Name: のサイレンシング BRCA2ヒト培養細胞における新規BRCA2-調節される生物学的機能を同定するために、 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-08-12T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 24 s
Description: 学ぶBRCA2遺伝子サイレンシング法。siRNAトランスフェクションとウェスタンブロッティングを用いてヒト培養細胞でBRCA2発現を効率的に抑制し、タンパク質レベルを解析する技術です。がん生物学研究に有用です。

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この作業は、プロジェクト「FaReBio di Qualità」のために、FIRB-Meritの助成金RBNE08YFN3_005とRBNE08HWLZ_012、およびイタリア経済財務省からCNRへの支援を受けました。

1.のsiRNA溶液を調製します<ol><li>再懸 ​​濁5スクランブルのナノモル（Ctrlキー）とRNaseフリー水（最終siRNA濃度：50μM）の100μl中BRCA2 siRNAを乾燥したペレットの5ナノモル。これは、siRNAの株式であり、10μlのアリコートで-20℃で保存する必要があります。 </li><li> siRNAのストックから10μLのアリコートを取り、10μMのsiRNA作業溶液を得るために、RNaseフリー水40μlを添加します。この希釈は、使用するまで-20℃で保存する必要があります。 注：siRNAの作業溶液を3回以上解凍/凍結受けるべきではありません。 </li></ol>ヒト上皮細胞株の2播種<ol><li> 37℃、5％CO 2の加湿インキュベーター中で組織培養プレート中の細胞単層として増殖するヒト上皮細胞株から増殖培地を取り除き。 </li><li> RT PBS（100ミリメートルプレートのための10mlのPBS）で1回プレートに細胞を洗浄します。 </li><li>プレートから細胞を剥離するためには、0.25％トリプシン/ 0.53 mMのEDTA溶液2mlを添加し、細胞型に応じて3~5分間インキュベートします。 </li><li>剥離した細胞を回収する前に、10％ウシ胎児血清を含む完全増殖培地2mlを添加することによりトリプシンを中和します。 </li><li> 15mlチューブに細胞を移します。 </li><li>スイングバケットローターで4℃で3分間、320〜330×gで細胞を遠心します。 </li><li>抗生物質を含まない培地5ml中に細胞ペレットを再懸濁します。 </li><li> Burkerチャンバー中または製造者の指示に従って、自動計数装置を用いて顕微鏡下で細胞を数えます。 </li><li> 6ウェルプレート中で細胞を24時間（0.5〜1×10ウェルそれぞれについて、培地2mlで6個の細胞）の後に約80％コンフルエントになるように種子。播種する細胞の最適数は、特定の細胞株および成長速度に応じて変化し得ます。 注：抗生物質が負transfeの効率を妨害するので、この時点では、培地中の抗生物質を追加しないでくださいction。これは、BRCA2のsiRNAトランスフェクションの高い効率を達成するために、低培養継代（&lt;10）の細胞であることが非常に重要です。 </li></ol> siRNAで3トランスフェクト細胞<ol><li>二十四時間細胞をプレーティングした後、トランスフェクションの最初のラウンドに進みます。 <ol><li>低血清培地130μlの脂質ベースの10特異的なsiRNAトランスフェクション試薬の6μLを希釈します。 </li><li>低血清培地130μlの10μMのsiRNA（30ピコモル）の3μLを希釈します。 </li><li>希釈されたトランスフェクション試薬で希釈したsiRNAを組み合わせて、室温で5〜10分間インキュベートします。 </li><li>インキュベーションの間、細胞から培地を除去し、37°C​​（抗生物質を含まない）に予め温めておいた新鮮な培地2mlを加えます。 </li><li> （この量は6ウェルプレートの1ウェルのためのものである）を細胞にsiRNAをトランスフェクション試薬複合体の250μlを添加します。 </li><li> 37の加湿インキュベーター中で細胞をインキュベート76; C、5％CO 2。 </li></ol></li><li> 24時間後、ステップ3.1.2には、次の変更で3.1.1-3.1.5の手順を繰り返すことにより、トランスフェクションの第二ラウンドを続行：低血清培地130μlの10μMのsiRNA（50ピコモル）の5μLを希釈します。 <ol><li>分析の前に、37℃で1〜2日間細胞をインキュベートします。 注：トランスフェクションし、第二ラウンドで高いのsiRNA /トランスフェクション試薬比の使用の2ラウンドは、BRCA2サイレンシングの高効率を得るために不可欠です。 </li></ol></li></ol>イムノブロット分析のための4を溶解細胞<ol><li>非イオン性、非変性洗剤オクチルフェノキシポリエトキシエタノール、5mMのピロリン酸ナトリウム、1mMのオルトバナジン酸ナトリウム、10mMのフッ化ナトリウム、2mMのフェニルメチルスルホニルフルオリド、を10μg/ mlのロイペプチン、10を1％含有PBS新鮮な溶解緩衝液（pH 7.4）を準備/ mlのアプロチニン。氷の上に保管してください。 </li><li>細胞およびWからメディアを削除しますプレート内の冷PBS（2ミリリットル/ウェル）で1回、それらを灰。