Name: ゼブラフィッシュ角膜実質外植片は皮膚創傷治癒における集団細胞の移動および再上皮化を研究するために (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-02-25T17:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 35 s
Description: 学ぶゼブラフィッシュ角膜細胞のエクスプラント培養法を用いた集団細胞移動と上皮創傷治癒の研究手法。Danio rerioの鱗片を培養し、ビデオ顕微鏡で細胞挙動を観察する一次培養モデルです。

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健康科学研究促進助成金の中西部の大学からの資金によってサポートされていたこの作品は、研究とスポンサープログラム学内グラントのオフィスKJLに授与EEHと中西部の大学に授与。

このプロトコルは、実験動物の管理と使用に関するAVMA動物福祉の原則に準拠しており、中西部の大学の施設内動物管理使用委員会（IACUC）によって承認されています。 麻酔、機器、およびメディアの作製<ol><li>約1.5（ペット店で入手可能）のどちらか、市販の脱塩剤を使用した水道水のLまたは24時間水スタンドをさせることにより、脱塩素。 3 1Lのビーカーを取得し、水を脱塩素500ミリリットルでそれぞれを埋める。すべての手順の前に魚を保持するための1と回復のための1にラベルを付けます。第3のビーカーに、トリカインメタン100μg/ mlを追加します。これは魚が麻酔をされる中でビーカーになる。 </li><li>氷浅いトレイを埋める、培地を温める（RPMI 1640,10％FBS（ウシ胎児血清）、50μg/ mlのゲンタマイシン、100μg/ mlのカナマイシン、25mMのHEPES）RTにし、清潔な宝石商ピンセットを集める。イメルによるクリーンピンセット70％エタノールでのヒントを歌うとエタノールを燃焼させること、ブンゼンバーナーを通過する。 </li><li> 10倍の倍率、または顕微鏡（個人的な好みに完全に依存）を解剖 - 手順は2で、商業、卓上照明付きルーペで、倍率なしで実行するかどうかを決定します。 </li></ol> 2.体外培養物を確立<ol><li>保持ビーカーに魚や場所の所望の数をキャッチ。麻酔のビーカーに、単一の魚を移す。それは個別に魚を麻酔するのが最善です。 </li><li>魚の水泳と鰓の動きを観察することによって麻酔の影響を監視します。麻酔が進行すると、鰓の動きが遅くなり、魚は不規則に、頻繁に逆さまに泳ぎます。とすぐに鰓の動きが止まるように麻酔魚を検討してください。これは魚の死をもたらす可能性がある麻酔浴に長期間魚を放置しないでください。 </li><li>麻酔ビーカーと転送から魚を削除氷に、ピンセットを持つ手に直面して尾を水平に魚を置く。技術で、複数の魚が外植片を作るために使用される場合に経験した場合、この時点で麻酔をビーカー内の次の魚を配置することを検討。 </li><li>スケールを除去するために、位置ピンセットは、スケールの端に先端が魚に平行である。スケールは魚の体から昇格させるために少し魚の側にピンセットの平らな面を押します。摘む、ピンセットで規模を持ち、組織培養皿で（反転なし）の場所。鰓地域、側線、フィンを避け、（それぞれの側から6）大の大人から12のスケールの最大値を除去し、手順を繰り返します。 </li><li>回復ビーカーに魚を置き、麻酔の影響から回復することを確認するために監視する。この時点で、魚が個々のタンクに戻って転送することができる。魚が完全なスケールの再生を可能にするために、少なくとも21日間回復できるようにします。 </li><li>応じてガラスボトムディッシュあたり6スケール - 実験デザイン、プラスチック製の35mm組織培養処理皿当たり20スケールまたは4にまで配置します。スケールは皿からスケールを剥離しないように、静かにメディアを追加する前に皿に接着させる。 注：メディアが最初皿に添加される前に経験により、複数の魚を処理することができる。 </li><li>各35ミリメートル皿に完全なメディア（上記1.2を参照のこと）の1.2ミリリットルを追加します。 </li><li>好ましくは、または追加の処理なし所望の時間、5％CO 2で28℃、外植文化をインキュベートする。また、加熱された顕微鏡ステージ上またはビデオ顕微鏡のための生きた細胞培養チャンバ内の文化をインキュベートする。 </li></ol> 3.明とビデオ顕微鏡<ol><li>顕微鏡ステージ上に、最初は細胞シートを含むポジション料理は4X対物レンズを用いて焦点を合わせる。 注：より高い倍率は実験に応じて、使用することができる。の位置をマーク各細胞シート及び/又はステージ上皿の向きがほぼ同じ方向にシートを経時的に画像を撮影が容易になる。 </li><li>各実験プロトコルに従って、種々の時点でのインキュベーターと写真から料理を取り外し、静止画像のみが実験的な時間枠にわたって必要とされている場合は、インキュベーターに戻し置く。 </li><li>ビデオ顕微鏡の実行中に、次のように注意を払う： <ol><li>位置移行細胞シートは、ビデオの継続時間の視野に残るように、視野内の目盛り/新興の細胞シート。 