Name: T細胞は、樹状細胞からTransinfectionによって細菌をキャプチャ (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-01-13T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 39 s
Description: 学ぶ細菌のCD4+T細胞トランスインフェクション定量法。マウス細胞モデルを用いて、樹状細胞からの細菌キャプチャと殺菌効率を評価する免疫学的プロトコルです。

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この作業は、スペイン科学イノベーション省からの助成金BFU2011-29450、BFU2008-04342/BMC、およびConsejo Superior de Investigaciones Cientìficas（CSIC）からのPIES201020I046によって支援されました。

注意：実験手順は、大学自治・デ・マドリッドの研究倫理委員会によって承認され、スペイン語、欧州のガイドラインに従って動物福祉と健康の大学自治・デ・マドリードヘッドの監督の下で行われました。マウスは、特定病原体不在（SPF）は、ハウジングで飼育され、それらは、二酸化炭素（CO 2）吸入法を用いて、訓練を受けた有資格者により安楽死させました。 1.マウスの骨髄由来DC分化および感染注： 図1は、この最初のステップをまとめたものです。すべての手順は、メディア、楽器、ピペットチップ及び培養皿だけ滅菌を使用して、この時点からフード内で行われるべきです。 <ol><li>マウス骨髄由来DCの分化<ol><li> 1 C57 / BL6 マウス 22から脛骨と大腿骨を解剖し、RPMI培地10mlでプラスチックの皿に移します。 </lI&gt; <li>滅菌はさみで、各骨端をカットし、特徴的な赤の鮮やかな色をしている骨髄を、公開しています。 </li><li>滅菌ペトリに無菌注射器を用いて0.5％ウシ血清アルブミン（BSA）および5mMエチレンジアミン四酢酸（EDTA）（PBS / BSA / EDTA緩衝液）を含有するリン酸緩衝生理食塩水（PBS）10mlで骨の内部に吹き込みます皿。 </li><li>冷却遠心機（4℃）で600×gでチューブ中の細胞懸濁液と遠心分離機を収集します。 </li><li>塩化アンモニウム-カリウム（ACK）溶解緩衝液（0.15 M NH 4 Clを 、10mMのKHCO 3および0.1mM EDTA）を1mlで細胞を再懸濁し、赤血球を除去するために室温で30秒間インキュベートします。 </li><li>塊は、濾過により除去されたので、同じ速度（600×gで）で遠心分離する前に、骨片および細胞塊を除去するために、セルストレーナー（70ミクロン）を介して、10％ウシ胎児血清（FBS）を含むRPMI 1640培地10mlを加え、濾過します。 </li><li>細胞をカウントし、AND RPMI 10％FBS（50μMのβ-メルカプトエタノールを含有し、1mMピルビン酸ナトリウム）、5×10 5細胞/ mlに調整し、20 ngの/ mlの組換えマウス顆粒球-マクロファージコロニー刺激因子（RM-GM-CSF）を追加最終濃度として。 </li><li> CO 2インキュベーター中で、滅菌、微生物学的品質、15 cmでペトリ皿、培養にこの懸濁液を加える（37℃、5％CO 2）。 </li><li> 3日ごとに、20 ng / mlでRM-GM-CSFを含有する新鮮な培地で、細胞密度を5×10 5細胞/ mlで、非接着細胞およびPBS中の5mM EDTAで剥離した細胞を再懸濁両方をスピンダウン。 </li></ol></li><li> DCおよび抗原負荷の成熟<ol><li> 9日目に、20 ngの/ mlのRM-GM-CSFを含有する培地中濃度の5×10 5細胞/ mlで細胞を再懸濁。