Name: 2非生物の動物モデルを組み合わせた顕微トレーニング方法：ステップバイステップ (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-05-09T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 25 s
Description: 学ぶ 非生物の鶏大腿部と翼を用いた顕微外科トレーニング法。顕微鏡下で大腿動脈と上腕動脈の端側吻合を練習し、生体手術への準備を整える効果的なスキル習得プロトコルを解説します。

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1.準備： <ol><li> 45Xズームに変数3,5 xは、卓上ステレオ顕微鏡を取得し、200ミリメートル作動距離、55〜75ミリメートル変数間瞳孔距離とアクセサリは、リングライトを導きました。任意の同様の顕微鏡は、それが小さなテーブルの上に設定することができ、適切であると非常に高価ではありません。 </li><li>収集し、2顕微ピックアップ、1解剖はさみ、一針ドライバで顕微楽器のセットを用意。これは必要最低限​​で、これらは、実際の機器であることを考慮しなければならず、ハイエンド品質の機器が必要とされません。 </li><li>すべての実践のための9/0モノフィラメントマイクロ縫合糸を使用してください。地元のスーパーで市販されている鶏の太ももや翼と食品着色剤を購入します。 </li><li> 20gの血管カテーテルはニワトリ大腿動脈に開通性試験のために使用されます。上腕動脈のために、より薄い27 Gカテーテルが必要とされています。これらは地元の薬局で、インターネット上で取得することができますか設定の楽器で。食品着色剤を注入するために、市販の注射器を購入。 </li></ol> 2.肉眼解剖技術： <ol><li>大腿血管へのアプローチは簡単です。鶏もも肉の場合、大腿骨軸にちょうど内側鈍的切開法を行い、骨から大腿筋を分離し、大腿動脈、静脈や神経を露出。神経はさらに神経修復の実践の異なるタイプのための2つの別々の繊維束に切断することができます。 </li><li>手羽先に鶏の上腕動脈にアクセスするためには、肩から上翼の先端に、はさみで縦方向に皮膚を切開。上腕二頭筋と上腕三頭の間を走る動脈を観察します。 </li></ol> 3.推奨トレーニング計画： <ol><li>大腿動脈とトレーニング。 注：トレーニング計画の最初のステップは、鶏大腿動脈に練習することです。 </li></ol><ol><li>顕微鏡下でピースを配置し、顕微解剖を開始します。下にある組織から大腿動脈を解放。と水平方向に分割します。 adventicectomyを実行します。動脈内腔を覆う任意のadventiciaをトリミングするマイクロピックアップやマイクロはさみを使用してください。定期的な水道水で内腔を洗い流します。開始時間を書​​き留めます</li><li>吻合をエンドツーエンドを実行します。 <ol><li>オペレータとは反対側の動脈の背壁に開始します。最初のステッチを配置。垂直方向に作業している場合下側に、水平に作業している場合、左側に開始します。内腔に向かって、その後、内腔からの動脈の外側に動脈の外から針を渡します。 </li><li>ステッチを結ぶ、最初の二重結び目を実行し、2単一が交互に方向をスローします。上記の技術では、全体のバック壁を完了します。 </li><li>あなたが水平に作業または上側されている場合は、woのであれば、右サイドの起動垂直rking、内腔にした後、内腔から外に外部からシングルステッチを配置します。上記のように結び目を作ります。 3.1.2.2に記載された手順を繰り返す前壁を完了します。 </li><li>これはあなたの進行を制御することができるようにあなたは、時間の記録を保持することができます最終的な時間を書き留めます。 注：著者は技術を一つの方法を好みます。しかし、顕微手術縫合糸の任意のタイプを練習することができます。それは彼が他の臨床シナリオを試すことができます前に、トレーニング者がこのようにして約25顕微吻合を完了することが推奨されます。これらは、静脈、動脈ギャップに対する移植、神経の修復を終了する終了、および神経ギャップの治療のための静脈管路の使用を含みます。このトレーニング方法で学習することができる微小血管手術において重要な技術は、3.1.2.1のようにこの技術を研修生が進行を行うために、連続的または連続縫合であるが、シュティッヒはなしで3.1.2.1のようにステッチを実行するために継続し、切断されていませんそれらuを切断ntilあなたは全体の縫合糸を完了し、終了時に元のステッチにそれを結びます。 </li></ol></li></ol><ol start="2"><li>上腕動脈とトレーニング<ol><li>顕微鏡下で作品を配置します。大腿動脈のために上記のような手順を実行します。 注：唯一の違いはサイズです。上腕動脈は大腿動脈よりもはるかに小さく、吻合はかなり困難です。 </li></ol></li><li>開通試験<ol><li>一緒に両方の血管壁を縫合ステッチによって引き起こされる障害物を確認するために、吻合を介して滑らかに20または27のGアンギオカテーテルを渡ります。 </li><li>アンギオカテーテルの端部に市販食品の着色剤と注射器を適用し、ジェット漏れをテストするために動脈に色素を灌流</li><li>ステッチ、その並列性と撮影した壁の量を可視化するために、長手方向に動脈を開きます。 </li></ol></li></ol>

