Name: マウスナイーブCD4 + T細胞の単離とインビトロ T細胞サブセットへの分化 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-04-16T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 12 s
Description: 学ぶマウスナイーブCD4+T細胞の単離とインビトロ分化法。リンパ節と脾臓から磁気ビーズ分離とフローサイトメトリーで精製し、サイトカイン処理によりTヘルパー細胞亜群へ誘導分化する手法を解説。免疫学研究に有用です。

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著者は、このプロトコルの最適化のためにテキサス大学MDアンダーソンがんセンターの大学の医学と科学のロザリンド·フランクリン大学のレイノルズラボのすべてのメンバー、および陳ドンラボに感謝したいと思います。この作品は、国立衛生研究所（K22AI104941）からJMRの助成金によってサポートされていました。

全ての実験手順は医学と科学のロザリンド·フランクリン大学環境健康と安全のオフィスによって承認されたプロトコルを使用して実行されます。このプロトコルに使用される（NCIから購入）C57BL / 6マウスは、特定病原体を含まない条件下で飼育し、そしてすべての動物実験は医学ロザリンドフランクリン大学の施設内動物管理使用委員会（IACUC）によって承認されたプロトコルを使用して実施した。科学。 楽器、用品、および試薬の調製<ol><li>滅菌PBS、カバー抗CD3および抗CD28（ 表1）コート48ウェルまたは24ウェルプレート及び蒸発および汚染を防ぐためにパラフィルムで包んで、その後T前日C oを 4でO / Nインキュベート細胞の単離。 37 O Cで別の方法として、コートウェル1時間30秒〜1 ml中の1μ​​g/ mlの抗CD3および抗CD28の両方をコーティングすることによりTh0の、のTh1、Th2の、およびiTreg条件を実行するタル·ボリューム（48ウェルプレート）。 Th17のために、私たちは一般的にコートの抗CD3を1μg/ mlのmlおよび抗CD28を2μg/時。 注：我々は、高い抗CD3濃度はTh17の生成のために最適であるが低い抗CD3濃度がTh1、Th2の、およびiTregの生成のために最適であることを見出した。従って、抗CD3および抗CD28の濃度を滴定し、個々の研究室（ 表2）のために最適化されるべきである。 </li><li>オートクレーブまたは消毒液による解剖ツール（はさみや鉗子）のセットを滅菌する。 70％エタノールを含むチューブまたは小ビーカー解剖の間にツールの迅速な殺菌のために必要とされる。最後に、70％エタノールを含むスプレーボトルは、切開の前、マウスの表面を殺菌するために必要とされる。 </li><li>アルミホイルで発泡スチロールやコルク板の平らな部分をラップすることにより解剖表面を準備します。解剖ピンや針が所定の位置に動物を固定するために使用されている。 </li><li> TIの収集のための料理またはプレートを準備しますssues。組織をプールした場合、脾臓およびリンパ節組織のための滅菌PBS + 1％FBS（P​​BS +）の3ミリリットルを含む別の60ミリメートル皿で十分である。個々のマウスからの維持の組織を分離した場合、井戸の所望の数にPBS +の1ミリリットルを含む24ウェルプレートを準備します。 </li><li>使用前に細胞培養および前加温するための完全RPMI培地を調製した（ 表1）。 注：私たちは日常的にRPMIを使用しますが、そのようなIMDMとDMEMなどの他のメディアラボと実験に応じて等しく有効または優れていることがあります。 </li><li>ナイロンの四角は滅菌するために120ミクロンの孔サイズ、オートクレーブ噛み合うカット2×2センチメートル（ 表1）。 </li><li>オプション：そのようなCD4 +細胞の濃縮、前加温ランニングマシンの損傷を防止するために37°Cの水浴中でバッファを洗浄するためをautoMACSなどの高速磁気細胞ソーティングシステムを使用する場合。 </li><li>注：濃縮はソートの収量を増加させ、時間をソート減少することをお勧めします。 </li><li>すべて調製工程は、切開を除き、無菌の組織培養フード内で行われるべきである。 </li></ol>マウスからのリンパ節および脾臓の2の分離<ol><li>制度的に承認された技術を用いて動物の必要数を安楽死させる。使用彼らのナイーブT細胞の割合が高いと、男性または古いマウスと比較して低い体脂肪に起因するC57BL / 6雌マウス、年齢5-10週間は、。 注：雄マウス由来の細胞は、in vitroにおいても同様に実行し、プロトコルステップは同じまま。 5~10週齢の雌マウスは、典型的には、マウスあたり3-6×10 6のナイーブCD4 + T細胞が得られる。しかし、マウスの異なる株を使用して、収率および性能に影響を及ぼし得る。 