Name: 微小電極アレイへの3Dエンジニア神経文化のインタフェース：革新的なインビトロ実験モデル (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-10-18T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 47 s
Description: 学ぶ、微小電極アレイ（MEA）と組み合わせた3D神経ネットワークの構築法。ガラス微小ビーズを用いたスカフォールド上でラット海馬ニューロンを培養し、コンフォーカル顕微鏡で可視化する革新的なインビトロモデルです。

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著者らは、閉じ込め構造とdottの開発に技術的なサポートのためにジョルジオCarliniに感謝します。原稿の徹底した見直しのためのオルネラLoBrutto。これらの結果につながる研究は、欧州連合（EU）の7 番目のフレームワークプログラムから資金提供を受けた（ICT-FET FP7 / 2007年から2013年、FETヤング探検方式）付与契約284772脳弓下（www.brainbowproject.eu）。

実験プロトコルは、DL 1992分の116とし、ジェノバ大学（Protののガイドラインにより応じた保健のイタリア語省によって、ヨーロッパの動物保護法制（63分の2010 / EU）によって承認された。N. 13130​​、月を2011）。すべての努力は、プロジェクトのための動物の数を減少させ、その苦痛を最小限にするために行われました。 材料と支持体の作製<ol><li> CNC（コンピュータ数値制御）フライス盤を用いて、PDMS（ポリジメチルシロキサン）の制約を構築するための金型を作成します。このような金型は、ポリテトラフルオロエチレンで中心筒（PTFE）とポリカーボネートで実現されます。この材料は、PDMSが硬化した後にマスクを容易に抽出することができます。 注：金型の設計は、コンピュータ支援設計（CAD）によって行われ、その後、CNCフライス盤に配信されています。 </li><li> PDMSエラストマーを準備します。 PDMSは、有機ポリマーです。これは、二つの要素から構成されています、硬化剤及びポリマー。 1：10の体積比で混合して、硬化剤の一部とポリマー9部。ペトリ皿に二つの成分を入れ、気泡を除去するために10分間真空チャンバ内で混合を振るとインサート。 PDMSの3グラムは、つの制約のために十分です。 </li><li> PDMS制約を構築します。成形機にPDMS材料を挿入し、120℃で30分間オーブンに入れて。 PDMS制約はそれぞれ22.0と3.0ミリメートルの外部および内部直径650ミクロンの高さの理想的な円筒の形状を有しています。 </li><li>メッキ前日、カップル実体顕微鏡下でピンセットを用いた微小電極アレイ（MEAの）の活性領域にマスクと120℃のオーブンで、PDMSマスクを滅菌します。 </li><li>円錐バイアル中で2時間、70％エタノールおよびEVを回転させ、ガラスビーズ（42.3±1.1ミクロンの認定平均直径40±2μmの呼び径）滅菌すべてのマイクロビーズを公開するERY 30分。 </li><li>バイアルからのエタノール溶液を除去し、滅菌水でマイクロビーズを2回すすいでください。 </li><li> 0.05μgの/ mlのポリ-D-リジンおよびラミニンの混合溶液の24μlの（直径3.0ミリメートルに等しい）PDMSマスクによって画定MEA領域の中央部を条件付けます。 </li><li>コー​​トは0.05μg/で接着タンパク質、ラミニンおよびポリ-D-リジンとのマイクロビーズはmlであり、安定的かつ長期的な神経ネットワークを得るために、37℃のインキュベーター内で一晩置いておきます。 </li><li> MEAのガラス表面からガラスマイクロビーズの両方から接着因子を削除します。吸引するピペットでコーティング溶液の約95％とは、MEAの表面に滅菌水の小さなVOLUME-24μl-を適用します。吸引し、再び水の95％以上と細胞をプレーティングする前に1時間層状フードの下で、MEAの乾燥をしてみましょう。 注：マイクロビーズの場合は代わりに、コーティングを吸引ニューロンはメッキされたガラス表面を調整するために、滅菌水や、B27などの基礎培地とサプリメント第1と第一の洗浄を、ソリューションとなります。マイクロビーズを乾燥させないでください。バイアル内部の培養液中の懸濁液のままにしておきます。 </li><li>彼らは均一な層を形成する自己集合する膜インサート（細孔直径0.4ミクロン）とのマルチウェルプレートにピペット-200μl-、処理されたマイクロビーズの懸濁液（約32,000）を用いて、配布します。 </li><li>培地0.5mlを有する膜の各ウェルを記入し、インキュベーターに入れて（T = 37.0°Cの 、CO 2 = 5％）ニューロンは（3.2）メッキすることの準備が整うまで。 </li></ol> 2.胚の解剖と組織の解離<ol><li>中（点灯午前7時 - 午後7時）、通常の明暗スケジュールの下で一定温度（22±1℃）および相対湿度（50％）でハウス大人雌ラット（200〜250グラム）動物施設。