Name: 転写後調節される遺伝子の化学モジュレーターのためのハイスループットスクリーニング (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-03-03T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 44 s
Description: 学ぶ 転写後調節機構を標的としたハイスループットスクリーニング法。ルシフェラーゼレポーターアッセイを用いて化学ライブラリーから3'UTRを介して遺伝子発現を制御する化合物を同定し、創薬研究や遺伝子制御メカニズムの解明に活用する。

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このプロジェクトへの全面的な財政的支援に対して、イタリアの神経芽細胞腫財団に感謝します。

注：そのようなアッセイシステムのスループットは、利用可能なHTSのラボ機器に依存します。このプロトコルは、96ウェルフォーマットで液体ハンドリングを行うテカン自由EVO 200ロボットによって促進される。 384ウェルフォーマットの小型化も可能である。ロボット液体ハンドリングシステムは、全ての実験工程の間、無菌状態を維持するために、層流フードの下に配置されている。に液体ハンドリング自動化が可能でない場合、プロトコルは、容易に低スループットフォーマットに適合させることができる。 一次スクリーニング 1. 1日目：準備し、種細胞 NOTE：種子細胞はルシフェラーゼ活性、播種後、すなわち 、48時間の検定時に80％のコンフルエンスが得られた。 <ol><li>再懸 ​​濁し、10％FBSおよび1％L-グルタミンを含むRPMI中で2×10 5細胞/ mlの濃度にCHP134-mycn3UTR神経芽腫細胞をトリプシン処理。 27プレート用の少なくとも250ミリリットルを準備<html>アカウント液体ハンドリングを考慮細胞懸濁液は、デッドボリュームを繰り返しピペット操作谷。無菌のリザーバに細胞懸濁液を注ぎ、ロボット机の上に置きます。 </li><li> 9バーコード白平底96ウェルプレートとロボットの机の上に200μlの滅菌ピペットチップの箱を置きます。重力下で沈降細胞を避けるために、各分注工程の前に、ピペッティングにより細胞懸濁液を混合する。ウェルあたり1.5×10 4細胞の最終密度を得るために9プレートの各ウェルへの細胞の75μlの分注する。 </li><li>蓋でプレートをカバーし、細胞がウェルの底に沈降することを可能にするために30分間インキュベーターの外にそれらを残す。これは、エッジ効果を最小化する。 </li><li>繰り返し27プレートの総数を調製するために、二度1.2および1.3を繰り返す。 </li><li> 37℃でプレートを置き、5％CO 2および24時間インキュベート。 </li></ol> 2. 2日目：ライブラリ化合物を用いて細胞を処理ntent &quot;&gt;注：スペクトラムコレクション小分子ライブラリーは、DMSO中10mMの濃度で、25を96ウェルプレートに8行10列に配列された2000の化合物で構成され、最初と最後のカラムにウェルをコントロールの空のままにされている。 。化合物スクリーニングアッセイは、通常、1〜10μMの化合物濃度8で実行されている。ここで説明するスクリーニングプロトコルは、アッセイのエンドポイントとして使用濃度として2μM、24時間を修正します。 <ol><li>室温で9化合物ライブラリープレートを解凍する。 </li><li>滅菌PBSとPBS-0.5％のDMSO溶液で2谷を準備し、ロボットの机の上に置きます。少なくとも400μlの作業容積でポリプロピレンU底96ウェルプレート - 各ライブラリープレートについては、それに応じてつの希釈プレートを調製し、ラベルを付けます。液体ハンドラの固定チップを使用して滅菌PBSの398μlの希釈プレートの11に列2の各ウェルを埋める。