その後、細胞に高MHC-IIの発現を可能にし、24時間非組織培養処理滅菌15センチメートルペトリ皿にインキュベートすることを20ng /リポポリサッカライド（LPS）のミリリットルを追加します。 </li><li> 1の後LPS刺激の日は、フローサイトメトリーによってDCの分化を確認するために、マウスのCD11c、MHCIIおよびGR-1に対する抗体で、いくつかのDC細胞を染色します。 DCのフローサイトメトリー分析の例を図3A及び 3Bに示されています。 <ol><li>サンプルあたり50μlのPBS / BSA / EDTA緩衝液中の最終濃度2.5μgの/ mlの抗マウスCD16 / CD32モノクローナル抗体を用いたDC（5×10 5細胞 /サンプル）をインキュベートします。それぞれPBS / BSA / EDTA緩衝液で500：100：1：200および1その後、1で異なる蛍光色素とコンジュゲートMHCII（IA / IE）、のCD11cおよびGR-1に対する抗体の50μlを添加します。 </li><li>最後に、PBS / BSA / EDTAバッファーでDCを洗浄し、製造業者のプロトコールに従って、フローサイトメトリーによって分析します。 注：細胞が十分に分化している場合は、細胞が抗原負荷の準備ができています。 </li></ol></li><li>ウォッシュ（抗生物質を含まない）RPMI、10％FBSを含む樹状細胞および10μg/ mlのOTII OVAp（OVA 323-339でそれらをインキュベート; ISQA37ºCで最小1時間、5×10 6のDCあたりRMPI 10％FBS培地1ml中のプラスチックチューブにVHAAHAEINEAGR）。陰性対照として、OVApとインキュベートすることなく、DCを残します。 </li></ol></li><li> DCの感染<ol><li> CO 2インキュベーター（37℃、5％CO 2）で1時間10細菌（DCあたり10細菌）の感染多重度（MOI）での樹状細胞に感染します。 </li><li>ウォッシュDC細胞は、細胞外細菌の大部分を洗浄するためにRMPI、10％FBSおよび450×gで遠心分離にPBSおよび1倍で3倍。最後に、20×10 6細胞/ mlで（抗生物質を含まない）RMPI 10％FBS培地中で細胞を再懸濁し。 </li></ol></li></ol> OTIIトランスジェニックマウスからのCD4 + Tリンパ球の2の単離注： 図1は、この第二段階をまとめたものです。リンパ節は、リンパ節におけるCD4 +リンパ球の割合ので、CD4 + T細胞を単離する代わりに脾臓を使用すべきですS（〜50％）、脾臓（〜25％）よりも大きいので、精製はより有効であろう。 <ol><li>リンパ節の単一細胞懸濁液を作製<ol><li> OTIIトランスジェニックマウスから23ノード鼠径部、腋窩、上腕、子宮頸部および腸間膜リンパを削除し、RPMI、10％FBS培地10mlでプラスチックの皿に移します。 </li><li> 2つや消し顕微鏡スライドを使用して無菌フード下のリンパ節を挽きます。 1顕微鏡スライドのつや消し側のリンパ節を置き、臓器がグラウンドされるまで、第2のスライドのつや消し側でこすります。 </li><li> PBS / BSA / EDTA緩衝液中の単一細胞懸濁液を洗​​ってください。 </li><li>セルストレーナー（70μm）は、結合組織を除去し、PBS / BSA / EDTA緩衝液で洗浄するためにかかわらず、細胞をフィルタリングします。 </li><li> ACK溶解緩衝液1ml中に細胞を再懸濁し、赤血球を除去するために室温で1分間インキュベートします。 </li></ol></li><li> CD4 + T細胞の単離<ol><li>ステップ2.1.3カウントのように再び洗浄し細胞を、PBS / BSA / EDTA緩衝液中の100×10 6細胞/ mlで再懸濁します。 