食料と水は自由に利用可能であることを確認してください。 </li><li> 3％のイソフルランを使用して、開発の18日（E18）の後に妊娠したメスのラットを麻酔。その後、頸椎脱臼により動物を生け贄に捧げます。 </li><li>各ラットの胚から海馬を削除およびCa 2+およびMgのない氷冷ハンクス液2+に入れます。日目に開発海馬および皮質組織の18は非常に柔らかく、小片に切断する必要はありません。さらなる詳細は18,19を見ることができます。 </li><li> 37℃で18〜20分間のDNAse 0.05％を含むトリプシン/ハンク溶液の0.125％で組織を解離します。 </li><li>パスツールピペットを用いて上澄み液を除去し、5分間、10％ウシ胎児血清（FBS）を含む培地を加えることによって、酵素消化を停止します。 </li><li> FBSで培地を除去し、そのサプリメント、1％L-グルタミン、ゲンタマイシンを10μg/ mlの培地で1回洗浄します。パスツールピップで再びメディアを削除しますETTEおよび10μg/ mlのゲンタマイシン、そのサプリメント、1％L-グルタミンを有する成長培地の少量（500μL）で再度補充。 </li><li>細胞の乳白色の懸濁液が明らかになるまで、狭いパスツールピペットで機械的に組織ペレットを解離します。これは、細胞懸濁液を遠心分離する必要はありません。 </li><li> 2.0 mlの最終容積を得るために、増殖培地で細胞懸濁液の少量を希釈します。血球計数器室で得られた細胞濃度を数えます。 /μL600-700細胞の所望の細胞濃度を得るためには5：1で、この濃度を希釈します。 </li></ol> 3.セルメッキ<ol><li> PDMSの制約によって定義され、MEAの活性領域上に約2,000細胞/ mm 2の密度でプレートの細胞は、2次元神経回路網を作成します。 注：各海馬は約5×10 5細胞を含む、（単一胚のための1×10 6）。 6×10の合計量を取得するために6胚を解剖6 2ml中の細胞、および/μlの3000細胞の推定濃度。 /μlの所望の細胞濃度およびプレート約600-700の細胞を得るために、5：1で、この濃度を希釈します。 PDMSの制約によって区切られたMEAの面積は約7.065ミリメートル2、播種した細胞600個/μL×24μL= 14,400細胞/ mm 2で2038細胞の最終濃度の合計数である場合。 </li><li> 37℃の加湿CO 2雰囲気下（5％）でインキュベーターにMEAデバイスを配置します。 </li><li>三次元培養の構築のための予備的なステップを完了するために、マルチウェルプレートの内側に位置するマイクロビーズ単層の表面に600〜700個/μlの（約100,000細胞）の細胞濃度で懸濁液の160μlのを配布します。 37℃の加湿CO 2雰囲気下（5％）でインキュベーターでマルチウェルプレートを置きます。 </li></ol> 4. 3D神経ネットワークの構築<ol><li> 6-8時間、めっき後、約30〜40マイクロリットルの容量に設定されたピペットを用いて、PDMSの制約によって区切られた領域の内側に非常に慎重に、マルチウェルプレートからサスペンション（ニューロンとマイクロビーズ）を転送します。各転送後、自己集合六角形のコンパクトな構造にするマイクロビーズを可能にするために、約半分の分を待ちます。 </li><li>すべての層が堆積され、自然に組み立てられると、媒体の約300μlのPDMS制約で区切られた領域の上部の大滴で補充します。 </li><li>インキュベーター内（T = 37.0をO℃、CO 2 = 5％）をMEAに結合された三次元構造を入れ48時間のサプリメントで成長培地培養物の最終体積（約1ml）を添加する前に。 注：メンブレンインサート（3万）とMEAデバイス（6000）上に単層のビーズの数をマルチウェルプレート上のビーズの総数を考えてみましょう。得られた三次元構造は、MIの5 層から構成されていますcrobeads細胞。 3D神経ネットワークが幾何学的に完全ではないことを考慮すると、結果として得られる3次元構造は、5-8の層で構成することができます。 </li><li>メッキ後の日は、慎重に、MEAのリングの内側に培地（約900μL）の最終容量を追加します。 4-5週間、37℃の加湿CO 2雰囲気下（5％）での3次元培養を維持します。週に一度培地の半分を交換してください。 </li></ol> 5.共焦点顕微鏡の取得<ol><li>ホルダーに顕微鏡のステージに、生物学的サンプルを修正。正しい帯域幅発光フィルターをキャプチャするイメージごとに、順番にPMTの（-0.3％）画像を取得することで、レーザー（アルゴン、496から555 nm）で、スキャン速度（400 Hz）を設定し、ゲインとオフセット飽和を回避し、信号対雑音比を増加させます。結果セクションは 、図4の画像を取得するために使用される値を報告します。 </li><li> Z -stackシーケンスの取得については、モミSTは、上部とサンプルの底層のz位置の値を選択し、取得を行うためのステップサイズを選択します。 </li></ol>