無菌PBS50μlと列1および12を埋める対照ウェルにおける車両濃度（0.02％）を再生するために、0.5％のDMSOを含む。 </li><li>ロボット机の上に2ライブラリのプレート、それに応じてラベル希釈プレート、50μlの滅菌したピペットチップと6セルプレートの2箱を置きます。細胞プレートを発見する。 </li><li>対応する希釈プレート内の2つのライブラリプレートの1から10 mMのストック溶液をピペットを2μl、よく混ぜる。これは、50μMの中間体化合物の濃度になります。チップの同じセットを使用して、細胞と3バーコードの白色96ウェルプレートに50μMの希釈液3μlを分配する。各々の濃度を作業2μMでこの希釈スキームの結果は、化合物をテストした。 注：ライブラリプレートは唯一の80の化合物が含まれているにもかかわらず、最初から96のヒントの完全なセットを使用し、ヒントを不要な操作を避けるために。第ライブラリプレートの最後の列は空であるので、これは可能である。 </li><li>ピペットチップを交換して、聖を繰り返す第二のライブラリプレート用EP 2.4。 </li><li>細胞プレートをカバーし、24時間培養器に戻す。 </li><li>繰り返して、残りのライブラリプレート用2.3から2.6をさらに2回繰り返します。 </li></ol> 3. 3日目：ルシフェラーゼアッセイを行う注：ルシフェラーゼアッセイを行う前に、各ウェルからの9細胞生存率を得るために、レサズリンの還元に基づく細胞生存率アッセイでそれを多重化することが可能である。多重ルシフェラーゼおよび生存率アッセイ細胞を、ルシフェラーゼ活性の十分に高いレベルを提供する場合、しかし、無視できるルシフェラーゼシグナルの減少アッセイの結果。ルシフェラーゼ活性は、安定した発光シグナルの商業自家製10,11ルシフェラーゼアッセイ試薬の多様によって検出することができる。 <ol><li>室温への最適な再構成されたルシフェラーゼ試薬を平衡化する。ボリュームはすべてのアッセイされたプレートには十分であることを確認してください。 27プレートのためにSルシフェラーゼ試薬の170ミリリットルは、アカウントの液体処理を考慮して必要とされる、デッドボリュームと繰り返しピペット操作ステップを谷。リザーバにルシフェラーゼ試薬を注ぎ、ロボット机の上に置きます。 </li><li>インキュベーターから細胞と9のプレートを取り外し、ロボット机の上に置き、明らかにし、室温に平衡化するまで待つ。プレートによってウェルプレートあたりルシフェラーゼ試薬50μlのを追加。プレート間に、一方のプレートの発光読み取り時間に等しい遅延を導入する。これは、すべてのプレートが試薬添加から等しい時間間隔内に測定されることを保証する。 </li><li> 30分間のインキュベーション後、ルミノメーターで第一プレートを配置し、簡単な振盪工程後の発光を測定する。すべてのプレートについて繰り返します。各プレートのバーコードを記録し、取り扱いのプレートの大多数から生じるミスを避けるために、対応するデータファイルに関連付けます。 </li><li>繰り返して細胞と残りの18プレート用二度3.2から3.3を繰り返します。 </LI&gt; <li>残りのルシフェラーゼ試薬を収集し、-20℃で保管してください。 </li></ol> 4. 4日目：データ解析<ol><li>オンプレートビヒクル処置対照の平均にすべてのサンプルの正規化を使用して、プロセスの実験データ。各ライブラリー化合物については、トリプリケートにわたる平均値XおよびSDを計算。 </li><li>選択してアップレギュレートおよびダウンレギュレートの平均値xとSDが全てのアッセイ処理された値に対して計算されているSD、およびK×K±xのしきい値を設定することでヒットを定義された定数である。 </li><li>ルシフェラーゼシグナルの減少は、おそらく、化合物の毒性に関連付けられている場合、任意の閾値カットオフ&lt;ビヒクル処置対照の20％を選択する。