Name: テタヌス刺激による局所CA1γ振動の発生 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-08-14T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 2 s
Description: 学ぶ テタヌス刺激による海馬CA1γ振動の記録法。脳切片を用いて神経興奮性を評価し、薬物効果や神経疾患の病態メカニズムを解明する実験手法です。

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APAからRJHへの支援、NHMRCプログラム助成金の400121 SPへの支援、およびNMHRCフェローシップ1005050 SPへの支援を受けていますFT0990628。Florey Institute of Neuroscience and Mental Healthは、ビクトリア州政府のインフラストラクチャーファンドによってサポートされています。

マウスの実験はすべてフローリー研究所動物倫理委員会によって承認されました。 脳スライスを切断するための1.セットアップ<ol><li> （MM）125コリン-Clで、2.5のKCl、0.4のCaCl 2、6のMgCl 2、1.25のNaH 2 PO 4、26 NaHCO 3で成る切削液を調製し、20 D-グルコースは、カルボゲンガス（95％O 2 -5で飽和します（MM）125のNaCl、2.5のKCl、2 CaCl 2を、2のMgCl 2、1.25のNaH 2 PO 4、26 NaHCO 3で飽和した10 D-グルコースから構成される％のCO 2）と人工脳脊髄液（aCSFの）記録液カーボゲン。冷たいそれを維持するために氷の上に切削液を配置します。 </li><li>切削液の約400 mlで凍結し、氷スラリーを生成するために解凍切断溶液100mlと一緒にブレンドします。小さ ​​なCを通る約0.5リットル/分の流量でカルボゲン（95％O 2 -5％CO 2）とバブルaliberチューブまたは焼結ガラスは、泡の安定したが、穏やかな流れを生成します。 </li><li>脳スライスが配置される上に隆起したナイロンメッシュインサートを備えた250ミリリットルのビーカーを用意します。気泡が直接スライス保持領域を破壊しないようにすること、カルボゲンで約2cmと気泡によってメッシュをカバーするためにaCSFで記入してください。これは、任意にそれらを削除しているので、もし存在する空気の泡が、ナイロンメッシュに存在しないことも重要です。これは、保持チャンバになり、室温に保たれている（20から25°C）。 </li><li>はさみの大きなペア、は​​さみ、小規模および大規模マイクロスパチュラ、鉗子の大小のペアの小さい一対解剖器具を配置し、氷の上にそれらを冷やします。アルミニウム箔の広場に氷上でビブラ組織切断ブロックを配置します。 6センチメートル濾紙、単一のエッジかみそりの刃、同様に切削液のスラリーを充填した25ミリリットルのビーカーの2枚を入手します。 </li><li>氷と第二の容器を充填し、組織PAPのピースを置きますえー、氷上で上にある12 cmの培養皿を置きます。カルボゲンで解氷スラリーと泡を切断すると培養皿を埋めます。これは、脳の解剖を行うこととした容器です。 </li><li>ビブラトームを準備します。その後、脱イオン水をその包装から（たびに新鮮なブレードを使用）、新鮮な両刃のカミソリの刃を外し、80％エタノールでスプレー。それは先細りし始める時点で3ミリリットルのプラスチック転送ピペットをカットします。これは、脳スライスを転送するために使用されます。ベンド約45°、1ml注射器に付着することによりベースで27 G針。これは、切断中のスライスを操作するために使用されます。 </li></ol> 2.脳スライスを切断<ol><li> 2％イソフルランまたは局所的に承認された方法で - マウス（P18 P16）を麻酔。