注：これは、細胞が、スケールの下から移行方法を観察中にいくつかの経験がかかる場合があります。短いビデオでは、これは長いビデオのためのより関心の低い。 </li><li>短い時間枠の場合は、RTでインキュベートする。より長い時間枠（18+時間）については、温度を維持するために加熱されたステージまたはインキュベーションチャンバーを使用してpHバランス、培養mの蒸発を最小限にするedium。 </li></ol></li></ol>免疫蛍光顕微鏡4.固定<ol><li>準備し、28℃に予熱暖かいすべてのソリューション。ガラスボトム35mmの組織培養皿を用いて、上記のように、蛍光下で角膜表示するために、外植片培養物を成長させる。また、ガラスチャンバースライドを使用しています。 </li><li>各ディッシュに1.1倍PBS中の4％パラホルムアルデヒドの0.8ミリリットルを追加します。最初の培養培地を削除しないでください。 溶液を除去するために吸引し、次いで室温で5分間インキュベートする。 </li><li>各ディッシュに1.1倍PBS中の4％パラホルムアルデヒドの0.8ミリリットルを追加します。溶液を除去するために吸引し、次いで室温で5分間インキュベートする。 </li><li> 1X PBS 0.5 mlを、0.2％トリトンX-100を添加することにより、外部のリガンドまたは外部のエピトープ、透過化細胞を使用しない場合。溶液を除去するために吸引し、次いで室温で5分間インキュベートする。 </li><li> 1×PBS中0.5ミリリットルの1％のBSAを追加し（4℃で）1（RTで）時間またはO / Nインキュベートする。 注：実験条件に依存して、のphalloidinこの工程で添加することができる。 </li><li>インキュベーション後、吸引して溶液を除去し、抗体染色を進める。 4℃で4週間 - 3用の1×PBS中の1％BSAを2ml - あるいは、少なくとも1を加算して培養皿を格納する。 </li></ol> 5.免疫蛍光プロトコル<ol><li>製造業者の推奨に従って一次および二次抗体溶液を準備します。 NOTE：ポリクローナル500および1：製造業者の推奨を使用できない場合は、（1×PBS中の1％BSA）で一次抗体の良い出発希釈は1 1,000モノクローナル抗体について、二次抗体のための良い出発希釈は1：千。信号が強く、バックグラウンドが問題となる場合には、信号が低く、弱い場合、より高い製造業者から入手したオリジナルの株式のこれらの希釈液を調整します。 </li><li> 1×PBS溶液中の1％BSAを吸引する。一次抗体溶液0.5mlを加え、（4℃で）またはO / N（RTで）1時間インキュベートする。 </li&gt; <li> 、一次抗体溶液を除去清潔に置き、1.5 mlマイクロチューブを標識し、-20℃で凍結する。 注：必要に応じてこれは、一次抗体の再利用が可能になります。 </li><li>各洗浄後、PBSを除去し、廃棄、1×PBSで5回 - ディッシュ3を洗ってください。 </li><li>二次抗体溶液の0.5ミリリットルを追加します。必要であれば、このステップの間に（どのメーカーの推奨濃度以下）蛍光標識ファロイジンを追加します。 （4℃で）またはO / N（RTで）1時間インキュベートする。 NOTE：蛍光標識ファロイジンの使用は、アクチンフィラメントの可視化を可能にする。我々は488標識ファロイジンは我々のゼブラフィッシュ角膜実質において最適に動作するが、他のフルオロフォアを使用することができることを見出した。 </li><li>二次抗体溶液を除去し、廃棄する。 </li><li>各洗浄後、PBSを除去し、廃棄、1×PBSで5回 - ディッシュ3を洗ってください。 注：皿4℃争うことができない場合に、光からカバーし、保存することができますすぐにワット。 （ - 30分20）、その後の直前次のステップに進むようにPBSを削除する1×PBSは、細胞が完全に乾くけどRTに暖かいないように格納する前に皿に追加されたことを確認してください。 </li><li>準備ができたら、観察する2追加するには - 皿に、実験的なニーズに応じて、DAPIの有無にかかわらず、封入剤の3滴を、室温で10分間放置します。 注：我々はDAPIで市販の、グリセロールベースの​​封入剤を使用していますが、他の取り付けメディアを使用することができます。皿に座って取り付け媒体10分を許可すると、皿の底からカバーガラスを容易に除去することが容易になります。 </li><li>インキュベーション後、軽く緩め、カバースリップを除去するための皿の側面に絞る。スライド上に、下に、細胞をスライドガラス上に取り付けメディアの追加のドロップを追加し、カバースリップを配置。 注： - 2日スライドよりも長い1保持する必要がある場合に明確な爪のポリッシュを使用してスライドにカバースリップを密封することを検討してください。 </li><li>蛍光顕微鏡下でスライドを観察します。 注：私たちの画像のほとんどは、油浸下40Xまたは63X対物レンズを用いて撮影したが、使用される特定の対物レンズは、実験プロトコルに依存します。 </li></ol>

