Name: 共焦点光学イメージングによるローズベンガル光血栓インビボ：単一の容器ストロークのモデル (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-06-23T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 7 s
Description: 学ぶローズベンガル光血栓法によるマウス感覚野での単一血管閉塞モデル。共焦点光学イメージングで脳虚血の細胞応答をリアルタイム観察し、神経科学研究に応用する。

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この作業のための資金は、AG007218とNIH F32 AG031606によって提供されました。
画像は、UTHSCSA、NIH-NCI P30 CA54174(UTHSCSAのCTRC)、およびNIH-NIA P01AG19316によってサポートされているCore Optical Imaging Facilityで生成されました。

注：すべての動物の手順は、テキサス大学健康科学センターのサンアントニオの施設内動物管理使用委員会によって承認され、ARRIVEガイドラインと一致しました。 1.皮質の準備のために麻酔<ol><li>麻酔を誘導するために、酸素と混合して2〜3％のイソフルランで誘導チャンバ内にマウスを置きます。マウスが誘導されると呼吸速度の低下を観察します。マウスはノーズコーンに移動する準備ができているかどうかを決定するために、マウスの足をつまみます。注：麻酔レベルは、任意のin vivoでの調製における重要なステップであるとケアがグローバル虚血の原因となるレベルを誘発しないように注意してください。 </li><li>マウスが十分に麻酔されると、手術/イメージングプラットフォームに動物を転送し、ノーズコーンにマウスの鼻を配置し、麻酔状態を維持するために、1から1.2パーセントのイソフルランを適用します。マウスは、温度共に横たわっていることを確認してくださいntrolled加熱パッドは、残りの手順を通して、体温（37℃+/- 0.5℃）を維持します。麻酔下ながら乾燥を防ぐために、目の上の獣医軟膏を置きます。 </li><li>システムに付属の尾や足のクリップを使用して、パルス酸素濃度計システムを使用して、マウスの生理機能を監視します。呼吸数が50〜65呼吸/分の間で維持されることを確認してください。 300から450 BPMと酸素飽和度は、動物の長期生存を確保するために、97から98までパーセントの間で維持される間に心拍数が残っていることを確認してください。 </li><li>マウスが十分に麻酔されると、電気バリカンを用いて頭蓋の上に髪を剃るエタノール綿棒に続く残留髪とベタジンできれいにし、削除します。無菌手術用環境を確保するために3回にこの手順を繰り返します。 </li></ol> 2.手術手順<ol><li>頭皮が完全に洗浄され、坊主で、頭蓋fissuを明らかにするために、マウスの頭皮に、5mmの切開を作りますブレグマを検索する解像度と。 </li><li>頭蓋の上にある残りの筋膜を除去するために滅菌綿棒を使用してください。 </li><li>ブレグマの定位座標を用いて、頭頂葉皮質の上にある骨に組織接着剤を使用したカスタムステンレス製リング（ 図1）接着剤：横-1〜-3ミリ、2-4ミリメートル。注：接着剤は、典型的には、骨の上にリングを配置した後、2分以内に設定します。 </li><li>マウスを安定させ、画像形成中の移動を防止するために、定位ホルダー（ 図2）環を貼付。 </li><li>外科用グレードの解剖顕微鏡下で、ゆっくりとそれが開けられるように領域レベルを維持することを確認すること速度制御DREMELのようなツール（Meisinger 3.9ミリメートルドリルビット）を使用して、頭蓋中で1〜2ミリのセクションをドリル。ジグザグパターンを使用してこれを達成します。熱を避けるために構築、低へのドリル速度を設定し、頻繁に休憩を取ります。 </li><li>頭蓋頭蓋骨は、外観に登るとなると、間伐を続けます頭蓋頭蓋骨の薄層の円滑な除去を容易にするために薄くなった面レベルを維持するために、同じジグザグパターンを利用して手術用メスの刃を使用して頭蓋。メスの刃の先端を使用すると、一度に骨の薄い層を除去するための光の圧力で小さなリニアストロークを行います。血管系は、解剖顕微鏡を通してはっきりと表示されるまでこれを続けます。 </li><li>実験者の穿刺を介して、または間引き処理中に頭蓋骨を破壊した場合、基礎となる皮質への可能性損傷に動物を安楽死させます。 注：マウスの​​頭蓋骨は、約300ミクロンの厚さであり、2つの薄い緻密骨の層（1外部と一つの内部層）とコンパクトな骨の2つの層の間に挟まれた海綿骨の層で構成されています。外部コンパクト骨の層および海綿骨の大部分が残っているコンパクトな骨のおおよそ50μmの層が得られ、5mmの掘削領域内に削除されます（ 図2B参照します ）。 Visualiz血管系のationが最終そのまま薄く頭蓋骨が約50μmの厚さであることを保証します。この厚さまで薄くする際の頭蓋骨はまだそのために存在します。 </li></ol> 3.顕微鏡セットアップ<ol><li>客観的なインバータを有している倒立顕微鏡システム（従来、共焦点または二光子システム）を使用します。注：これは、標準的な正立顕微鏡を利用することも可能です。制限要因は、ステージと目標との間の空間になります。ステージへの変更は、このセットアップを実行する必要があるかもしれません。 </li><li>脇顕微鏡のベースに位置してカスタムメイドのステージに外科的/撮影台を固定します。注：プラットフォームは、対物下外科手術/撮影台の垂直運動を可能にするために、実験室ジャッキを使用して行われます。実験用ジャッキは、4つの円筒状のポールに固定されたプレートに取り付けられています。 （ 図2を参照してください）。 </li><li> 20Xを含む客観的なインバータを置き頭蓋窓の上の目的。顕微鏡の接眼レンズを通して見ることにより、頭蓋窓を見つけ、撮影領域に目標を配置するために外部光源を使用してください。注：撮像領域は、脈管構造の存在によって示されます。 </li><li>水ベースの目的のために、人工脳脊髄液（aCSFの）を使用します（; 30のKCl、130mMの塩化ナトリウムを12mMのKH 2 PO 4、200mMの炭酸水素ナトリウム、30mMのHEPES、100 mMグルコース）培地として、潜在的に撮影時の頭蓋腔への漏出（ 図3）。 </li></ol> 4.ローズベンガル染料準備、管理および脳卒中の誘導<ol><li>人工脳脊髄液（aCSFの）中のローズベンガルの新鮮な20 mg / mlの溶液を調製します。フィルタリングし、投与前に滅菌します。それが混合された後にローズベンガルを再利用したり、保管しないでください。各実験のために新鮮なソリューションを行います。 </li><li>ローズベンガルの一方で、0.1mlの尾静脈注射を与えます溶液の適切な注入を保証するために、561 nmのレーザーで頭蓋窓を缶詰。