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</ol>

著者らは、競合する金銭的利益はないと宣言している。

この作品では、3Dで構成された試験管プラ ​​ットフォームにおける新規の実験では、ネットワークの電気生理学のためのMEAに結合された神経細胞培養は、提示された設計しました。 Z -軸に沿って神経突起伸長を可能にするための足場としてのマイクロビーズの使用は、平面MEAと統合するように調整されています。このように、有効かつ信頼性の高いin vitroでの3Dモデルで得られたマイクロシステムの結果は、緊急電気力学16を研究します。 MEA記録セットアップ MEAデバイスは、電気活性組織から細胞外シグナルを測定することができる基板に埋め込まれた微小電極の統合アレイで培養室で構成されています。典型的な記録された信号は、（ すなわち、単一の超閾値電圧一つ以上の神経細胞の電気的活動を表す変動）及びバースト（すなわち、高度に充填されたスパイクのシーケンスは、多くの場合、occurrinスパイクか...

微小電極アレイ（MEAの）に結合された試験管 2次元（2D）のニューラルネットワークではニューロンのダイナミクスと基礎接続の間の相互作用を研究するために採用した金標準実験モデルをarethe。開発中に、ニューロンは、よくdefinedspatio-temporalpatternsof活性を示す複雑なネットワーク1,2（ すなわち 、バースト、ネットワークバースト、ランダムスパイク活動を）再作成します。 MEAがネットワークレベルで発現ダイナミクスの詳細な調査を可能にする、多くのサイトから（数十から数千の微小電極に）電気生理学的活動を記録。また、解離文化の使用は、設計、ネットワークを設計することが可能ですになります。これは、異種の神経ポップの存在、このように記録された電気生理学的活性および細胞密度3、モジュール4,5度のようなネットワーク組織のパラメータとの間の機能の関係を理解することは容易ですulations 6などがしかし、解離培養細胞上のすべてのin vitroでの研究は、2D神経回路網に基づいています。このアプローチは 、in vivo（本質的に3次元、3D）システムに関してoversimplificationsにつながる：2Dモデル、細胞体と成長円錐（I）における平坦化され、軸索、樹状突起の伸長は、全方向7に拡散することはできません。 （ii）の2D インビトロネットワークの展示は、ネットワーク8のニューロンの大部分を伴う活動を破裂によって支配電気生理学的ダイナミクスをステレオタイプ。 最近、 インビトロの3次元構造を可能にするために開発されてきた別の解決法は、神経ネットワークを解離しました。一般的な考え方は、ニューロンが、3Dの方式で成長することができます足場を作ることにあります。そのような足場は、高分子ゲル、固体多孔質マトリックス9-13で実現することができます。ポリマーの機械的性質を利用することにより、THES細胞内を埋め込むことが可能ですニューロスフェア11の3次元培養の均一なブロックを定義することにより、電子構造。このアプローチの主な特徴は、神経球9,12の剛性機械的性質です。しかしながら、これらの材料は、多孔性が制限されており、それらは、マトリックス内部の細胞移動を保証しません。この欠点を克服するために、可能な解決策は、「ユニット」モジュールにマトリクスをスライスすることからなります。残念ながら、粒子のサイズおよび形状の多様性は、通常、層状構造への充填を妨げる可能性があります。 7では 、カレンと共同研究者は、生物活性、細胞外マトリックスベースの足場内のニューロンおよび/ ​​またはアストロサイトで構成された3D神経構造物を設計しました。このような操作された神経組織は、3Dマイクロ環境内の神経生物学的応答を研究し、操作するためにインビトロの研究では許可 。このモデルでは、細胞外マトリックス（ECM）および/またはヒドロゲル足場（500-600ミクロン厚）全体に分散ニューロンおよびグリア細胞から成っていました。この共同で5,000細胞/ mm 3 - ndition、最適な細胞生存率（90％より大きい）が約3750の最終密度で細胞をプレーティングすることによって発見されました。そのような濃度値がマウスの脳皮質の細胞密度が90,000細胞/ mm 3 14でのin vivo条件でのものよりもはるかに低いことに留意しなければなりません。この制限を克服し、Pautot 15は、細胞密度とのネットワーク接続は、ネットワークのリアルタイムイメージングを可能にしながら、インビボ条件に似ているように制御される三次元インビトロシステムを実現するために、同僚。実際に、この方法は、培養神経細胞は、 シリカマイクロビーズ上で増殖することができる解離概念に基づいています。これらのビーズは付着する神経細胞体のためと、成熟した、成長し拡張し、他のニューロンへのシナプスの連絡先を定義するために、彼らのarborizationsための十分な大きさの成長表面を提供します。この方法は、FOする単分散ビーズの自発的な組立特性を利用RM 3Dは、異なるビーズ上のニューロンの間で拘束された接続性を有する異なる層のニューロンの明確なサブセットを含む六角形の配列をレイヤード。この方法で達成された細胞密度は約75,000細胞/ mm 3でした 。 最近、我々は、MEAを16にPautotの方法を適応している。得られた結果は、3D電気生理学的活性は、2Dネットワークによって発現される1以上の活動の広いレパートリーを提示することを示しています。 3D成熟した文化がネットワークバーストと、ランダムなスパイク活動の共存の両方強化ダイナミックを示します。同様に、唐-Schomerと同僚17は、数ヶ月のために、in vitroでの一次皮質培養を維持シルクプロテイン系の多孔質足場を実現し、タングステン電極を用いて電気生理学的活性を記録しました。 この作品では、多国間環境協定に結合された3次元神経回路網を構築するための実験手順を説明します。