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<li>Nishikawa, A., Shimizu-Nishikawa, K., Miller, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation%2C+characterization%2C+and+in+vitro+culture+of+larval+and+adult+epidermal+cells+of+the+frog+Xenopus+laevis%5BTitle%5D)+AND+%22In+Vitro+Cellula.%2C+%26+Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">Isolation, characterization, and in vitro culture of larval and adult epidermal cells of the frog Xenopus laevis.</a> In Vitro Cellula., & Developmental Biology. 26, 1128-1134 (1990).</li>
<li>Schober, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Focal+adhesion+kinase+modulates+tension+signaling+to+control+actin+and+focal+adhesion+dynamics%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Focal adhesion kinase modulates tension signaling to control actin and focal adhesion dynamics.</a> The Journal of Cell Biology. 176, 667-680 (2007).</li>
</ol>

著者らは、開示することは何もない。

培地の添加の前に、3分間 - 角膜実質細胞移植片培養を成功させるために最も重要なステップは、スケールが約2の培養皿に付着させている。スケールの約75％が、シート（各実験のために確立培養の数はそれに応じて調整する必要がある）に付着し成長する。角膜実質細胞シートは、魚から除去し、いくつかの理由のために培養にあらゆる規模の周りに形成しない。まず、外植のDAPI染色は、いくつかのスケールが少数の細胞が付いていることを明らかにし、したがって、それはこれらのスケールは、角膜実質のシートを持っていないことが予想される。第二に、組織培養皿に付着する外植片の能力は、シートの移動のための必須の前提条件である。スケールが付着し、成功した移植片培養が確立されているかどうかの重要な決定因子は、成長表面および培地の添加のスケールを配置する間の時間である。メディアを使用せずに接着するのに不十分な時間がfloatinスケールにつながる長すぎる期間は（売却のエッジに見える細胞の残党との植片の乾燥に恐らく）成長なしとの接着性の尺度になりますしながら、メディアにおけるG（時々目に見える組織に取り付けられている）。スケール皿で配置し、成長培地の添加の間の時間は、乾燥することな...

