Name: 動脈再狭窄のマウスモデル：大腿ワイヤー傷害の技術的な側面 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-03-10T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 42 s
Description: 学ぶマウス大腿動脈ワイヤー傷害モデルによる内膜肥厚誘導法。血管生物学研究における再狭窄の病態生理学的メカニズム解明と治療戦略開発への応用を支援する詳細プロトコルです。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

この研究は、ウィスコンシンパートナーシッププログラムの新人研究者賞(ID 2832)、National Heart, Lung, Blood Institute R01助成金(HL-068673)、およびT32トレーニング助成金(HL-110853)によって支援されました。ノースウェスタン大学のMelina Kibbe博士のグループには、有益な情報を提供していただいたことに感謝します。

注：倫理に関する声明：すべての手順は、実験動物の管理と使用に関する指針（全米アカデミープレス、第8版、2011）、およびウィスコンシン大学の施設内動物管理使用委員会によって承認されたプロトコルに準拠しています。すべての手術は（速度2ml /分流量、吸入を介して）、イソフルラン麻酔下で実施し、全ての努力が苦痛を最小限にするために行われた。動物を、徐々にCO 2で満たされたチャンバー内で安楽死させた。 全身麻酔と皮膚切開の1の誘導<ol><li> 23〜28グラムの12〜16週の年齢と体重と雄のC57BL / 6マウスを使用してください。閉回路の麻酔​​装置を通過イソフルランにより動物を麻酔。そのつま先をつまんで、適切な麻酔を確認してください。乾燥を防ぐために、目にいくつかの人工涙液軟膏を適用します。 </li><li>少し拉致左後肢膝関節のSLと仰臥位でマウスを置きますightly撓む。左大腿上部領域の周囲の毛を剃るとクロルヘキシジンで皮膚を消毒、滅菌した綿先端アプリケーターを用いて3回を適用した。手術中に滅菌楽器を保つためにホットビーズ滅菌器を使用してください。 </li><li>左足の上に滅菌ガーゼドレープを配置します。鼠径部（ 図1A）に膝関節からの左大腿内側に1.5センチメートルストレート、縦皮膚切開を行います。 </li></ol>大腿動脈と枝の2暴露メモ： 図1（b）は、大腿上部における総血管系の解剖学を示している。皮膚切開が適切に大腿内側の正中線に沿って行われたとき浅大腿動脈（SFA）は、解剖顕微鏡で観察することができる。 <ol><li>細かいピンセットでSFAの上にある薄い筋膜を開き、9-0ナイロン縫合糸とループSFA。 注：このプロセスでは、大腿神経が容易ように置かれたその壁は、それが簡単に穿孔と出血していることを非常に薄いので、IDEが、隣接する大腿静脈は細心の注意が必要です。キー技術は動脈自体に集中することです。限り切開が近い動脈に行われるように、任意の偶発的静脈の損傷が回避される。 </li><li> SFAがループされると、モスキート鉗子で縫合糸を保持し、やや下向きに引き出します。この操縦は簡単にさらに解剖になりますが、あまりにも強制的に引っ張らないでください動脈を損傷しないように。 </li><li> 9-0ナイロン縫合糸で総大腿動脈（CFA）を露出し、ループするように近位に動脈を解剖続行。 注：通常、上腹部動脈（ 図1B）に遠位の点でCFAのループは、電線を挿入するための十分です。同じようにモスキート鉗子でCFAの縫合糸ループを保持します。 </li><li>上向きのCFAの縫合糸ループを引いて、SFAの縫合糸ループを下方にSFAと深い大腿動脈（DFA）の分岐を明らかに。 DFA、CFAの主要な枝、大腿筋（ 図1B）に向かう。 注：ワイヤーは後でDFAから挿入されます。 </li><li>余分な慎重にループDFA隣接静脈を動脈の下に絡まっているため。静脈からの出血の場合には、ガーゼで30〜60秒程度の単純な圧縮は、止血をもたらすのに通常は十分である。 </li><li> DFAは ​​、9-0ナイロン縫合糸でループされると、すべての3つの縫合糸ループは、（ 図2A）が正しい位置にあることを確認してください。 </li><li>遠位に可能な限り分岐からポイントで動脈を結紮するDFAの解剖を続行します。余分な縫合糸をカットしますが、両端がDFAは、ワイヤの挿入を作るより簡単に安定させるモスキート鉗子で保持できるように一定の長さにしておきます。 </li></ol> 3.ワイヤー傷害を作成する<ol><li> DFAを経由して電線を挿入<ol><li>一時的な止血を確立するために、CFA、SFA、およびDFAの縫合糸をひずみ。 </li><li> DFに小さな穴を作るmicroscissorsとA。 0.015インチ径のワイヤーのために十分な大きさの穴を拡張するために湾曲したmicrotweezersの先端を挿入します（ 図2Bは、動脈とワイヤとの間のサイズの違いを示しています）。 <ol><li> DFAに穴を行う前に、CFAの縫合糸ループを緩め、静かにクランプ/鈍い先端がmicrotweezersでDFA数回絞る。この操縦ワイヤの挿入を容易にするために著しく動脈の直径を拡大する。 PBSで徹底的にワイヤーを加湿することもスムーズに挿入するために重要である。 </li><li> DFAに穴を作るときは、動脈壁をトリミングが、小さなV字型のニップを作成し、操作するための鋭い先端がmicrotweezersとフラップを挟まないでください。 </li></ol></li><li> DFAに適切に-拡張穴を通してワイヤーを挿入します。 CFAの周りに縫合糸ループを緩めながらゆっくりと腸骨動脈に向かって線を進める。 5〜8ミリメートルはほとんどの場合、すべてのCFAの長さをカバーするために十分である（ 図2C </strong&gt;）。動脈穿孔は通常、マウスの損失をもたらすように強制的にワイヤーを挿入しないでください。長さ約15ミリにワイヤを短くする処理に役立ちます。 </li></ol></li><li> 1分間の中にワイヤーを残し<ol><li>最適な長さにワイヤーを挿入した後、動脈壁を伸び過ぎ1分間放置する。乾燥を防ぐためにPBSワイヤおよび動脈を湿らせる。別の9-0ナイロン縫合糸は、この待ち時間の間にワイヤ挿入ポイントにDFA近位の周りに配置することができる。この縫合糸は、ワイヤの除去後DFAに穴を閉じるために後で使用される。 </li></ol></li><li>ワイヤーを取得し、血流を再開<ol><li>血管カニュレーション鉗子で線を持ち、ゆっくりと引き戻す。ワイヤーがスムーズに取得されるべきである。通常動脈壁へのワイヤの付着によって生じるいかなる抵抗を克服するために、穏やかに回転してワイヤーを引き戻すと便利です。ここでも、力強い操縦は、動物の損失につながる可能性があります。 </li><li> Aワイヤーを取り出すFTERは、9-0ナイロン縫合糸との分岐点でDFAを連結する。 SFAへの血液流出を危うく分岐、に近づきすぎ連結しないでください。 </li><li>正常な血流を再開するためにSFAとCFAの縫合糸ループを緩めます。 CFAは、ワイヤの挿入（ 図2D）で十分に展開されていることに注意してください。 </li></ol></li></ol> 4.皮膚閉鎖と術後ケア<ol><li>コントロールが出血。マイナーにじみ出るは、簡単な圧縮によって停止することができる。いくつかの主要な動脈採血を11-0ナイロン縫合糸でステッチが必要になります。これらの縫合動脈は、最終的には動脈閉塞になります。 </li><li>スキンステープラー（通常3-4ステープル）で皮膚創傷を閉じます。クロルヘキシジン外科ソリューションを適用することにより、滅菌創傷領域にしてください。 </li><li>術後の治療法を適用します。ブプレノルフィンの皮下注射でマウスの痛みを制御します。それはSUFを取り戻したまでは温暖化パッド上でマウスを保つ胸骨の横臥位を維持するために意識をficient。他の動物の会社のない清潔なケージ内のハウスには、完全に回復するまで。 </li></ol>