<table><tbody><tr><td>ラミニン</td><td>シグマ-アルドリッチ</td><td>L2020</td><td>0.05 &micro;g/ml</td></tr><tr><td>ポリ-D-リジン</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P6407</td><td>0.05 &micro;g/ml</td></tr><tr><td>Trypsin</td><td>Gibco</td><td>25050-014</td><td>0.125% 希釈 HBSS で 1:2 希釈 w\o CA++, MG++</td></tr><tr><td>DNAase</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D5025</td><td>0.05% 希釈&nbsp; ハンクス溶液</td></tr><tr><td>Neurobasal</td><td>Gibco Invitrogen</td><td>21103049 培養</td><td>培地</td></tr><tr><td>B27</td><td>Gibco Invitrogen</td><td>17504044</td><td>2% 培地供給</td></tr><tr><td>ウシ胎児血清(FBS)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F-2442</td><td>10%</td></tr><tr><td>グルタマックス-I&nbsp;</td><td>Gibco</td><td>35050038</td><td>0.5 mM</td></tr><tr><td>ゲンタマイシン</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G.1272</td><td>5 mg/L</td></tr><tr><td>ポリ-ジメチル-シロキサン (PDMS)</td><td>コーニング シグ</td>マ <td>481939</td><td>硬化剤およびポリマー</td></tr><tr><td>Micro-Electrode Arrays</td><td>マルチチャネルシステム (MCS)</td><td>60MEA200/30-Ti-PR</td><td>MEA と: 電極グリッド 8x8;電極の間隔と直径200および30 &micro;それぞれm;糸なしプラスチックリング</td></tr><tr><td>Microbead</td><td>Distrilab-Duke Scientific</td><td>9040</td><td>&nbsp;1グラムのガラス部品サイズ標準40&マイクロ;m</td></tr><tr><td>Transwell</td><td>Costar Sigma</td><td>CLS 3413</td><td>マルチウェルプレート、メンブレンインサート付き (直径 6.5 mm 多孔質 0.4 &micro;m)</td></tr><tr><td>HBSS w\o Ca++ ,Mg++&nbsp;</td><td>Gibco Invitrogen</td><td>14175-052</td><td></td></tr><tr><td>ハンクス緩衝液&nbsp;</td><td>シグマ&nbsp;</td><td>H8264</td><td></td></tr><tr><td>テフロン</td><td>シグマ</td><td>430935-5G</td><td>ポリテトラフルオロエチレン</td></tr><tr><td>ラット</td><td>スプレイグ ドーリー</td><td>ウィスター ラット</td><td></td></tr><tr><td>共焦点顕微鏡 直立</td><td>ライカ</td><td>TCS SP5 