Balb.cマウス由来の細胞はTh2細胞を生成するために優れている一方、例えば、C57BL / 6マウス由来の細胞は、Th1細胞を生成するための優れている。 </li><li>動物の手足を広げ、 図1に示すように、場所でそれらをピン。長い皮膚をカットitudinally肛門からあごのより深い組織を穿刺しないように注意しながら。 </li><li>スプレッドは、鉗子で皮膚を開いて、 図1に示すように、リンパ節への容易なアクセスを可能にするために適所に皮膚をピン。 </li><li> 図1に示す位置からアクセス可能なリンパ節を採取する。ピンセットでリンパ節をつかむ鉗子の別のペアを用いて組織を分離することは容易な除去を可能にしている。コレクション皿に組織を置きます。 </li><li> 図1に示す位置から脾臓を採取する。この場合には、腹膜への慎重な切断は、脾臓へのアクセスを得るために必要とされる。コレクション皿に組織を置きます。 </li><li>複数の組織を採取する場合の手順を繰り返します。そうしないと次のステップに進みます。この時点で、ソートした後、T細胞のメッキまで氷上で残りのすべての手順を実行します。 </li></ol> 3.組織の処理およびCD4 +エンリッチメント<ol><li>マイナー白血球死をもたらす可能性赤血球溶解を必要としないリンパ節細胞調製物などの歩留まりを向上させる別の皿におけるリンパ節および脾臓を処理する。したがって、次の手順は別々にソートするためのラベル付けする前に組み合わせることで、その後脾臓及びリンパ節集団を処理するための方法について説明します。 </li><li> PBS +の3ミリリットルを含む新しい60ミリメートル皿に収集皿場所からの組織（脾臓またはプールされたリンパ節）を取り外します。滅菌ピンセットを用いて、組織上の滅菌ナイロンメッシュの正方形を置きます。 </li><li>シリンジプランジャ（3〜10ミリリットル）の親指側を取り、軽くメッシュに対する組織を粉砕。ほとんどすべての組織の懸濁液に行く必要があります。あるいは、2つのオートクレーブすりガラスのスライド間の組織を配置し、懸濁液にすっ。 </li><li>残りの水溶性の塊を分割するまで、数回ダウンサスをピペット。の開口部にナイロンメッシュの新しい正方形の作品を配置15ミリリットルコニカルチューブ、残りの破片を除去するためを通じてサスペンションをフィルタリングする。 </li><li>繰り返して、追加リンパ節および脾臓組織のために手順2〜4を。 </li><li>サスペンションは、15ミリリットルチューブに濾過された後、PBS +でチューブの残りの部分を埋め、数回転倒。 4℃。で5分間、475×gで細胞を遠心</li><li>脾細胞は、遠心分離後の上清を吸引し、赤血球を溶解するために1分間あたりの脾臓を氷冷1X ACK溶液1ml中に細胞ペレットを再懸濁する。その後、ACKの上にPBS +の10ミリリットルを追加するチューブを反転し、遠心分離機475×gで4 Oで5分間</li><li>リンパ節細胞の場合は、PBS +の2ミリリットルで上清と再懸濁を吸引。所望であれば、これらは、それらのACK溶解および洗浄工程の後に脾細胞と組み合わせることができる。 </li><li> PBS +の別の10ミリリットルで脾細胞の遠心分離および再懸濁した後、上清を吸引除去する。この時点で、リンパ節懸濁液とすることができる組織プーリングがソートに必要な場合脾臓サスペンションの上にdded。 4 Oで5分間475×gで再びチューブを遠心</li><li>細胞ペレットは、現在CD4濃縮のために調製することができる。このステップは実行されません場合は、仕分け準備ステップに進みます。 </li><li>高速磁気セルソーティングシステムを使用して、CD4の濃縮のために、CD4ビーズと細胞のペレットを再懸濁。通常、PBS +の85μlの希釈されたビーズの15μlを1マウスからの組織を標識するために使用されます。必要に応じて、ビーズ混合物の容量を増やすペレットを再懸濁し、そして4℃。で15-30分間インキュベート</li><li> 、PBS + 10mlで細胞を洗浄4℃。で5分間475×gで再び破片、および遠心分離機を除去し、新しい15mlチューブにナイロンを通して懸濁液を渡す</li><li>マウス当たりのPBS +100μlにペレットを再懸濁し、高速磁気細胞ソーティングシステム上の正の選択に進みます。手動の分離システムを使用する場合、fは濃縮のための製造元の指示にollow。滅菌濾過し、1mMのEDTA（pH値= 8）および1％BSAを含むPBS：あるいは、FACS緩衝液中で試料を再懸濁する。 </li><li>陽性画分を除去し、PBS + 10mlので再び洗う。豊富なCD4 +画分は今、ソートのために標識される準備ができている。 </li></ol> 4.ソートナイーブCD4 + T細胞<ol><li> PBSをCD62L、CD44、CD25、およびCD4に対して向けられた蛍光抗体を含有する+と細胞ペレットにラベルを付けます。 表1に記載された抗体を使用する場合、それぞれのための希釈液が提供される。