2015年8月19日
新しいイメージングプロトコルは、カスタムモーター駆動の機械式アクチュエータを使用して開発され、生細胞の機械的ひずみに対するリアルタイムの応答の測定を可能にしました。メカノバイオロジーに関連して、このシステムは最大20%のひずみを適用でき、共焦点顕微鏡または原子間力顕微鏡によるほぼリアルタイムのイメージングを可能にします。
次の実験の全体的な目標は、細胞メカノバイオロジーに対する機械的ひずみの役割をほぼリアルタイムで観察することです。これは、まず、細胞を増殖させ伸ばすための柔軟な膜を持つシステムを構築することによって達成されます。2番目のステップとして、メンブレンを伸ばして、メンブレンひずみでモーターカウントを校正します。
次に、マウスの肺上皮細胞を伸ばし、核をイメージングします。膜ひずみが細胞に伝達されることを示すために、ストレッチャーをナノインデンテーション用のA FMに組み込み、ストレッチ前後の個々の細胞の剛性を測定します。結果は、適用されたストレッチによる細胞への直接的な損傷を示しています。
また、蛍光イメージングに基づくと、活性酸素種の産生は伸張とともに増加することが示されています。この方法は、上皮細胞が人工呼吸器で損傷を受ける可能性があるかどうかなど、肺の機械生物学分野の重要な質問に答えることができます。この方法は、肺細胞、機械生物学に関する洞察を提供するだけでなく、肝臓や成長板スライスなどの他の軟組織にも適用できます。
一般に、この方法に不慣れな個人は、原子間力顕微鏡などのこれらの実験で使用されるツールの型破りな組み合わせのために苦労するでしょう。まず、付属のテキストプロトコールに記載されているように、細胞培養で使用するために修飾したコラーゲンコーティングPDMSメンブレンを調製します。次に、マウス肺上皮細胞をウェルあたり250万個の細胞で、無菌の柔軟なコラーゲンコーティング膜に播種します。
細胞がコンフルエントに達するまで、細胞を摂氏37度および5%CO2で2日間インキュベートします。次に、1.5ミリメートルの生検パンチを使用して、プリテンションが不要な場合は、コンストラクトの中心から20.5ミリメートルの6つのクランプタブのそれぞれに2つの穴を開けます。そして、細胞培養培地を取り出します。
機械式アクチュエータがゼロひずみ位置にあることを確認し、パンチ穴がピンとクランプと揃うようにメンブレンをストレッチャーに配置します。トップクランプを所定の位置に置き、ネジを一度に1つずつ、異なる側面を交互に締めます。デバイスを顕微鏡ステージに置く前に、1ミリリットルの細胞培養培地を添加します。
デバイスを光路の中央に配置します。次に、デバイスをステージに固定します。目的地入力ブロックの顕微鏡のステージコントローラーを使用して、機械装置の平面内位置と垂直位置を調整して、膜に焦点を合わせます。
適用する目的のひずみレベルに対応するモーターカウント値を入力します。次に、Velocity Input ブロックの値を 10 RPM 以下に設定して、顕微鏡の対物レンズに対して磁場がシフトする可能性があるため、伸張の前後で同じ視野を観察するため、伸張中に顕微鏡のステージを調整する必要がある場合があります。すべての設定が完了したら、[実行]をクリックします。
原子間力顕微鏡の調整から始めます。a FMヘッドの高さをZ方向の最大位置まで上げます。次に、脚にエクステンダーを取り付けて、FMカンチレバーがサンプルに接触する平面を持ち上げます。
次に、A FMスキャナープレートと目的の対物レンズを顕微鏡から取り外します。対物レンズにスペーサーを追加し、顕微鏡に取り付け直します。次に、スキャナープレートをAFMMに戻します。スペーサーの高さは、対物レンズや特定のFM設定によって異なりますが、光学イメージングが必要な場合は、観測計画がZ方向にシフトするため、スペーサーを使用する必要があります。
次に、A FMソフトウェア、光学顕微鏡ソフトウェア、および蛍光測定用の光源を含むすべての必要な光源を起動します。A FMで生細胞の弾性率を測定するために、ナノメートルあたり200ピコニュートン以下の剛性を持つカンチレバービームを備えたチップをマウントします。次に、レーザーの位置を合わせ、次にガラスカバースリップをデバイスに取り付け、それを使用してメーカーの提案に従ってカンチレバーの剛性を校正します。メンブレンを延伸装置に取り付ける直前に、壁を高さ約1ミリメートルに切ります。
これにより、メンブレン壁とロードセルとの間に生じる干渉が減少します。次に、細胞培養培地を取り出し、メンブレンを機械装置に取り付けます。ソフトウェアを使用して、アダプター付きの機械装置をスキャナーに配置します。
ナノインデンテーションの前に、メンブレンを所望の引張ひずみレベルまで引き伸ばします。細胞に0.5ミリリットル以下の培地を添加して水分を補給しますが、FMスキャナーや顕微鏡を損傷する可能性のあるこぼれないように注意してください。次に、カンチレバービームをメンブレンにかみ合わせます。
特定のAFMデバイスのプロトコルに従って、関心のある領域をスキャンします。膜上に播種した細胞に20%のひずみを適用したとき、細胞はここに示されているように20%変位し、活性酸素種の産生に対する細胞の影響を、添付のテキストプロトコルに記載されているように、累積ミトコンドリアスーパーオキシドセンサーを使用して気管支上皮細胞で測定した。機械的なストレッチがない場合、17%のストレッチを1回適用して維持した場合、ROSの生成は60分間で大幅に増加しませんでした。
ミトコンドリアのROSが増加し、これは機械式ストレッチャーを原子間力顕微鏡に組み込むことでさらに60分間持続しました。弾性率、10%引張ひずみ前後のマウス肺上皮細胞のマップを、ここで概説した領域から取得しました。40 x 40 マイクロメートルの領域にわたって 300 の個別の強制変形曲線が記録され、ひずみの適用による高弾性領域の局在化の変化が示されました。
一度習得すれば、細胞のストレッチは15分で完了します。FMナノインデンテーションは、この手順を試行する際に適切に実行するために2時間かかる場合がありますが、データが報告される前に、結果が攪拌や長時間の室内空気曝露によって悪影響を受ける可能性があるため、細胞を慎重かつ迅速に取り扱うことを覚えておくことが重要です。FMでの作業は非常に難しい場合があることを忘れないでください。
この手順を実行するときは、すべての液体をスキャナーから遠ざけるなどの予防措置を講じる必要があります。
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この研究は、生細胞の機械的歪み応答をリアルタイムで観察することを可能にする新しいイメージングプロトコルを提示します。カスタムモーター駆動式機械アクチュエータを用いて、システムは最大20%の歪みを適用しながら、共焦点または原子間力顕微鏡を用いたほぼリアルタイムのイメージングを可能にします。
Real-time live cell imaging during mechanical stretch enables direct observation of mechanobiological responses, supporting predictive confidence in early discovery and target validation. This approach provides actionable insights into cellular injury mechanisms relevant to respiratory and soft tissue disease models, informing risk-adjusted portfolio decisions. Integration of confocal and atomic force microscopy (AFM) with mechanical actuation advances the precision and reproducibility of mechanistic de-risking in preclinical research.
This method bridges early discovery, lead identification, and preclinical mechanistic studies by enabling real-time, quantitative assessment of cellular responses to mechanical stimuli.