注：ローズベンガルは、脳の血管系内注射後5秒以内に可視化されます。容器全体は、ローズベンガルで満たされるべきです。 </li><li>ローズベンガル色素の十分な注射後特定の病変体積の再現性を保証するために、血管の直径（40〜80ミクロン）に基づいて、血栓症の適切な容器を選択します。血流の方向を見て、動脈と静脈を区別：動脈は小径血管に大きな直径から移動し、静脈はより大きな直径の血管に小さいから移動します。ローズベンガルが注入されると、これは、容易に可視化することによって達成されます。 </li><li>次のように顕微鏡の設定を変更します。 <ol><li>滞留時間を増加させます。注：これは、利用される顕微鏡システムに依存して変化します。 </li><li> 100％にレーザーパワーを大きくしてください。 </li><li>使用して1フレーム/秒で時系列画像を収集最大スキャン速度。 </li></ol></li><li>安定した凝血塊が血管内に形成されるまでマウスをスキャンします。注：この一般的に連続スキャンの5分以内に達成される（ 図4を参照してください）。 </li><li>ローズベンガルを用いた血栓形成の誘導後、バック解剖顕微鏡の撮像領域からマウスを取り外します。慎重に頭蓋頭蓋骨からステンレス製のリングを取り外します。出血のための頭蓋窓を調べます。出血が発生した場合は、実験を終了します。 </li><li>頭蓋骨の上に切開部を閉じるために、6.0モノフィラメント縫合糸を使用してください。感染を防ぐために、縫合線に沿って抗生物質軟膏を置きます。 Buprenex（0.05ミリグラム/ kg）の疼痛管理のために3日間皮下12時間毎に注入します。 </li><li>完全に覚醒し、自由に移動するまで麻酔から除去した後の回復室にマウスを返します。 </li><li>後で、さらなる調査のためにきれいなケージにマウスを返します。 </li></ol> 5。その後の日に縦イメージング<ol><li>その後の日後に光血栓の縦撮影を行うには、次の方法を採用しています。 <ol><li>方法の第1節で説明したように、マウスを麻酔。 </li><li>十分な麻酔の際に、以前に掘削撮像視野を覆う皮膚を再度オープンするために、任意の残留縫合糸を除去することにより、頭皮を再オープンします。 </li><li>頭蓋の上にある残りの筋膜を除去するために滅菌綿棒を使用してください。 </li><li>前回の撮像視野を覆う骨に組織接着剤を使用したカスタムステンレス製リング（ 図1）を接着。 </li><li>マウスを安定させ、画像形成中の移動を防止するために、定位ホルダー（ 図2）環を貼付。 </li><li>以前に薄く頭蓋骨の基礎となる血管系を探します。以前に誘導された血餅の存在を確認するためにFITCデキストランの尾静脈注射を使用してください。 </li><li>内を閉じるために6.0モノフィラメント縫合糸を使用頭蓋骨の上cision。感染を防ぐために、縫合線に沿って抗生物質軟膏を置きます。 Buprenex（約0.05mg / kg）を、疼痛管理のために3日間皮下12時間毎に注入します。 </li><li>完全に覚醒し、自由に移動するまで麻酔から除去した後の回復室にマウスを返します。 </li></ol></li></ol>脳卒中の誘導の6検証（死後） <ol><li>研究の終わりに、 図5に示すように、2,3,5-トリフェニルテトラゾリウムクロリド（TTC）染色を使用して、ストローク量を確認する。完全な方法は、12に見出すことができます。 </li></ol>