CD4 + T細胞の後の負の選択のために氷上で30分間、250：CD8、IgM抗体、B220、CD19、MHCクラスII（I-AB）、のCD11b、CD11cの1でDX5に対するビオチン化抗体を追加します。 </li><li> PBS / BSA / EDTA緩衝液中で細胞を洗浄し、氷上で15分間、製造業者のプロトコールで推奨濃度でストレプトアビジンマイクロビーズを用いた細胞（100×10 6細胞/ ml）をインキュベートします。 </li><li> PBS / BSA / EDTA緩衝液中で細胞を洗浄し、CD4 + T細胞の単離の前に細胞ストレーナー（30ミクロン）かかわらず、それらをフィルタリングします。 </li><li>製造業者のプロトコルに従って、磁気細胞分離機を用いて陰性選択によってCD4 + T細胞を単離します。 </li><li>細胞をカウントし、（抗生物質を含まない）RPMI、10％FBS培地に4×10 6細胞/ mlに調整します。 </li><li>流れにより純度を確認して修正し、氷単離したCD4 + T細胞 （3×10 5細胞 ）を続けますサイトメーター24を説明します。 CD4 + T細胞の精製の ​​一例は、図3Cに示されています。 </li></ol></li></ol>ゲンタマイシン保護アッセイ3. T細胞Transinfection測定注： 図2は、プロトコルのこの第三の工程をまとめたものです。 <ol><li> T細胞Transinfection <ol><li> CO 2インキュベーター（37℃、5％における免疫シナプス形成を可能にするために30分間（DCを1時間感染させ、自由な細菌を除去するために洗浄した）感染したDC細胞（1）を有する単離されたCD4 + T細胞をインキュベートCO 2）。 </li><li>追加単離されたCD4 + T細胞（2×10 6細胞）を、24ウェル培養プレートに感染したDC（2×10 6細胞 ）を0.1mlの0.5 mlです。陰性対照として、30分間、10細菌のMOIで直接0.5 mlのCD4 + T細胞に感染します。 </li><li>使用したT細胞から感染したDCを分離する追加のコントロールを含めますDC-Tの物理的接触を妨げる（孔径3ミクロンを有する）ポリカーボネートトランスウェル障壁。ウェル（24ウェルプレート）の下の区画に0.1トランスウェル内部のDC mlのCD4 + T細胞の0.5ミリリットルを追加します。 </li><li>最後に、RMPI培地で完全に全てのサンプルにおいて同等のボリュームを作成する各ウェルの0.6ミリリットルがあるまで。 </li><li>免疫シナプス形成の30分後、ゲンタマイシン100μg/ mlを添加し、CO 2インキュベーター中で細胞を収集する前に1時間インキュベート（37℃、5％CO 2）。 </li></ol></li><li>再分離CD4 + T細胞の<ol><li>非接着細胞を収集し、PBS / BSA / EDTA緩衝液で再懸濁します。 DCの大部分は、プラスチック培養皿に付着したままです。ボルテックスチューブを静かに細胞分解を確実にします。ゲンタマイシンがうまく働いていることを示すためのコントロールとして細胞上清500μlのを保管してください。 </li><li>ステップ2.2と一緒にDCおよびT細胞を含む試料からCD4 + T細胞を再単離します、が、DCのほとんどがプレートに付着している必要があります。氷の上にコントロールサンプルを保管してください。アカウントに2％未満の汚染との唯一の実験を行ってください。 transinfection後のCD4 + T細胞の精製の ​​一例が図3Dに示されています。 </li></ol></li><li>溶解性T細胞および細菌中寒天プレート上でそれらをシード。 <ol><li> PBSで2回洗浄CD4 + T細胞。 </li><li>細胞をカウントし、PBS中で2×10 6細胞/ mlで再懸濁。 </li><li> T細胞からの細胞内細菌を放出する、1×10 6細胞/ mlで、それらを溶解するT細胞を500μlの0.1％トリトンX-100の500μLを加えます。 </li><li>溶解した細胞の3連続小数の希釈を行い、細菌培地寒天プレート上で各希釈液50μlをシード。 4の部分に板を分割し、各部分に溶解した細胞の異なる希釈をシード。代表的な結果を図4に示します 。 <ol><li>対照として、またプレートゲンタマイシンがうまく働いていることを確認するために、寒天のコンジュゲートの細胞上清を保管していました。また、追加の対照として、感染したDCをプレート。ケースでは、低DCの汚染は（&lt;2％）、低直流汚染に対応するコロニー形成単位（CFUの）を引く起こります。 </li></ol></li></ol></li></ol>フローサイトメトリーによるT細胞Transinfection 4.定量注： 図2は、この手順をまとめたものです。 <ol><li> T細胞Transinfection <ol><li>ステップ1.3のようにのBMDCに感染するが、この場合には、GFP発現する細菌を使用しています。 </li><li>製造業者のプロトコルに従って、37℃で30分間、細胞トラッカークロロメチルアミノクマリン（CMAC）と（ステップ2.2でリンパ節から単離された）ステインCD4 + T細胞ºC。 </li><li>二回（抗生物質を含まない）RMPI 10％のFBSで標識されたCD4 + T細胞を洗浄します。 </li><li>感染した樹状細胞をインキュベートし、標識CD4 +と（細菌と1時間のインキュベーション後）30分間のT細胞は、ステップ3.1.1で説明するすべてのコントロールを含む37ºCで免疫シナプスの形成を可能にします。 </li></ol></li><li>感染CD4 + T細胞の染色<ol><li> DC-T免疫シナプス形成の30分後、細胞を回収し、PBS / BSA / EDTAでそれらを洗浄。 </li><li> PBS / BSA / EDTA緩衝液、静かにチューブをボルテックスすることにより独立した凝集細胞で2回洗浄した後。 </li><li>室温で15分間、3％PFAを含むPBSを0.2ml /チューブでサンプルを修正しました。その後、PBSでそれらを洗ってください。 </li><li>樹状細胞のFc受容体をブロックするために、氷上で15分間、PBS / BSA / EDTAを50μl/サンプル中の抗マウスCD16 / CD32モノクローナル抗体（2.5μgの/ ml）でインキュベートします。 </li><li>細胞外細菌を染色し、氷上で30分間50μL/ PBS / BSA / EDTAのサンプル中の抗細菌抗体（最終濃度として10 / mlの）ウサギを追加します。 </li><li> PBS / BSAは/ EDTAで細胞を洗浄し、フィコエリトリン（PE）とコンジュゲートしたマウスのCD11cに対する抗体およびSEでインキュベート氷上で30分間、PBS / BSA / EDTAを100μl/サンプル中の200：1でアレクサフルーア647のような他の蛍光色素と結合したウサギに対するcondary抗体。 </li><li>細胞を洗浄し、フローサイトメトリーによってサンプルを分析。ただ一つのサンプルを補償し、設定25フローサイトメトリーを調整するために実験で使用した各蛍光色素で標識の非蛍光細菌などネガティブコントロールとサンプルを使用してtransinfected T細胞のサンプルを含めることを忘れないでください。代表的な分析は、 図5に示されています。 注：細菌は、GFPを発現しない細胞内および細胞外細菌を区別するために、細胞外細菌をラベル、修正し、5分間PBS中の0.5％トリトンX-100を含む試料を透過した場合。その後、異なる蛍光色素で総細菌（細胞内+外）を染色します。 </li></ol></li></ol>