このしきい値以下のヒットを破棄することが大幅カウンタースクリーニングで偽陽性ヒット数を減らすことができます。 注：代わりに、制御系の正常化のため、実験データは、Zスコアまたはその堅牢なアナログB sに適用して処理することができるコア12。また、ヒットの選択のための代替統計的アプローチは12利用可能です。 </li></ol> 5.カウンタースクリーニング注：一次スクリーニング（ラベル「ヒット」）で同定された化合物は、カウンタースクリーニングにより特異性について確認され、評価される。 <ol><li>チェリーは単一の2Dバーコードのチューブに格納されている分量から選択ヒットを選んで、「プレートをヒット &quot;新しいを作成し、対応するレイアウトを保存する。コントロールの自由な位置を残すことを忘れないでください。 注：効率的なチェリー·ピッキングシステムが存在しない場合には、1を制御し、一次スクリーニングで並行して、3 &#39;UTRを有する細胞の両方をテスト可能性があります。この場合、唯一の導入3 &#39;UTR依存効果を有する化合物の特定の選択は、カウンタースクリーニングの必要性を排除し、一次スクリーニングの後に可能となる。しかし、2つの細胞株における並列スクリーニングアッセイを倍増コスト。 </li><li>一次スクリーニングのためのプロトコル（セクション &quot;1日目：準備し、種細胞」）に続いて、各「ヒットプレート」のために各CHP134-mycn3UTRとCHP134-CTRL安定した細胞の3の96ウェルプレートを準備します。 </li><li>一次スクリーニングのためのプロトコル（セクション「2日目：ライブラリ化合物を用いて細胞を処理」）に続いて、作業濃度2μMで3 CHP134-mycn3UTRと3 CHP134-CTRLプレートを治療するための各ヒットプレートを使用しています。 注：ここで説明するカウンター画面が2μmの単回投与で、三連で行われている間、それは標準の複製を代用し、2μMから20の範囲の10倍希釈液として3濃度でのヒットをテストすることは有益かもしれません。このアプローチを適用する一次画面のデータを確認することを可能にするだけでなく、一次ヒットの予備的な用量 - 応答データを取得するために、偽陽性率を最小化する。この場合、異なる解析パイプラインはアプリであるべき実験データを処理し、ヒットを確認するために、編。 </li><li>一次スクリーニングのためのプロトコル（セクション「3日目：ルシフェラーゼアッセイの実行」）に続いて、すべてのCHP134-mycn3UTRとCHP134-CTRLプレートでルシフェラーゼ活性を測定する。 </li><li>一次スクリーニングのためのプロトコル（セクション「4日目：データ解析 &quot;）に続いて、オンプレートビヒクル処置対照の平均に処理したウェルからの実験データを正規化し、反復実験にわたる平均およびSDを計算する。試験した各化合物について、CHP134-CTRL細胞対CHP134-mycn3UTRにおけるルシフェラーゼ活性の変化倍率を計算する。任意の倍率変化カットオフ&gt; &lt;0.01の1.5と意義p値を選択します。 注：記載されているアッセイの設定でヒット特異性のための行列式のパラメータは、CHP134-CTRL細胞対CHP134-mycn3UTRにおけるルシフェラーゼ活性の有意な倍率変化である。必要に応じて、一つ又それに並行して細胞生存率アッセイを行うことにより、化合物の毒性を評価するかもしれないlected化合物。一次ヒットは、用量反応分析でカウンタースクリーニングされる場合に特に有益であり得る。単回投与のために、我々の経験は6細胞生存率の低下を低減し、ルシフェラーゼ活性の強い相関関係を示している。従って、標的細胞におけるルシフェラーゼ活性の低下、並びにコントロール細胞は、試験した濃度で、化合物の毒性の指標と考えることができる。 </li></ol>