AOBS</td><td></td></tr><tr><td>20.0x0.50 水対物レンズ</td><td>ライカ</td><td>HCX APO L U-V-I&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>40.0x0.80 水目的</td><td>ライカ</td><td>HCX APO L U-V-I&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>25.0x0.95 水対物レンズ</td><td>ライカ</td><td>HCX IRAPO L</td><td></td></tr></tbody></table>

微小電極アレイへの3dエンジニア神経文化のインタフェース：革新的な<em&gt;インビトロ</em&gt;実験モデル

Interfacing 3D Engineered Neuronal Cultures to Micro-Electrode Arrays: An Innovative In Vitro Experimental Model

現在、細胞外マイクロトランスデューサーデバイス上でin vitroで成長し発達する解離ニューロンに由来する大規模なネットワークは、ニューロン細胞集合体の形成と維持に関与する基本的な神経生理学的メカニズムを研究するためのゴールドスタンダードの実験モデルです。しかし、in vitroでの研究では、二次元(2D)ニューラルネットワークによって生成される電気生理学的活動の記録に限定されていました。それにもかかわらず、構造とダイナミクスの間の複雑な関係を考えると、3次元(3D)ネットワークの形成と発達するダイナミクスを調査するには、大幅な改善が必要です。この研究では、3D海馬または皮質ネットワークが平面微小電極アレイ(MEA)に結合された新しい実験プラットフォームが提示されます。3Dネットワークは、ガラスマイクロビーズ(直径30〜40μm)で構成された足場にニューロンを播種することで実現され、その上でニューロンが成長し、複雑に相互接続された3Dアセンブリを形成することができます。このようにして、予想される最終セル密度を持つ5〜8層で構成されるエンジニアリングされた3Dネットワークを設計することが可能です。3Dアセンブリの形態学的組織化の複雑さが増すと、このタイプのネットワークによって表示される電気生理学的パターンの増強が引き起こされます。高度にステレオタイプ化されたバースト活動が出現する標準的な2Dネットワークと比較して、3D構造はバースト活動の持続時間と頻度の点で変化し、よりランダムなスパイク活動を観察することができます。この意味で、開発された3Dモデルは、in vivoニューラルネットワークにより近いものとなっています。

この実験手順では、関連する役割が3Dニューロンネットワークの成長のための機械的な足場を定義するマイクロビーズで再生され、図1A及びBは、マイクロビーズの配置を表示する（40±2μmの公称直径;の認定平均直径平面で42.3±1.1ミクロン）。このような構造の特殊性は、マイクロビーズが自発的にコンパクト六角形の幾何学（ 図1BおよびC）を定義する自己集合するということです。そのように生成足場は、神経突起と細胞体の代謝交換のための十分な大きさの隙間空間のための一貫性のある成長表面を保証します。このマイクロビーズ寸法は、間質間隔と最後の神経密度のための合理的な妥協点であることが判明しています。 PDMS構造体が「理想的な」シリンダを再現し、かつコンパクトな六方晶構造の影響因子（HPF）が0.74に等しいので、ビーズの最大数（40の直径ことを考慮81; PDMS制約内に含まれるm）は、約100,000、各層あたり約6,000マイクロビーズに対応するです。プロトコルの項で説明したように、これらのマイクロビーズは、接着因子（例えば、ラミニン及びポリ-D-リジン）で前...