任意のPBSのキャリーオーバーを防止するために、完全にプレートから取り外します。 </li><li>各ウェルに200μlの溶解緩衝液を追加します。 注：細胞は、他のアッセイにも使用する必要がある場合、ステップ2.1〜2.6に記載し、使用する用途に応じて適切な緩衝液/培地中で細胞を再懸濁したように、細胞をトリプシン処理。 </li><li>静かに均一に溶解バッファーを配布し、回転子に4℃で15分間インキュベートする板を回転させます。 </li><li>セルスクレーパーを用いて氷上でマイクロ遠心チューブ内の細胞溶解物を収集します。 </li><li> 4℃で25分間、17,900×gで遠心分離し、新しいチューブに上清を収集します。 </li><li>製造業者の指示に従って市販のタンパク質アッセイを用いてタンパク質濃度を測定します。 </li></ol> 5. BRCA2のイムノブロット分析<ol><li> Bを実行して20倍のトリス - 酢酸SDSの50ミリリットルを希釈することにより、ランニング緩衝液を調製します蒸留水950ミリリットルでuffer（50mMのトリシン、50mMのトリス塩基、0.1％SDS、pHは8.24）。 </li><li>次のように試料を調製：20の最終容量まで15全細胞溶解物のμgの、4×サンプルバッファー5μlのpHは8.4でドデシル硫酸リチウムを含む、10倍のサンプル還元剤（0.5 M DTT）を2μl、および溶解バッファーを追加μlの。 注：（5μgのまで）全タンパク質のより少量を使用した場合、このプロトコルは、正常細胞株でBRCA2の検出を可能にします。 </li><li> 10分間55℃でサンプルを変性。 注：これは、55℃を使用することが重要です。 BRCA2タンパク質は感熱11であるため、より高い変性温度は、無傷の完全長（390キロダルトン）BRCA2タンパク質の一貫した損失をもたらします。 </li><li>製造者の指示に従って電気泳動チャンバーを設定します。 </li><li>サンプルおよびプレキャストゲル（トリス - 酢酸3から8パーセント）の高分子量プレ染色タンパク質標準の10μLをロードし、AB、120 Vで動作します2時間12アウト。 55kDaの青いマーカーがプレキャストゲルを離れる前に、電気泳動実行を停止します。 </li><li> 20X転送バッファの50ミリリットル、100％メタノール850 mlの水100mlで転送バッファを準備します。 </li><li>蒸留水で洗浄し、少なくとも5分間、転写緩衝液中で平衡化し、5分間、100％メタノール中に浸漬することによりPVDF膜（0.45μmの孔径）をアクティブにします。使用するまで4℃で転送バッファ内の転送装置のスポンジを浸します。 </li><li>電気泳動の実行が終了すると、次の順序（ボトムアップ）での転送スタックのサンドイッチ組み立てる：転送バッファに飽和3スポンジを、1 3MMグレード紙は、転送バッファ、ゲル、活性化されたPVDF膜、1 3mmの飽和しますトランスファー緩衝液に飽和等級紙、転送バッファ13,14飽和3スポンジ。装置内にスタックを配置し、4℃で一晩4℃で180 mAで4時間、350 mAでタンパク質を転送します。 注：ビーイングBRCA2非常に大きなタンパク質は、高分子量のタンパク質の完全な移動を確実にするために、4時間または一晩に1時間（メーカー、最も転送プロトコルによって示唆されるように）からの転送時間を延長することが重要です。また、原因長い転送時間には、過熱を最小化し、サンドイッチ分解を容易にするために、4℃の冷室でブロッティングを行うことが必須です。セミドライトランスファーシステムは、大きなタンパク質を転送するための良いものではありません。 </li><li>転写後、TBSで膜を洗浄し、0.25％（TBS-T）を30μlの抗BRCA2ウサギポリクローナル抗体と共に4℃で一晩、5％脱脂粉乳およびプローブを含むTBS-Tween中で室温で1時間、それを阻止します（ [：300（v / v）の希釈液1] 9ミリリットルTBS-T + 5％脱脂粉乳中で希釈した200μg/ ml）を、。 </li><li>その後TBS 10mlに希釈した西洋ワサビペルオキシダーゼ結合抗ウサギ二次抗体の1μlの1時間、フィルターをインキュベートし、TBS-Tを用いて膜を3回（10分毎）で洗浄-T + 5％の脱脂粉乳。その後、TBS-Tで膜を3回（各10分）を洗浄します。 </li><li>製造業者の説明書に従って、増強化学発光（ECL）ウエスタンブロッティング検出試薬を用いて、BRCA2タンパク質を明らかにし、ECLによって免疫検出を実行します。高解像度ECLフィルム上immunochemiluminescentバンドを可視化。 </li><li> 10 1,000抗チューブリン抗体（10μL：1に希釈したチューブリンをβに対するモノクローナル抗体を用いて、ローディングコントロールとして同じフィルタ上に、βチューブリン（55kDaの）のように、ハウスキーピング遺伝子に対する抗体を用いて免疫検出を行いますRTで1時間mlのTBS-T + 5％脱脂粉乳）。西洋ワサビペルオキシダーゼ結合抗マウスの代わりに抗ウサギ二次抗体を使用したことを除き、洗浄し、BRCA2（5.10から5.11）について記載したように二次抗体をインキュベートします。 </li><li> immunochemiluminescentバンドと感動フィルムのデジタル画像を取得し、専用の画像解析ソフトウェアによって、バンドの強度を分析する（ 例えば。、ImageJの）。 </li></ol>