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著者は、彼らが競合する金融利害関係がないことを宣言します。

動物からヒトへの適用に実験的なストローク病態生理を変換する機能は、障害に悩まされています。しかし、このような光血栓モデルなどの動物モデルの使用は、改良されたストローク病態生理の理解と脳卒中後の神経保護を提供するための新しい治療法の探求を可能にします。光血栓モデルによって生成される小さな皮質ストロークとmicroinfarctionsは、臨床的に無症状または高い有病率を持っており、毎年16米国の人口（約11万人）の約4％に影響を与える&quot;サイレント&quot;脳卒中13-15、に関連しています。サイレントストロークが中大脳動脈（MCA）閉塞または一過性脳虚血発作（TIA）17に見られるような麻痺、感覚消失や難易度などのより大きなストローク中に存在する古典的な脳卒中の症状は、そのような話す必要はありません。また、サイレントストロークは、どのラクナストロークとは異なります深い脳の構造や脳幹内の単一貫通動脈の閉塞と、モータと、臨床的にマニフェスト、感覚または混合赤字18によって引き起こされます。無症状または「サイレント」脳卒中患者は、典型的には、任意...

技術はすぐにそのままマウスでローズベンガル光血栓の誘導後のインビボ細胞応答の許可の可視化について説明しました。ローズベンガル（4,5,6,7-テトラクロロ-2 &#39;、4&#39;、5 &#39;、7&#39;-テトラヨード）は、動物モデルにおける虚血性脳卒中（マウス及びラット）を誘導するために使用される感光性染料です。 564 nmのレーザー光を薄く頭蓋骨を介して尾静脈を介して後続の照明RBのボーラス注射に続いて、血栓が生理的発作を引き起こし1に誘導されます。この方法は、もともと1977年にローゼンブラム、エル·Sabbanによって記述し、それ以降の1980年代半ば1,2にワトソンによって適応されました。要するに、ローズベンガルは、その後、組織因子、凝固カスケードの開始剤を活性化し、活性酸素種の生産を生成緑色励起光（この場合は561 nmレーザー）を照射します。凝固カスケードの誘導は虚血性レを生成します臨床ストローク3に病理学的に関連するイオン。 脳卒中は、ニューロン、グリア、内皮および免疫系を含む多くの異なる細胞タイプの相互作用に起因する複雑な病態生理を持っています。特定の細胞プロセスを研究するための最良の方法を選択すると、複数の配慮が必要です。実験技術は、3つのカテゴリのいずれかに広く分類さ： インビトロ 、 インビボ及びそれぞれが長所と短所とインシリコin vitro試験は、それらの天然の環境から細胞を除去する主な欠点を持っているので、そのままで見られる効果を再現できない場合があり、動物を生きた。in vivoでの技術増加翻訳意義と病態の強化実験的複製を提供する。 インシリコ一般的疾患または細胞プロセスのコンピュータモデリングを参照して、ますます試験の潜在的な薬物相互作用を研究するために利用しながら、PLE、収集されたすべての情報は、まだ生きている細胞や組織で試験されなければなりません。 実験室の設定における脳卒中の理想的なモデルは、ヒト集団において見られるものと同様の病理学的特徴を実証する必要があります。ヒト集団において脳卒中の一般的な生理学的特性がありますが、経験した損傷の種類に応じて多くの違いもあります。ヒト集団においてストロークを変化させ、梗塞ボリュームだけでなく、それぞれの病状に関連するメカニズムの違いをもたらすような小さなまたは大血管閉塞、出血性病変、および動脈または心臓塞栓動脈に発生します。動物の脳卒中モデルを利用する利点は、人間のストロークの特性を模倣再現性梗塞の発生です。中大脳動脈閉塞（塞栓または血管内フィラメント法）をモデル遠位MCAOおよび光血栓モデル：もっとも一般的な動物ストロークモデルが使用して動脈閉塞が含まれます。利点各モデルのd欠点は（ 図4、図5を参照してください）他の場所で検討されています。グローバル虚血モデル（MCAO）、実行するのが比較的容易に焦点脳卒中モデルであるよりも、人間のストロークにはあまり関連していました。さらに、これらの方法は、再現性の脳梗塞病変を誘導するのに非常に可変です。実験者は、MCAOモデル上で明確な利点を提供し、よく彼らの実験を制御するように光血栓モデルがあれば高い再現性です。しかし、微小血管傷害のモデルは、最小限虚血性ペナンブラ、細胞を救出6,7であると考えられる領域を表示することが記載されています。また、血管原性浮腫及び細胞毒性浮腫形成はまた、撮像領域の照射後の誘導され得ます。これらの制限にもかかわらず、技術は、脳卒中8、9、10、11以下の多くの生理学的プロセスに新たな洞察を提供しました。