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著者らは、競合する金銭的利益はないと宣言している。

このプロトコルは、3' UTR依存性転写後プロセスを標的とするモジュレーターの同定を目的とした細胞ベースのレポーター遺伝子アッセイを記述しています。これには一次スクリーニングとカウンタースクリーニングが含まれており、必要に応じて細胞毒性アッセイを伴うことができます。一次スクリーニングの結果は、多くの貴重な候補化合物であり、その再現性と特異性はカウンタースクリーニングでさらに検証されます。
一次ヒットの同定は、レポーター-3' UTRキメラ転写産物を発現する細胞の処理時のルシフェラーゼ活性の変化に基づいています。3' UTRを使用せずに同じレポータープラスミドを保有する細胞でヒットを再テストすると、真のヒット(3' UTR依存性メカニズムを介してルシフェラーゼレベルを特異的に調節する化合物)と偽陽性(プロモーターの転写応答性を介してルシフェラーゼ活性を変化させる化合物)を区別できます。一次ヒットのカウンタースクリーニングによって証明されるように、アッセイはかなりの偽陽性率を示しています6。この制限を回避するには、いくつかの戦略を採用できます。薬物による転写の阻害...

長期間の遺伝子発現の転写調節は、タンパク質産生の制御において主要でない場合、排他的な役割を果たしていると考えられた。証拠を蓄積するが、転写後調節は、細胞のタンパク質存在量1,2を決定する限り、そうでない場合、転写調節よりも寄与していることを示している。遺伝子発現の転写後制御は、最初に考えただけであったよりはるかに複雑かつ精巧である。実際には、転写後制御のすべての様々な段階は、mRNAプロセシング、局在、代謝回転、並進3と同様に、新たに記載の可逆的RNAのメチル4を含む、調節されることが浮上している。潜在的に影響を受けた転写後調節プロセスの数から、以下に記載のアッセイは、mRNAの3 &#39;非翻訳領域（UTR）に関与するものに焦点を当てている。 3 &#39;UTRは広く、主にRNA結合PRの特異的相互作用を介してmRNAの運命に影響を与えるその調節配列および/ ​​または二次構造5 oteinsおよび非コードRNA。したがって、これらの相互作用を変化させるか、上流のシグナル伝達経路を妨害する小分子は、タンパク質の存在量を調節するバランスをシフトする。この治療アプローチは、証拠は、疾患関連遺伝子がこのような薬理学的介入のための潜在的標的を表す転写後調節に供されていることを示す存在するヒトの病状のために特に重要である。したがって、ハイスループット形式における転写後制御機構との干渉を介してmRNAレベル「モジュレーターのスクリーニングを可能にするシステムは、潜在的な新規治療の同定に有用なツールになることができる。 記載した細胞ベースのレポーター遺伝子アッセイは、その3 &#39;UTR依存メカニズムを介してmRNAの運命を調節することができる化合物の同定を可能にする。これは、いくつかの主要なCで構成されていomponents（ 図1）およびアッセイの実現可能性を検証するためにいくつかの予備的な手順が必要です。まず、レポーター構築物は、目的の遺伝子の3 &#39;UTRを含むように設計されている。 3 &#39;UTRは、ホタルルシフェラーゼのようなレポーター遺伝子（ 図1）の末端に融合される。挿入された3 &#39;UTRを介して発揮される転写後制御機構の変化は、様々なルシフェラーゼのレベルをもたらす、このキメラ転写物の安定性および/または翻訳効率を変える。したがって、ルシフェラーゼ活性の変化は、目的の遺伝子の影響を受けた転写後調節の間接的な尺度として役立つ。システムの第二の成分は、対照レポーター構築、同じレポーター遺伝子を発現するが、任意の3 &#39;UTRを含まない同一の発現プラスミドである。 2つのレポータープラスミドは、従来の分子生物学プロトコールを用いて実験室で設計された、または商業的供給源から購入することができる。適切な細胞株の選択は、アッセイの構築のために重要である。どの細胞株が最適モデルである可用性、トランスフェクション能力、及び成長特性のようなだけで実用的な問題への病理に対する最大の類似性のような臨床要件に至るまで、多くの要因に依存します。重要なことは、前には1つが、レポーター遺伝子の3 &#39;UTRの融合がキメラ転写物のレベルで期待される効果があることを確認する必要が進みます。 3からのルシフェラーゼシグナルの有意差がないこと」UTR-ベアリングとコントロールレポーター一過選択した細胞にトランス構築物3ことを示すことになる」UTRは、代替ものの検索の入力を求める、この細胞モデルにおいて機能していません。ハイスループットフォーマットでは、3 &#39;UTR-軸受および制御ルシフェラーゼレポーター構築物を安定的に選択された細胞株中で統合されるべきである。安定的にトランスフェクト一過上に統合を使用して、細胞株は、いくつかの理由のために好ましい。これは、困難なトランスフェクト細胞株を含む細胞モデルの選択を広げるトランスフェクション効率の変動によるデータのばらつきを減少させ、コストが治まる。また、一過性トランスフェクション細胞に非常に多くの場合、システムの飽和につながるDNAプラスミドで過負荷にされている。これらの設定ではレポーター発現の更なる増加は、潜在的なアップレギュレート化合物に向かって減少した感度で、その結果、困難な場合があります。 すべてのアッセイ成分が設定されている場合、ルシフェラーゼ活性を特異的に挿入3を介して上方及び下方調節することができ、実際に最後に、もし、それは、 すなわち 、アッセイの実行可能性を決定するために、ハイスループットフォーマットに移動する前に、重要であるUTR。最高のコントロールが関心の3 &#39;UTRを通じてmRNAの安定性または翻訳可能を調節することが報告された小分子であろう。これらを有するある場合所望の効果を模倣していない可能性、サロゲートコントロールが受け入れられます。これらのmiRNAまたは対象の3 &#39;UTRへの結合を介してそれらの効果を発揮することが知られているRNA結合タンパク質であり得る。このような制御の評価は次スクリーニングは、開発されたアッセイの機能性を示すだけでなく、ハイスループット形式でのダイナミックレンジ、感度や性能の推定を可能にするだけでなく、前に。 記載されているプロトコルを使用して、我々は、2000-化合物ライブラリ6をスクリーニングした。神経芽細胞腫、幼児期の最も一般的な頭蓋外固形腫瘍は、増幅強く標的遺伝子7として、神経芽細胞腫の有害転帰を予測するMYCN癌遺伝子の生物学的モデルおよび3 &#39;UTRとした。 図2実験的なレイアウトの概要を示します。スクリーニングは、1回の実行でスクリーニング27のプレートのバッチサイズで3回の実行に分けた。 27プレートのバッチはスペクトラムコレクションライブラリが含まれてプレートN.1-N.8 + n.25（ファーストラン）、n.9-n.16 + n.25（セカンドラン）とn.16-n.24 + n.25（第3ラン）、各三重でスクリーニングプレート。このように、1ライブラリプレート（n.25）が可能インターラン比較を行う3つのすべての実行中で分析した。以下のプロトコルを3回試験9ライブラリプレートの回の実行について説明します。