<ol><li>Lee, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Historical+events+on+development+of+experimental+microsurgical+organ+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Yonsei+Med+J%22%5BJournal%5D)">Historical events on development of experimental microsurgical organ transplantation.</a> Yonsei Med J. 45 (6), 1115-1120 (2004).</li>
<li>Shurey, S., Akelina, Y., Legagneux, J., Malzone, G., Jiga, L., Ghanem, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+rat+model+in+microsurgery+education%3A+classical+exercises+and+new+horizons%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Plast+Surg%22%5BJournal%5D)">The rat model in microsurgery education: classical exercises and new horizons.</a> Arch Plast Surg. 41 (3), 201-208 (2014).</li>
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<li>Peled, I. J., Kaplan, H. Y., Wexler, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microsilicone+anastomoses%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Plast+Surg%22%5BJournal%5D)">Microsilicone anastomoses.</a> Ann Plast Surg. 10 (4), 331-332 (1983).</li>
<li>Gluer, N. M., Rao, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Canniesburn+%E2%80%9Cever-ready%E2%80%9D+model+to+practise+microsurgery%5BTitle%5D)+AND+%22Br+J+Plast+Surg%22%5BJournal%5D)">Canniesburn “ever-ready” model to practise microsurgery.</a> Br J Plast Surg. 43 (3), 381-382 (1990).</li>
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<li>Jeong, H. S., Moon, M. S., Kim, H. S., Lee, H. K., Yi, S. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microsurgical+training+with+fresh+chicken+legs+and+their+histological+characteristics%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Plast+Surg%22%5BJournal%5D)">Microsurgical training with fresh chicken legs and their histological characteristics.</a> Ann Plast Surg. 70 (1), 57-61 (2013).</li>
<li>Couceiro, J., Ozyurekoglu, T., Sanders, S., Tien, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microsurgical+training+regimen+with+nonliving+chicken+models%5BTitle%5D)+AND+%22Microsurgery%22%5BJournal%5D)">Microsurgical training regimen with nonliving chicken models.</a> Microsurgery. 33 (3), 251-252 (2013).</li>
<li>Phoon, A. F., Gumley, G. J., Rtshiladze, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microsurgical+training+using+a+pulsatile+membrane+pump+and+chicken+thigh%3A+A+new%2C+realistic%2C+practical%2C+nonliving+educational+model%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">Microsurgical training using a pulsatile membrane pump and chicken thigh: A new, realistic, practical, nonliving educational model.</a> Plast Reconstr Surg. 126 (5), 278e-279e (2010).</li>
<li>Zhou, Y., Gu, X., Xiang, J., Qian, S., Chen, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparative+study+on+suture+versus+cuff+anastomosis+in+mouse+cervical+cardiac+transplant%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Clin+Transplant%22%5BJournal%5D)">A comparative study on suture versus cuff anastomosis in mouse cervical cardiac transplant.</a> Exp Clin Transplant. 8 (3), 245-249 (2010).</li>
</ol>