染色のために、抗体カクテル100μlの体積は、1匹のマウスからの組織ごとに使用される。 </li><li>抗体カクテルでペレットを再懸濁し、暗所で4 O℃で 15〜30分間インキュベートする。 </li><li> PBS +の10ミリリットルと4 Oで5分間遠心分離機475 XGで細胞を洗浄</li><li>再別のナイロンフィルターまたはセルストレーナーキャップの上に物を渡す残っ破片を移動します。セルソーターのために互換性のあるチューブに標識された細胞をピペットで。氷の上で細胞を維持し、ソートされるまで、光から保護。 </li><li>セルソーター上の収集のための互換性のあるチューブの底に完全RPMI培地またはFBSの1〜2ミリリットルをピペットにより採血管を準備します。 </li><li> CD62L + CD44 - - CD4 + CD25としてソートナイーブCD4 + T細胞集団（ 図2）。完全RPMI培地で回収した細胞を洗浄し、上記のように遠心する。 </li><li> 、完全RPMIでペレットを再懸濁ナイーブ細胞をカウントし、1×10 6細胞/ mlの濃度に調整。 </li></ol> 5. インビトロ分化を設定する<ol><li>抗CD3および抗CD28でコーティングしたプレートのウェルを吸引し、滅菌PBS（FBSなし）の1ミリリットルで、各ウェルを洗浄する。 48ウェルプレートについては、RPの0.5×10 6細胞/ウェルを0.5mlプレートMI。 24ウェルプレート、培養1×10 6細胞をRPMI /ウェルで1.0ミリリットルである。 </li><li>薬物などの要因の影響をテストする時にどちらかの前に、適切なウェルに物質を追加したり、実験に応じて分化処理後の場合。次に、それに応じてサイトカインおよび遮断抗体との培養培地を補足する。 Th0を：30 U / mlののhIL-2。のTh1：15 / mlののrmIL-12、30 U / mlでのhIL-2、及び5000 / mlの11B11.Th2：10ng / mlののrmIL-4、30 U / mlでのhIL-2を、2000 ngの可溶性37.51ミリリットル/および5000 / mlのXMG1.2。 iTreg：15 / mlのhTGFβ、30 U / mlののhIL-2、5000 / mlのXMG1.2、および5000 / mlの11B11。 Th17分化：20ng / mlののrmIL-6,3 / mlのhTGFβ、5000 / mlのXMG1.2、及び5000 / mlの11B11。 注記：上記の条件は、分化実験（ 代表的な結果セクション ）の最後に測定されたサイトカイン産生を最大にするために最適であることが見出された。しかし、各条件を表2（各施設のために最適化されるべきである</stroNG&gt;）。さらに、プレート結合抗CD28に加えて、可溶性抗CD28の添加は、我々の研究室でのTh2サイ​​トカイン産生を増強することがあるが、他のT細胞サブセットに影響を及ぼされなかった。 </li><li>前の遺伝子発現およびサイトカイン産生の分析dは4~5、5％CO 2で37°Cのでプレートをインキュベートする。あるいは、増殖および最終収率を向上させるために、新鮮な培地で1×10 6細胞/ mlに調整し、2日後にTCR刺激から細胞を除去し、新しいウェル（非被覆）でプレート。この場合には、新鮮な偏サイトカインおよび抗体が必要とされないが、IL-2を10 U / mlのTh0を、TH1、TH2、およびiTreg培養に新しい培地に添加されるべきである。 </li></ol>分化の6.分析<ol><li>フローサイトメトリーによるサイトカイン分析のために、10ng / mlのPMAと各ウェルを再刺激1,000 / mlのイオノマイシン、またはそのような（ 表ブレフェルジンとしてゴルジ阻害剤の存在下で4-6時間、で1μg/ mlの抗CD31）。実験（ 図3）に応じて、細胞内サイトカイン染色を行います。 注：染色は、非系統特異的サイトカインまたはそのような（図示しない）IL-4およびIFNγなどの転写因子、陰性対照としての分化効率の指標として各条件Th17細胞培養のための（ 図3）。さらに、Tregの逆数の開発などのTh17培養のため汚れのFoxp3は、TGFβの添加で発生する可能性があります。 </li><li>タンパク質定量のために、サイトカイン特異的ELISA（ 図3）により各ウェルアッセイからの上清を収集します。試験される因子は、対照試料と比較して細胞増殖に影響を与えていることが懸念される場合は、細胞は、洗浄し、計数し、正規化され、その後、ELISAアッセイのために上清を収集する前に24時間、抗CD3を1μg/ mlの再刺激することができる。 Th2の条件からのIL-4をアッセイする場合には、洗浄および再刺激がlとすることができることから、IL-4を除去する必要がある初期分化培養からeftover。 </li><li>リアルタイムPCRによる遺伝子発現解析のために、収穫細胞は、インキュベーション期間の後、洗浄正規化し、抗CD3の1μg/ mlの収穫のmRNAの前（ 図3）で2-6時間、再刺激する。 </li></ol>