<table><tbody><tr><td>培養プレート 96 ウェル ホワイト</td><td>PerkinElmer</td><td>6005688</td><td></td></tr><tr><td>StorPlate 96 ウェル U 底 (希釈プレート)</td><td>PerkinElmer</td><td>6008190</td><td></td></tr><tr><td>試薬用 100 ml ディスポーザブルトラフ</td><td>Tecan</td><td>10 613 048</td><td></td></tr><tr><td>300 ml ディスポーザブル ロボットリザーバー</td><td>VWR</td><td>PB12001301</td><td></td></tr><tr><td>ロボットチップ DITI 50&nbsp;&mu;l 滅菌</td><td>テカン</td><td>30038607</td><td></td></tr><tr><td>ロボットチップ DITI 200&nbsp;&mu;l 滅菌</td><td>Tecan</td><td>30038617</td><td></td></tr><tr><td>Matrix 1.4 ml 2D バーコード付き、フラットボトムチューブ</td><td>Thermo Scientific</td><td>3711</td><td></td></tr><tr><td>ONE-Glo Luciferase Assay System&nbsp;</td><td>プロメガ</td><td>E6120</td><td></td></tr><tr><td>RPMI</td><td>ロンザ</td><td>BE12-918F</td><td></td></tr><tr><td>PBS-1x、Ca2+、Mg2+</td><td>ロンザ</td><td>BE17-516F</td><td></td></tr><tr><td>L-グルタミン 200&nbsp;mM</td><td>Lonza</td><td>BE17-605E</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Lonza</td><td>DE14-801F</td><td></td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D8418</td><td></td></tr><tr><td>The Spectrumコレクション(化合物ライブラリ)</td><td>MicroSource Discovery Systems</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Tecan Freedom EVO200ロボット&nbsp;</td><td>Tecan</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Tecan F200 マルチプレートリーダー&nbsp;</td><td>テカン</td><td>N/A</td><td></td></tr></tbody></table>

