Name: げっ歯類でのアクリル樹脂成形ベースヘッド固定法 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-01-12T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 51 s
Description: 学ぶアクリル樹脂を用いたげっ歯類の新規ヘッド固定法。金属フレーム不要で脳へのアクセスを容易にし、行動神経科学研究の実施可能性を向上させる。CAD設計と歯科用アクリルで実現する革新的な技術です。

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この研究は、文部科学省(2010-0022362)および(2012R1A2A2A02046812)の資金提供を受けたNRFを通じて、基礎科学研究プログラムの支援を受けました。

倫理の声明： この実験は、慶北大学校施設内動物管理使用委員会によって承認され、実験動物の管理と使用（国立衛生研究所、1996）のための案内に従って行きました。実験後、動物は、二酸化炭素の安楽死の下で屠殺しました。 ラット用頭部固定バーの1デザイン注：この手順は、固定バー設計のための一般的なガイドラインです。寸法および材料についての変更は、動物やインプラントに応じて可能です。 CADソフトウェアを使用して、ヘッドの固定バーを設計する必要は推奨されないが。 <ol><li>固定バーを設計するためのCADソフトウェアを使用してください。 <ol><li>長方形（123×35×6ミリメートル）（ 図1A）の固定バーを設計します。固定バーの中央に、長方形のノッチ（ポート16×20ミリメートル）を行います。斜面やくぼみを追加whicHは、ポートの境界にガイドレール（ 図1A-A、 図1Bは -arrows）として機能します。 注：ポートの面積は開頭を通じて脳領域のほとんどに定位マニピュレータを使用して垂直方向のアクセスを可能にするために、脳の上にラットの頭蓋骨の推定矩形をカバーしていることを確認してください。 </li><li>固定バーの両側に2つの細長いアンカー穴とプレート（50×20×6 mm）を取り付けます。これらの穴は直径6mm（ 図1A-D）のネジを渡したことを確認してください。ロックフック（ 図1A-B）のためのポートの前に直径3mmの穴を作成します。 </li><li>箱が床（135×305ミリメートル）と側壁（305×76ミリメートル）を有することを確認します。 図1A（挿入図）に示すように、2つの直径6mmの穴をドリル。固定バー（ 図1A-E）に支持壁を追加します。 </li></ol></li><li>設計バーとボックスを製造し、としてシアノアクリレートを使用して、それらのそれぞれを組み立てます図1A（挿入図）に示します。直径6mmのネジを使用してボックスにバーを組み立てます。人間工学的な頭部固定（ 図1A、挿入図 ）は、バーのネジ位置を調整することによって、勾配を適用します。 注：マウスの​​場合、固定バーの寸法は、（厚さ2mmのアクリル板の二層からなる）60×20×4mmです。ポートは8 mmの幅（上部）および図1（c）に示すように 9×10 mmの（下側）の正方形です。アンカープレートは、ラットのと同じサイズです。ボックスプレートとサイドの壁はそれぞれ100×72ミリメートルと100×50ミリメートル、です。 </li></ol>移植手術中に2頭マウンター建設注意：歯科アクリル樹脂を扱うときは注意してください。液体は皮膚の炎症を引き起こす可能性があります。マスクを着用し、手袋を着用してください。換気の良い場所で作業してください。 <ol><li>手術前の準備<ol><li>しっかりと固定バー使用して、APのポートの境界をラップバーに適用されたアクリル樹脂の付着を防止するaraffin膜（ 図1B及び図2Aを参照）。コー​​トアクリル樹脂の薄層でパラフィンフィルムで覆われたポートの境界。 </li><li>滅菌手術器具を使用してください。完全に定位フレームとその周辺用いて70％のエチルアルコールを消毒します。 </li></ol></li><li>定位移植手術を行います<ol><li> 10 mlのケタミン（50 mg / mlで）、キシラジン塩酸1.5ミリリットル（23.32 mg / mlで）、および生理食塩水2.5ミリリットルのカクテル混合物（2ミリリットル/ kg）を腹腔内注射によって動物を麻酔。動物が完全に麻酔し、尾とつま先ピンチに応答しないことを確認してください。必要な場合に手術中に1ミリリットル/ kgでのカクテル混合物を注入します。 </li><li>定位固定装置に動物を修正。