<table><tr><tbody><td colspan="4">試薬</td></tr><tr><td>ローズベンガル</td><td>シグマ</td><td>330000</td><td></td></tr><tr><td>イソフルラン麻酔</td><td>薬MWI獣医用品</td><td>088-076</td><td></td></tr>ベ<tr><td>トボンド</td><td>1469SB</td><td>1469SB</td><td></td></tr><tr><td>aCSF&nbsp;</td><td>126 mM NaCl、2.5 mM KCl、1.25 mM NaH2PO4、2 mM MgCl2、2 mM CaCl2、10 mM グルコース、26 mM NaHCO3 (pH 7.4)。</td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="4">[header]</td></tr><tr><td colspan="4">機器</td></tr><tr><td>解剖ハサミ</td><td>バイオ工業製品</td><td>500-410</td><td></td></tr><tr><td>手術ハサミ 14cm</td><td>バイオ工業製品</td><td>12-055</td><td></td></tr><tr><td>鉗子デュモン ハイテク#5スタイル、ストレート</td><td>バイオ工業製品</td><td>TWZ-301.22</td><td></td></tr><tr><td>LabJack 132X80</td><td>オプトシグマ株式会社</td><td>123-6670</td><td></td></tr><tr><td>Labjack 8X 8</td><td>Optosigma Co</td><td>145-1110</td><td></td></tr><tr><td>定位固定装置セットアップのイヤーバーホルダー用プラットフォーム</td><td>Stoelting/Cyborg</td><td>51654</td><td></td></tr><tr><td>Dispomed Labvent げっ歯類麻酔器</td><td>DRE, Inc.</td><td>15001</td><td></td></tr><tr><td>Tech IV イソフルラン気化器</td><td>DRE, Inc.</td><td>34001</td><td></td></tr><tr><td>F エア キャニスター</td><td>DRE, Inc</td><td>80120</td><td></td></tr><tr><td>ベイン回路呼吸管</td><td>DRE, Inc</td><td>86111B</td><td></td></tr><tr><td>ベイン管用げっ歯類アダプター</td><td>DRE, Inc</td><td>891000</td><td></td></tr><tr><td>酸素タンク用 O2 レギュレータ</td>ー <td>DRE, Inc</td><td>CE001E</td><td></td></tr><tr><td>げっ歯類誘導室</td><td>DRE, Inc</td><td>15004C</td><td></td></tr><tr><td>Ethicon Silk 6-0; 18 in with P-3 needle</td><td>Suture Express</td><td>1639G</td><td></td></tr><tr><td>Objective inverter Optical Adapter</td><td>LSM technologies</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Foredom drill Dual voltage 110/120</td><td>Foredom</td><td>134.53</td><td></td></tr><tr><td>Meisinger 3.9 mm drill</td><td>bit Meisinger</td><td></td><td>(Ref#310 104 001 001 009)</td></tr></tbody></table>

共焦点光学イメージングによるローズベンガル光血栓<em&gt;インビボ</em&gt;：単一の容器ストロークのモデル

Rose Bengal Photothrombosis by Confocal Optical Imaging In Vivo: A Model of Single Vessel Stroke

近年のイメージング色素と光学技術の進歩により、生体内のイメージング技術の利用が増加し、無傷の動物の細胞イベントをイメージングする能力が可能になりました。 さらに、in vivoで脳卒中などの生理学的疾患状態を誘導する能力は、その有用性を高めます。本明細書に記載の技術は、脳卒中後のCNS内の細胞応答の生理学的評価を可能にし、研究されている他の病理学的状態に適応させることができる。 提示された技術は、感光性色素Rose Bengalのin vivoでのレーザー励起を使用して、単一の血管に局所虚血イベントを誘発します。 
ビデオプロトコルは、マウスの体性感覚皮質の上に薄い頭蓋骨の頭蓋窓を準備し、ローズベンガル光血栓イベントを誘発し、根底の硬膜物質と脳への損傷を最小限に抑える方法を示しています。 外科的製剤は、最初にカスタムメイドの外科/イメージングプラットフォームを備えた解剖顕微鏡で行われ、その後、倒立対物レンズアダプターを備えた共焦点顕微鏡に移されます。 このプロトコルを使用して取得された代表的な画像と、脳卒中誘導のタイムラプスシーケンスが提示されます。 この技術は、同じ領域をその後の日に繰り返し画像化できるという点で強力であり、脳卒中後の病理学的プロセスの縦断的in vivo研究を容易にします。

この方法の目的は、561 nmのレーザー光を薄く頭蓋骨の尾静脈とその後の照明を介してRBのボーラス注射後の動物モデルにおける虚血性脳卒中（マウス、ラット）を誘導することでした。 図4の画像は、0、1、1.5、2分間の領域の照射後の単一の容器内に血栓形成の進行を示しています。血栓形成の前に容器全体はローズベンガルを流れる自由に起因白です。容器の照射誘導後そこに容器の一部が明らかに暗くし、血餅形成（フレーム1と1.5分）の誘導を示しています。完全な閉塞に続いて血管内凝固塊（黒領域）の前のローズベンガル色素（白い部分）の顕著な蓄積があります。 2分のフレームは、動脈の完全閉塞を示しています。 虚血性脳卒中のTTC染色の存在を利用することができるかどうかを確認します。 TTCが共同でmmonly健康な組織の赤いホルマザンTTC生成物の形成によって脳梗塞の検出のための染色を使用していました。ホルマザン生産（白組織）の欠如は、梗塞領域を示しています。 図5のボックスで示された領域は、直径約80ミリメートルの容器内で生成血塊次の...