<ol><li>Dzau, V. J., Braun-Dullaeus, R. C., Sedding, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vascular+proliferation+and+atherosclerosis%3A+new+perspectives+and+therapeutic+strategies%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Med%22%5BJournal%5D)">Vascular proliferation and atherosclerosis: new perspectives and therapeutic strategies.</a> Nat Med. 8 (11), 1249-1256 (2002).</li>
<li>Hui, D. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intimal+hyperplasia+in+murine+models%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Drug+Targets%22%5BJournal%5D)">Intimal hyperplasia in murine models.</a> Curr Drug Targets. 9 (3), 251-260 (2008).</li>
<li>Ferns, G. A., Avades, T. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+mechanisms+of+coronary+restenosis%3A+insights+from+experimental+models%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Exp+Pathol%22%5BJournal%5D)">The mechanisms of coronary restenosis: insights from experimental models.</a> Int J Exp Pathol. 81 (2), 63-88 (2000).</li>
<li>Sata, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+mouse+model+of+vascular+injury+that+induces+rapid+onset+of+medial+cell+apoptosis+followed+by+reproducible+neointimal+hyperplasia%5BTitle%5D)+AND+%22J+Mol+Cell+Cardiol%22%5BJournal%5D)">A mouse model of vascular injury that induces rapid onset of medial cell apoptosis followed by reproducible neointimal hyperplasia.</a> J Mol Cell Cardiol. 32 (11), 2097-2104 (2000).</li>
<li>Xu, Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+models+of+arteriosclerosis%3A+from+arterial+injuries+to+vascular+grafts%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Mouse models of arteriosclerosis: from arterial injuries to vascular grafts.</a> Am J Pathol. 165 (1), 1-10 (2004).</li>
<li>Lv, L., Meng, Q., Ye, M., Wang, P., Xue, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((STAT4+deficiency+protects+against+neointima+formation+following+arterial+injury+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Mol+Cell+Cardiol%22%5BJournal%5D)">STAT4 deficiency protects against neointima formation following arterial injury in mice.</a> J Mol Cell Cardiol. 74C, 284-294 (2014).</li>
<li>Zhu, B., Kuhel, D. G., Witte, D. P., Hui, D. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Apolipoprotein+E+inhibits+neointimal+hyperplasia+after+arterial+injury+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Apolipoprotein E inhibits neointimal hyperplasia after arterial injury in mice.</a> Am J Pathol. 157 (6), 1839-1848 (2000).</li>
<li>Fu, Y., Duru, E. A., Davies, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+metabolic+syndrome+on+the+response+to+arterial+injury%5BTitle%5D)+AND+%22J+Surg+Res%22%5BJournal%5D)">Effect of metabolic syndrome on the response to arterial injury.</a> J Surg Res. , (2014).</li>
<li>Kuhel, D. G., Zhu, B., Witte, D. P., Hui, D. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distinction+in+genetic+determinants+for+injury-induced+neointimal+hyperplasia+and+diet-induced+atherosclerosis+in+inbred+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Arterioscler+Thromb+Vasc+Biol%22%5BJournal%5D)">Distinction in genetic determinants for injury-induced neointimal hyperplasia and diet-induced atherosclerosis in inbred mice.</a> Arterioscler Thromb Vasc Biol. 22 (6), 955-960 (2002).</li>
<li>Cooley, B. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+strain+differential+neointimal+response+in+vein+grafts+and+wire-injured+arteries%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+J%22%5BJournal%5D)">Mouse strain differential neointimal response in vein grafts and wire-injured arteries.</a> Circ J. 71 (10), 1649-1652 (2007).</li>
<li>Ishigami, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Deficiency+of+CuZn+superoxide+dismutase+promotes+inflammation+and+alters+medial+structure+following+vascular+injury%5BTitle%5D)+AND+%22J+Atheroscler+Thromb%22%5BJournal%5D)">Deficiency of CuZn superoxide dismutase promotes inflammation and alters medial structure following vascular injury.</a> J Atheroscler Thromb. 18 (11), 1009-1017 (2011).</li>
</ol>