手術中の乾燥を防ぐために、目に眼軟膏を適用します。 70％エタノールで頭皮を剃るし、清掃してください。 2％のリドカインの皮下注射を与え、SCAを切開頭蓋骨の正中線に沿ってのlp。完全に骨膜を削り取ります。生理食塩水で数回すすいでください。 </li><li>頭蓋骨のリム付近にバリ穴加工を行います。硬膜の違反を防止するために、頭蓋骨の表面からインプラントのネジ（1ミリメートルの深さまで）4-5ターン。ネジ移植後頭蓋表面上CSFおよび血液のことを確認漏れを行いません。生理食塩水ですすぎ、空気パフを使用して、頭蓋骨の表面を乾燥、特にネジの周り。 </li><li> 「歯科用接着剤（スーパーボンドC＆B）」の薄層でコート頭蓋骨の表面。追加の電極注入が予定されている場合、完全にブレグマ含む頭蓋骨の表面を覆わないでください。開頭術座標をマークするためにブレグマを使用してください。インプラント電極および/またはマイクロドライブとその周りにアクリル樹脂を塗布することにより頭蓋骨​​に固定します。 </li><li>歯科用セメントの上に付加的なアクリル系樹脂を適用します。バーでコーティングされた樹脂のANとの間に十分なフィルアウトスペースを残すためにアクリル樹脂の適切な量を使用しますねじおよび/ ​​または電極（ 図2A）を固定する際の取り付け樹脂を頭文字D。 </li></ol></li><li> 5mm以上頭蓋骨表面上置きヘッド固定バーと、その中心（ 図2A -left）を合わせます。 </li><li>頭蓋骨と初期の実装系樹脂のベースとの間の隙間にアクリル樹脂を適用します。 （ 図2A -center）。樹脂が硬くなるまで待ちます。 </li><li>耳バーを取り外し、固定バーポートから成形マウンタを引き出します。 （ 図2A右回転）。必要に応じて成形マウンタのエッジレールの周りに追加のアクリル樹脂を慎重に適用されます。 </li><li>滅菌生理食塩水で頭皮の傷の表面を洗浄します。手術直後抗生物質（エンロフロキサシン、5ミリグラム/ kgの皮下）と鎮痛剤（酒石酸ブトルファノール、2ミリグラム/ kgの皮下）注入します。ハウス個別に1ケージ内の動物。 </li></ol> 3.頭部固定に動物をHabituating 注：この手順のデ著者の経験的に成功した評価に基づい慣れスケジュールをスクライブ。ヘッド固定用慣れ手順の概要については、シュワルツの10または郭の11作品を参照してください。 <ol><li>動物への十分な回復期間（週またはそれ以上）を与えます。 1日目に、頻繁に分割短いセッションで動物を処理します。 </li><li>次の日（2日目）には、固定環境（ボックス）に動物を公開します。固定バーのポートに自分の頭マウンタを挿入しないでください。環境に慣れるために動物のままにしておきます。しっかり1〜2秒間、手を使ってヘッドマウンタを取得し、すぐにそれを解放。ハンドグラブ数回短期固定を繰り返します。 </li><li> 3日目、頭部固定に動物を慣らします。 <ol><li>ホームケージから動物を持参し、固定バーのポートに向かって頭を向けるボックスでそれらを決済します。ヘッドマウンタをつかみ、固定バーのポートに挿入します。 </li><li> （動物のマウンタをバインドゴムバンドを使用して、固定バーのロッキングフックの頭）。 5分間放置。 注：きしむ音、動物のストレスを増加苦労した動物をリードする、固定後の動物のトランクまたは尾に触れないでください。動物は1分以上に苦労し続けた場合、それを解放し、後で試してください。頭部固定にさらされるたびに、このステップから、動物は尿と糞排泄を示すが、これは徐々に慣れが進むにつれて減少します。 </li><li>ロックゴムバンドを取得し、ポートからマウンタを取り出します。バックホームケージに動物を入れて、報酬としてホームケージに穀物の一部またはヒマワリ種子を提供しています。次の試験は30分に開始されます。日以内3.4.4 5以上に3.4.1を繰り返します。 </li></ol></li><li> 7日目4日、プロトコル3.4で説明したように固定を頭ために動物を公開します。徐々に（10分、20分、30分、および馴化が進むにつれて50分）ヘッド固定の持続時間を増加させます。 注：動物が行うとなしtはそれがストレスの高レベルの徴候である可能性があり、食品の報酬を養います。定着時間を増加させないでください。動物は繰り返し苦労挙動を示す場合は、より長い期間のためにそれらを慣らします。 </li><li>毎日の動物の体重をチェックしてください。体重が減少している失敗慣れを考慮してください。成功慣れた後、頭部固定と行動のタスクに進みます。 注：成功慣れは、その後の行動訓練（ 図3EおよびF）を容易にします。 </li></ol>