<html>細胞運動性の研究は、伝統的に、個別に移動する細胞に集中している。魚や両生類外植片からの培養された角膜実質1-6に近づく実験的および数学的モデリングの両方を使用して、細胞運動のメカニズムを研究するための強力なモデル系であることが判明している。均一な形状、速度、および方向を維持しながら、個別に移動する細胞に対する実験研究は、細胞の急速な、滑らかな滑走運動によって補助される。特に、胚形成、創傷治癒、および転移の間に、細胞間結合を維持しながら、しかし、 インビボにおいて 、細胞は、しばしば集合的に移動する。したがって、集合的な細胞移動、細胞遊走のフィールド内の研究の成長とますます顕著領域である。これらの細胞の集合的な移行は、最近7に記載されており、それは創傷治癒モデルにおいて、集団の細胞遊走を研究するための強力なシステムにする多くのユニークな特徴を有している。 ove_content &quot;&gt;スケールが麻酔され、成体ゼブラフィッシュから引き抜かれると、いくつかの上皮組織は、スケールの下側に取り付けられたままである。細胞培養培地は、これらの上皮細胞、または角膜を添加する場合、スケールからの集合的な単位として急速に移行する。ザ·移植片培養は、細胞が無傷の上皮を再確立するために離れて外植片から、彼らは、創傷床の暫定マトリックス全体に同じように移行するモデル治癒上皮創傷、と見ることができる。最近のデータは、このex vivoでの文化を模倣し、多くの機能を示唆しているin vivoで成体ゼブラフィッシュにおける創傷治癒。創傷閉鎖率は8 エキソビボ系7で観察されるものと同様の移動速度に変換する。また、 インビボでの創傷治癒モデル、ワルファリンによる治療は、止血率に影響を及ぼさないことを示唆している治癒、免疫応答を低下させるヒドロコルチゾンでの処置は再上皮8を遅らせていない間</SUP&gt;。スケールは動物から除去されたとき、ゼブラフィッシュが出血しないように、止血は主要なプレーヤーではない。私たちは外植で免疫細胞を発見したが、我々は彼らが集団的細胞遊走に与えるかもしれない影響を研究していません。 ここで紹介するプロトコルは、多くの生物学的アッセイで使用するための一貫性と再現性を確保するゼブラフィッシュ角膜実質植片培養を確立する方法について説明します。これらの外植片培養は、いくつかの理由のために集団的細胞移動のためのin vitroモデルでは特に魅力的である。まず、ゼブラフィッシュ角膜実質は外植文化を確立する時間以内に使用される主要な細胞である。したがって、これらの細胞は、初代細胞9-13の通路に関連付けられた形態学的および遺伝子発現の変化を受けていない。第二に、このシステムは、創傷への応答、間葉trの上皮の一部として、14が負傷に応答して、再上皮化の研究のためのモデルを表すと遺伝子発現の変化および細胞骨格再配列14,15によって証明されるようにansition（EMT）プロセスが開始される。したがって、未処理の細胞において生じる遺伝子発現と運動性の背景の変化が特徴づけおよび処置変化を解釈するためのコンテキストを提供してきた。また、魚の角膜実質とヒトケラチノサイトは、機能的に同等である。両方は、それぞれの種の主要な上皮細胞である上皮創傷治癒において重要な役割を果たしている。第三に、大人のゼブラフィッシュは、黒色腫および他の癌19-21、8,14および組織再生22-24治癒皮膚の創傷を含むヒト疾患16-18の様々なモデル系として認識を得ている。 このモデルシステムの技術的利点は、同じように魅力的である。突然変異体およびトランスジェニック系統が増え、非営利、集中型の施設から利用できます。具体的には、ゼブラフィッシュ変異プロジェクト（ZMP）ウェルカム·トラスト·サンガー研究所では、ゼブラフィッシュゲノム中のすべてのタンパク質をコードする遺伝子中にノックアウト対立遺伝子を作成することを目指しています。現在、彼らは特徴付け24088アレルで、11892遺伝子、ゲノムの約45％に変異している。また、ZMPは提案を受け入れ、無償でノックアウトを生成します。幼虫と大人のゼブラフィッシュ25-28における遺伝子ノックダウンの最近の方法は、トランスジェニックアプローチが問題か、非現実的であるために発生上重要な遺伝子の機能を研究するための柔軟性を提供する。 〜145ミクロン/ hrの運動性の彼らの非常に急速な速度に起因する間もなく文化29の設立後、アッセイは（通常は24時間以内に）迅速に完了することができます。実験は迅速に完了することができ、培養物を室温で十分に成長するにつれ、ビデオ顕微鏡を含む哺乳動物細胞遊走アッセイに関連する技術的なハードルのいくつかは回避される。また、研究予算を締めるの時代に、zebrafISHは、容易かつ安価に維持されている。 外植片の構造と動作は複雑である。スケールが除去されると、魚が出血しないように、表面的な表皮層よりもはるかに規模で除去するとは考えにくい。角膜実質細胞の大部分は抗E-カドヘリン抗体14を染色するために表示されるスケールは、最初に魚から除去されるときに、外植片における優勢な細胞型であるように見える。さらに、免疫蛍光14によってビメンチン染色の欠如によって判断されるように、最初の培養における線維芽細胞の証拠はない。しかし、繰り返しスケール除去と、（ ビデオ1を参照） を植片における多数の好中球があるように思われる。 LPSにさらされたとき、我々は、それらのサイズ、急速に運動性、および細胞シートのうち、それらの移動の形態学的観察に基づいて、好中球のような、これらの細胞を同定した（データは示さず）。さらに、これらの細胞は明るくウィットを染色好中球サイトゾル因子ならびにとともに、それらがその表面上に豊富なFcRを有することを示す二次IgG抗体の様々な抗体（データは示していない）時間。複数の細胞層が外植片内に存在する。共焦点顕微鏡は、上、下、及び細胞角膜実質細胞シート間の可視好中球スケール付近の角膜実質層以上の前縁付近単層の存在を明らかにする。 初期の時点では、〜145ミクロン/ hrの初期レートでの外植片から角膜実質の集合的な移行を開始する多層外植分極しの端に、上の細胞。外植片によって覆われる領域が急速に増加し、シート内で、張力を拡散セルにつながる、前縁の進行速度の低下。リーダーとフォロワー細胞との間の迅速な相互変換は、シート7内で自然発生的に形成されたホールの形成及び閉鎖時の前縁で観察される。として外植片を用いて開始EMTプロセスは、シート断片を継続し、角膜実質細胞は、特殊化した、迅速な運動性を失う。遺伝子発現とEMTと一致して形態変化、創傷治癒、および炎症反応は外植は約10日間14のための実行可能な検討されて培養7日以内に発生する。