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著者らは開示するものは何もない。

T細胞またはTリンパ球は細胞性免疫において中心的な役割を果たし、適応免疫応答26に属している白血球の一種です。 T細胞は 、インビトロで感染されるのに不応性であるが、いくつかの報告は、それらがインビボ14,15 に感染させることができることを示しています。免疫シナプス中のAPCとT細胞の緊密な連絡先は、HIV 11のようないくつかのウイルスを含む生物学的材料13を 、交換するためのプラットフォームとして機能します。最近、教義に反して、T細胞、適応免疫の細胞のパラダイムは、さらに効率的に感染したDC 11,16からtransinfectionによって細菌を捕捉することができることが示されました。ここで我々は彼が感染したBMDCから、in vitroでのT細胞の細菌transinfectionを定量化するためのプロトコルを詳述示します。 T細胞の細菌transinfectionは、抗原...

病原体は、ホストに感染すると、細菌排除のために必要な自然免疫と適応免疫応答の活性化は、通常はあります。自然免疫は、ほとんどの感染を防ぐ防御の最前線です。自然免疫は、微生物の広範なグループの間で保存されている正確な方法要素（病原体関連分子パターン、PAMPS）1に区別します。先天性免疫機構は、食細胞（マクロファージ、好中球、および樹状細胞）、マスト細胞、好酸球、好塩基球、およびナチュラルキラー細胞を含む皮膚、化学障壁（抗菌ペプチド、リゾチーム）と先天的白血球、などの物理的障壁を含みます2。これらの細胞は、コンタクトを介して、または病原体巻き込むと殺害を含んで食作用を介してそれらを攻撃することによってのいずれか、特定して病原体を排除します。このシステムは、pに対する免疫記憶を与える適応免疫とは対照的に、生涯の防衛を許可していませんathogens。適応免疫系は、防衛の2行目で、認識し、複数の微生物および非微生物物質3の特定の抗原に反応することができます。適応免疫系の主要な構成要素は、BおよびT細胞を含むリンパ球です。 B細胞は、病原体または外来性タンパク質に対する抗体を分泌する、体液性応答に関与しています。しかし、T細胞は、サイトカイン分泌または殺す病原体に感染した細胞を4との免疫応答を調節する、細胞性免疫を表します。 主要組織適合複合体（MHC）5-7によって細胞表面に提示される抗原に貪食病原体及びプロセス細菌成分を認識することができ、樹状細胞またはマクロファージ、先天性免疫系の構成成分を含む、抗原提示細胞（APC）。 APCが病原体を貪食した後、彼らは通常、彼らはTと対話流入領域リンパ節への移行します細胞。 Tリンパ球は、そのT細胞レセプターによって特異的ペプチド-MHC複合体を認識することができます。免疫シナプス（IS）は、抗原提示8,9の間に抗原負荷APCとリンパ球との界面に発生します。いくつかの細菌は、食作用を生き残るためには、APCの内部に体系的に普及させることができます。このビューでは、感染したAPCは、細菌の貯水池や細菌の拡散10を容易に 「トロイの木馬」としての役割を果たす。 IS形成の過程で起こりAPCおよびリンパ球の間の密接な接触はまた、膜の一部の交換、遺伝物質およびエキソソームのためのプラットフォームとして機能し、T細胞を感染させるためにいくつかのウイルスのハイジャックすることができます。このプロセスはtransinfection 11-13と呼ばれています。 いくつかの病原性細菌（ リステリア菌 、 サルモネラ菌や赤痢菌）は 、in vivoでのTリンパ球に侵入し、その挙動14-16を変更することができます。我々は持っています最近、Tリンパ球は、抗原提示16の過程で以前に感染した樹状細胞（DC）からtransinfectionによって細菌を捕捉することができることを説明しました。 T細胞の直接感染より（1,000-4,000x）極めてより効果transinfectionによる細菌捕獲。 T細胞はtransinfectionはT細胞によって駆動されるプロセスよりも示す病原体及び非病原体細菌を捕捉します。驚くべきことに、細胞が急速に捕捉された細菌を殺し、プロの食細胞16よりもので、より効率的にやったT（東工大）transinfected。免疫学の定説を破るこれらの結果は、適応免疫の細胞は、先天性免疫のおそらく排他的であった機能を実行することができることを示しています。加えて、我々は、TIT細胞が前炎症性サイトカインを大量に分泌し、 インビボでの細菌感染から保護することが示されました。 ここでは、細菌transinfectionプロセスを研究するために使用される様々なプロトコルを提示マウスモデル。このモデルは、細菌に感染した骨と特異的に相互作用するI-AB 17の文脈においてOVA（OVAp）ペプチド323-339に特異的なTCRを負担OTIIトランスジェニックマウスからのCD4 + T細胞の使用に基づきますmarrow-安定した免疫シナプスを形成OVApでロード由来DC（BMDCを）18,19、。 T細胞transinfectionを可視化し、蛍光顕微鏡を使用して追跡することができます。さらに、フローサイトメトリー、緑色蛍光タンパク質（GFP）16,20を発現する細菌によって放出される蛍光を利用して、感染した細胞を検出するために使用することができます。さらに、T細胞transinfectionより敏感なアプローチ、多数のイベントの測定を可能にゲンタマイシン生存アッセイにより定量することができます。ゲンタマイシンは、真核細胞に浸透することができない抗生物質です。したがって、この抗生物質を使用して、抗生物質添加FRを生き残った細胞内細菌の分化を可能にします21を殺されたオム外のもの。