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</ol>

著者らは開示するものは何もない。

女性と男性の乳癌、卵巣癌、前立腺癌、膵臓癌、及びメラノーマ3,4を含むいくつかの癌型のリスク増加にBRCA2遺伝子リードの生殖細胞変異は、多くの研究は、生物学的機能を理解するために行われているのでBRCA2タンパク質の。これらの研究のほとんどが原因BRCA2のような巨大なタンパク質の分析における技術的困難に遺伝ベースの主です。 BRCA2タンパク質の発現をサイレンシングし、分析するためのここに記載した方法は、生物学的ア ​​ッセイの広いスペクトルにBRCA2腫瘍抑制遺伝子の機能を研究するための効率的なツールを提供します。サイレンシングプロトコルは、標準的なsiRNAトランスフェクションの手順に基づいて、まだいくつかの重要な変更並びにBRCA2の成功と一貫性のノックダウンのためのヒントが含まれています。 siRNAトランスフェクションプロトコルは、安全で迅速かつ効率的で、異なる通常LENを利用したshRNAからですtiviralベクターは、特定の生物学的安全手順を必要とせず、容易に細胞培養設備を備えた任意の実験室で行うことができます。同様に、免疫ブロットプロトコル...

BRCA2（乳癌感受性遺伝子-2）遺伝子は、リコンビナーゼ酵素のRad51 1の機能を調節することにより、DNA二本鎖切断の修復に重要な役割を演じる腫瘍抑制タンパク質をコードします。 BRCA2はまた、転写の調節および細胞周期の制御2に関係しています。 BRCA2遺伝子に生殖細胞変異は、男性に女性と前立腺癌における乳癌および卵巣癌に常染色体優性の感受性を誘導するだけでなく、他の癌タイプ3,4の素因。しかし、抑制またはDNA損傷5-7を引き起こす化学療法剤に対する癌細胞の脆弱レンダリングしてもよいBRCA2の機能を低下させる癌、BRCA2変異を開発するリスクの増加にもかかわらず。 BRCA2タンパク質レベルの低下は、そのBRCA2タンパク質を示唆し、いくつかの癌の種類で検出されているものの、散発性の癌はBRCA2変異 （&lt;3％）の低速度を示します非突然変異依存機構7,8を介して散発性の癌において腫瘍形成の間に失われることがあります。したがって、完全に癌生物学の文脈において、ならびに他の生物学的環境においてBRCA2の機能を理解することが重要です。 哺乳動物細胞における遺伝子の新規な機能を識別するために使用される強力なツールは、その発現を抑制することです。一例として、正常上皮細胞の様々なBRCA2の発現を抑制することは、最近アノイキス耐性の調節、癌細胞浸潤性および転移能9の取得中に重要なステップとして、BRCA2の新規機能の同定につながりました。遺伝子サイレンシングは、細胞小干渉（SI）RNAまたは特定の遺伝子を標的とする短いヘアピン（SH）RNA分子のいずれかで導入することによって達成することができます。高いsiRNAの効力とその使いやすさは重要な生物学的プロセスに新たな洞察を得ることを目的とした実験をサイレンシングするため、それを優先ツールを作ります新たな治療標的を同定するためにND。しかし、遺伝子発現の効率的なノックダウンは、すべての遺伝子のために容易に達成できないことがあり、細胞の種類に応じて非常に変化してもよいです。細胞内タンパク質のレベルの減少は、調査中の最も関連性の表現型であるため、遺伝子産物の解析をイムノブロッティングにより遺伝子サイレンシングを定量化することが重要です。これに関しては、BRCA2タンパク質は、さらに課題を提示：大きなタンパク質（約390キロダルトン）をされ、技術的な困難が免疫ブロット法を含む、従来の生化学的解析のために存在します。 ここでは、ヒト上皮細胞株におけるBRCA2の効率的なサイレンシングのためと分析をイムノブロッティングによりノックダウンBRCA2タンパク質の迅速かつ成功した検出のために最適化されたプロトコルを報告しています。