著者らは、競合する金銭的利益はないと宣言している。

ワイヤ傷害手順は、我々は12-16週齢の雄C57BL / 6マウスを使用する限り、それらの解剖学的構造が類似しているように4本研究では、マウスのすべての株に適用可能である。私たちは私たちの予備的研究から学んだように、10週より若いマウスの大腿動脈は、多くの場合、線挿入は非常に困難であることが非常に小さい。一方、16週間以上経過したマウスにおける電線挿入は、技術的に容易であるが、より多くの変数新生内膜過形成をもたらす傾向がある。雌マウスは、雄よりも低い新生内膜形成を招く傾向がある。ワイヤー傷害手順は大腿動脈のいずれかの側で行うことができますが、我々が原因右利きの演算子のための解剖のアクセシビリティの左側を好む。 血管形成術後の再狭窄のすべてのマウスモデルのうち、動脈ワイヤ傷害はほとんど密接内皮裸出と血管壁overstrechingによる血管形成を模倣あり2,5,6-大腿動脈および頚動脈：ワイヤー傷害のための2つの主要な標的動脈がある。彼らは大腿動脈よりも幅が広いので、技術的な観点から、電線挿入は頸動脈のために簡単です。しかし、新生内膜形成が...

様々な心血管疾患に対する血管内治療の適用が拡大する時代において、血管形成術後の再狭窄は、そのような治療を受けている患者にとって大きな問題の一つです。血管形成術時の血管内皮の損傷は、アテローム性動脈硬化症の背景と相まって、内側層に過剰な平滑筋細胞の増殖を誘発し、新生内膜の過形成を引き起こします。したがって、血管形成術後の新内膜過形成を再現する生存可能な動物モデルは、疾患メカニズムの調査だけでなく、この病状を治療するための効果的な治療法の開発にとっても重要です。
マウスは、次の理由から新内膜過形成を再現するための優れたモデル動物を表しています：実験マウスの遺伝的背景は十分に確立されており、多種多様な遺伝子組み換え株が利用可能です。2同じ背景の同腹仔を入手するのは簡単です。そして、動物のコストは比較的安いです。動脈結紮モデルとワイヤー損傷モデルは、機械的に誘発された新生内膜過形成の最も一般的な2つのマウスモデルです。動脈結紮モデルは簡単に作成できますが、実際の血管形成術とは生理学的に異なります。ワイヤー損傷モデルは、実際の血管形成術の手順を忠実に模倣していますが、マウスの動脈のサイズが小さいため、技術的に困難です。2,3 Sata et al.は、血管系の解剖学的構造と適切なサイズのフレキシブルワイヤーの使用に基づいて、マウス大腿動脈のワイヤー損傷法を最初に説明しました。この技術を用いて、彼らはマウスの様々な系統において新内膜過形成を再現性よく誘導することに成功しました。4
大腿骨ワイヤー損傷は確立されたモデルですが、その技術の技術的側面のいくつかは、結紮などの他のモデルと比較して非常に困難です。5 この論文の目的は、Sataの元の方法の修正版であるマウスワイヤー損傷モデルの手順を詳細に説明することです。1)動脈のみをループする、2)リドカインを使用しない、の2つの主要な変更を加えました。