<table><tbody><tr><td>RPMI</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>SH3025501</td><td></td></tr><tr><td>r-GMCSF</td><td>Peprotech</td><td>315-03</td><td></td></tr><tr><td>LPS</td><td>SIGMA</td><td>L2630-10mg</td><td></td></tr><tr><td>Na ピルビン酸</td><td>サーモサイエンティフィック</td><td>SH3023901</td><td></td></tr><tr><td>2-ME</td><td>Gibco</td><td>31350-010</td><td></td></tr><tr><td>OVAp OTII (323&ndash;339)</td><td>ジェンスクリプト</td><td></td><td></td></tr><tr><td>セルストレーナー 70uM</td><td>BD</td><td>352350</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp;30 uM シリンジ Filcons 滅菌</td><td>BD</td><td>340598</td><td></td></tr><tr><td>AutoMacs Classic</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-088-887</td><td></td></tr><tr><td>Gentamicin</td><td>Normon</td><td>624601.6</td><td></td></tr><tr><td>Transwell</td><td>Costar</td><td>3415</td><td></td></tr><tr><td>LB</td><td>Pronadisa</td><td>1231</td><td></td></tr><tr><td>寒天</td><td>Pronadisa</td><td>1800</td><td></td></tr><tr><td>パラホルムアルデヒド 16%</td><td>電子顕微鏡科学</td><td>15710</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>CD8 biot</td><td>BD Biosciences</td><td>553029</td><td></td></tr><tr><td>IgM Biot</td><td>ImmunoStep</td><td>Clone RMM-1</td><td></td></tr><tr><td>B220 Biot</td><td>BD Biosciences</td><td>553086</td><td></td></tr><tr><td>CD19 biot</td><td>BD Biosciences</td><td>553784</td><td></td></tr><tr><td>MHC-II Biot (I-A/I-E)</td><td>BDBiosciences</td><td>553622</td><td></td></tr><tr><td>CD11b biot</td><td>Immunostep</td><td>11BB-01mg</td><td></td></tr><tr><td>CD11c biot</td><td>Immunostep</td><td>11CB3-01mg</td><td></td></tr><tr><td>DX5 biot</td><td>BD Biosciences</td><td>553856</td><td></td></tr><tr><td>Gr-1 biot</td><td>BD Biosciences</td><td>553125</td><td></td></tr><tr><td>CD16/CD32</td><td>ImmunoStep</td><td>M16PU-05MG</td><td></td></tr><tr><td>抗サルモネラ</td><td>ABD セロテック</td><td>8209-4006</td><td></td></tr><tr><td>CD11cPE</td><td>BD Biosciences</td><td>553802</td><td></td></tr><tr><td>CD4-APC</td><td>とんぼバイオサイエンス</td><td>20-0041-U100</td><td></td></tr><tr><td>Gr-1 APC</td><td>BD バイオサイエンス</td><td>553129</td><td></td></tr><tr><td>MHC-II (I-A/I-E) FITC</td><td>BD Biosciences</td><td>553623</td><td></td></tr><tr><td>Alexa-Fluor 647 ヤギ抗ウサギ IgG (H+L) 抗体、高度に交差吸着された</td><td>Invitrogen</td><td>A-21245</td><td></td></tr><tr><td>CMAC(7-アミノ-4-クロロメチルクマリン)</td><td>ライフサイエンス</td><td>C2110</td><td></td></tr><tr><td>BSA</td><td>SIGMA</td><td>A7030-100G</td><td></td></tr><tr><td>ストレプトアビジンマイクロビーズ</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-048-101</td><td></td></tr><tr><td>BD FACSCanto II</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

t細胞は、樹状細胞からtransinfectionによって細菌をキャプチャ

T Cells Capture Bacteria by Transinfection from Dendritic Cells

最近、私たちは、記述されている内容に反して、適応免疫細胞のパラダイムであるCD4+ T細胞が、感染した樹状細胞(DC)から細菌を捕捉する、いわゆるトランスインフェクションと呼ばれるプロセスを示しました。ここでは、抗原提示の過程で発生するトランスインフェクションプロセスの分析について説明します。このプロセスは、オボアルブミンのペプチドに特異的なT細胞受容体(TCR)を持つトランスジェニックOTIIマウスのCD4+ T細胞を用いて明らかにされました。この細胞は、この特定のOVApをロードした感染樹状細胞と安定した免疫複合体を形成することができます。DC-T細胞伝達中の緑色蛍光タンパク質(GFP)発現細菌の動態は、生細胞イメージングによってモニターでき、細菌のトランス感染の定量化はフローサイトメトリーによって行うことができます。さらに、トランス感染は、細胞外細菌を殺すが細胞内細菌を殺さない非透過性のアミノグリコシド系抗生物質であるゲンタマイシンの使用に基づく、より感度の高い方法によって定量化できます。この古典的な方法は、細菌感染の効率を研究するために微生物学で以前に使用されてきました。ここでは、初代細胞の単離からトランス感染の定量化まで、全プロセスのプロトコルについて説明します。