著者らは開示するものは何もない。

顕微手術の臨床実践には、継続的な実践と高度な専門知識が必要です。その用途には、遊離皮弁、再植および血行再建術、脳神経外科手術のための頭蓋内 - 頭蓋外吻合、末梢神経手術などが含まれます。 顕微手術技術を必要とするさまざまな手順にもかかわらず、それらのいくつかは多くのセンターでめったに行われていません。したがって、外科医は、さまざまな実践モデルで手術をリハーサルするスキル レベルを維持する必要がある場合があります。 
現在、最も広く普及しているトレーニングモデルはラット 1,2です。これは、顕微手術指導の「ゴールドスタンダード」であると多くの人に考えられています。ラットは確かに、顕微手術の教育と学習において非常に貴重なツールです。それらは、臨床状況と非常によく似た環境を提供します。ただし、このアプローチにはいくつかの本質的な制限があります。生きた動物の使用は倫理的なジレンマをもたらします。通常、治験審査委員会の承認が必要です。さらに、麻酔と専任の技術者と設備が必要です。これらすべての要因は、重要な経済的コストを意味します。これにより、生きた動物に関する訓練は、同...

基本的なマイクロサージェリースキルと高度なマイクロサージェリースキルの両方の学習と維持のために、十分な数のトレーニングモデルが説明されています。これらには、生きている動物1,2、人間の死体標本3、不活性モデル4,5、および非生きている動物モデル6-9が含まれます。ザ・ 生きている動物モデル、特にラットを使用したモデルは、マイクロサージェリーの教育に広く使用されています1,2;そして、それらは現在のトレーニングのゴールドスタンダードと見なされています。その驚くべき教訓的価値にもかかわらず、集中的または長期のトレーニングが必要な場合。経済的および倫理的な懸念が、それらの実際の使用を妨げる可能性があります。
Cadaveric models3は、実際の臨床状況と同様の環境で練習する機会を提供します。残念ながら、解剖学研究室や同様の施設に限定されており、顕微鏡も研究室で利用可能でなければなりません。したがって、これらのモデルは広く利用可能ではありません。ゴムチューブや手袋4,5などの不活性モデルは安価で、簡単にアクセスでき、そのアプリケーションに必要な機器は最小限です。しかし、臨床状況との類似性は希薄です。そして、その適用は一般的に、研修生がラットで練習を始める前の訓練の入門段階に限定されます。私たちの知る限り、日野6は、臨床顕微手術技術の開発と維持のために非生物ニワトリの使用を提案した最初の企業です。彼のモデルは、市販の手羽先からの鶏の上腕動脈の抽出とその後の使用に基づいています。このアプローチには、施設審査委員会の承認、げっ歯類の麻酔、検査技師、術後ケアは必要ありません。
日野のチキンウィング動脈モデルの説明に続いて、他の多くの非生物動物モデルが発表されました。市販の鶏もも肉の使用は、大腿動脈、静脈、神経を教訓的な目的で使用したことを報告したMarshら7によって最初に提案されました。この特定のモデルは、動脈とは異なる構造を含むトレーニングの可能性を広げます。これにより、研修生は静脈移植片、神経移植片、束状修復など、さまざまな複雑な手順を実行できます。Jeong et al.8 は、マーシュの鶏もも肉モデルとその研修医の教育への応用をさらに研究しました。著者たちは、ニワトリ組織サンプルを組織学的に解析し、ヒト組織と類似性があることを発見した。研修生による吻合を行う時間は、彼らの研究での実践によって大幅に短縮されました。彼らは、「ニワトリの大腿神経血管束は、マイクロサージェリーを教え、実践するための適切で効果的なモデルである」と結論付けました。2013年、私の同僚と私9は、鶏もも肉と手羽先モデルの両方を組み合わせた顕微手術トレーニングレジメンを発表しました。このアプローチは、鶏もも肉の多様性と、より高度な研修生にとって大腿骨血管よりも課題となる可能性のある手羽先の動脈のサイズが限られているという利点があります。
現在の原稿では、顕微手術の実践ステーションを設置するプロセス、必要な材料、各モデルの神経血管構造をどのように解剖するか、そしてどのように効果的にトレーニングレジメンを適用するかを段階的に説明しています。