誘導後、はさみの大きなペアで動物を刎ねると泡状の​​切削液のスラリーが含まれているサイズである12 cmの培養皿に頭をドロップします。スラリーを完全にするために頭を浸す必要があります急速冷却。 </li><li>一方、鼻に向かって前進皮膚および結合組織を剥離して、ヘッドの前面を持ちます。結合組織を切断する小型のはさみを使用して、下にある頭蓋を露出させます。その後、頭蓋骨と首の背側面を覆う筋肉を削除します。 </li><li>最初の大鉗子で頭蓋骨の前面を固定することによって頭蓋骨から脳を削除してから、小さなハサミ（ 図1、A1とA2のラベルカット）を使用して、大後頭孔の骨両側を介して2つの横方向のカットを行います。 <ol><li>目の間に別のカット（ブレグマのちょうど前方）（ 図1、カットラベル付けB）を注意深く前方矢状縫合に沿って切断を行い、脳（ 図1、カットラベルされたC）を明らかにカット頭蓋骨のセクションを反映しています。 </li><li>培養皿に脳と場所をかき出すために小さなへらを使用してください。 CRANの点に注意してください。切断する必要がある脳の下面にIAL神経が、これはより小さなサイズのマイクロスパチュラを使用して行うことができます。大きいヘラを使用すると、切削液のスラリーを充填した25ミリリットルのビーカーに脳を転送します。 </li></ol></li><li>スライス用の脳半球の準備。 <ol><li>その後、新鮮な切削液のスラリー及び泡でいっぱいに新鮮な培養皿の底6センチろ紙の一枚を置きます。濾紙上に、脳、腹側を下に配置するために、より大きなヘラを使用してください。新しく、清掃単一のエッジかみそりの刃を取り、2つの半球に脳を分離するために、中間線に沿ってカットを行い、その後、小脳を除去するために、脳をカット。 </li></ol></li><li>ビブラ組織ブロックを準備します。 <ol><li> 、チルドビブラトーム組織ブロックを取り、表面を乾燥し、中間にシアノアクリレート接着剤の滴を配置し、脳のおおよその大きさに均一に広がります。のいずれかを操作するために、小さなヘラを使用して大きなマイクロスパチュラ上に脳半球の脳の内側がダウンしているようにします。 </li><li>可能な限り解決策をできるだけ多く除去するために、ろ紙2枚目の脳の界面にへらの端をタッチします。のりにそれを導くために小さいスパチュラを使用して、より大きなへらから脳をスライドさせます。 </li><li>脳が完全に浸漬されることを保証、ビブラトーム室に切断ブロックを確保し、切削液のスラリーや気泡を持つチャンバーを埋めます。脳の腹側がブレードに直面しているように、切断ブロックを回転させます。 </li></ol></li><li>脳スライス。 注：各ビブラトームので、製造元の指示に従って独特です。 <ol><li> 450ミクロンにスライス厚を設定し、それは約0.3ミリメートル/秒の速度で脳内を移動するようにブレードが振動していることを確認します。皮質表面に腹側から脳を介して完全にカットし、これは、bはでき全脳矢状スライスを生成します電気生理学的記録のために使用される電子。スライスは、内側に横方向に生成されると、典型的には3から4のスライスは、各半球から切断することができます。 </li><li>スライスリフトのベースはバックダウン穏やかなプレスにスライスを曲がった27 G針を使用する場合。各スライスを切断するように、彼らは、最大8時間のために実行可能である収容室にプラットフォームの上に移動するには、転送ピペットを使用しています。 </li></ol></li></ol> 3.細胞外電気生理学レコーディング<ol><li>記録チャンバー内のスライスをマウントします。 <ol><li> 2 ml /分および32℃に加熱 - トランスファーピペットを用いて、aCSFのは1で流れるで灌流沈め記録室に脳スライスを配置します。のMg 2+濃度は4 mMの2ミリモルから増加される。