、視覚信号処理メカニズムの解明に貢献した一般的な方法であった5,6。
遺伝子突然変異技術が開発された後、マウスの網膜は視覚研究者7-9にとってより一般的なモデルとなりました。哺乳類の網膜は、進化的に人間の網膜に近いため、下等脊椎動物の網膜よりも魅力的であり、疾患モデルを使用する機会があります。しかし、マウスの網膜細胞は小さくて壊れやすい10ため、暗室で網膜製剤の作成やパッチクランプ記録を行うことは困難です。技術の進歩に伴い、画像研究11や網膜電図(ERG)12など、視覚シグナル伝達メカニズムを研究するための多様なアプローチが利用可能になりました。それにもかかわらず、パッチクランプ法によるシングルセル記録は、他の方法と比較して時間的および空間的に非常に敏感であるため、依然として重要です。そこで、私たちはパッチクランプ記録を継続的に行い、マウス網膜スライス調製物13-15における視覚信号処理の探索方法を改善してきました。
このビデオチュートリアルでは、プロトコルが重要なヒントとともに紹介されています。良い録音は、良い準備があって初めて達成できます。動物の解剖を練習し、頑丈なパッチクランプリグを作ることで、ほとんどの研究者は記録を成功させることができます。

<table><tbody><tr><td>マウス(28-60日齢、オス)</td><td>ジャクソン研究所</td><td>C57BL/6J株</td><td></td></tr><tr><td>エイムズ培地粉末</td><td>シグマ</td><td>A1420</td><td>優れた</td></tr><tr><td>実体顕微鏡</td><td>ニコン</td><td>SMZ745</td><td></td></tr><tr><td>優れた 解剖ツール:鉗子</td><td>デュモン</td><td>#4、#5、#55</td><td>優れた</td></tr><tr><td>解剖ツール:はさみ</td><td>ロボズ</td><td>RS-5605</td><td>優れた</td></tr><tr><td>解剖ツール:手術用ナイフ</td><td>サージ</td><td>スター7514</td><td></td></tr><tr><td>優れたカミソリ刃(チョッパー用)</td><td>EMS</td><td>71970</td><td>優れた</td></tr><tr><td>チョッパー</td><td>手作り</td><td></td><td></td></tr><tr><td>赤外線ビューア</td><td>ナイトフクロウ光学</td><td>NOBG1</td><td>明るい視界を示しています。小さな物体にピントを合わせることが課題です。</td></tr><tr><td>プーラー</td><td>サ</td><td>ッターP-1000</td>は<td>優れたサイズで、安定したサイズのピペットが使えます。</td></tr><tr><td>ダークボックス</td><td>ペリカン</td><td>ダークボックス</td><td>優れた</td></tr><tr><td>パッチクランプシステム</td><td>サイエンティカ</td><td>スライススコープ 2000</td><td>優れたセットアップ。ほとんどの主要コンポーネントが1つのパッケージに含まれています。マイクロマニピュレーターは優れています。</td></tr><tr><td>アンプ</td>分子<td>デバイス</td><td>マルチクランプ700B</td><td>優れた簡単な制御。</td></tr><tr><td>ソフトウェアの取得</td><td>Molecular Devices</td><td>pClampソフトウェア</td><td>優れた簡単な制御。</td></tr><tr><td>光源(LED)</td><td>クールLED</td><td>pE-2 4チャンネルシステム</td><td>優れた</td></tr><tr><td>CCDカメラ</td><td>Qイメージング</td><td>レティーガ2000</td><td>優れた</td></tr><tr><td>ファラデーケージ</td><td>手作り</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

パッチクランプ技術を用いたダーク適応、マウス網膜スライス標本におけるニューロンにおける記録光誘発シナプス後応答

Recording Light-evoked Postsynaptic Responses in Neurons in Dark-adapted, Mouse Retinal Slice Preparations Using Patch Clamp Techniques