<ol><li>Mayrhofer, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+two-alternative+forced+choice+paradigm+for+bilateral+vibrotactile+whisker+frequency+discrimination+in+head-fixed+mice+and+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Novel two-alternative forced choice paradigm for bilateral vibrotactile whisker frequency discrimination in head-fixed mice and rats.</a> J Neurophysiol. 109, 273-284 (2013).</li>
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<li>Hadlock, T., Kowaleski, J., Mackinnon, S., Heaton, J. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+method+of+head+fixation+for+the+study+of+rodent+facial+function%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+neurology%22%5BJournal%5D)">A novel method of head fixation for the study of rodent facial function.</a> Experimental neurology. 205, 279-282 (2007).</li>
<li>Roh, M., Jang, I. S., Lee, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Push-in+Head+Restraining+Apparatus+for+Intracranial+Self+Stimulation+Tasks+in+Rats%5BTitle%5D)+AND+%22Korean+J+Physiol+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Push-in Head Restraining Apparatus for Intracranial Self Stimulation Tasks in Rats.</a> Korean J Physiol Pharmacol. 18, 103-108 (2014).</li>
<li>Schwarz, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+head-fixed+behaving+rat--procedures+and+pitfalls%5BTitle%5D)+AND+%22Somatosensory+%26+motor+research%22%5BJournal%5D)">The head-fixed behaving rat--procedures and pitfalls.</a> Somatosensory & motor research. 27, 131-148 (2010).</li>
<li>Guo, Z. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Procedures+for+Behavioral+Experiments+in+Head-Fixed+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Procedures for Behavioral Experiments in Head-Fixed Mice.</a> PLoS ONE. 9, (2014).</li>
<li>Osborne, J. E., Dudman, J. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RIVETS%3A+a+mechanical+system+for+in+vivo+and+in+vitro+electrophysiology+and+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">RIVETS: a mechanical system for in vivo and in vitro electrophysiology and imaging.</a> PLoS One. 9, e89007(2014).</li>
</ol>

著者らは開示するものは何もない。

このプロトコルは、手元にある材料を使用した簡単で便利な頭部固定方法を示しています。頭部固定を物理的に成功させるには、手術中の最初の重要なステップは、歯科用接着レジンセメントを塗布する前に、頭蓋骨の表面をはっきりとすすぎ、乾燥させることです。第二に、この方法は側頭筋の下に埋め込まれるネジを使用せず、頭蓋骨のネジにのみ依存し、頭蓋骨の縁の表面に対する垂直な移植が重要です10。これにより、特にラットにおいて、レジンマウンターが頭蓋骨から偶発的に分離する可能性が低くなります。
ヘッドマウンターを構築するためのアクリル樹脂は、バーに接着剤です。ポートの上にパラフィンフィルムを覆うことで、これを防ぎました。ただし、これは不便な手順です。これを改善するための 1 つの可能な解決策は、固定バーを金属材料で設計することです。さらに、これはパラフィンフィルムが占める隙間を取り除くことにより、アクリル棒よりもクランプの安定性を高めるはずです。記載されている方法は、パラフィンフィルムに由来するギャップが小さいため、脳画像研究には不適切である可能性があります。これは、金属固定バーまたは...