レコーディングに使用するaCSFのは、保持チャンバ内のものとは異なります</li><li> （ - 3 mmの間隔2で張らナイロンストランドを有する半円形のステンレス鋼）「ハープ」でスライスを固定します。場所ハープストランドはCA1に平行に走るようにします。 32℃で10 ml /分 - 8に灌流の速度を上げます。 </li></ol></li><li> CA1（ 図2A）の放線状層の表面上に、解剖顕微鏡下に置く刺激電極と記録電極（ガラス電極は、aCSFの記録液が充填されました）。記録電極を配置し、最初の刺激電極を配置します。 </li><li>シェーファーは120と担保刺激- 150μAの振幅と0.1ミリ秒の持続時間の試験パルスとスライス健康（ 図2B）を決定するために、得られたフィールド興奮性シナプス後電位（のfEPSP）の波形を観察します。のfEPSPが小さい繊維ボレーと大きな振幅で記録を取得するために100μmのスライス面から - 刺激と記録電極は、約50スライスに移動する必要があるかもしれません。シャファー側枝はfEPSPsはステレオタイプであり、スライス健康の良い指標を提供誘発しました。 Healthyスライスは、典型的には0.3未満ののfEPSP振幅比に繊維ボレーを示します。 </li><li>電極の再配置。 <ol><li>解剖顕微鏡を使用して、階層oriensの真ん中に刺激電極を移動し、 図3Aに示すように、できるだけ記録電極の近くに錐体細胞層に記録電極を移動させます。 120のfEPSP応答振幅ように100ミクロン - - 150μAテストパルスは、約1 mVである。刺激と記録電極は、スライスを約50に押し込むことが必要になることがあり</li></ol></li><li> γ振動を発生させます。 <ol><li> γ振動を生成するには、200 Hzで配信さ20×0.1ミリ秒パルスの列で組織を刺激します。 5分ごとに送達された場合、この強縮刺激は、再現性のある反応を得ることができます。 </li></ol></li><li>次の記録パラメータを使用してください。 <ol><li>の入力電圧範囲と一致するように出力信号の利得をスケールアナログ·デジタル変換器。予想される最大信号エクスカーションが、入力電圧範囲の30％の最小値を使用していることを確認します。信号がクリップする可能性があります高いようにゲインを設定するときは注意してください。フィールド·レコーディングのために必要な典型的な帯域幅は、ベースラインのドリフトを除去するために0.1 HzのACカップリングと500 Hzです。 </li><li>信号エイリアシングを回避するために、ローパスフィルタのコーナー周波数よりも速く5倍 - 少なくとも4をデジタル化。 </li></ol></li><li>データ分析。 <ol><li> 5 Hzのハイパスフィルタデータは、任意のベースラインシフトを除去しました。 10ミリ秒の最小イベント分離、ピークと7ミリの回帰間隔、〜100 mVの/秒のしきい値にする典型的なイベント時間、および100％の分離谷で、デリバティブのしきい値を使用してスパイクを識別します。刺激アーチファクトの終了後に発生する最初に同定されたスパイクに要した時間と待ち時間を計算します。この分析は、スパイク、待ち時間、イベント間の時間間隔の数の特徴付けを可能にし、そして持続時間は、のように計算します次のとおりです。 </li><li>各スイープ用発振あたりのスパイクの総数が決定されるスパイクの数を計算します。 </li><li>発振待ち時間を計算します。それぞれの発振に、刺激アーチファクトの終了から最初に同定スパイクの時間を減算します。 </li><li>平均イベント間間隔（ISI）を計算します。複数の検出スパイクと平均との間の時間を決定します。 </li><li>発振期間を計算します。各振動内の最初と最後の検出スパイク間の時間を測定します。 </li></ol></li></ol>