ここでは、マウスの体性感覚皮質にRose Bengal光血栓をin vivoで誘導するための半侵襲的光学顕微鏡法のアプローチについて説明します。 イメージング手順の技術的側面は、光血栓性イベントの誘導からアプリケーションおよびデータ収集まで説明されています。

In vivo imaging techniques have increased in utilization due to recent advances in imaging dyes and optical technologies, allowing for the ability to ...

本手順の全体的な目的は、半侵襲的な光学顕微鏡アプローチを用いて、マウスの体性感覚皮質にローズベンガル光血栓を誘発することです。まず、マウスを麻酔し、イメージング用の薄い頭蓋骨クラニアルウィンドウを作製します。次に、ローズベンガルを注入し、レーザーを用いて光血栓症を誘発します。最終的に、ローズベンガル光血栓症によって形成された血栓の影響を、麻酔からの回復後すぐに分析することができます。この手法の主な利点は、ローズベンガル光血栓症の誘発直後に、生体内での細胞反応を観察できることです。この手法に不慣れな方は、頭蓋窓の薄い骨窓作成に困難を感じるかもしれません。この工程は難易度が高く、時間を要するためです。まず、2〜3%のisof fluorineと酸素の混合ガスでマウスを麻酔します。導入に伴い、呼吸数が減少することを確認してください。その後、マウスの足先をつまみます。麻酔状態を確認し、ヒートパッドと温度プローブを用いて、処置の間、体温を37 °Cから0.5 °C以内の範囲に維持します。次に、眼軟膏を塗布して動物のバイタルサインをモニターします。オキシメトリシステムを尾または足にクリップで固定します。呼吸数を分間50〜65回、心拍数を分間300〜450回に維持するように麻酔量を調整します。酸素飽和度は、理想的には97〜98%に維持します。これらのパラメータがすべて維持されていれば、長期生存が可能です。最後に、手術に向けて皮膚の準備を行います。頭蓋部の毛を剃り、ベタジンで繰り返し洗浄した後、エタノールを用いて皮膚を清浄にする。頭皮に5 mmの切開を加え、頭蓋縫合線を露出させて手術を開始する。綿棒で上層の筋膜を除去し、bgmaを特定する。次に接着を行います。特製のステンレス製リングを、頭頂皮質を覆う骨に固定します。この位置は、bmaから水平方向に-1〜3 mm、外側に+2〜4 mmの範囲で決定します。2分後、接着剤が硬化します。次に、動物を固定するためにリングを脳定位固定装置のホルダーに取り付けます。続いて、手術用解剖顕微鏡下で、体性感覚皮上の頭蓋骨に1〜2 mmの穴をゆっくりと開けます。ジグザグにドリルを動かし、熱の発生を防ぐため、穿孔中は頭蓋骨が水平に保たれていることを確認してください。骨が光り始めたら、ドリルを低速で回し、頻繁に休憩を挟みながら作業してください。ジグザグのパターンで穿孔を続け、頭蓋骨を薄くします。レーザーをローズベンガル充填血管に到達させ、血栓を誘導するためには、頭蓋窓を薄くすることが不可欠です。ウィンドウが十分に薄くなったら、メスを用いて軽い圧で小さな直線的なストロークを繰り返し、接眼レンズを通して血管がはっきりと見えるまで骨の薄い層を取り除きます。脳を撮影するには、対物レンズとステージの間に動物をプラットフォームに載せるのに十分なスペースがある顕

rose-bengal-photothrombosis-confocal-optical-imaging-vivo-model

Research

JoVE Journal

Medicine

医学

出典:Talley Watts, L., et al. Rose Bengal Photothrombosis by Confocal Optical Imaging In Vivo: A Model of Single Vessel Stroke.J. Vis. Exp.