頭部固定や頭の拘束は、剛性クランプ用の頭蓋骨上のフレームまたはプレートを取り付けることによって、動物の頭を固定化する技術です。技術は1-3目を覚まし動物および睡眠-覚醒サイクル 4の間juxtacellular標識のための神経記録の有無にかかわらず、正確な感覚刺激のための行動センシングを採用しています。また、 インビボでの脳イメージング5,6のために使用されます。今頭部固定技術は、神経科学と行動研究で一般的に使用されるツールです。 基本的には、従来の頭部固定は頭蓋骨6-8の上にメタルヘッド・ポストの外科用アタッチメントが必要です。添付ファイルは、その後、ヘッドの固定化の結果、静止プラットフォームにクランプされます。このような神経および/または光記録、脳回路の介入として覚醒した動物における神経生理学的研究は、脳イメージングは​​、歯科用アクリルを使用して移植手術を伴っています。そのため、それは、実験が必要であるときに、これらの実験室で頭部固定を実現するための簡単​​な作業です。フレームは軽量かつホームケージ内の動物の自然な行動を邪魔しない程度に小さくなるように設計する必要があります。静止プラットフォームにクランプする際にも機械的剛性を提供します。さらに、実験の目的に応じて、生体適合性を有しています。したがって、一般的な実験装置にかかる頭柱を設計し、製作することは技術的に困難です。 本研究では、新規な頭部固定方法は、金属ヘッドのポストを使用することなく、便利なクランプを介して機械的剛性を提供し、記載されています。この方法を用いることにより、ヘッドの固定は、移植手術は、通常、脳の研究のためにげっ歯類で行われる一般的な実験室の条件下で行うことができます。メタルヘッド・ポストはimplan中に行われたカスタムメイドの頭部固定バーと成形プロセスによって部分的に成形されたアクリル樹脂セメントに置き換えられますテーション手術。固定バーは、ニューラル記録プローブ、刺激電極として他のインプラント、との高い空間の互換性を提供します。また、それはネジ止めを除去することにより、固定プラットフォーム上の動物の頭をクランプする工程を簡素化します。私たちは前の行動の研究では、この方法を使用し、我々は、この方法は、実装が容易で実用的な実験9で便利であると結論しました。

<table><tbody><tr><td>歯科用アクリル樹脂</td><td>ラングデンタルマニュファクチャリング</td><td>オルソジェット</td><td>成形マウンター</td></tr>を作る <tr><td>パラフィンフィルム</td> バー<td>へのアクリル樹脂の付着を防ぐ</td>ための<td>ビーミス</td><td>パラフィルム</td></tr><tr><td>歯科用接着剤</td><td>サンメディカル</td><td>スーパーボンド C&アクリル</td><td>樹脂と頭蓋骨プ</td></tr><tr><td>レックスガラスまたは他のアクリル板</td><td></td><td></td>との間に接着するBは、アクリル板を接着するための<td>固定バーとボックスプラットフォーム</td></tr><tr><td>シアノアクリレート</td><td></td><td></td><td></td></tr>を作成します</tbody></table>