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</ol>

著者らは、開示することは何もありません。

急性脳スライスにおけるCA1のγ振動を生成するための堅牢な方法が記載されています。生成された振動が制御し、ネットワーク振動12の神経生理学的基礎を理解するためのより良い機会を可能にするローカル回路から生じます。 AMPA受容体、GABA A受容体は、I HとT型Ca 2+チャネルはすべて、このモデルにおけるγ振動のために必要とされます。ここで説明するローカルCA1の振動が確実に発生させることができるが、これは、脳スライスが健康であることを確実にすることに依存しています。重要なステップは、氷冷溶液中で除去した後、急速に浸漬中に脳に浸透しないように注意しながら、頭蓋骨から脳を迅速に除去することです。スライス健康21を維持するために60秒-理想的には頭蓋骨から断頭し、脳の除去との間の時間はない30以上である必要があります。 テタヌス刺激を使用して、ローカルのCA1γ振動はすることができます薬剤に依存せずに、標準的な生理学的記録溶液中で生成されました。これは、薬剤の添加は解釈を混乱...

脳のネットワーク振動が行動状態に相関異なった周波数帯域内で発生します。げっ歯類では、海馬θ振動（5から10 Hz）は、探索行動1,2の間に観察されたγ振動しながら-知覚と注意3,4を含むさまざまな認知過程、と（20〜80 Hz）と関連付けます。同期γのネットワーク活動はまた、てんかんや統合失調症5,6のような障害の病態に関与しています。例えば、γ振動が皮質てんかん焦点5,7,8の領域に対応すると考えられているとpharmacosensitivityや抵抗、てんかん研究9における調査の二つの重要な領域のマーカーとして使用することができます。 海馬脳スライスは、広くネットワーク活動10-12を調査するために使用されているモデルです。様々なプロトコルは、典型的には、I脳切片におけるγ振動を発生させるために開発されていますこのような低Mg 2+を 、4-アミノピリジン（4AP）、ビククリン、およびカイニン酸12-17としてnvolve薬理学的調節。薬理学的に引き起こさ振動の欠点は、それらが薬物適用後にランダムに発生し、確実に生成されるか、または経時的に安定していないということです。電気的γ振動は、これらの問題の多くを克服し、また時間的にエピソードの記録および分析を可能にする刺激イベントにロックされるという利点を有するトリガー。ここで、プロトコルは、海馬スライスにおける階層oriensにテタヌス刺激を提供することにより、CA1のγ振動を発生させるために記載されています。

<table><tbody><tr><td>4-(N-エチル-N-フェニルアミノ)-1,2-ジメチル-6-(メチルアミノ)ピリミジニウムクロリド(ZD7288)</td><td>シグマ-アルドリッチ</td><td>Z3777</td><td></td></tr><tr><td>ビウクリン</td><td>シグマアルドリッチ</td><td>14340</td><td></td></tr><tr><td>6-シアノ-7-ニトロキノキサ-ライン-2,3-ジオン(CNQX)</td><td>シグマ-アルドリッチ</td><td>C127</td><td></td></tr><tr><td>ニッケル</td><td>シグマ-アルドリッチ</td><td>266965</td><td></td></tr><tr><td>カルバマゼピン</td><td>シグマアルドリッチ</td><td>C4024</td><td></td></tr><tr><td>(2R)-アミノ-5-ホスホノペンタノ酸 (APV)</td><td>Tocris Bioscience</td><td>0105</td><td></td></tr><tr><td>レチガビン</td><td>ChemPacific</td><td>150812-12-7</td><td></td></tr><tr><td>Choline-Cl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C1879-5KG</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P9333-500G</td><td></td></tr><tr><td>NaH2PO4</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S9638-250G</td><td></td></tr><tr><td>NaHCO3</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S6297-250G</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S7653-5KG</td><td></td></tr><tr><td>Glucose</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G8270-1KG</td><td></td></tr><tr><td>CaCl2 & bull; 2H2O</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>223506-500G</td><td></td></tr><tr><td>MgCl2 &雄牛;6H2O</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M2670-500G</td><td></td></tr><tr><td>電極ガラス</td><td>ハーバード製装置&nbsp;</td><td>GC150F-10</td><td></td></tr><tr><td>同心円状バイポーラ刺激金属電極&nbsp;</td><td>FHC</td><td>CBBPF75</td><td></td></tr><tr><td>デジタルアイソレータ</td><td>機器取得</td><td>モデル BJN8-9V1&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>モデル1800アンプ</td><td>AMシステム</td><td>モデル1800アンプ</td><td></td></tr>デ<tr><td>ジタイザーナショナル</td><td>インストゥルメント</td><td>NI USB-6211</td><td></td></tr><tr><td>振動ライ</td><td>カ</td><td>VT1200s</td><td></td></tr></tbody></table>

テタヌス刺激による局所ca1γ振動の発生

Generation of Local CA1 &#947; Oscillations by Tetanic Stimulation

神経回路網の振動は、健康と疾患における脳活動の重要な特徴であり、臨床的に使用される薬物の範囲によって調節することができます。 （ - 80ヘルツ20）プロトコルはCA1のγ振動を研究するためのモデルを生成するために設けられています。これらのγ振動は、少なくとも30分間安定しており、ペースメーカー電流の活性化に加えて、興奮性と抑制性シナプス活性に依存します。 Tetanically刺激振動は、ネットワーク状態に報告スパイク·カウント、発振期間、待ち時間および周波数を含む再現性、容易に定量化可能な特性の数を持っています。電気的に刺激振動の利点は、安定性、再現性とネットワーク機能の強固な特性評価を可能にするエピソードの取得を含みます。 CA1のγ振動のこのモデルは、細胞メカニズムを研究し、体系的疾患および薬物によって変更される方法を神経回路網の活動を調査するために使用することができます。疾患状態の薬理学を容易に特に病気のメカニズムを標的とする薬剤の選択を可能にするように遺伝的に改変された、または介入の動物モデルからの脳切片を使用して組み込むことができます。