<table><tbody><tr><td>35 mmガラス底培養皿(Poly-Dリジンコーティング)</td><td>MatTek</td><td>P35GC-1.5-14-C</td><td>1.5 mmの厚さはカバーガラスの除去に最適です。</td></tr><tr><td>スイスの宝石商様式の鉗子、インテグラ、Miltex 17-303</td><td>VWR</td><td>21909-460</td><td>私達は、狭く、細かい鉗子がスケールの取り外しのために最も適していると思う。</td></tr></tbody></table>

ゼブラフィッシュ角膜実質外植片は皮膚創傷治癒における集団細胞の移動および再上皮化を研究するために

Zebrafish Keratocyte Explants to Study Collective Cell Migration and Reepithelialization in Cutaneous Wound Healing

それらの固有の運動特性のために、魚の角膜実質細胞は、外植片培養物から解離長い単一細胞移動のメカニズムを研究するために使用されている。植片が確立されている場合しかし、これらの細胞はまた、個体が、移行を研究するための魅力的なモデルを角膜実質にする機能の多くを維持し、一括して移動：運動性の急速な速度、垂直アクチンケーブルとの広範なアクチンに富むラメラ、かつ比較的一定の速度をと移動の方向。初期の外植片では、集合的に移行するものと個別に移動する細胞の迅速な相互変換は、移行のモードを決定する際に、細胞 - 細胞接着の役割の研究を可能にし、移動の二つのモードの間の分子リンクを強調している。間葉への移行上皮が発生し、創傷治癒および炎症に関連する遺伝子が差次的に発現されるように、後に外植片中の細胞を迅速かつ集合的に移行する能力を失う。したがって、角膜実質細胞の外植片、皮膚創傷治癒の間に起こる遺伝子発現の変化の定義されたプログラムのコンテキストで集合的細胞移動のメカニズムを研究するための独自のシステムを表すことができ、再上皮化のためのインビトロモデルとして働くことができる。変異体およびトランスジェニックゼブラフィッシュ系統の様々な、利用可能な外植片は、異なる遺伝的背景を持つ魚から確立されることを可能にする。これは、これらのプロセス内の異なるタンパク質の役割を一意にアドレス指定することを可能にする。ここで概説プロトコルは、集団細胞遊走に関連する種々のアッセイで使用するためにこれらの外植文化を確立するための簡単​​かつ効果的な方法を記載する。