げっ歯類でのアクリル樹脂成形ベースヘッド固定法

Acrylic Resin Molding Based Head Fixation Technique in Rodents

頭部固定は、頭蓋骨に頭部支柱を取り付けて固定することで動物の頭部を固定する技術です。従来の頭部固定では、頭蓋骨に金属フレームを外科的に取り付ける必要があります。次に、取り付けられたフレームを固定プラットフォームに固定し、ヘッドを固定します。しかし、頭部固定用の金属フレームは、一般的な実験室環境での設計と実装が技術的に困難でした。本研究では、新しい頭部固定法を提供する。カスタムメイドのヘッド固定バーを使用して、インプラント手術中にヘッドマウンターを構築します。頭蓋骨に電極やカニューレなどのインプラントを固定するためのアクリル樹脂を塗布した後、その上に樹脂を追加で塗布し、固定バーのポートに合わせた型を作ります。成形ヘッドマウンターはガイドレールとして機能し、研究者はヘッドマウンターを固定バーのポートに挿入することで動物の頭部を便利に固定します。この方法は、歯科用アクリルを使用した移植手術が必要な場合に簡単に適用でき、CNC機械加工された金属ヘッドポストを簡単に製造できない研究室に役立つ可能性があります。

このヘッドの固定方法は、ラットとマウスの両方に適用可能です。合計8匹のラットは、内側前脳束に電極を刺激する二国間の注入を受けました。それらのうち4については、カスタマイズされたタングステンワイヤ電極（マイクロドライブ）を追加的にM1前肢領域（ 図2C）に移植しました。マウスについて（N = 2）は、4つのステンレス鋼ワイヤ電極を、前頭/後頭部皮質領域に移植しました。手術からの回復後にプロトコル部2で説明するように手術中、ヘッドマウンタは、ラットとマウスの両方で頭部固定用に成形した、彼らは慣れまたは行動のタスクのいずれかのヘッド固定の日々のセッションに暴露しました。成形ヘッドマウンタは実験終了（40.5±1.73（平均±SD）ラットおよび81±5.66日間（手術後のマウスのためにSD）日平均値±）を介して滞在しました。ラットは、行動タスクの間に40〜60分の頭部固定毎日暴露しました。マウスがあることの40分に毎日20暴露しましたhaviorタスク。 これまで我々は、頭部固定の下でレバーを押すとプルラットを訓練するためにこの技術を使用していました。報酬...

伝統的な頭部固定技術は、頭部固定装置のインターフェースとして頭蓋骨に取り付けられた金属フレームを使用してきました。このプロトコルは、げっ歯類の行動課題に対するフレームレスのアクリル樹脂成形ベースの頭部固定技術を示しています。

Head fixation is a technique of immobilizing animal's head by attaching a head-post on the skull for rigid clamping. Traditional head fixation requires ...