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<li>Veldhoen, M., Hocking, R. J., Atkins, C. J., Locksley, R. M., Stockinger, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TGFbeta+in+the+context+of+an+inflammatory+cytokine+milieu+supports+de+novo+differentiation+of+IL-17-producing+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">TGFbeta in the context of an inflammatory cytokine milieu supports de novo differentiation of IL-17-producing T cells.</a> Immunity. 24 (2), 179-189 (2006).</li>
<li>Avni, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((T%28H%29+cell+differentiation+is+accompanied+by+dynamic+changes+in+histone+acetylation+of+cytokine+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Immunol%22%5BJournal%5D)">T(H) cell differentiation is accompanied by dynamic changes in histone acetylation of cytokine genes.</a> Nat Immunol. 3 (7), 643-651 (2002).</li>
<li>Matheu, M. P., Cahalan, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+CD4%2B+T+cells+from+mouse+lymph+nodes+using+Miltenyi+MACS+purification%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Isolation of CD4+ T cells from mouse lymph nodes using Miltenyi MACS purification.</a> J Vis Exp. (9), (2007).</li>
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</ol>

著者は、競合する経済的利益を宣言していない。

脾臓はナイーブThの細胞を含んでいるが、リンパ節におけるこの集団の割合がはるかに高い。適切にこのプロトコルでリンパ節を識別して削除に失敗すると、ナイーブ細胞の貧弱な収量になります。これは、より多くの脂肪組織を有する老齢マウスまたは雄マウスでは特に困難である。 図1に示すように、動物の四肢や皮膚の適切な固定及びピニングがアクセス可能な外部のリンパ節の容易可視化を可能にする。リンパ節及び脾臓が処理されると、細胞選別は、高度に精製されたナイーブCD4 + T細胞集団を得るための好ましい方法である。純度は、ナイーブ細胞分化プロセスに影響を及ぼすことTh細胞nTregsまたはエフェクターおよびメモリーを防止することが重要である。ナイーブT細胞の高い収率を得ることの難しさは、典型的には、分離工程中に非効率的な組織収集および処理または細胞の喪失によって引き起こされる。収量メイクSを大きくするにはUREを氷上で冷緩衝液およびインキュベーションを用いて細胞を処理する。さらに、試薬および分離プロトコルの最適化、濃縮および/またはソーティングの間に細胞の損失を防止するために事前に推奨される。プロトコルス...