<table><tbody><tr><td>固定芯線ガイド</td><td>クック</td><td>G02426</td>直径<td>0.015インチ、ストレート</td></tr><tr><td>拡張鉗子</td><td>Roboz</td><td>RS-4927</td><td>湾曲した、鈍い先端</td></tr>デュ<tr><td>モントツイーザー#5</td><td>世界の精密機器</td><td>14095</td><td>まっすぐで鋭い先端</td></tr><tr><td>デュモン血管カニューレ鉗子世界の</td><td>精密機器</td><td>503373</td><td></td></tr><tr><td>マクファーソンバンナスはさみ</td><td>ワールドプレシジョンインスツルメン</td><td></td>ツ501234<td></td></tr><tr><td>モスキート鉗子</td><td>ワールドプレシジョンインスツルメンツ</td><td>501291</td><td></td></tr><tr><td>エチロンナイロン縫合糸9-0</td><td>Ethicon</td><td>7717G</td><td>9-0、ブラックナイロンモノフィラメント</td></tr><tr><td>マイクロアロシュタレ、滅菌11-0、70マイクロメートル、METポイント</td><td>アロス外科</td><td>VT4A00N07</td><td>11-0、ブラックナイロンモノフィラメント</td></tr><tr><td>3M精密マルチショットDS使い捨てスキンホッチキス</td><td>3M</td><td>DS-25</td><td></td></tr></tbody></table>

動脈再狭窄のマウスモデル：大腿ワイヤー傷害の技術的な側面

A Murine Model of Arterial Restenosis: Technical Aspects of Femoral Wire Injury

アテローム性動脈硬化症により引き起こされる心血管疾患は、先進国における死亡の主な原因である。動脈硬化性プラークの開発や確立プラークの破裂による血管内腔の狭窄は、このような心筋梗塞や脳卒中などの様々な病的状態につながる正常な血流を遮断する。診療所では、そのような血管形成術などの血管内の手順は、一般的に内腔を再度開くために行われている。しかし、これらの治療は、必然的に、過剰な治癒反応と血管狭窄（​​再狭窄）を引き起こすルーメン内に延びて、新生内膜プラークの発達を誘発する、血管壁、ならびに血管内皮を損傷する。再狭窄は、アテローム性動脈硬化症のための血管内治療の失敗の主要な原因である。したがって、再狭窄の前臨床動物モデルは、病態生理学的機序ならびに脈管介入翻訳アプローチを調査するために極めて重要である。いくつかのネズミexperimeうち、それは密接に内皮および血管壁の両方を傷つける血管形成術に似ているので、NTALモデルは、大腿動脈ワイヤ傷害は広く血管形成術後の再狭窄の研究のために最も適していると認められている。しかし、多くの研究者が、技術的難易度の高い程度に、このモデルを利用して困難である。金属ワイヤが顕著新生を誘導するのに十分な損傷を生成するために、ワイヤの約3倍薄い大腿動脈に挿入する必要があるため、これは主にある。ここでは、効果的に、このモデルの主要な技術的困難を克服するために不可欠の手術の詳細を説明します。 、提示された手順に従って実行することによって、マウスの大腿動脈ワイヤ傷害が容易になる。慣れた後、全体の手順は、20分以内に完了することができる。

手術後4週間、ワイヤー損傷大腿動脈を収穫し、新生内膜形成を分析するためにパラフィンブロック標本を作る。上記のように全身麻酔を誘導する。すぐに胸を開き、左心室に20ゲージの翼状針を挿入します。点滴ボトルにラインを接続します。 4％パラホルムアルデヒド（通常は10〜20ミリリットル、各）に続いて、PBSの点滴を経由して灌流固定を行います。動物は、ワイヤ損傷CFAを取り出し、4℃で一晩、4％パラホルムアルデヒド中で固定し、20分間生理pressure.Waitで灌流されるように、輸液ボトル、心臓レベルよりも約140センチメートル高く配置されている。標準的な組織学的技術を使用して、試料のパラフィンブロックを作成し、組織学的染色のために5μmの厚さの断面を準備します。 ヘマトキシリン​​ - エオシン染色は、ワイヤ負傷したF内部の新生内膜形成の明確な可視化を可能にしますemoral動脈（ 図3A、ワイヤー損傷大腿動脈、3B、無傷の大腿動脈）内腔面積（LA）を測定するための適切なソフトウェア.USE、内弾性板...