この手順の全体的な目的は、げっ歯類の埋め込み手術を行う研究室で広く入手可能な歯科用アクリルを用いた、新しい頭部固定技術を提供することです。この手法は、脳および行動研究分野における重要な問いに答えることができます。この技術の主な利点は、金属製のヘッドポストやプレートを使用しないため、CNC加工によるヘッドポストを容易に作製できない研究室でも利用できる点にあります。CADソフトウェアを使用して、123 × 35 × 6 mmの長方形の固定バーを設計します。このバーの中央に、16 × 20 mmの長方形のポートを設けてください。このポートは脳へのアクセスに使用されるため、必要に応じてサイズを調整してください。ポートの縁に沿って、ガイドレールとして機能する傾斜または切り込みを追加します。固定バーの両側に、長穴を介して取り付けるためのプレートを用意してください。穴には6 millimeterのネジが通るようにし、またポートの前方にはロッキングフックを装着するための直径3 millimeterの穴を追加します。次に、135 × 305 × 76 millimeterの立方体の壁面と底面を設計します。大きな側壁はバーを支持するために使用されます。この目的のために、6 millimeterの穴が必要です。すべての部品をアクリルから機械加工した後、シアノアクリレートを用いてボックスとバーを組み立てます。次に、6 millimeterのネジを使用して、バーをボックスの支持壁に取り付けます。最後に、ネジの位置を調整して、ラットの頭部に適切に適合するようにアタッチメントの傾斜を調整します。マウスに使用する場合は、同じ設計で、より小さい寸法のバー、同じアンカープレート、およびより小さいボックスを使用してください。まず、バーの準備から始めてください。まず、ポートをパラフィンフィルムで包みます。次に、パラフィンの縁をアクリル樹脂の薄い層でコーティングします。その後、70% ethanolを用いてフレームを十分に洗浄し、消毒します。ラットを麻酔した後、足指を挟んで（toe-pinch）麻酔状態を確認します。必要に応じて、麻酔を維持するために薬剤カクテルを半量投与してください。ラットを脳定位固定装置に固定した後、眼軟膏を塗布し、頭蓋骨の被毛を剃毛します。次に、切開部位に2%リドカインを皮下注射します。続いて、正中線に沿って頭皮を切開し、骨膜を完全に掻き出します。その後、生理食塩水で数回洗浄し、頭蓋骨のきれいな領域を露出させます。次に、頭蓋骨の縁付近にネジ用の穿孔（バーホール）を作成します。ネジを頭蓋骨に対して垂直に植え込みます。植え込んだネジから液体が漏れていないことを確認してください。インプラント部位の周囲を洗浄し、準備した部位をエアドライさせます。次に、頭蓋骨の表面の大部分に歯科用接着剤を薄く塗布します。ただし、座標ナビゲーションのためにブレグマは露出させたままにしておきます。その他の電極またはハイパードライブのインプラントを設置します。次に、歯科用セメント層の上にアクリル樹脂を用いてインプラントを固定します。その際、バーを頭蓋骨に接着できるよう、固定用樹脂に十分なスペースを残してください。次に、頭部固定バーを頭蓋骨から約5ミリメートル上に配置して合わせます。頭蓋骨とバー上のレジンとの間に、さらにレジンを塗布します。レジンが硬化した後、イヤーバーを取り外し、固定バーポートからモールドとマウンターを引き抜きます。手順を完了させるため、動物に抗生物質と鎮痛剤を投与します。その後、回復用ケージに移し、胸立位に戻ったら個別に飼育します。頭部固定の慣らしを行う前に、少なくとも1週間は動物を回復させてください。順化の1日目は、短時間のセッションを頻繁に行い、動物をハンドリングします。2日目に固定ボックスを導入し、動物に自由に環境を探索させます。探索期間中、数回にわたってヘッドマウンターを1〜2秒間だけ軽く掴ませます。3日目に頭部固定の経験を導入します。動物をボックスに入れ、頭部固定バーのポートに頭を向けさせます。次にヘッドマウンターを取り出し、固定バーに取り付けます。ロッキングフックとゴムバンドで頭部を固定してください。その後、動物に触れずに5分間静止させます。触れると動物の暴れが激しくなるためです。排尿および排便が予想されますが、固定に慣れるにつれて徐々に減少します。5分後、ラバーバンドを外し、マウンティングバーから動物を放出してください。その後、動物をホームケージに戻し、報酬としてシリアルまたはひまわりの種を与えます。30分後にこの工程を繰り返します。固定初日は、動物を5回固定します。4日目には、固定回数を7回に増やします。その後、固定時間を5分から10分、20分、30分、そして最終的に50分まで徐々に延長します。動物が報酬を受け付けなくなった場合は、強いストレスの兆候であるため、それ以上の固定時間の延長は行わないでください。馴化プロセスの間、動物の体重を毎日測定します。プロセスの途中で動物の体重が減少した場合は、その個体を研究に使用してはいけません。8匹のラットを用いた実験において、内側前脳束に両側刺激電極を留置しました。また、ラットのM1前肢領域にマイクロドライブとタングステン電極を装着しました。順化後、ラットは頭部固定状態で40〜60分間の行動タスクを行いました。成形されたヘッドマウンターは、実験の全40日間、動物に装着されたままでした。実験では、動物に刺激報酬を得るためにレバーを引くよう学習させました。4本の電極を植え込んだマウスを用いた実験において、ヘッドマウンターは80日間装着されたままでした。これらのマウスは、80日間にわたり、1日あたり20分から40分間の頭部固定を経験しました。このビデオを視聴することで、頭部固定バーの設計方法および固定された動物の処置方法について十分に理解できるはずです。練習を積めば、アクリル製ヘッドマウンターの装着は数分以内に完了できます。その後は、ネジやクランプが不要なため、頭部固定を迅速かつ容易に行うことができます。歯科用アクリル樹脂の取り扱いは皮膚刺激を引き起こす可能性があるため、注意してください。本手順を実施する際は、マスクと手袋の着用、および換気の良い場所での作業など、常に適切な予防措置を講じてください。