転写後調節される遺伝子の化学モジュレーターのためのハイスループットスクリーニング

High-throughput Screening for Chemical Modulators of Post-transcriptionally Regulated Genes

転写および転写後調節の両方が遺伝子発現に大きな影響を持っている。しかし、一般的に採用細胞ベースのスクリーニングアッセイは、本質的に、プロモーター - 標的分子の同定を目的とされて、転写調節に焦点を当てる。その結果、転写後のメカニズムは、主に薬剤開発の標的遺伝子の発現によって明らかにされる。ここでは、それを修正することができる化合物を同定することで、そのmRNAの運命の調節において3 &#39;非翻訳領域（UTR）の役割を調べることを目的とした細胞ベースのアッセイを記載する。アッセイは、安定に疾患関連細胞株に組み込まれた目的の遺伝子の3 &#39;UTRを含むルシフェラーゼレポーター構築物の使用に基づいている。プロトコルは、処理の24時間後にルシフェラーゼ活性に影響する分子の同定を目的とした一次スクリーニングでの最初の焦点を、2つの部分に分割される。プロトコルの第2部分カウンタースクリーニング3 &#39;UTRを通じて、具体的ルシフェラーゼ活性を調節する化合物を区別する必要を説明しています。詳細なプロトコルおよび代表的な結果に加えて、我々はアッセイ開発および内因性標的に対するヒット（複数可）の妥当性についての重要な考慮事項を提供する。記載した細胞ベースのレポーター遺伝子アッセイは、科学者が3 &#39;UTR依存的転写後機構を介してタンパク質レベルを調節する分子を同定することを可能にする。

説明したアプローチを用いて、我々は、MYCN遺伝子の3 &#39;UTRを介して発揮される転写後制御機構の潜在的調節のための2000-化合物ライブラリーをスクリーニングした。 図3を単一のライブラリープレートによって例示次スクリーニングの結果を示す。ビヒクル処置対照のパーセンテージとして表示されるルシフェラーゼシグナルは、単一のライブラリープレートの化合物で治療CHP134-mycn3UTR細胞の三連のプレート中のルシフェラーゼ活性を測定することにより求めた。予想されるように、100％のベースラインに近い値で示されるように、化合物の大部分は、ルシフェラーゼ活性に影響を及ぼさなかった。ヒット（透明の四角形）は、平均値XとSDを全てのアッセイ値に対して計算されるX±SD 2の閾値を設定することを選択した。検出された阻害はおそらくpronouした結果として20％（アスタリスクでマーク1）は、以下のルシフェラーゼ活性を低下させる化合物は、検討対象から除外されるべきである化合物のNCED細胞毒性。 図4は、</strong...

ここでは、細胞ベースのレポーター遺伝子アッセイを、3' UTRを介して発揮される転写後制御メカニズムを調節する化合物の化学ライブラリーをスクリーニングするための貴重なツールとして説明しています。

Both transcriptional and post-transcriptional regulation have a profound impact on genes expression. However, commonly adopted cell-based screening assays ...