網膜は視覚系へのゲートウェイである。視覚信号処理メカニズムを理解するために、網膜の神経回路網の機能を調査する。ネットワーク内の網膜神経細胞は、多数のサブタイプが含まれる。双極細胞、神経節細胞、およびアマクリン細胞の10以上のサブタイプは、形態学的研究によって確認されている。網膜ニューロンの複数のサブタイプは、そのような動きや色などの視覚的シグナルの明確な特徴をコードする、複数の神経経路を形成すると考えられる。しかし、視覚的な信号処理における各ニューロンの機能的役割は十分に理解されていない。パッチクランプ法は、この根本的な問題に対処するのに便利です。ここでは、暗順応状態でパッチクランプ記録を用いて、マウスの網膜神経細胞の光誘発性シナプス応答を記録するためのプロトコルが提供される。マウスの眼には、O / N暗順応であり、網膜スライス標本は、赤外線照明と視聴者を使用して、暗い部屋で解剖されている。赤外光にはありませんマウスの光受容体を活性化し、したがって、それらの光反応性を保持します。パッチクランプは、網膜神経細胞の光誘発性の応答を記録するために使用される。蛍光色素は、ニューロンの形態学的サブタイプを特徴付けるための録音中に注入される。この手順では、マウスの網膜に各ニューロンの生理的機能を決定することが可能になります。

代表的なスライス標本は、スライス標本が平坦面に神経節細胞の光受容体を示す、真っ直ぐな位置にある。 図1に示されず、濾紙からの剥離される。スライスが傾いている場合、製剤の唯一の部分は、それが困難なパッチクランプのための適切な細胞を同定することを可能にする焦点である。記録のために、それは通常、光沢のある表面を有して良い相馬、さえ丸い形状、目に見える暗いプラークを選択することが重要である。細胞全体の構成が行われた後、スライス工程光（ 図2）に、バックグラウンド光で露光した。光誘発性興奮性シナプス後電位（L-のEPSP）が（タイミングは黄色で示されている）、ステップ光に応答して誘発した。ピーク振幅および減衰時間は、細胞型およびサブタイプに依存して変化した。神経節細胞は、明るい刺激（ 図2のD＆E）に応答して活動電位を生成した。セルLタイプとその形態学的サブタイプは、生理的な録音（ 図2、右）の後にローダミン標識により明らかにされた。 <p class="jove_content" fo:keep-tog...

マウスの目から網膜スライスを準備し、網膜ニューロンの光応答を記録する方法を示します。すべての手順は、暗所に適応した条件で行われます。

The retina is the gateway to the visual system. To understand visual signal processing mechanisms, we investigate retinal neural network functions. ...