ここで、我々は派生-DCを感染した骨髄からマウスT細胞細菌transinfectionを実行する方法を説明し、どのように2つの異なるアプローチを介した細菌transinfectionを測定する：フローサイトメトリーおよびゲンタマイシン生存アッセイ図1は、細胞を得るための手順をまとめたものです。 DCは、9日間のGM-CSFとの骨髄細胞をインキュベートすることによって生成されます。その後、DCはOVA（OVAp）の特定のペプチドで、後にそれらをロードするために、その膜上MHCIIを高めるために、LPSで成熟しています。対照として、いくつかのDCをOVApがロードされていません。両方のDC（OVAp、ロードされ、無負荷）が10細菌の感染多重度（MOI）で感染させます。一方、CD4 + T細胞は、特定のOVApを認識OTIIトランスジェニックマウスのリンパ節から単離されている。 図2は、適切な陰性対照を含むT細胞transinfectionを実行し、定量化するための手順を示しています。 d...

ここで、プロトコルは、事前に感染した樹状細胞（DC）からtransinfection介して抗原提示の間に発生するCD4 + T細胞による細菌の取り込みを測定するために提示されています。初代細胞、DC、DC / T細胞複合体の形成の感染、および細菌のT細胞トランスフェクションの測定の分離：私たちは、必要なステップを実行する方法を示しています。

T細胞は、樹状細胞からTransinfectionによって細菌をキャプチャ

Recently, we have shown, contrary to what is described, that CD4+ T cells, the paradigm of adaptive immune cells, capture bacteria from infected dendritic ...

本手順の全体的な目的は、マウス細胞モデルを用いて、細菌によるCD4+ T細胞へのトランス感染を定量化することです。生体内（in vivo）では、Listeria monocytogenesやSalmonella enteritidisなどの一部の病原性細菌はTリンパ球に感染し、その挙動を変化させることができます。しかし、試験管内（in vitro）において、T細胞に感染させることは容易ではありません。この観察結果に基づき、ウイルス感染時に起こるのと同様に、抗原提示の過程でT細胞が感染した樹状細胞から細菌を捕捉できるかどうかを検討しました。その結果、T細胞が細菌を捕捉し、その後殺傷することが分かりました。実際、T細胞は専門的な食細胞よりも効率的にこれを行うことが明らかになりました。これらの結果は、適応免疫の細胞が、本来は自然免疫のみに限定されていると考えられていた機能を果たし得ることを示しており、免疫学の中心的教義と矛盾しています。本日は、マウスモデルを用いて細菌のトランスインフェクション（再感染）プロセスを研究するために使用したプロトコルを紹介します。Esteban Veigaと私が、大学院生のGuillermo Ramirez-SantiagoとRaquelle Garcia-Ferreras、および技術者のMonica Torres-Torresanoと共に、この手順を実演します。このビデオで説明するすべての手順は、滅菌済みの培地、器具、ピペットチップ、および培養皿のみを使用し、クリーンベンチ内で行ってください。組織培養処理されていない滅菌済みの15 centimeterペトリ皿に、1匹のマウスから得られた骨髄由来樹状細胞に1 µLの1 mg/mLリポポリサッカライドを添加します。主要組織適合性複合体II（MHC II）の発現を高めるため、細胞を24時間インキュベートします。インキュベーション後、フローサイトメトリーを行い、MHC IIの発現と分化を確認します。ここに示すようにMHC IIの発現が確認されたら、細胞を滅菌済みの50 milliliterポリプロピレンチューブに移します。5 millimolar EDTAを含むPBSを10 milliliters加え、細胞を600 x gで遠心分離します。遠心分離が完了したら、10% FBS含有RPMIで細胞を再懸濁し、再度遠心分離して洗浄を行います。洗浄後、樹状細胞5×10⁶個につき1 mLの10% FBS含有RPMIを加え、ピペッティングして再懸濁します。次に、再懸濁した樹状細胞を、等量ずつ2本のチューブに分注します。1本のチューブに、10 micrograms per milliliterのOT-II OVApを加えます。もう一方のチューブは未処理のままにします。これは抗原ローディングの陰性対照として

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学と感染症

我々はレトロウイルス導入を用いて抗原特異的マウスT細胞を生成するためにプロトコルを提示...