<table><tbody><tr><td>BRCA2 siRNA</td><td>ダルマコン</td><td>L-003462-00</td><td>スマートプール: ON-TARGETplus BRCA2 siRNA</td></tr><tr><td>Ctrl siRNA</td><td>ダルマコン</td><td>&nbsp;D-001810-10-05</td><td>ON-TARGETplus ノンターゲティングプール</td></tr><tr><td>リポフェクタミンRNAiMAX試薬&nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td><a href="http://www.lifetechnologies.com/order/catalog/product/13778075">13778075</a></td><td>トランスフェクション試薬</td></tr><tr><td>OPTI-MEM I 還元血清 ミディアム</td><td>ライフテクノロジー</td><td>ズ 31985-070</td><td>トランスフェクション処置用培地</td></tr><tr><td>NuPAGE トリス-アセテート 3-8% 1,5 mm ゲル プレキャスト</td><td>ライフテクノロジー</td>ズ <td>EA0378</td><td>タンパク質電気泳動用ゲル</td></tr><tr><td>NuPAGE LDSサンプルバッファ&nbsp;</td><td>ライフテクノロジー</td>ズ <td>NP0007</td><td>タンパク質電気泳動用試薬</td></tr><tr><td>NuPAGEサンプル還元剤 (10x)</td><td>ライフサイエンス</td><td>NP0004</td><td>タンパク質電気泳動用試薬</td></tr><tr><td>NuPAGE抗酸化</td>剤 <td>ライフテクノロジー</td><td>ズ NP0005</td><td>タンパク質電気泳動用試薬</td></tr><tr><td>HiMark 染色済みタンパク質標準品</td><td>ライフテクノロジー</td><td>ズ LC5699</td><td>ゲル用染色マーカー電気泳動</td></tr><tr><td>XCell SureLoc Mini-Cell&nbsp;システム</td><td>ライフテクノロジー</td>ズ <td>EI0002</td><td>蛋白質電気泳動・転写装置</td></tr><tr><td>NuPAGE Tris-Acetate SDS Running Buffer</td><td>Life Technologies</td><td>LA0041</td><td>ウェスタンブロッティング用試薬</td></tr><tr><td>PVDF膜</td><td>ミリポア</td><td>IPVH00010</td><td>ウェスタンブロッティング用試薬</td></tr><tr><td>NuPAGEトランスファーバッファー</td><td>ライフテクノロジー</td>ズ <td>NP0006-1</td><td>ウェスタンブロッティング用試薬</td></tr><tr><td>BRCA2 H-300 ウサギポリクローナル抗体</td><td>Santa Cruz Biotechnology</td><td>sc-8326</td><td>1:300 希釈</td></tr><tr><td>β-チューブリンモノクローナル抗体</td><td>Sigma Aldrich</td><td>T4026-100UL</td><td>1:1,000 希釈</td></tr><tr><td>スキムミルク 粉乳</td><td>Sigma Aldrich</td><td>70166</td><td>ウェスタンブロッティング用試薬</td></tr><tr><td>Tween-20</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P1379</td><td>ウェスタンブロッティング</td></tr><tr><td>用試薬SuperSignal West Pico/Femto Chemiluminescent Substrate</td><td>Pierce Thermo Scientific</td><td>34080/34096</td><td>化学発光システム</td></tr><tr><td>PNT1A cells</td><td>SIGMA Aldrich (ECACC用)</td><td>95012614</td><td>PNT1A ヒト、正常な前立腺上皮 SV40</td></tr><tr><td>Nthy細胞</td>で不死化 <td>SIGMA Aldrich (ECACC用)</td><td>90011609</td><td>Nthy-ori 3-1 Cell Line ヒト、甲状腺濾胞上皮細胞</td></tr><tr><td>細胞増殖キットI(MTT)</td><td>Roche</td><td>11465007001</td><td>細胞増殖アッセイ用キット</td></tr></tbody></table>