この実験では、転写産物の3'非翻訳領域を介して翻訳後制御機構を調節する化合物を化学ライブラリーからスクリーニングします。まず、標的遺伝子において目的の3'非翻訳領域を特定します。この3' UTRをElルシフェラーゼ制御リポータープラスミドにクローニングし、Elルシフェラーゼ3' UTRキメラ転写産物を作成します。次に、これら2つのプラスミドを疾患に関連する細胞株に安定的に導入し、キメラ転写産物を保持する細胞を96ウェルプレートに播種します。化合物ライブラリーを用いて24時間処理し、ルシフェラーゼ活性に影響を与える分子を同定します。さらなる検証スクリーニングのために、選択した分子をチェリーピックします。次に、コントロール細胞とルシフェラーゼ3' UTRキメラ転写物を保持する細胞の両方を、チェリーピックしたライブラリサブセットで処理します。これにより、化合物の効果が3'非翻訳領域を介したものか、あるいは他のベクター配列を介したものかを区別でき、これは多くのレポーターベースのスクリーニングアッセイとは異なる点です。転写調節に焦点を当てたアッセイである本細胞ベースのアッセイでは、3'非翻訳領域を介してmRNA転写レベルを調節する化合物の同定を目的としています。トリプシン処理により、安定的にトランスフェクトされた神経芽細胞腫細胞を回収します。細胞を2×10⁵ cells/mLの濃度に希釈します。10%FBSおよび1%L-glutamineを含むRPMIを用いて、27プレート分を調製します。液量操作、トラフのデッドボリューム、および繰り返しのピペッティング操作を考慮し、少なくとも250 millilitersの細胞懸濁液を調製してください。その後、細胞懸濁液を滅菌リザーバーに注ぎ、ロボットデスク上に配置します。バーコード付きのホワイトフラットボトム96ウェルプレート9枚と、200 µL滅菌ピペットチップ1ボックスをロボットデスクにセットします。細胞懸濁液を混合し、9枚のプレートの各ウェルに細胞を75 µLずつ分注します。エッジエフェクトを最小限に抑えるため、プレートに蓋をして、細胞がウェルの底に沈降するまで30分間静置します。その後、9枚すべてのプレートを37 °C、5% carbon dioxideの条件下で24時間インキュベートします。同様に、残りのプレートについても9枚ずつ処理を進めます。化合物ライブラリプレートを室温で解凍します。1つのトラフに滅菌PBSを、もう1つのトラフにPBS溶液中の0.5% DMSOを満たし、ロボットデスク上に配置します。各ライブラリプレートについて、以下の手順を行います。適切に準備し、ラベルを貼ります。希釈プレートを1枚用意します。次に、希釈プレートの2列目から11列目の各ウェルに、滅菌済みPBSを398 µLずつ分注します。次に、1列目と12列目に、滅菌PBSで希釈した0.5% DMSOを50 µLずつ充填します。続いて、2枚の希釈プレートをロードします。また、2枚のライブラリプレート、50 µL滅菌チップ2ボックス、および6枚のセルプレートをロボットデスクに配置します。次にセルプレートのカバーを取り除き、2枚あるライブラリプレートのうちの1枚から10 mMのストック溶液を2 µL分、対応する希釈プレートにピペッティングし、よく混合します。同じチップセットを使用して、50 µMの希釈液を3 µL分、細胞を含むバーコード付きの白い96ウェルプレート3枚に分注します。チップをすべて交換し、2枚目のライブラリープレートについて細胞誘導を繰り返します。培養液に蓋をし、24時間インキュベートします。その後、残りのライブラリープレートについても、化合物希釈と細胞誘導のプロセスを繰り返します。使用するルシフェラーゼ調製液を室温に戻します。ルシフェラーゼリザーバーをロボットデスクに配置し、試薬を注ぎ入れます。誘導培養した9枚のプレートをインキュベーターから取り出します。それらをロボットデスクに配置し、カバーを取り除いて室温に戻します。次に、プレート間に1ウェルあたり50 µLのルシフェラーゼ試薬を添加します。1枚のプレートのルミネッセンス測定時間に相当する遅延時間を設定します。30分間のインキュベーション後、まず、プレートのバーコードを記録して対応するデータファイルに関連付けます。次に、最初のプレートをルミノメーターにセットし、発光を測定します。短時間の振盪後、すべての誘導プレートについてルミネッセンス測定を繰り返します。