CD4 + Tヘルパー（Th）細胞の明確な系統またはサブセットの概念は、20 世紀1の後半から出回っている。細胞増殖と細胞のThエフェクターへの最終的な分化のいくつかのラウンドで共刺激シグナルの結果の存在下で同族抗原の認識。このプロセスの間に生成されたTh細胞のタイプは、活性化2中に存在するサイトカイン環境に依存する。最初に、ナイーブTh細胞は、T細胞受容体（TCR）活性化、共刺激CD28のライゲーション、およびサイトカインシグナル伝達以下、2つの異なる系統に分極すると考えられていた。 1型ヘルパー細胞（Th1が）IFNγサイトカインのそのエフェクター生産ならびに分化プロセス3,4の間にIL-12シグナル伝達に対するそれらの要件によって特徴付けられる。最終的には、分化したTh1細胞は、ほとんど区別bとを特徴とする遺伝的プロファイルを有することが発見されたYのTh1遺伝的プログラム5のマスターレギュレーターと考えられているTボックスファミリー転写因子の発現、Tbx21（T-BET）、。さらに、IL-12と同様にIFNγは、T-bet発現6,7を促進することができます。免疫応答を、Th1細胞は、細胞内病原体、ならびに自己免疫性炎症の強力なプロモーターに対する宿主防御のために重要である。対照的に、2型ヘルパー細胞（Th2の）は、それらの開発のためのIL-4およびIL-4、IL-5を含むそれらのエフェクターサイトカイン、およびIL-13を必要とし、B細胞応答を駆動するために重要であり、アレルギー8において病原性であり、 9。 Th1細胞と同様に、Th2細胞は、自分のマスター転写調節因子を発現することが見出された、GATA-3 10,11と称される。興味深いことに、偏サイトカインの存在と特定のTh系統の世代は、特定のThサブセットが、免疫再中に優勢になることを示唆している、他人2,12の発展に拮抗的であるsponse。 Th1とTh2の系統の同定以来、最近（、さらなる作業は濾胞ヘルパー（TFH）、IL-9産生（TH9）を含むヘルパーT細胞のさらに多くのユニークなサブセットを、実証した、およびIL-22を産生する（TH22） 13で）検討。 in vitroでの分化実験のために、このプロトコルは2つだけ追加のThサブセットに焦点を当て、調節性T細胞（Treg細胞）およびIL-17産生CD4 + T細胞（Th17細胞）と呼ばれる。 CD25 +制御性T細胞は胸腺で自然に（nTreg）が発生することがあります。ナイーブTh細胞はまた、（14,15に総説）周辺の規制になるために（iTreg）を誘導することができる。 Tregの両方のタイプの特性転写因子を発現し、可溶性抗炎症性メディエーター産生、IL-2の消費、および細胞接触依存性の機構14,15を含み、それらのエフェクター抑制メカニズムにとって重要であるフォークヘッドボックスP3（Foxp3の）は、と呼ばれる。 Foxpの欠如深刻な、多臓器自己免疫疾患の3式の結果は、炎症を解決し、自己抗原16に末梢寛容の調節におけるこのThのサブセットの重要な役割を実証し、免疫調節異常、内分泌腺、腸、X連鎖症候群（IPEX）と呼ばれる。アップレギュレートするのFoxp3およびIL-2による刺激のTregプログラムにコミットなり14,15 TGF-βin vitroでのナイーブCD4 + Tヘルパー細胞。 （17,18に総説）はサイトカイン産生を検討する場合は特に、CD4 + T細胞系統のかなりの可塑性の中等度があってもよい。しかし、in vitroでの分化プロトコルの目的のために、我々は、ユニークな系統として各サブセットを議論する。 最近、IL-17のサイトカインを産生するTh17細胞のサブセットは、自己免疫炎症19-21の間、特に病原性の炎症促進性機能を有するユニークな系統として同定された。 Th17細胞は、固有の転写因子を発現し、Th17の遺伝的プログラム22を調整レチノイド関連オーファン受容体γトン（のRORγt）と呼ばれる。 TGFβは、RORγtの誘導を介してのTh17系統の世代のために重要である。しかしながら、TGFβシグナル伝達の効果のみ（12日）、IL-6と相乗際のTh17コミットメントを誘導すると考えられている。さらなる研究は、他の正IL-1βを含む、Th17細胞のコミットメントを調節することができる信号が増加ナトリウム、およびTLR種々の23-26をシグナリングすることを示した。他の報告では、 インビボで病原性Th17細胞が実際TGFβシグナル伝達をバイパスするものであり、その代わりに、それらの分化27 IL-1、IL-6、およびIL-23の組み合わせに依存することを示唆している。したがって、Th17細胞は、シグナル伝達経路の様々な由来してもよい。 Th17の系譜コミットメントのためにこのプロトコルの目的のために、一般的に使用される（TGFβおよびIL-6）経路表示されます。 すべてのエフェクター系統のために以下に記載される分化プロトコルは、実験の全過程を通じて、TCRおよびCD28のための刺激として固定した抗体に依存しています。しかし、他の2日間29抗原提示細胞28またはハムスター抗体と架橋抗CD3および抗CD28抗体によるTCR活性化は、様々なThのサブセットの生成を誘導する非常に有効な手段であること。実証されているここに提示されたプロトコルは、Th17細胞31を二次リンパ器官30から、マウスCD4 + T細胞を単離および生成するための以前に報告された方法を上に構築する。一つの大きな違いは、このプロトコルは、リンパ組織からのナイーブCD4 + T細胞を分離するセルソーターの使用に依存することである。しかし、多くの企業が要件fのをバイパスすることができる可能性が、ナイーブCD4 + T細胞を濃縮することができ迅速な分離キットを提供または実験に応じてソート。このプロトコルで提示方法および試薬は、私たちが日常的に最も効果的に使用すると何を見つけるです。しかし、別の試薬および方法論は、以下に提示手順の多くのために存在し、それが彼らの目的のために最適に動作されるか決定するために、個々の研究室次第であることに留意してください。