図1に示すように、角膜実質細胞のシートは、移植片培養を確立するための時間以内にスケール直下からの移行を観察することができる。時折、集合的に移行するシートから離れて壊れて個別に移行する角膜実質を観察することができる。外植片が以前に摘み取られ​​ていた魚から確立されたように加えて、シートを通って移動する豊富な好中球があります。より長い培養期間で、角膜実質細胞のようなシートフラグメントは、EMT 14を受ける。 シート進歩の初期速度は非常に急速であるが、このレートはすぐに、培養の最初の48時間（ 図2A-C）の間（〜3.1それぞれ倍〜1.8を増やし面積と核間距離によって測定されたと）細胞が広がるように遅くなります。急速な増加は、細胞増殖と関連していない。 （蛍光チミジンアナログエチニルウリジンで24時間標識した後にEDUの）、〜10％の細胞が細胞分裂の証拠は、形質転換された細胞株で見られるよりもはるかに低いが、ヒトの器官培養30にreepithelizationに関与する細胞...

ゼブラフィッシュ角膜実質は植片から細胞シートに移行し、上皮の創傷治癒の文脈における集団的細胞移動のメカニズムの研究のためのin vitroモデルを提供する。これらのプロトコルの詳細集団細胞遊走アッセイにおいて使用するための一次外植片培養を確立するための効果的な方法。

Due to their unique motile properties, fish keratocytes dissociated from explant cultures have long been used to study the mechanisms of single cell ...