感光性色素を用いたマウス脳内血栓形成の誘導

Photothrombosisは、再現性の高い方法で、興味のある分野での小よく区切り梗塞を誘発するための迅速、低侵襲技術です。これは、トランスジェニックマウスの脳の可塑性の根底にある細胞および分子応答を研究するために特に適している。...

Photothrombotic虚：マウス脳卒中研究のための低侵襲かつ再現性の光化学皮質病変モデル

このプロトコルは、脳の血栓塞栓を可視化するための複合近赤外蛍光（NIRF）イメージングおよびマイクロコンピュータ断層撮影（マイクロCT）の適用を説明します。この技術は、血栓負担と進化の定量化を可能にします。 NIRFイメージング技術は、マイクロCT技術は、金ナノ粒子を用いた動物生体の内部に血栓を視覚化しながら、蛍光、切除した脳内の血栓標識可視化します。...

直接脳血栓塞栓を可視化するための複合近赤外蛍光イメージングおよびマイクロコンピュータ断層撮影

従来の光血栓性脳卒中(PTS)モデルは、主に組織プラスミノーゲンアクチベーター(tPA)溶解性治療に対して高い耐性の高密度血小板凝集体を誘導します。ここでは、光活性化のためにトロンビンと感光性色素を同時注入することにより、修正されたマウスPTSモデルが導入されています。トロンビン増強PTSモデルは、血小板:フィブリン血栓を混合し、tPA血栓溶解に対して非常に敏感です。...

フィブリン富化およびtPA感受性光血栓性脳卒中モデル

ここで説明するフォトトロンボミックストロークモデルは、感光性染料の投与後にレーザー照明を用いて永久的な微小血管閉塞を誘導することによって無傷の頭蓋骨を通してストロークが生成される。...

マウスにおける脳卒中のモデリング:光血栓症による焦点性皮質病変

ここでは、ローズベンガルとレーザー誘導網膜イメージング顕微鏡システムを使用した網膜静脈閉塞のための最適化されたプロトコルと、遺伝子組み換え株での再現性を最大化するための推奨事項について説明します。...

変動性を制限するための網膜静脈閉塞マウスモデルの最適化

この研究は、虚血性脳卒中の非侵襲的イメージングのためのマルチモーダル超音波ベースのイメージングプラットフォームの使用を示しています。このシステムは、光音響イメージングによる血液酸素化の定量化と、音響血管造影による脳内の灌流障害の定量化を可能にします。...

虚血性脳卒中の非侵襲的全脳イメージングのための統合光音響、超音波、および血管造影断層撮影(PAUSAT)

本プロトコルには、蛍光発泡スチレン微小球を用いた in vivo 二光子顕微鏡イメージングに最適な慢性頭蓋ウィンドウおよび微小血管塞栓症マウスモデルの段階的アプローチを詳細に記述しています。...

蛍光発泡スチレン微小球を用いた 生体内 2光子顕微鏡用微小血管塞栓症マウスモデル

全光学的アプローチを使用して、虚血性脳卒中を誘発すると同時に、覚醒して行動しているマウスの新たな脳卒中コアで蛍光バイオセンサーを使用してニューロンのCa2+...

行動マウスの虚血性脳卒中を誘発および監視するための同時光血栓症とファイバー測光法

このプロトコルは、ウイルスの送達、視球体の着床、光血栓誘導、アストロサイトおよびニューロン活動の同時記録、アストロサイトのオプトジェネティック刺激を含む統合的な手法を提供します。この統合手法は、虚血性脳卒中の急性期から慢性期にわたり、アストロサイトとニューロンの関係を同時に調査することを目的としています。...

振る舞うマウスの神経細胞およびアストロサイト活動の光血栓性脳卒中モデリングおよび in vivo 光学記録のための統合手法

学ぶローズベンガル光血栓法によるマウス感覚野での単一血管閉塞モデル。共焦点光学イメージングで脳虚血の細胞応答をリアルタイム観察し、神経科学研究に応用する。

共焦点光学イメージングによるローズベンガル光血栓

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