この実験の全体的な目的は、暗順応させた網膜ニューロンから光応答記録を得ることです。まずマウスの眼球を採取し、次に網膜を分離して、スライス標本作製のために切断することでこれを達成します。次に、パッチクランプ記録の標的細胞を探すため、網膜標本を顕微鏡に載せて観察します。ホールセルパッチクランプ構成を確立した後、細胞の近傍に光刺激を与えます。最終的に、収集ソフトウェアを通じて、同時に電気生理学的反応を観察することができます。KRCイメージングなどの既存の手法と比較した本手法の主な利点は、記録感度が高く、記録した細胞を形態学的に同定できる点にあります。一般的に、この手法に慣れていない人は、完全な暗闇での作業が困難で方向感覚を失いやすいため、習得に苦労することがあります。準備として、解剖顕微鏡の近くに解剖器具と転送用ピペットを配置します。暗所でも各ツールに簡単にアクセスできるよう、作業エリアを適切に整理します。準備が整ったら、赤外線ビューアを使用して暗所で手順を行います。安楽死後、速やかに眼球を摘出し、顕微鏡下の暗箱内に保持した冷解剖溶液のディッシュに入れます。眼球を、酸素を連続的にバブリングした冷たい解剖溶液が入ったディッシュに移します。角膜と水晶体を取り除くため、眼球の反対側にある視神経を保持して固定し、マイクロサージカルナイフで角膜の上部を切開します。外科用ハサミを用いて切開線を延長し、周囲に強膜を少し残して角膜を取り除きます。次に、微細鉗子で水晶体を掴み、ゆっくりと引き出します。アイカップが完成したら、小型の転送ピペットを用いて、冷やした酸素供給済みの解剖溶液をアイカップに静かに注ぎます。網膜の形状を維持するため迅速に作業し、網膜の背側と腹側を識別するために緩やかな圧力を加えます。赤外線ビューアーを用いて、視神経乳頭付近を通る網膜アイカップを横切る線を確認します。この線は主に視神経の腹側を横切っており、視神経を含む側が背側となります。実験の内容に応じて、腹側または背側のいずれかに切り込みを入れます。これにより不要な側が特定され、以降の操作における有用な目印となります。次に、網膜に触れないように注意しながら、極細ピンセットを用いて硝子体を静かに除去します。硝子体は主に眼杯の底部および外縁に付着しています。硝子体は眼杯に強く付着している可能性があるため、網膜剥離を行う際は慎重に操作してください。抵抗が感じられなくなるまで牽引を続けます。網膜を分離した後、強膜をつかんでゆっくりと網膜を剥離します。ピンセットの背面を使用して網膜をトリミングし、不要な半分を同じプラスチックディッシュ内で廃棄します。残った網膜を2つの断片に切り分けます。縁を切り取り、網膜スラブを作成し、折りたたまれた端をトリミングします。次に、大容量のトランスファーピペットを使用して、網膜スラブをガラスプレート上に移します。余分な溶液を小型ピペットで吸引し、フィルターペーパーを用いてスラブを平らにします。小型トランスファーピペットを使用して、フィルターメンブレンの一片を組織の上にそっと置きます。フィルターメンブレンの上に解剖用溶液を1滴滴下します。溶液が広がり、網膜組織がフィルターメンブレンに付着するまで約15秒間待ちます。密着したら、メンブレンが浮き上がるまで、フィルターの下と周囲に冷解剖液をさらに注ぎます。次に、フィルターメンブレンをスライシングチャンバーに入れ、解剖液で覆います。メンブレンが乾燥しないよう迅速に作業し、チョッパーを用いて網膜組織をスライスします。グリースレール付きのプラスチックカバーガラスをスライスチャンバー内に配置します。網膜スライスをグリースレールの上に転送し、横断面が見えるようにスライスを90度回転させます。フィルターペーパーの側面をグリースで覆う前に、フィルターメンブレンをカバーガラス上に押し付けて固定します。プラスチックカバーガラスに固定した切片を、33 mmのプラスチックディッシュに移します。作製物をコール dissecting solution に浸し、継続的に酸素供給が行われている暗箱の中に各ディッシュを保管します。これはパッチクランプ記録用です。ProfusionチューブをAims培地でプライミングし、チューブ内の気泡をすべて取り除きます。ガラスプラーで記録用ピペットを作成した後、チップ内をピペット溶液でバックフィルします。次に、マイクロピペットフィラーを用いてピペットの約3分の1まで溶液を満たし、各ピペットを湿らせたピペットボックスに保管します。次に、コンピュータ、アンプ、CCDカメラ、および暗室条件下で動作する顕微鏡を含む、パッチクランプ記録用装置の電源を入れます。赤外線ビューアを使用して、網膜スライス標本を顕微鏡ステージ上に配置します。固定後、連続灌流を開始します。灌流温度を33～37°Cに設定します。CCDカメラでスライス表面を観察し、標的部位にフォーカスを合わせます。標的細胞が存在する領域で、パッチクランプ記録に適した、健全に見える細胞を選択します。健全な細胞を特定したら、記録用ピペットをピペットホルダーに装着し、組織切片へと近づけます。切片に近づいたところで、顕微鏡を用いてピペットの先端を確認します。顕微鏡下でピペットチップが確認できたら、チップを標的細胞に向かって下げます。次に、アンプを設定し、ピカアンプで5 V/nAに調整します。約5 mV、約10 Hzの連続電気パルスを印加し、ピペット抵抗を確認します。網膜ニューロンの多くにおいて、理想的な抵抗値は5〜12 MΩの間です。準備ができたら、マウスピースまたはシリンジを使用して、ピペットの先端が標的細胞の表面に接するまで内部溶液を吹き出します。正圧によって細胞表面に小さな窪みができたら、先端をわずかに進めて吹き出しを停止します。ピペット抵抗が継続的に上昇している場合はそのままにし、抵抗値が1 GΩ以上に達するまで監視してください。抵抗値が自然に上昇しない場合は、ギガシールが形成されるまで緩やかに陰圧を印加します。ギガシール形成後、保持電位を-70 mVに変更し、断続的に陰圧を印加してピペットチップ内の膜を破裂させます。ホールセル構成が完了すると、ピペット抵抗は500 MΩから1 GΩの間となり、容量性電流が観察されます。-80から40 mVまでのIV関係を記録します。細胞の種類に応じて、異なる種類の電位依存性チャネルが活性化されます。最後に、光誘発性シナプス電流または電圧を記録します。この切片標本を10倍で観察すると、フィルターペーパーからの剥離がなく、光受容細胞と神経節細胞の両方が確認できます。この標本を60倍の対物レンズで観察すると、各細胞層が明確に観察されます。ステップ光への応答として、網膜ニューロンから光誘発性の興奮性ポストシナプス電位が誘発されました。ピーク振幅と減衰時間は、細胞の型およびサブタイプによって異なります。細胞の型とその形態学的サブタイプは、生理学的記録およびその後の発達後に行われた硫黄ラベル法によって明らかになりました。この手法により、網膜研究分野の科学者が、自然な視覚信号伝達の機能やシナプス機構の寄与を研究する道が開かれました。

recording-light-evoked-postsynaptic-responses-neurons-dark-adapted

Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

このビデオでは、水生トラフサンショウウオの網膜スライスにおけるホールセル電圧クランプ記録のプロセスを示しています。網膜の視覚刺激時のパッチクランプ記録を実行する方法を我々は、だけでなく、スライスの準備を示しています。...