<table><tbody><tr><td>完全なRPMI:</td><td></td><td></td><td>使用前に37 oCウォーターバスで温めます</td></tr><tr><td>RPMI 1640 Media</td><td>Life Technologies</td><td>11875119</td><td></td></tr><tr><td>10% FBS</td><td>Life Technologies</td><td>26140-079</td><td></td></tr><tr><td>1000X 2-mercaptoethanol</td><td>Life Technologies</td><td>21985023</td><td></td></tr><tr><td>100X Pen/Strep</td><td>Life Technologies</td><td>15140122</td><td></td></tr><tr><td>100X L-グルタミン</td><td>ライフテクノロジー</td>ズ <td>25030081</td><td></td></tr><tr><td>120ミクロンナイロンメッシュ</td><td>Amazon</td><td>CMN-0120-10YD</td><td>2 cm2正方形とオートクレーブにカット</td></tr><tr><td>代替:100ミクロンセルストレーナー</td><td>フィッシャー</td><td>08-771-19</td> ナイロンメッシュ<td></td></tr><tr><td>autoMACSランニングバッファ</td><td>Miltenyi</td><td>130-091-221</td><td>を切断する代替37 oCウォーターバスで温め</td></tr>てから、<tr><td>autoMACSリンス液</td><td>Miltenyi</td><td>130-091-222</td><td>37 oCウォーターバスで温めてから、CD4</td></tr><tr><td>ビーズ</td><td>Miltenyi</td><td>130-049-201</td><td></td></tr><tr><td>ACK溶解バッファー</td><td>ライフテクノロジー</td><td>ズ A10492-01</td><td></td></tr><tr><td>サイトカイン:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ヒト(h) IL-2</td><td>Peprotech</td><td>200-02</td><td></td></tr><tr><td>組換えマウス (rm) IL-4</td><td>Peprotech</td><td>214-14</td><td></td></tr><tr><td>rmIL-6</td><td>R &Dシステム</td><td>ズ406-ML-025</td><td></td></tr><tr><td>rmIL-12</td><td>Peprotech</td><td>210-12</td><td></td></tr><tr><td>hTGFb</td><td>R&D Systems</td><td>240-B-010</td><td></td></tr><tr><td>抗体:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>2C11 (抗CD3)</td><td>BioXcell</td><td>BE0001-1</td><td></td></tr><tr><td>37.51 (抗CD28)</td><td>BioXcell</td><td>BE0015-1</td><td></td></tr><tr><td>11B11 (抗IL-4)</td><td>BioXcell</td><td>BE0045</td><td></td></tr><tr><td>XMG1.2 (抗IFNg)</td><td>BioXcell</td><td>BE0055</td><td></td></tr><tr><td>抗CD62L-FITC</td><td>BioLegend</td><td>104406</td><td>1:100</td></tr><tr><td>で使用 抗 CD25-PE</td><td>BioLegend</td><td>102008</td><td>1:400 で使用</td></tr><tr><td>抗 CD4-PerCP</td><td>BioLegend</td><td>100434</td><td>1:1000</td></tr><tr><td>で使用 抗 CD44-APC</td><td>BioLegend</td><td>103012</td><td>1:500</td></tr><tr><td>で使用 ホルボール&nbsp; 12-ミリスチン酸 13 アセテート (PMA)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P-8139</td><td>DMSO で 0.1 mg/ml でストックを調製し、アリコートを -20 o で凍結します。C</td></tr><tr><td>イオノマイシン</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>I-0634</td><td>DMSO中に0.5mg/mlのストックを調製し、-20oCでアリコートを凍結</td></tr><tr><td>ブレフェルディンA</td><td>eBioscience</td><td>00-4506-51</td><td>1:1000で使用</td></tr></tbody></table>

マウスナイーブcd4<sup&gt; +</sup&gt; t細胞の単離と<em&gt;インビトロ</em&gt; t細胞サブセットへの分化

Mouse Na&#239;ve CD4+ T Cell Isolation and In vitro Differentiation into T Cell Subsets

抗原未経験(ナイーブ)CD4+ T細胞は、MHCクラスIIで提示された同族抗原のT細胞受容体(TCR)認識時に、エフェクターサブセットへの増殖と分化を受けます。 TCR活性化時に環境中に存在するサイトカインシグナルは、ナイーブCD4+ T細胞のエフェクター運命を決定する主要な因子です。 ナイーブT細胞の活性化中のサイトカイン環境は複雑で、in vivoでは冗長なシグナルと対立するシグナルの両方を含む可能性がありますが、in vitroでのナイーブCD4+ T細胞の活性化中にさまざまなサイトカインの組み合わせを追加することで、特徴的なサイトカインおよび転写因子の発現を持つエフェクターTヘルパー系統の確立を容易に促進できます。 このような分化実験は、特定のCD4+ Tヘルパーサブセットの発達を促進または阻害すると考えられる標的を評価するための最初のステップとして一般的に使用されます。 分化過程におけるシグナル伝達アゴニスト、アンタゴニスト、または他のサイトカインなどのメディエーターの添加は、T細胞の分化に対する特定の標的の影響を研究するためにも使用できます。 ここでは、マウスからナイーブT細胞を単離するための基本的なプロトコールと、ナイーブ細胞をin vitroでさまざまなTヘルパーエフェクター系統に分極するために必要なステップについて説明します。

分化の分析のための時点は、試験されるThの条件ならびにT細胞受容体活性化の強さに応じて変えることができる。分化の2~3日後、細胞はT細胞増殖の程度を決定するために、光学顕微鏡によって可視化することができる。細胞の大規模な増殖および凝集を示すウェルは、最も可能性が高いと考え、培養中の4日後にメディアを排出し、外因性IL-2、そのようなTh1とTh2などのほかに頼って4日目分化条件での解析のための準備が整います。サイトカイン産生を最大にするために、消耗したメディアを有するそのようなウェルは、新鮮なRPMIはIL-2を含む、または、計数し、別の日以上の分化を拡張するためにIL-2を含む新鮮なRPMI中ウェルあたり1×10 6個の細胞で再プレーティングして補充することができるこの方法を使用する。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/52739/52739fig1.jpg" /> FIGUR脾臓およびリンパ節の単...