のサイレンシング<em&gt; brca2</em&gt;ヒト培養細胞における新規brca2-調節される生物学的機能を同定するために、

Silencing of BRCA2 to Identify Novel BRCA2-regulated Biological Functions in Cultured Human Cells

従来の生化学的分析による腫瘍抑制タンパク質BRCA2とその検出のサイレンシングは、ヒトのBRCA2タンパク質（約390キロダルトン）のサイズが大きいために大きな技術的課題を表します。我々は、ヒト上皮細胞株において、それぞれ、ヒトのBRCA2を沈黙し、内因性BRCA2タンパク質を検出するための標準的なsiRNAトランスフェクションおよびイムノブロッティングのプロトコルの変更を報告しています。重要なステップは、トランスフェクション試薬の比が高いsiRNAを、同じ実験内のsiRNAトランスフェクションの2その後のラウンドがあります。抗BRCA2抗体を用いたイムノブロット分析によって判断されるように、我々は一貫して人間のBRCA2遺伝子の70％以上のサイレンシングを達成するための標準プロトコルへのこれらおよびその他の変更を使用しました。また、代わりに、従来の70〜100°Cおよび免疫ブロット法の他の技術的な最適化の55℃での細胞溶解物の変性は、無傷のBRCA2タンパク質の検出が可能であってもWH出発物質が非常に少量エン入手可能であるか、またはBRCA2タンパク質の発現レベルが非常に低い場合。ヒト細胞におけるBRCA2の効率的なサイレンシングは、腫瘍中の病原性BRCA2変異によって影響を受ける可能性がある新たな分子経路および細胞機能を調べるために、腫瘍細胞を含む、無傷のBRCA2と細胞内でBRCA2の機能を破壊するための貴重な戦略を提供しています。効率的なサイレンシングおよびBRCA2のような他の「大規模な」タンパク質の分析のためにこのプロトコルの適応が容易に達成する必要があります。