地層oriensのテタヌス刺激は（35.4±2.2 Hz）で、堅牢で再現性のγ振動を生成し、 図3Bを参照してください。振動はCA3からの入力が屈曲32 G針を用いCA2領域のスライ​​スを切断することによって切断されたCA1ローカルネットワーク内で生成されたことを実証するために。振動が局所的に生成されていることを示し、カットスライスの振動特性は、切断されていないスライス（切断されていないスライス5.89±0.8スパイク、N = 6;±1.1 6.16スライスをカットスパイク、N = 6、P = 0.85）と差がなかったです。 この方法の重要な利点は、記録の安定性です。破傷風は、5分間隔で送達されたときに振動が（15分対30分のスパイクの数についてp = 0.26）は、任意の所与のスライスのために少なくとも30分間安定でした。振動およびその他のパラメータの中のスパイクの総数のスライス間のばらつきがあります。 Dのためのベースライン特性の差は軽微な要因であるように、実験対のラグ研究を行うことができます。イントラスライスの比較のために変動が懸念されるこ...

振動は、基本的なネットワークのプロパティであり、病気や薬物によって調節されます。脳スライス振動を研究することは、制御された条件下で分離されたネットワークの特徴付けを可能にします。プロトコルはCA1のγ振動を誘発するための急性脳切片の調製のために提供されます。

テタヌス刺激による局所CA1γ振動の発生

Neuronal network oscillations are important features of brain activity in health and disease and can be modulated by a range of clinically used drugs. A ...