ナイーブCD4+ T細胞は、活性化時の環境に応じて、さまざまなサブセットに分極します。 ナイーブCD4+ T細胞の種々のエフェクターサブセットへの分化は、T細胞受容体刺激および特異的サイトカインシグナルの添加により、in vitroで達成することができる。

マウスナイーブCD4<sup&gt; +</sup&gt; T細胞の単離と<em&gt;インビトロ</em&gt; T細胞サブセットへの分化

Antigen inexperienced (na&#239;ve) CD4+ T cells undergo expansion and differentiation to effector subsets at the time of T cell receptor (TCR) recognition ...

本手順の目的は、マウスのリンパ節および脾臓から単離したナイーブCD4陽性T細胞を、それぞれ異なるTヘルパーサブセットへと分化させることです。in vitroにおいて、これはまず、成体野生型マウスから採取した脾臓とリンパ節を処理することで行われます。次に、磁気ビーズ分離法によってCD4陽性細胞群を濃縮し、さらにナイーブT細胞マーカーの発現に基づきソートを行います。最終ステップとして、細胞をT細胞受容体活性化因子および分極化サイトカインで処理し、さまざまなTヘルパー細胞系譜への分化を誘導します。最終的に、フローサイトメトリー、ELISA、およびリアルタイムPCRを用いて、Tヘルパー細胞分化の効率を評価します。この手法は、特定の分子の発現や特定の薬剤による処理がT細胞応答の性質にどのような影響を与えるかなど、Tヘルパー細胞分野における重要な疑問を解決するのに役立ちます。まず、5〜10週齢のC57BL/6マウスの肢を解剖板に固定し、下層の腹膜組織を傷つけないように注意しながら、肛門から顎まで皮膚を縦に切開します。次に、皮膚をピンで固定して広げ、1組のピンセットでリンパ節を掴み、もう1組のピンセットを使用して、画像に示された各部位から組織を分離します。リンパ節を採取するごとに、1% FBSを添加したPBSまたはPBS plusを含む回収皿に入れます。その後、腹膜を慎重に開き、脾臓を取り出します。脾臓も同様に回収皿に入れ、CD4陽性細胞を濃縮するために皿を氷バケツに移します。滅菌ピンセットを用いて、リンパ節と脾臓を、それぞれ3 mLのPBS plusを含む2枚の独立した60 mmディッシュに分け入れます。次に、脾臓の上に滅菌済みのナイロンメッシュを正方形に切り出したものを載せ、シリンジプランジャーの親指側を用いて、組織のほとんどが懸濁液になるまでメッシュに押し付けて緩やかに潰します。懸濁液を数回ピペッティングして、残っている可溶性の凝集塊を分散させ、その後、15 mLコニカルチューブの開口部に新しいナイロンメッシュを載せます。懸濁液をチューブにろ過し、残りのデブリを除去します。次に、リンパ節に対して同様に機械的解離を行い、フィルター後の細胞が入った両方のチューブにPBS plusを満たします。その後、チューブを数回反転させて混ぜ、遠心分離して細胞を沈殿させます。リンパ節のペレットを2 mLのPBSに再懸濁します。脾臓細胞ペレットに、氷冷したACK溶液をマウス1匹あたり1 mL加えます。1分後、10 mLのPBS+を加えて赤血球溶解を停止させます。チューブを転倒混和し、再び細胞を遠心回収します。次に、脾臓のペレットをさらに10 mLのPBS plusで再懸濁し、リンパ節細胞を加えて、混合した細胞懸濁液を遠心分離します。今回は、マウス1匹あたり85 µLのPBS plusで希釈した15 µLのCD4磁気ビーズを用い、4 °Cで15～30分間ペレットを再懸濁します。その後、細胞を10 mLのPBS plusで希釈します。懸濁液をナイロンストレーナーでろ過して新しい15 milliliterチューブに移し、遠心分離して細胞を回収します。再度、マウス1匹あたり100 microlitersのPBS plusでペレットを再懸濁し、製造元の指示に従って磁気ビーズ選択によりCD4陽性細胞をポジティブセレクションします。CD4陽性細胞画分を得た後、細胞を10 millilitersのPBS plusで洗浄し、CD4陽性T細胞画分を分取します。次に、洗浄後、適切な蛍光抗体を用いて、4°Cの暗所内で15〜30分間、細胞をラベルします。ラベル化した細胞をろ過してデブリを除去し、氷上の遮光したFACSチューブに移します。CD4陽性、CD25陰性、CD62L陽性、CD44陰性の集団を、完全RPMI培地へと分取します。すべての細胞の回収が完了するまでこれを繰り返します。ナイーブT細胞を新鮮な完全培地で洗浄します。次に、ペレットをRPMI完全培地で再懸濁し、ナイーブT細胞をカウントして、in vitroでのTヘルパーサブセット分化を誘導するために、濃度を1×10⁶ cells/mLに調整します。続いて、あらかじめanti-CD3およびanti-CD28でコーティングした細胞培養プレートの各ウェルを、1 mLの滅菌済みFBS不含PBSで洗浄し、細胞を播種します。最後に、表に記載されている適切なサイトカインとブロッキング抗体を培地に添加し、細胞を37°C、5% CO2条件下で4〜5日間培養します。4〜5日間の培養後、in vitroで分化させたTH1、TH2、inducible treg、およびTH17培養物からCD4陽性T細胞を回収し、細胞内サイトカイン染色を行います。これにより、各T細胞サブセットが期待されるサイトカインプロファイルを示すことを確認できます。実際に、抗CD3抗体を用いて24時間再刺激した後、Aにより、各サブセットが細胞内で発現したサイトカインタンパク質に対応する細胞外への産生も行っていることが示されています。系統特異的な転写因子のリアルタイムPCRにより、in vitroで分化したCD4陽性T細胞サブセットが、適切な転写因子プロファイルを有することがさらに確認されました。このビデオを視聴することで、ナイーブCD4陽性Tヘルパー細胞を得るための、鏡像的なリンパ節および脾細胞の分離・処理方法について十分に理解できるはずです。さらに、これらのT細胞をTH1、TH2、TH17、またはiTreg細胞へと分化させることができます。