次に、残りのLuciferase試薬を回収し、-20 °Cで保存します。一次スクリーニングの実験データの処理が完了したら、ヒット化合物を選択し、カウンター・スクリーニングによって化合物の特異性を確認します。選択したヒットをピックアップし、コントロールの位置を含めた新しいスクリーニングプレートのレイアウトを作成します。次に、個別の2Dバーコードチューブに保存された分注試料から、新しいHIITプレートを作成します。その後、スクリーニングについて同様のプロトコルに従います。hiプレート1枚につき、各安定細胞株の96ウェルプレートを3枚ずつ準備します。翌日、ライブラリー化合物で細胞を処理します。各hiプレートを用いて、CHP 1 34 mickenの3枚、prime UTRの3枚、およびコントロール細胞の3枚のプレートに対し、2 µMの最終濃度で24時間処理を行います。すべてのCHP 1 34プレート（3つのプライム非翻訳セットおよびコントロールセット）においてルシフェラーゼ活性を測定します。一次スクリーニングのデータ解析と同様に、処理済みウェルの実験データを、同一プレート内のビークル処理コントロールの平均値で正規化します。その後、テストした各化合物について、反復試行における平均値と標準偏差を算出します。CHP 1 34 3' UTRとCHP 1 34におけるルシフェラーゼ活性のフォールドチェンジ。対照細胞では、フォールドチェンジのカットオフ値を1.5超、有意確率P値を0.01未満に任意に設定した。本実験では、2000種類の化合物ライブラリを用いて、micおよびオンコジーンの3' UTRを介して行使される転写後制御メカニズムの潜在的なモジュレーターをスクリーニングした。代表的な25枚のライブラリプレートのうち1枚のルシフェラーゼシグナルの結果を、ビークル処理群に対する割合（%）として表示している。コントロールの結果から、大半の化合物は3' UTRに対して明らかな影響を及ぼさないことが示されました。ヒット化合物の選定において、平均値と標準偏差はすべてのアッセイ値から算出されており、ルシフェラーゼ活性を20%以下に低下させた化合物は、その化合物の顕著な細胞毒性を示している可能性が非常に高いと考えられます。このグラフは、WX、Y、およびZと指定された4つの選定化合物のカウンタースクリーニングにおける代表的な結果を示しています。化合物WとXは、フォールドチェンジ（倍率変化）の差およびT検定で示されるように、オンコジーンの3' UTRレポーターからのルシフェラーゼ発現を増加させました。化合物WとXの両方の効果が実際に3' UTRに依存している一方で、化合物Wは細胞生存率に有意な影響を及ぼさないことに留意してください。化合物Xは、CHP 1 34コントロール細胞における正規化ルシフェラーゼ信号で示されるように、ある程度の細胞毒性活性を示しますが、2 µM濃度の化合物Yおよび化合物Zはいずれも、ルシフェラーゼレベルに3' UTR依存的な影響を及ぼしません。一次スクリーニングにおいて化合物Yの処理時に検出されたルシフェラーゼ活性の低下は、むしろ細胞毒性の結果によるものです。化合物Zの場合、ルシフェラーゼ活性の上昇は、3' UTRとは無関係なウイルスプロモーターの活性化によるものです。コントロール群と非翻訳領域（UTR）セットの両方で同等のアップレギュレーションが観察されるため、このハイスループットアッセイにおいては、コントロール細胞における一次ヒートを検証することが、3'非翻訳領域を介して真に作用する化合物と、プロモーターを介して作用する化合物を区別するために不可欠であることに留意してください。

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JoVE Journal

Biology

生物学

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学ぶ 転写後調節機構を標的としたハイスループットスクリーニング法。ルシフェラーゼレポーターアッセイを用いて化学ライブラリーから3'UTRを介して遺伝子発現を制御する化合物を同定し、創薬研究や遺伝子制御メカニズムの解明に活用する。

転写後調節される遺伝子の化学モジュレーターのためのハイスループットスクリーニング

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