June 25th, 2015
ワクチンがどのように機能するかについての知識は全体的に不足しています。ここでは、逆遺伝学と骨髄キメラマウスの併用を提案するとともに、樹状細胞とT細胞免疫に特に焦点を当てて、ワクチンに対する初期の宿主免疫応答についての洞察を得ることを提案します。
この手順の全体的な目標は、ワクチン特異的適応免疫の生理学的開始を評価するシステムを説明することです。これは、まずリバースジェネティクスを使用して、特定の免疫原性ペプチドを含む弱毒生インフルエンザワクチンを生成し、次にニワトリの胚を使用してウイルスを増殖させることで達成されます。次に、ワクチン接種済みマウスのリンパ節から細胞を採取し、ファックス分析を使用して樹状細胞の遊走を追跡します。
次のアッセイでは、免疫原性ペプチドに反応するCD8個の陽性T細胞を標識してワクチン接種済みマウスに注入し、その後、FAX分析を行ってこれらの細胞の増殖を測定し、免疫応答をより詳細に分析します。骨髄細胞を発現するジプテリア毒素受容体を照射したコンジェニックマウスに注入し、次いでジプテリア毒素を曝露することにより、競争力のある骨髄チャイムミラーが作られます。枯渇が成功した後、マウスにワクチンを接種し、標識抗体と四量体を使用してCD8陽性T細胞を同定します。
特定のペプチドを認識する。この方法は、ワクチンの主要な細胞および分子標的であるワクチンが神経学的レベルでどのように機能するか、そして最も重要なこととして、現在の予防戦略をどのように改善できるかなど、ワクチン学分野の重要な質問に答えるのに役立ちます。手順を実演するのはSanmen Medinaです。
私たちのラボマネージャーと私 このプロトコルでは、寒冷適応株を使用して再ソートされた風邪適応インフルエンザワクチンを生成します。アナーバー6 60。背景として、A PR 8 34株のヘマグルチニンおよび修飾ノイラミニダーゼと結合した。
ノイラミニダーゼ遺伝子のタンパク質茎配列の一部は、ニワトリペプチドsyn糞便をコードする短いCDNA配列に置き換えられます。このペプチドは、H two BMHCクラスで非常に免疫優性があります。C 57黒色6マウスの1つの制限応答であり、トレーサブルな要素として機能します。
10%のウシ胎児血清と1%の連鎖球菌を含むDMEMを含む6ウェルプレートの各ウェルにプレート1,000,002 93個のT細胞を注入する。次に、ウェルあたり100マイクロリットルのプラスミドトランスフェクション混合物を調製します。各プラスミドを1マイクログラム組み合わせ、別のチューブにプレウォームオプティMEM細胞培地を50マイクロリットルまでチューブに充填します。
トランスフェクションするプラスミドの総量に対応する2000回の脂肪切除術の容積を2倍追加し、トランスフェクションミックスを細胞に加える前に、opti MEMでチューブを50マイクロリットルに補充します。室温で30分間放置します。次に、100マイクロリットルのトランスフェクションミックスを各ウェルに加え、プレートをインキュベーターに16時間移動します。
翌日、培地を0.3%BSAと1%ペン連鎖球菌を含むDMEMに変更します。次に、細胞を5%の二酸化炭素で摂氏33度に5時間移動します。5時間後。
100万個のインフルエンザ許容性MDCK細胞をTripsin添加DMEMに重ねて追加します。33°Cのインキュベーション体制下で2〜3日間共培養を維持し、ウイルスを生成および増幅します。その後、5分間の260Gスピンを使用して破片を取り除きます。次に、上清を収集し、無菌条件下で生後9〜10日齢の鶏の胚卵を接種します。
これを行うには、卵の殻の上部に穴を開け、100 x 10 xまたは1 x希釈でウイルスを追加します。綿棒を使用して卵殻を溶かしたワックスで覆い、接種した鶏の卵を摂氏33度で3日間インキュベートします。その後、感染した卵からアラントイック液を採取します。
卵の殻を70%エタノールで洗います。上部に非常に穏やかな亀裂が入った卵を開き、滅菌鉗子を使用してアラントイック膜を取り除きます。10ミリリットルのピペットを使用して、できるだけ多くの水分を集めます。
通常、6〜10ミリリットルです。液体を260gで摂氏4度で10分間遠心分離し、透明化したAlan Toic液体を新しいチューブに移します。ドナーマウスに麻酔をかけ、縦隔に外科的にアクセスした後、湾曲した鉗子を使用してリンパ節を採取します。
リンパ節を1ミリリットルのDMEMを含む6ウェルプレートに移します。リンパ節を囲む結合組織または脂肪組織を取り除いた後、片方の針でリンパ節を固定し、もう一方の針でリンパ節を壊します。これにより、細胞がリンパ節からメディアに飛び出し、細胞が収集されるはずです。
まず、すべての組織材料を70ミクロンのナイロンフィルターに通して、遠心分離の準備ができている細胞の懸濁液を取得します。細胞ペレットを2ミリリットルのRBC Lysingバッファーに再懸濁します。溶解反応を室温で3分間行かせ、氷冷PBSを2ミリリットル添加して終了させ、テキストプロトコルに従って細胞を染色します。
抗体インキュベーションの前に、プレートフリックを使用して、スーパーの名前を取り出して廃棄してください。市販のTCRトランスジェニックマウスの標識ドナーT細胞は、5マイクロモルCFSEを含むPBS1ミリリットルで500万個の細胞をインキュベートします。暗闇の中で摂氏37度で20分間インキュベーションを行います。