細胞の機能にサイレンシングBRCA2の影響を調べるために、生化学的/生物学的ア ​​ッセイに進む前に、最初のステップは、BRCA2のsiRNA（ 図1Aと並んでスクランブルsiRNA（非標的とするsiRNA）側を使用してサイレンシングの特異性を確認することです）。これは、BRCA2サイレンシングの高い効率を得るために高いのsiRNA /トランスフェクション比でsiRNAトランスフェクションの第二ラウンドを行うことが重要です。実際、siRNAトランスフェクションのいずれか一方のみのラウンドを行う以下ノックダウン効率（ 図1B）をもたらすであろう第二ラウンド（siRNAの25ピコモルおよびトランスフェクション試薬の6μL）でトランスフェクション率の低いsiRNAを用い。第二段階は、遺伝子サイレンシングの最高レベルを得るために最適な最小時間を評価することです。細胞型に依存し、これは、siRNAトランスフェクションの第二ラウンド後24及び48時間の間で変化してもよいです。例えば、24時間はNthyの甲状腺細胞には十分であるが...

siRNAによる遺伝子サイレンシングは、BRCA2依存性の生物学的機能を解析するための便利な実験戦略であり、がんの生物学をより深く理解するための即効性があります。BRCA2を効率的にサイレンシングする方法と、ヒト細胞株のイムノブロッティングによりBRCA2タンパク質の発現変化を検出・定量する実験手順について紹介します。

のサイレンシング<em&gt; BRCA2</em&gt;ヒト培養細胞における新規BRCA2-調節される生物学的機能を同定するために、

Silencing of the tumor suppressor protein BRCA2 and its detection by conventional biochemical analyses represent a great technical challenge owing to the ...

この手順の全体的な目的は、siRNA AをトランスフェクションすることによりBRCA2の発現をサイレンシングすることです。まず、siRNA Aとトランスフェクション試薬の複合体を調製します。次に、コンフルエンシーが80%に達した細胞単層に複合体を滴下し、1回目のトランスフェクションを行います。その後、siRNA Aとトランスフェクション試薬の比率を高めて、2回目のsiRNA Aトランスフェクションを実施します。最後に、細胞単層を氷冷したPBSで洗浄し、界面活性剤ベースの溶解バッファーを用いて4 °Cで細胞を溶解します。最終的に、ウェスタンブロッティング解析を用いて、タンパク質レベルでのB RCA A twoのサイレンシングを実証します。既存の手法に対するこの技術の主な利点は、効率的な遺伝子サイレンシングが可能であること、および腫瘍抑制因子B RCA twoのような高分子量タンパク質を最適に検出できることです。まず、加湿チャンバー内、37 °C、5% carbon dioxideの条件下でヒト上皮細胞単層を培養した後、培地を除去し、室温のPBSを用いて細胞を洗浄します。プレートから細胞を剥離させるため、0.25% trypsin 0.53 millimolar EDTA溶液を2 mL加え、細胞種に応じて3〜5分間インキュベートします。10% FBSを含む完全培地を2 mL加えてtrypsinを中和した後、細胞を15 mLチューブに移します。チューブをスイングバケットローターにセットし、320〜330 G、4 °Cで3分間遠心分離します。抗生物質を含まない培地5 mLを用いてペレットを再懸濁し、バーカーチャンバーまたは自動細胞計数装置で細胞数を計測します。次に、抗生物質を含まない培地2 mLに調整した約0.5〜1 × 10⁶個の細胞を6ウェルプレートの各ウェルに播種し、コンフルエンシーが80%になるまで24時間インキュベートします。インキュベーション後、脂質ベースのsiRNA特異的トランスフェクション試薬6 µLを低血清培地130 µLで希釈し、1回目のトランスフェクションを行います。10 µMのS irna 3 µLを、低血清培地130 µLで希釈します。希釈したirnaと希釈したトランスフェクション試薬を混合し、室温で5〜10分間インキュベートします。インキュベートしている間に、細胞から培地を除去し、抗生物質を含まない新鮮な培地2 mLを加えます。37 °Cで予熱します。次に、6ウェルプレートの各細胞ウェルに、siRNAトランスフェクション試薬複合体を250 µLずつ加えます。その後、5% CO2を含む37 °Cの加湿インキュベーター内で細胞をインキュベートします。24時間後、10 µM の irna 5 µL を 130 µL の低血清培地で希釈し、実演さ

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Research

JoVE Journal

Biology

生物学

我々は、RNAiを用いて細胞から内因性のBRCA1蛋白質を破壊し、コーディングの変更が含まれているBRCA1点変異体でそれを置き換えることにより、DNA損傷の相同組換え修復のためのアッセイに基づいて組織培養でのBRCA1の変異体をテストするための方法を提供する。...