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神経科学

我々は、ミリメートルにまたがると、脳の炎症を伴わないヶ月間安定であるマウスの頭蓋骨の画像ウィンドウを形成する手法を提案する。このメソッドは、よく二光子顕微鏡を用いて血流、細胞のダイナミクス、細胞/血管構造の縦断的研究に適しています。...

マウス脳の長期イメージングのためのポリッシュと強化間引き頭蓋骨ウィンドウ

このビデオは、マウスモデルでのヘッドポスト移植手術を示しています。ヘッドポストは、実験中にマウスを頭部固定して拘束するだけでなく、自由に動く動物にヘッドデバイスをしっかりと取り付けるために使用されます。...

マウスヘッドポスト移植:げっ歯類の頭部固定法

出典:Lee, H. et.al., ヘッドマウント小型顕微鏡による、自由に行動するマウスの扁桃体における生体内カルシウムイメージングに成功しました。J. Vis. Exp. (2020)このビデオは、勾配屈折率またはGRINレンズと小型顕微鏡を使用したマウスのin...

自由に動くマウスにおけるリアルタイム微小内視鏡的カルシウムイメージング

新規高分解能<em生体内で&gt;</em腫瘍増殖と治療に頭蓋内構造物の動的応答を研究する&gt;イメージング技術

この作品は、特注ガラス optrode...

覚醒マウス ガラス Optrode を持つ神経型のオプトジェネティクス同定

提案するプロトコルは、長期的な学習の勉強を目的とした実験のための永続的な感覚の衝突を生成します。完全に頭に固定装置を装着、によってマウスはホーム...

自由に行動するマウスで長期的な感覚の衝突

特定の神経集団や脳領域の光遺伝学的操作により、自由に動く動物の高い時間的および空間的分解能で行動を修正することができる。慢性に埋め込まれた光ファイバーと組み合わせて異なる光遺伝学的ツールを使用することにより、さまざまな神経変調および行動検査を行うことができます。...

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生体内の微小内視鏡的カルシウムイメージングは、動物の行動を自由に行う神経活動をリアルタイムで監視できる貴重なツールです。しかし、扁桃体にこの技術を適用することは困難であった。このプロトコルは、マウスの顕微鏡を小型化した扁桃体細胞を標的にするための有用なガイドラインを提供することを目的としています。...

自由に振る舞うマウスの扁桃体の頭部小型顕微鏡による生体内カルシウムイメージングに成功

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ここでは、使いやすさ、プローブの回収率、実験の汎用性、および行動との適合性が最適化された、げっ歯類の慢性電気生理学用の軽量で費用対効果の高いプローブインプラントシステムを紹介します。...

DREAMインプラント:頭部固定マウスと自由行動マウスの慢性電気生理学のための軽量でモジュール式で費用対効果の高いインプラントシステム

この記事では、マウスで一般的に使用される線形トラック仮想現実(VR)パラダイムの実験手順と、Y字型の信号識別タスクをテストすることにより、複雑なVRタスクを実行する可能性を決定する方法について説明します。...

マウスにおける頭部固定型バーチャルリアリティの行動訓練法

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げっ歯類でのアクリル樹脂成形ベースヘッド固定法

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