再狭窄のマウス大腿動脈ワイヤ傷害モデルは、技術的に困難である。このプロトコルでは、我々は成功し、再狭窄の研究のための一貫性の新生内膜を誘導するために、ワイヤ傷害を実施するための不可欠なキー技術的な詳細を示している。

Cardiovascular disease caused by atherosclerosis is the leading cause of death in the developed world. Narrowing of the vessel lumen, due to ...

この手順の目的は、マウスの大腿動脈において、ワイヤーによる損傷で誘導される顕著な内膜肥厚を作成することである。まず、左大腿部の皮膚を縦方向に切開する。次に、大腿動脈を探索し、浅大腿動脈（SFA）、総大腿動脈（CFA）、深大腿動脈（DFA）という3つの重要な解剖学的領域でループを作成する。次に、DFA壁に小さな穴を開け、金属線を挿入してCFAまで進め、1分間そのままにします。最後に、金属線を取り出し、DFAの2か所を結紮します。最終的に、横断面のH&amp;E染色により、大腿動脈に厚い内膜肥厚が認められます。一般的に、この手法に不慣れな者は2つの理由で困難に直面します。第一に、筋肉の深部から適切なアクセス動脈を見つけなければならないこと。第二に、アクセス動脈よりも約3倍太いワイヤーを挿入しなければならないことです。これは、C57BL/6マウス（雄）を麻酔した後に行います。テキストプロトコルに従い、適切な麻酔の確認と眼軟膏の塗布を行った後、マウスを仰臥位に安置し、左肢を軽く外転させ、膝関節を軽く屈曲させます。毛を剃除し、ピンセットを用いて当該部位を消毒した後、浅大腿動脈を覆う薄い筋膜を切開し、9-0ナイロン縫合糸を使用します。SFAをループさせるには、蚊針（モスキート鉗子）で縫合糸を保持し、さらに剥離しやすくするために、糸をゆっくりとわずかに下方へ引きます。動脈の解剖を続け、総大腿動脈（CFA）を露出させます。次に、9-0ナイロン縫合糸を用い、両方の縫合ループを保持しながらCFAにループをかけます。CFAの縫合ループを上に、SFAの縫合ループを下に引いて、SFAと、大腿筋に向かって分岐する深大腿動脈（DFA）の分岐点を露出させます。次に、細心の注意を払いながら、動脈の下に絡まっている隣接する静脈を避けるようにして、DFAにループをかけます。静脈から出血した場合は、GREを用いて30秒から62秒間圧迫し、止血を行います。DFAをループさせた後、3つの縫合ループすべてが正しい位置にあることを確認します。次に、DFAを遠位に向かって剥離し、分岐点から可能な限り離れた位置で動脈を結紮します。余分な縫合糸を切断しますが、蚊鉗子（モスキート）で両端を保持してDFAを固定し、ワイヤーの挿入を容易にするために、ある程度の長さを残しておきます。C-F-A-S-F-AおよびDFAの縫合糸を緊張させることから始めて、DFA経由でワイヤーを挿入します。一時的な止血法を確立するため、CFA縫合ループを緩め、鈍端のマイクロピンセットを使用してDFAを数回、緩やかにクランプまたは圧迫します。これにより、動脈径が著しく拡大し、ワイヤーの挿入が容易になります。次に、鋭端のマイクロピンセットを用いて、DFAに小さなV字型の切り込みを入れ、そのフラップを挟み込みます。PBSを使用して、無理な力を加えないよう

a-murine-model-arterial-restenosis-technical-aspects-femoral-wire

Research

JoVE Journal

Medicine

医学

片側後肢虚血の誘発のための外科手術は、レーザードップラー血流イメージングによる虚血の確認を、示されている。...

後脚虚血症のマウスモデル

我々は、ステップバイステップの手順および必要な器具の説明など、ネズミspinotrapezius筋における新規動脈結紮モデルを示しています。我々は、手術や生体共焦点顕微鏡を用いた血管網の再構築と機能的な血管拡張に関連する関連するアウトカムの測定について説明します。...