この研究では、3Dニューロン培養物が平面微小電極アレイ(MEA)に結合される新しい実験モデルpresented. 3D、ニューロンが成長し相互接続された3D構造を形成するガラスマイクロビーズで構成された足場にニューロンを播種することによってネットワークが構築されます。

微小電極アレイへの3Dエンジニア神経文化のインタフェース：革新的な<em&gt;インビトロ</em&gt;実験モデル

Currently, large-scale networks derived from dissociated neurons growing and developing in vitro on extracellular micro-transducer devices are the ...

本手順の目的は、マイクロ電極アレイ（MEA）に結合した、インビトロでの新規な三次元神経ネットワークモデルを提示することです。まず、MEAの中心部をポリ-D-リジンとラミニンの混合溶液でコンディショニングし、次にマイクロビーズを接着タンパク質であるラミニンとポリリジンでコーティングすることでこれを実現します。第二のステップとして、処理したマイクロビーズの懸濁液をマルチウェルプレートに分注し、ビーズを自己組織化させて均一な層を形成させます。手順の3番目のステップは、2D神経ネットワークを作成するために、MEAの活性領域に1平方ミリメートルあたり2000個の密度で細胞を播種することです。播種から6～8時間後、懸濁液をマルチウェルプレートからMEAに転移させ、マイクロビーズを六方最密充填構造に自己組織化させます。最終的に、共焦点顕微鏡を用いて3Dネットワークを可視化し、MEA上で培養した従来の2D神経ネットワークと比較します。in vitroの2次元細胞培養などの既存の手法に対する本手法の主な利点は、2次元モデルでは細胞体や成長円錐が平坦化され、軸索や樹状突起が全方向に伸展できない点にあります。さらに、2次元ネットワークの電気生理学的ダイナミクスではバースト活動が支配的であるのに対し、3次元ネットワークではランダムなスパイク活動も共存します。我々がこの手法を考案したのは、2008年にNature Methodsで発表されたSophie Pottoらの研究論文を読んだことがきっかけであり、その論文ではMICROBITSが3次元神経ネットワークを構築するための足場として使用されていました。次に、この手法を調整し、初の3次元in vitro記録を行いました。PDMSエラストマーを調製するには、硬化剤とポリマーを体積比1:9でペトリ皿の中で混合します。その後、混合物を振とうし、真空チャンバーに10分間置いて気泡を除去します。PDMS制約を作成するために、PDMS材料を金型に注入し、その後、120 °Cのオーブンで30分間加熱します。PDMS制約は、外径22.0 mm、内径3.0 mm、高さ650 µmの円筒形とし、播種の前日に準備します。実体顕微鏡下でマスクをMEAの活性領域に取り付け、その後、PDMSマスクを120 °Cのオーブンで滅菌します。次に、ガラスマイクロビーズを70% Ethanolが入ったコニカルチューブ内で2時間滅菌し、その際、すべてのマイクロビーズに溶液が行き渡るよう30分ごとに回転させます。チューブからエタノール溶液を取り除き、滅菌水でマイクロビーズを2回洗浄します。その後、PDMSマスクで区切られたMEA領域の中心部分に、0.05 micrograms per milliliterのポリリシンとラミニンの混合溶液を24 microliters添加してコンディショニングを行います。マイクロビーズを、0.05 µg/mLの接着タンパク質（ラミネンおよびポリリジン）でコーティングします。その後、安定した持続的な神経ネットワークを得るため、37 °Cのインキュベーターで一晩静置します。続いて、処理済みのマイクロビーズ懸濁液をメンブレンインサート付きのマルチウェルプレートに分注し、自己組織化させて均一な層を形成させます。次に、メンブレンの各ウェルに培地を0.5 milliliters注入します。ニューロンを播種できる状態になるまで、37 degree Celsius、5%carbon dioxideのインキュベーターに入れておきます。妊娠18日のラット雌を安楽死させた後、ラット胚を回収し、各ラット胚から海馬を取り出します。それらを氷冷したカルシウムおよびマグネシウム不含のHanks平衡塩溶液に移します。次に、0.05%のDNaseを含む0.125%トリプシンHanks溶液中で、37 °Cで18〜20分間、組織を解離させます。その後、ペーストピペットで上清を除去します。