光の全細胞録音は網膜スライスにおける興奮性シナプス電流を誘発

ここでは、電気生理学的記録のためのマウスの網膜の暗順応のスライスを生成するための手順を説明します。...

暗順応スライス標本におけるマウス網膜神経細胞からパッチクランプ記録

この記事では、細かく分析し、マウスで分離された網膜の準備から記録する方法の説明を提供します。特に、我々は、蛍光標識神経節細胞集団からの光の応答を記録し、続いてその形態を特定し分析する方法について説明します。...

遺伝的に標識された網膜神経節細胞からの光は応答を記録するために隔離された網膜の準備

我々は、無傷のマウス網膜から桿体と錐体の光応答を取得するためのtransretinal電図（ERG）の録音の比較的簡単な方法について説明します。このアプローチは、それらの光反応を分離し、分離されたフラットマウントされている網膜の間に配置フィールド電極を使用してそれらを記録する光受容体からシナプス伝達のブロックを活用しています。...

マウス網膜からERG Transretinal·レコーディング：ロッドとコーンの光応答

このビデオは、フラットマウントマウス網膜からの電気生理学的記録のための全細胞パッチクランプ技術を示しています。電極付きの薄いガラスピペットを使用して、網膜内のスターバーストアマクリン細胞(SAC)にアプローチします。シールを形成した後、吸引を加えてメンブレンを破裂させ、全細胞パッチクランプ構成を形成します。最後に、SACシナプス受容体を通るイオンの流れは、この構成を使用して測定されます。...

フラットマウントマウス網膜からの電気生理学的記録のための全細胞パッチクランプの確立

このビデオは、トランスフェクションされたマウス海馬の脳スライスにおけるシナプス相互作用とニューロン応答を研究するためのプロトコルを示しています。これには、長距離の感覚ニューロンを照射して活動電位をトリガーし、全細胞パッチクランプ技術を使用して記録されたニューロンに結果として生じる興奮性シナプス後電位を記録することが含まれます。...

マウス海馬切片におけるニューロンの光刺激および全細胞パッチクランプ記録

このビデオは、暗順応したマウス網膜組織スライス調製物における光誘発後シナプス応答の記録を示しています。網膜切片を記録室に入れ、記録ピペットを使用して網膜神経節細胞との電気的導通を確立する。光パルスを印加して神経節細胞に興奮性のシナプス後電位を生成し、ピペットで記録します。...

マウス網膜切片のニューロンにおける光誘発シナプス後応答

私たちは、水生虎サンショウウオ（から薄い網膜スライスの調製を記載...

両生類網膜スライス標本における感光体と2次ニューロンからの同時ホールセル録音

このプロトコルは、フラットマウント調製物から網膜ニューロンの全細胞パッチクランプ記録を実行する方法を示しています。...

Deafferentatedマウス網膜のフラットマウントの準備中のスターバーストアマクリン細胞のパッチクランプ記録

私たちは、網膜の表面に平行に切片化の面で大人の哺乳類の網膜の水平スライス標本を開発しました。 nonradially指向の網膜神経細胞の樹状のフィールドは、パッチクランプおよびイメージング技術と信号処理の研究を可能にする、切り捨てられませんでした。...

電気生理学的研究のための成体マウスの網膜の水平スライスの調製

アフリカツメガエル幼生の発達回路を勉強するセル全体パッチ ・ クランプ記録の 3...

準備やアフリカツメガエルの視蓋ニューロンの全体セル パッチ ・ クランプ記録のためのプロトコル

学ぶパッチクランプ技術によるマウス網膜スライス標本の暗適応ニューロンからの光誘発シナプス後応答記録法。この手法は網膜生理学と神経科学研究に応用可能です。

パッチクランプ技術を用いたダーク適応、マウス網膜スライス標本におけるニューロンにおける記録光誘発シナプス後応答

さらに動画を探す