次に、PBSの100マイクロリットルあたり200万個の細胞を収集し、眼窩後洞注射を介して100マイクロリットルのボーラスをレシピエントコンジェニックマウスに注入します。3〜5日後、マウスを安楽死させ、縦隔リンパ節を採取し、フローサイトメトリー用の単一細胞懸濁液を調製します。以前と同じです。
次に、抗体カクテル中の単一細胞懸濁液を染色することにより、ドナー細胞を同定します。分析のため。フローサイトメーターのFLを1チャンネル開いたままにして、CFSEの希釈プロファイルを決定します。
安楽死させたマウスの脛骨と大腿骨を取り外して消毒した後、そこにあるDMEMの皿にそれらを集めます。鋭利なハサミで骨の端を切り、骨髄をDMEMに流します。現在、標準的な方法を使用して、マウスに放射線を照射してから2〜4時間後にセシウム1 37源照射器を使用して6〜8週齢の雌マウスに放射線を照射し、マウスに麻酔をかけ、PBSの100マイクロリットルに200万個の細胞の眼窩後静脈注射を介してドナー骨髄細胞を移植します次の2週間、 マウスに飲料水に1キログラムあたり2.5〜5ミリグラムのバールを供給します。
ワクチン接種の2日前から、50マイクロリットルのPBSに希釈した50ナノグラムのDTを麻酔マウスの鼻孔に直接一滴ずつ投与します。ワクチン接種後3日間、この治療を続けます。最終的なマウスモデルを生成するための詳細については、テキストプロトコルを参照してください。
マウスに組換え弱毒生インフルエンザを、麻酔下での鼻腔内注射を使用してワクチン接種します。200マイクロリットルのピペットから50マイクロリットルのPBSに1000PFUのワクチンを送達 組換え弱毒生インフルエンザワクチンの生成は、インフルエンザウイルスの8つのセグメントをコードするプラスミドを双方向プロモーターの制御下でトランスフェクションすることによって達成できます。寒冷適応型インフルエンザワクチンには、通常、寒冷適応株の6つのセグメントと、選択したインフルエンザ株のHAとNA(H1、N1など)が含まれています。
寒冷適応では、マウスやヒトでは上気道の温度である摂氏33度でウイルスの複製が制限されますが、下気道での複製はできないため、肺炎の融合を引き起こすことはありません。PCRを使用して、ウイルスノイラミニダーゼのステムの保存領域をトレーサブルなOVA由来ペプチドで置き換えました。トレーサブルペプチドモデルは、ワクチン接種後3〜6日でマウスに接種しました。
トレーサブルなタンパク質syn糞便は、肺ドレーンリンパ節で検出されました。マルチパラメトリックフローサイトメトリーを使用して、ワクチン由来の抗原提示をリアルタイムで定量しました。同様に、syn糞便特異的T細胞の注入により、ワクチン接種中の遺伝子特異的機能を評価するためのワクチン特異的CD8T細胞応答の定量化が可能になりました。
DTR技術と競争力のある骨髄キーラを組み合わせたマウスモデルを利用しました。したがって、遺伝子機能の喪失は、ワクチン接種に対する免疫応答の過程で特定の細胞コンパートメントに標的とされました。このビデオを見れば、宿主におけるワクチン誘導性免疫の調節に関与する分子的および生理学的経路をどのように解析するかを十分に理解することができます。
さらに、この手法は、ワクチンの細胞標的の決定に新たな洞察を提供し、新しいワクチンプラットフォームの評価をさらに
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この研究は、リバース遺伝学と骨髄キメラマウスの組み合わせを使用して、ワクチン特異的な適応免疫の生理学的開始を評価することを目的としています。特に樹状細胞とT細胞免疫の役割に焦点を当てた、初期の宿主免疫反応の理解に焦点を当てています。
Understanding the physiological initiation of vaccine-specific adaptive immunity is critical for de-risking vaccine candidates and improving predictive confidence in preclinical models. This approach combines reverse genetics with chimeric mouse models to dissect early immune mechanisms, supporting target validation and translational biomarker identification for mucosal vaccines. The method enables mechanistic de-risking by linking antigen presentation to functional T-cell responses, informing go/no-go decisions in early discovery.
The method integrates into the discovery continuum from early target validation through lead identification to preclinical evaluation, particularly for mucosal vaccine candidates requiring mechanistic insight.