10% FBSを含む培地を加え、5分間静置して酵素消化を停止させます。次に、FBS含有培地を除去し、1% L-glutamineおよび10 µg/mLのGentamycinを添加した増殖培地で1回洗浄します。続いて、培地を除去します。増殖培地を500 µL補充します。この培地には、1% L-glutamineと10 µg/mLのGentamycinが添加されています。組織ペレットを細いPEピペットで機械的に解離させ、細胞の乳白色懸濁液が見えるまで行います。その後、少量の細胞懸濁液を増殖培地で希釈し、最終容量を2.0 millilitersにします。得られた細胞濃度をヘモサイトメーターで計測します。次に、この濃度を5倍に希釈し、目的の細胞濃度である 600 〜 700 cells/µL に調整します。PDMSの制約によって定義されたMEAの活性領域に、細胞密度 2000 cells/mm² で細胞を播種し、2Dニューロンネットワークを作成します。続いて、MEAデバイスを 5% 加湿二酸化炭素雰囲気、37 °C のインキュベーターに入れます。3D培養構築の予備段階を完了させるために、細胞濃度が600〜700 cells/µLの懸濁液160 µLを、マルチウェルプレート内に配置されたマイクロビーズ単層の表面に分配します。次に、マルチウェルプレートを37 °C、5%加湿二酸化炭素雰囲気下のインキュベーターに入れます。播種から6〜8時間後、マイクロビーズとニューロンを含む懸濁液30〜40 µLを、PDMS拘束壁で区切られたMEAの領域に転移させます。各転移後、マイクロビーズが六方格子構造に自己組織化されるまで、約30秒間待機します。PDMSによる制限領域の上部に300 µLの培地を加え、すべての層が堆積し自発的に構築されたら、MEAに結合させた3D構造体を37 °C、5% CO2のインキュベーター内に48時間置きます。その後、サプリメントを含む増殖培地を1 mL添加します。in vitroで3週間経過すると、図に示すPDMSによる制限がなくても3D構造体は安定します。これは、MEA表面に結合させたビーズの単層のDIC画像です。黒い点は電極の空間的配置を示しています。マップ2の免疫蛍光染色は赤色のシグナルで示されており、MEAの電極平面に直接結合したマイクロビーズ周囲のニューロンにおける樹状突起の分岐およびADAの分布を表しています。この画像は、成熟した有糸分裂後ニューロンで発現するNeuNおよびGABAで標識されたニューロンが、高度に相互接続されたネットワークを形成している3D培養のZスタック最大投影図を示しています。また、こちらは3D構成における海馬ネットワークの代表的な電気生理学的記録です。そして、こちらは2D構成における海馬ネットワークの代表的な電気生理学的記録です。この手順に習熟すれば、7時間で完了させることができます。ただし、本手順には異なる日に分けて行うステップが複数含まれているため、全工程に要する推定時間はあくまで目安であることに注意してください。この手順を行う際は、まずMEAの電極上に神経細胞の2Dレイヤーを播種し、その後、3D構造を形成させるために、マルチウェルプレートからマイクロビッツと神経細胞の懸濁液をMEAへ非常に慎重に転移させることが重要です。この手法は、計算神経科学の分野の研究者が、ネットワークの接続性がどのように創発的なネットワークダイナミクスを形成し得るかを探求するための道を切り開きました。このビデオを視聴することで、マイクロ電極アレイに結合したin vitroの三次元神経ネットワークを構築する方法について、十分に理解できるはずです。

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

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多電極アレイを用いた3D共培養球のシナプス生理機能の測定

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マルチ電極アレイ上のらせん神経節ニューロン外植片培養と電気生理学

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2光子重合によるマイクロスケール神経細胞培養装置の3Dプリンティング

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微小電極アレイへの3Dエンジニア神経文化のインタフェース：革新的な

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