本手順の全体的な目的は、集団細胞遊走および上皮創傷治癒の研究に使用するための、ゼブラフィッシュ角膜細胞（ケラトサイト）の外植片培養を確立することです。まず、麻酔をかけた成体ゼブラフィッシュから、上皮組織が付着した鱗を除去します。組織が付着した鱗を培養皿に入れ、細胞を接着させます。次に、実験デザインで指定された処理とともに培地を添加します。最後に、細胞をインキュベートし、目的の期間、ビデオ顕微鏡で観察します。最終的に、さまざまなアッセイを用いて、遊走能や細胞形態の変化、ならびにタンパク質やその他のマーカーの経時的な発現を実証することができます。形質転換細胞培養法などの既存の手法に対する本手法の主な利点は、外植片培養が一次培養であり、in vivoにおける細胞の特性を密接に再現している点にあります。本手法は、集団移動や上皮間葉転換の役割など、上皮創傷治癒分野における重要な疑問を解決するのに役立ちます。一般的に、この手法に不慣れな人は、鱗片が成長表面に付着しなかったり、特定の培養皿で成長しなかったりすることがあり、苦労する場合が多いです。この手順の実演は、医学生のJose Rap PanIN、および私の研究室のシニアリサーチアソシエイトであるChana TIとAgnes Pasqualeが行います。この実験の準備として、市販の脱塩素剤を使用するか、または24時間静置させることで、約1.5 litersの水道水を脱塩素化し、その後500 millilitersずつを3つの1 literビーカーに満たします。1つ目のビーカーには処置前の魚用、2つ目のビーカーには回復用、そして3つ目のビーカーとラベルを貼ってください。tricaを100 µg/mL添加します。魚を麻酔させるために、浅いトレーに氷を満たします。培地を室温まで温め、清潔な精密ピンセットを用意します。ピンセットの先端を70% ethanolに浸し、ブンゼンプナーで加熱してethanolを燃焼させ、洗浄します。必要な数の魚を捕獲し、保持用ビーカーに入れます。そこから1匹の魚を麻酔用ビーカーに移します。テキストのプロトコルに従って魚を麻酔した後、氷に移し、ピンセットを持つ手が尾側に来るように水平に置きます。鱗を除去するには、ピンセットを魚と平行に配置します。鱗の端に先端を当て、ピンセットの平らな面を魚の側面に軽く押し込み、鱗を体から浮かせます。ピンセットで鱗をつかみ、そのまま反転させることなく抜いて、組織培養皿に入れます。この手順を繰り返し、成魚から最大12枚の鱗を採取します。その際、鰓（えら）付近、側線、および鰭（ひれ）は避けてください。魚を回復用ビーカーに移し、麻酔の影響から回復したことを確認します。その後、魚を個別の水槽に移し、鱗が完全に再生するまで21日間回復させます。実験内容に応じて、プラスチック製の35 millimeter組織培養処理済みディッシュに最大20枚の鱗を、またはガラス製ディッシュに4～6枚の鱗を配置します。ディッシュの底面に鱗が接着するまで待ち、その後、各培養ディッシュに1.2 millilitersの完全培地を緩やかに加えます。顕微鏡観察を行うため、処理の有無にかかわらず、X explan培養物を28 degrees Celsiusで所定の時間インキュベートします。細胞シートを含むディッシュをインキュベーターから取り出し、顕微鏡のステージ上に配置します。経時的な画像撮影を容易にするため、まず4倍対物レンズを使用してピントを合わせます。各セルシートの位置、またはステージ上のディッシュの向きをマークします。実験プロトコルに従い、さまざまな時点でセルシートを撮影し、静止画のみが必要な場合は、ディッシュをインキュベーターに戻します。免疫蛍光顕微鏡観察のためにサンプルを固定するには、室温で溶液を調製し、あらかじめ温めておきます。蛍光下でOSE部位を観察するために、本ビデオの前半で説明した通り、底面がガラス製の35 mmディッシュを用いてエッグプラントを培養します。培養液を除去せずに、各ディッシュに1.1 XPBSで調製した4%パラアルデヒドを0.8 mL加えます。室温で5分間インキュベートします。次に、溶液を吸引して除去します。各ディッシュに固定液をさらに 0.8 milliliters 加え、5 分間、2回目のインキュベーションを行った後、溶液を吸引して除去します。外部リガンドまたはエピトープを使用しない場合は、0.2% TRITTON X 100 含有 XPBS を 0.5 milliliters 加えて 5 分間インキュベートし、細胞を透過処理します。溶液を取り除く前に、1% BSA含有1 XPBSを0.5 mL加え、室温で1時間、または4°Cで一晩インキュベートします。インキュベーション後、溶液を吸引し、抗体染色に進みます。あるいは、1% BSA含有1 XPBSを1〜2 mL加え、4°Cで3〜4週間保存します。その後、免疫蛍光染色を行います。ここに示されているテキストプロトコルに従うと、外植片（EXPLAN）培養を確立してから数時間以内に、鱗の下から角膜細胞のシートが遊走してくる様子を観察できます。時折、集団的に遊走するシートから離脱して個別に遊走する角化細胞が観察されることがあります。シートの初期前進速度は非常に速いですが、培養開始後48時間以内に細胞が広がるにつれて、この速度は急速に低下します。この急速な増加は細胞増殖によるものではありません。蛍光EDUを用いて24時間標識したところ、細胞分裂の徴候を示したのは約10%の細胞であり、この割合は形質転換細胞株に見られるものよりもはるかに低いためです。エクスプランが確立した時点で処理を加えると、化合物によっては集団的な細胞遊走が変化します。例えば、ここに示すように、一部のMMP阻害剤は24時間後の細胞シート面積を減少させます。培養において、接着形成を阻害するために可溶性RGD含有ペプチドを培地へ添加すると、シート前縁のラメリポディアが急速に収縮し、続いてシート前縁が剥離して後退します。2分以内に、シート内またはリーダー細胞およびフォロワー細胞内のタンパク質の局在を評価するため、この図に示すようにシート全体を固定し染色することができます。習得すれば、適切に実施することでこの手法は10分から15分で完了します。この手順を行う際は、細胞が培養皿に接着するための時間を設けてから、あらかじめ温めておいた培養液を添加することが重要です。時間経過や処理条件に関連した遺伝子発現の変化など、追加の疑問を解消するために、QPCRなどの他の手法を行うことができます。この手順を視聴することで、さまざまな手順で使用するためのIDE説明培養を確立する方法について、より深い理解が得られたはずです。

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