<table><tbody><tr><td>実体顕微鏡</td><td>Amscope</td><td>SM-1BX</td><td>顕微鏡</td></tr><tr><td>LEDライト</td><td>Amscope</td><td>LED-80S-YA</td><td>照明システム</td></tr><tr><td>マイクロサージャリー機器セット</td><td>陳編 顕微鏡手術器具</td><td>HC-X803-1</td><td>マイクロサージェクリー器具</td></tr><tr><td>マイクロサージェクティブ縫合糸</td><td>S/T マイクロサージェクティブ</td><td>9/0縫合</td><td></td></tr></tbody></table>糸

2非生物の動物モデルを組み合わせた顕微トレーニング方法：ステップバイステップ



Step By Step: Microsurgical training method combining two nonliving animal models

マイクロサージェリー技術の学習とマイクロサージェリー技術の維持は、伝統的に生きた動物、主に実験用ラットの使用に基づいていました。この方法は非常に価値がありますが、外科医とスポンサー機関の両方にとって経済的に厳しい場合があります。また、常に利用可能またはアクセスできるとは限らない特別なトレーニング施設も必要です。さらに、倫理的な懸念から、訓練目的で生きた動物を使用することを制限する可能性があります。不活性チューブや手袋などの代替トレーニング方法は、臨床状況と同様の経験を提供しないため、外科医の間で人気を博していません。非生物動物モデルには、鶏もも肉と手羽先の使用が含まれます。彼らは、臨床状況にかなり似ている実践体験を提供します。このタイプのトレーニングは比較的安価で、簡単に利用できます。必要な顕微鏡や器具はインターネットで手に入れることができ、鶏肉は地元のスーパーで購入できます。
このアプローチは、やる気のある研修生が合理的な費用で異なるタイプの外科技術を数回リハーサルすることを可能にし、より複雑な施設が利用できない場合に彼の外科技術を開発または維持するのに役立ちます。現在の原稿では、小さな練習ステーションの設置方法、標本の解剖方法、鶏もも肉と手羽先の両方で段階的に練習する方法について説明しています。このアプローチは、鶏もも肉モデルの汎用性と手羽先の上腕動脈の小ささを利用しています。

著者は、現在のトレーニング方法で自分の時間をchronometeredており、大幅に第3週の終わりに大腿動脈のための吻合時間を短縮するためにそれを見てきました。研修生は、彼の時代、彼の開存率と彼の縫い目の位置合わせをチェックすることによって、彼の技術の改良を制御することができます。本稿に記載されたシステムは、それが卓上顕微鏡顕微器具のセットを含む、図1に示されています。肉眼解剖は、図2及び3に大腿動脈の顕微吻合は、図5は上腕動脈顕微吻合を示す図4に示されている例を示しています。図6は、静脈グラフトと大腿動脈の修復を示しています。開通性試験は、図7に示されています。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/52625/52625fig1.jpg" /> 図1：CORR著者自身の顕微練習ステーションをesponding。これは、卓上顕微鏡とトレーニング顕微器の...

ここでは、小さな顕微手術の練習ステーションの設定方法と、非生物動物モデルを用いた顕微手術の訓練のためのシンプルで安価な方法を説明します。

The learning of microsurgical techniques and the maintenance of microsurgical skills have been traditionally based on the use of living animals, mainly ...