mouse-nave-cd4-t-cell-isolation-vitro-differentiation-into-t-cell

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学と感染症

ミルテニーMACのキットを用いてリンパ球の分離は、全体のリンパ組織のホモジネートから細胞を浄化するために信頼性の高い方法です。国内でのみ有効のシステムを使用して精製した細胞は通常、≥96パーセント純粋です。ここで、我々は、CD4 +...

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胸腺の特性を用いてマウス胚における前駆細胞をセトリング<em&gt;インビボ</em&gt;と<em&gt;インビトロ</em&gt;アッセイ

ここで、ナイーブ cd4 陽性 T 細胞、THGM の分化の分離を含む、ナイーブ cd4 陽性 T 細胞からマウスの granulocyte-macrophage-colony-stimulating-factor-producing T (THGM) ヘルパー細胞を区別するためにプロトコルを提案し、THGM の分化した細胞の解析。このメソッドは、規制の研究と THGM...

体外分化マウス顆粒球マクロファージ ・ コロニー刺激因子 (GM-CSF)-(THGM) ヘルパー T 細胞の生産

今回ナイーブ cd4 陽性 T 細胞 (T 細胞) の活性化、増殖、GM-CSF 骨髄 (BM) による th1 細胞分化・生体内で定量のためのプロトコル-由来樹状細胞 (Dc)。さらに、このプロトコルでは、BM と T 細胞の分離、DC 世代と DC および T...

メジャー ナイーブ cd4 陽性 T 細胞の活性化、増殖と骨髄由来樹状細胞による th1 細胞分化をIn Vivoマウス モデル

このプロトコルは、ナイーブCD4+ T細胞の in vitroでの病原性Th17細胞への分化について説明しています。具体的には、マルチパラメータフローサイトメトリーベースのアプローチと組み合わせると、この分化法を用いてナイーブなCD4+...

マウスにおけるナイーブCD4+ T細胞の病原性Th17細胞へのin vitro分化

現在の研究では、ウイルス特異的TFH...

急性LCMV感染マウスにおけるウイルス特異的濾胞性ヘルパーCD4+ T細胞の早期分化へのアクセス

ここでは、蛍光顕微鏡法を用いて、初代マウスおよびヒトT細胞におけるCa2+マイクロドメインとして知られる初期の局所Ca2+シグナルを分離するための包括的なプロトコールを提供します。このプロトコルは、免疫細胞内のCa2+シグナル伝達経路を研究し、その機能をさらに解明するための研究者にとって貴重なリソースとして機能します。...

初代T細胞における初期Ca2+ マイクロドメインのイメージング

学ぶマウスナイーブCD4+T細胞の単離とインビトロ分化法。リンパ節と脾臓から磁気ビーズ分離とフローサイトメトリーで精製し、サイトカイン処理によりTヘルパー細胞亜群へ誘導分化する手法を解説。免疫学研究に有用です。

マウスナイーブCD4

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