微小血管機能およびリモデリングに動脈結紮の影響を評価するためにネズミSpinotrapeziusモデル

マウス頸動脈内ステント移植のモデルが記載されている。他の同様の方法に比べて、この手順が異なる薬剤溶出ステントおよび再狭窄の分子機構に対する血管壁の反応便利な方法で勉強する可能性を提供し、非常に、迅速かつ簡単にアクセスできます。...

再狭窄の研究のための頸動脈内ステント留置のマウスモデル

心血管疾患の動物モデルからの動脈病変のEx...

発生と光学投影トモグラフィを用いたマウスにおける動脈病変の3次元定量

動脈瘤のエンドグラフト除外後の組織学的および生化学的な修正は、まだ不明である。我々は、マウス動脈瘤でエンドグラフト移植の新たなモデルを記述する。永続的な循環血液ストリームインタフェース、新しい血管内生体材料の評価の有無にかかわらず血栓分析を通して、このモデルでは、より良い血管内動脈瘤の除外病理生物学を理解するのに役立ちます。...

血管内大動脈瘤の修復の新しいマウスモデル

私たちは、マウスの大腿動脈にワイヤー損傷を引き起こして新内膜の過形成を誘発する外科的技術について説明し、再狭窄を阻害するための治療化合物の血管周囲送達のモデル試験システムとして機能します。...

血管周囲ドラッグデリバリーパッチの移植に大腿動脈ワイヤ傷害のマウスモデル

本研究は、マウスにおける加速アテローム性動脈硬化の誘導のための侵襲的処置を説明する。電気またはクライオによる傷害を用いた他の方法と比較して、機械的誘発傷害は、再血管化療法後の修復の人間の状態を模倣し、関係する分子機構の研究に理想的である。...

マウスにおける加速アテローム性動脈硬化症の誘導:ワイヤー傷害モデル

動脈裸出損傷後の再内皮の細胞および分子メカニズムを理解することは、動脈の血栓症および再狭窄を予防する上で極めて重要です。ここでは、下腹部大動脈の再現性動脈裸出損傷のためのプロトコルについて説明します。手順は、マウスモデルを使用して、内皮の再生を制御する機序を研究するために開発されました。...

マウスモデルにおける下腹部大動脈クランプすることにより、再現性動脈侵食に起因けが

心血管手術（バイパス手術、血管形成術、またはステント留置）後の再狭窄は、これらの処置の耐久性を低下させる重大な問題である。理想的な療法は、平滑筋細胞（VSMC）の増殖を阻害し、内皮の再生を促進する。インビボでのVSMC増殖および内皮機能の同時評価のためのモデルを記載する。...

ネズミ大動脈挫傷：効率的<em&gt;インビボ</em&gt;平滑筋細胞の増殖と内皮機​​能のモデル

ラット頸動脈バルーン傷害は、アテローム硬化性血管の血流を回復させるために行われる臨床血管形成術手順を模倣する。このモデルは、動脈壁を遠ざけ、内皮細胞の内皮層を脱脂することによって動脈損傷応答を誘導し、最終的にはリモデリングおよびインティタル過形成応答を引き起こす。...

過期治療アプリケーションを用いてラット頸動脈圧制御区分バルーン損傷

ここでは、大腿動脈吻合のマウスモデルを紹介し、血管吻合狭窄を研究し、シミュレートするための貴重な動物モデルを研究者に提供します。この開発は、この疾患の根底にある病態生理学の理解を深め、血管疾患のより正確で効果的な研究を促進するために重要です。...

大腿動脈吻合管狭窄症に対するマウスモデルの開発

学ぶマウス大腿動脈ワイヤー傷害モデルによる内膜肥厚誘導法。血管生物学研究における再狭窄の病態生理学的メカニズム解明と治療戦略開発への応用を支援する詳細プロトコルです。

動脈再狭窄のマウスモデル：大腿ワイヤー傷害の技術的な側面

さらに動画を探す