本実験の目的は、2つの非生体動物マイクロサージェリーモデルを組み合わせたマイクロサージェリー訓練法を開発することです。マイクロサージェリーの経験がない訓練者には、まず市販の鶏もも肉を用いて、大腿動脈、静脈、および神経を露出させる顕微鏡下解剖を行うことが推奨されます。その後、組織を顕微鏡下に配置し、目的のマイクロサージェリー手技を実施します。例えば、ニワトリ大腿動脈の端端吻合が挙げられます。トレーニングを受ける者が大腿部の組織操作に慣れたら、市販の手羽先にあるより小径の上腕動脈を用いて手技を練習することができます。最終的に、ニワトリの大腿動脈および上腕動脈を用いてこれらの微小外科手技を習得することで、脳神経外科医はより小型の生体動物モデルや臨床現場での処置への準備を整えることができます。ラットを用いたマイクロサージャリー訓練などの既存の手法と比較した本手法の主な利点は、麻酔を必要とせず、専用の設備も不要であるため、経済的負担と動物の犠牲を最小限に抑えられることです。鶏の大腿部において、大腿骨幹の内側を指でなぞることで、大腿血管と坐骨神経を容易に露出させることができます。その後、大腿骨幹に平行な剥離面付近で大腿骨頭を確認し、鶏の大腿動脈を用いてワンウェイアップ法による端端吻合の練習を行うことができます。次に、組織を顕微鏡下に置きます。ここで、大腿動脈、静脈、および坐骨神経の位置を確認してください。動脈を下の組織から剥離し、水平に切断します。次に、マイクロピンセットとマイクロ鋏を用いて、動脈腔を覆っている外膜をトリミングし、その後、内腔を水道水で洗浄します。トレーニング時間を計測する場合は開始時間を記録し、組織の反対側にある大腿動脈の背面壁に最初の針を刺します。針を動脈の外側から腔内へ通し、次に腔内から外側へ通して結紮します。まずダブルノットを作り、続いて交互の方向にシングルスローを2回行います。その後、先ほど実演した通りに針を前後に通し、背面壁全体を縫合します。次に、血管の前面壁において、外側から腔内へ、そして腔内から外側へと単結節縫合を1針行います。その後、先ほど実演した通りに結紮し、前述した単結節縫合を用いて前面壁の縫合を完了させます。そして、終了を記録します。それでは、ニワトリの上腕動脈で練習しましょう。まず、はさみを用いて、肩から翼の先端まで皮膚を縦に切開します。矢印で示されているように、上腕二頭筋と上腕三頭筋の間を走行する動脈を確認できます。いずれのマイクロサージェリー手技においても、開通性を確認するために、20ゲージまたは27ゲージの滑らかなアンギオカテーテルを吻合部に通し、閉塞がないかを確認します。次に、市販の食用色素を満たしたシリンジをカテーテルの末端に接続し、動脈内に色素を灌流させて漏出がないかを確認します。最後に、動脈を縦方向に切開し、縫合糸の状態、平行度、およびこの部位で切除された壁の量を確認します。ここでは、たった今実演したシングルステッチを用いたワンウェイアップ法によって達成された大腿動脈の端端吻合の顕微鏡画像を示します。一方、こちらの画像では、鶏の上腕動脈の代表的な端端吻合を提示しています。上腕動脈は大腿動脈よりもはるかに小さいため、手技的な難易度が大幅に高くなります。鶏腿モデルは非常に汎用性が高く、さまざまな種類の練習演習が可能です。実際に、この代表的な実験では、大腿静脈から採取した静脈グラフトを用いた大腿動脈の修復術が行われました。このビデオを視聴したことで、末端間動脈吻合の手法、および鶏の大腿動脈または頸動脈における吻合方法について十分に理解できたはずです。また、得られた結果の適切性を評価する方法についても習得できたはずです。

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