本手順の目的は、神経興奮性のモデルとして細胞外ガンマ振動を記録するための脳切片を調製することです。まず、頭蓋骨から脳を取り出します。次に、脳を人工脳脊髄液（A CSF）の氷中で急速に冷却し、450 micronの厚さに切片化します。次に、スライスを記録室に転送し、刺激電極をstratumに、記録電極をca one stratum parama dooleに配置します。最後のステップは、ガンマ振動を誘発し、薬剤が神経興奮性に及ぼす影響を評価することです。最終的に、海馬のガンマ振動の特性評価は、ネットワーク機能に対する薬剤の効果を示すため、または神経遺伝性疾患における疾患発生のメカニズムを理解するために利用されます。この手法は、てんかん、自閉症、アルツハイマー病など、神経ネットワークの興奮性が亢進する疾患のメカニズムに関する知見を得るために利用でき、また薬物の作用機序の研究にも利用可能です。この手順を開始するには、250 milliliterのビーカーに底上げされたナイロンメッシュを挿入し、保持チャンバーを作製します。次に、メッシュを約2 centimeters覆うまでビーカーにCSFを満たし、室温でカーボゲンをバブリングします。気泡がスライス保持エリアを直接妨げないようにしてください。次に、大型のハサミ、小型のハサミ、小型および大型のマイクロスパチュラ、ならびに小型および大型のピンセットを含む解剖器具を氷上に置きます。冷却したVibram組織切断ブロックを、氷上のアルミホイルの上に置きます。修理後、6 cmのフィルターペーパー2枚、片刃カミソリ、および切断用溶液のスラリーを満たした25 mLビーカーを用意します。次に、脳の解剖用に2つ目の容器に氷を満たします。氷の上にティッシュペーパーを敷き、その上に12 cmの培養皿を置きます。続いて、培養皿にカッティングソリューションの氷冷スラリーを満たし、カルボゲンでバブリングします。この手順では、小鋏を用いて鼻方向に向かって頭部の皮膚と結合組織を剥離し、結合組織を切除して下層の頭蓋骨を露出させます。その後、頭蓋骨の背面および頸部の表面を覆っている筋肉を除去します。脳を取り出すため、大きな鉗子で頭蓋骨の前方を固定します。次に、remとmagnumの両側の骨に沿って、外側に2箇所の切開を加えます。その後、bgmaの直前、両眼の間をさらに切開します。矢状縫合に沿って慎重に切開し、頭蓋骨の切断片を反転させて脳を露出させます。次に、小型のスパチュラを用いて、脳神経を切断することに注意しながら脳を掻き出します。取り出した脳を培養皿に入れます。その後、脳をカッティング溶液スラリーを満たした25 milliliterのビーカーに移します。脳半球をスライスするための準備として、培養皿の底に6 centimeterのフィルターペーパーを敷きます。次に、新鮮なカッティング溶液スラリーを満たし、carでバブリングします。続いて、脳の腹側を下にしてフィルターペーパーの上に置きます。次に、新しく洗浄した片刃カミソリで小脳を取り除きます。正中線に沿って切開し、2つの半球を分離します。Vibram組織ブロックを調製するために、冷却したVibram組織切断プラットフォームの表面を乾燥させます。Sano ACRL接着剤を中央に1滴滴下し、脳のおおよその大きさに合わせて均一に広げます。小型スパチュラを用いて、片側の半球を大型マイクロスパチュラ上に移し、脳の内側が下を向くように配置します。フィルターペーパーを用いて、脳の溶液を可能な限り吸収させます。次に、脳を大きなスパチュラから滑らせ、小さなスパチュラを使って接着剤の上に誘導します。その後、切断プラットフォームをVibramチャンバーに固定します。切断用溶液のスラリーでチャンバーを満たし、脳を完全に覆った後、カルボゲンで溶液にバブリングさせます。次に、脳の腹側がブレードに向くように切断プラットフォームを回転させます。脳を450 µmの厚さでスライスし、腹側から背側に向かって切断することで、電気生理学的記録用の全脳矢状切片を作成します。スライスの底部が浮き上がった場合は、曲げた27ゲージの針を使用して、スライスを軽く押し下げます。その後、ピペットを用いてスライスを保持チャンバーに移動させます。通常、各半球から3～4枚の海馬Campbellスライスを切り出し、記録チャンバーにマウントすることが可能です。1～2 mL/minで流動し、32 °Cに加熱されたCSFで灌流される浸漬記録室に脳スライスを配置します。記録に使用するCSFは、マグネシウム濃度を2 mMから4 mMに高めているため、保持室で使用するものとは異なります。半円形のステンレス製ウェイトを、そのストランドが海馬CA1領域と平行になるように配置し、スライスを固定します。その後、灌流速度を32 °Cで8〜10 mL/minに上げます。解剖顕微鏡を用いて、刺激電極をstratum orientsの中央に移動させます。次に、記録電極を刺激電極にできるだけ近づけてparameter layerに移動させます。続いて、刺激電極と記録電極の両方をスライスの中に50〜100 µmまで下げます。ガンマ振動を誘発するために、120〜150 µAのテストパルスに対して1 mVのフィールドEPSPを発生させるには、0.1 msのパルスを200 Hzで20回連続して組織に刺激します。このテタニック刺激は、5分ごとに与えることで再現性のある反応を得ることができます。この概略図は、CA1領域のstratum oriensにおける刺激電極と、stratum pyramidaleにおける記録電極の位置を示しています。そして、ここでは強刺激によって誘発されたガンマ振動の例を示します。この図は、20 µMのCNQXによるAMPA受容体の薬理学的遮断、20 µMのBicucullineによるGABAA受容体の遮断、20 µMのPicrotoxinによる$I_H$電流およびT型カルシウムチャネルの遮断を示しています。100 µMのニッケルを用いれば、各薬剤は独立してスパイク発生数を減少させることができました。この調製法は、薬剤のネットワークスケールでの作用を決定するのに最適です。Tineは、カリウムチャネルを開口させて膜興奮性を低下させる、臨床的に使用されている抗てんかん薬です。tineの投与により、振動期間中のスパイク数に用量依存的な減少が認められました。本手順に従い、脳切片の作製と電気生理学的記録のための解剖に習熟すれば、約10分で完了させることができます。さらに、ホールセルパッチクランプ記録などの他の手法を組み合わせることで、薬剤投与後および疾患時におけるネットワーク内での個々のニューロンの役割を理解することが可能です。

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

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学ぶ テタヌス刺激による海馬CA1γ振動の記録法。脳切片を用いて神経興奮性を評価し、薬物効果や神経疾患の病態メカニズムを解明する実験手法です。

テタヌス刺激による局所CA1γ振動の発生

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