マウスT細胞におけるT細胞受容体のレトロウイルス導入

我々は、細胞の成熟を引き起こすことなく、プラスミドDNAやsiRNAのどちらかで初代ヒト単球由来樹状細胞をトランスフェクトの効率的な方法として私たちの最適化されたハイスループットnucleofectionのプロトコルを提示する。我々はさらなる標的遺伝子のmRNAとタンパク質レベルの両方におけるRIG -...

細胞の成熟せずに樹状細胞の効率的なトランスフェクションに最適化されたプロトコル

それゆえ、それが関与するタンパク質の空間的および時間的挙動を調べることが重要であるシグナリングを理解するために、細胞膜内や細胞内の場所にどちらかのタンパク質の棲み分けが大幅にシグナル伝達の結果に影響を与えることができる1調節機構である。ここではT細胞のシグナル伝達を研究するための全反射顕微鏡ベースのシステムを説明しますが、広く適用可能である。...

TCRとそれに関連するシグナル伝達タンパク質のリアルタイムの同時イメージングのための全反射顕微鏡法

出典: Cruz-Adalia、A.、 et al. T細胞は樹状細胞からのトランス感染により細菌を捕捉する J. Vis.

免疫学的シナプス形成を介したT細胞のin vitro細菌トランス感染

このビデオは、型指定不可能なインフルエンザ菌(NTHi)を介してリンパ球を刺激し、免疫応答を評価するin...

病原菌を介してリンパ球を刺激するIn Vitro技術

ここでは、レトロウイルス形質導入およびテトラサイクリンの不存在下でレンチウイルスベクター（LV）の成分を発現できる細胞株を作成するためのコンカテマートランスフェクションを使用する。このLVは、GFPをコードし、樹状細胞上の受容体に特異的な糖タンパク質、SVGmuと偽されています。...

テトラサイクリン調節細胞株は、具体的に樹状細胞を標的とする高力価レンチウイルスベクターを生成

無細胞HIV-1粒子とは異なり、感染したCD4 + T細胞を効果的に形質細胞様樹状細胞（pDC）によって感知されます。この原稿は、I型​​IFNの放出によって評価した末梢血単核細胞（PBMC）または単離されたpDCは、pDCにすることにより先天的センスを評価するためにHIV-1感染T細胞と共培養する方法が記載されています。...

HIV-1感染CD4の生得センシングを評価<sup&gt; +</sup&gt;使用して形質細胞様樹状細胞によるT細胞<em&gt;エクスビボ</em&gt;共培養系。

ここでは、ヒトの抗凝固血液の密度勾配遠心分離後に、末梢血単核細胞からの磁気ビーズ分離によって単球がどのように単球を単離されるかを示します。5日間のインキュベーション後、ヒト単球は未成熟樹状細胞に分化し、非臨床環境での実験手順の準備が整います。...

全血からのヒト単球由来樹状細胞の生成

このプロトコールでは、腸内微生物叢抗原特異的T細胞養子移入大腸炎モデルが記載されている。CD4+ T細胞は、CBir1...

免疫不全マウスへのCBir1 TCRトランスジェニックCD4+ T細胞の養子移入による腸管炎症の誘導

この記事では、バクテリオファージラムダの感染の蛍光標識されたバージョンを準備する手順を説明します...

細胞運命を以下に<em&gt; E大腸菌の</emラムダファージによる感染後&gt;

学ぶ細菌のCD4+T細胞トランスインフェクション定量法。マウス細胞モデルを用いて、樹状細胞からの細菌キャプチャと殺菌効率を評価する免疫学的プロトコルです。

T細胞は、樹状細胞からTransinfectionによって細菌をキャプチャ

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