内因性野生型BRCA1を発現する細胞を用いて相同組換えにBRCA1の変異の影響を識別

エストロゲンとマイクロRNAの両方を介したシグナル伝達分子は、乳がんの発展と成長において重要である。エストロゲンは転写因子であるエストロゲン受容体を活性化する。多くの転写因子は、マイクロRNAの発現を調節することができ、エストロゲン調節マイクロRNAは、異なる大規模な技術を用いてプロファイリングすることができる。...

乳癌細胞におけるエストロゲン調節マイクロRNAのプロファイリング

NGSシーケンシングのためのgDNA濃縮は、体質的突然変異の研究のための簡単で強力なツールです。この記事では、DNA損傷修復に関与する11個の遺伝子の完全な配列を簡単に解析する手順を紹介します。...

の全配列のNGS解析のためのトランスポゼースベースの技術によるgDNAのエンリッチメント BRCA1 BRCA2、およびDNA損傷修復に関与する遺伝子9

ここでは、腫瘍細胞代謝のリアルタイムモニタリングと、転移のin vivoニワトリ胚絨毛膜-尿膜(CAM)モデルを組み合わせて、腫瘍細胞をDNA損傷化学療法に感作する能力について、新規の抗がん標的/薬剤を評価するために使用されます。...

がん薬感の有効性を評価<em&gt;インビトロ</em&gt;と<em&gt;インビボ</em

前臨床試験からヒト試験に移行する新規薬物標的を特定することは、科学的な優先事項です。そのために、ここでは、遺伝子の枯渇ががん細胞株スフェロイドに与える影響を調べるための機能ゲノミクスアプローチについて説明します。これは、in...

癌細胞スフェロイド培養における潜在的に新規薬剤標的を同定するためのスクリーニング機能ゲノミクスを利用

クロマチン環境規制、適切な遺伝子発現に必要な重要なプロセスです。ここでは、クロマチン修飾の採用によって遺伝子発現を制御する手法について述べる遺伝子特異的かつ可逆的に機械。...

化学のエピジェネティックな修飾剤の細胞機械装置をリダイレクトすることによって遺伝子の転写を抑制

BRCA1突然変異を有する人々は、BRCA1変異体の機能の正確な評価を保証する癌を発症するリスクが高い。本明細書において、生細胞における標的C:GからT:A変換を可能にするCRISPR媒介シトシンベースエディタを用いたBRCA1変異体の機能評価用プロトコルについて説明した。...

CRISPR媒介ベース・エディタを用いた BRCA1 バリアントの機能評価

このプロトコルは、マイクロRNAクラスターネットワーク解析のための、規則的に間隔をあけた短い回文反復(CRISPR)遺伝子編集ワークフローをクラスター化したハイスループットのクラスター化を記述しており、1回の実験で35...

マイクロRNAクラスターネットワーク解析のためのCRISPR遺伝子編集ツール

ここでは、高い、長期にわたる、安定したオンターゲットサイレンシング効率と、低いゲノムワイドなオフターゲット活性を持つ、遺伝子操作された転写抑制因子(ETR)の in vitro...

イン・ビトロ 標的エピジェネティックサイレンシングのための遺伝子操作転写リプレッサーの選択

この研究では、黒色腫細胞の長いノンコーディングRNAを標的とするデュアルCRISPRiシステムを示しています。これは、組み合わせ遺伝子ノックダウンと合成致死スクリーニングを可能にし、潜在的な治療戦略のためのがん特異的なlncRNA相互作用を特定します。...

がん細胞のノンコーディングRNA間の合成致死的相互作用を標的とするためのデュアルCRISPR干渉戦略

学ぶBRCA2遺伝子サイレンシング法。siRNAトランスフェクションとウェスタンブロッティングを用いてヒト培養細胞でBRCA2発現を効率的に抑制し、タンパク質レベルを解析する技術です。がん生物学研究に有用です。

のサイレンシング

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