2015年8月4日
次のプロトコルは、二次元(2D)と三次元(3D)の細胞環境の中間段階として使用されるサンドイッチ状の培養物を組み立てる手順を説明しています。設計されたシステムは、顕微鏡、バイオメカニクス、生化学、細胞生物学アッセイに応用できます。
この手順の全体的な目標は、より生理学的に関連性のある3D環境内で細胞の挙動を研究するために、サンドイッチのような培養物を組み立てることです。これは、最初に腹側と背側の基質を調製し、フィブロネクチンなどのタンパク質でコーティングすることによって達成されます。次に、細胞を標準的な2D培養と同様に座らせます。
次に、背側基質をオーバーレイして、細胞が腹側と背側に刺激されるようにします。最後に、創傷治癒アッセイなどの実験を行うことができます。最終的に、サンドイッチ様培養物は、ライブイメージング、免疫蛍光法、細胞抽出など、標準的な2D培養用にすでに開発されている手順によって分析されます。
さらなる分析のため。この文化的手法が既存の3次元システムよりも優れている点は、トポグラフィー、化学、剛性、腹側と背側の両方のタンパク質含有量など、材料相互作用のさまざまなパラメータを研究でき、高い汎用性を提供できることです。リピン、免疫蛍光、細胞抽出などの一部の3次元システムでは妨げられる可能性のある実験手順が簡単に実行できます ヒュームフード内で作業する溶媒鋳造によりポリ乳酸またはPLLAのフラットフィルムを生成するには、100ミリリットルのクロロホルムに2グラムのPLLAを添加し、室温で約3時間または完全に溶解するまで攪拌します。
ガラスのペトリ皿にステンレス製のワッシャーを置きます。次に、200マイクロリットルのPLLA溶液をワッシャーに加えます。皿を覆うためにいくつかの穴のあるアルミホイルを使用し、PLLAを室温で30分間ゆっくりと蒸発させます。
次に、微量の溶媒を蒸発させるために、サンプルを摂氏120度で5分間加熱します。次に、サンプルを室温で約30分間冷却した後、18.2メガオームセンチメートルの水を使用して皿内のサンプルを覆い、室温で8分間インキュベートします。インキュベーション後、かみそりの刃を使用してワッシャーをペトリ皿から剥がします。
次に、ピンセットを使用してワッシャーの端から欠陥を取り除き、サンプルを自然乾燥させます。PLLAは加水分解貯蔵により分解されるため、真空中のサンプルは実験日まで乾燥します。さらに、ELLA繊維はテキストプロトコルに従って製造でき、無菌培養フードの下の背側基質として使用できます。
カルシウムおよびマグネシウムを含むドコスPBSまたはDPBS中のFI ninを1ミリリットルあたり20マイクログラムをサンプルに加え、タンパク質コーティング後1時間室温でインキュベートします。DPBSを使用してサンプルを2回洗浄し、ガラスカバースリップで次のシード細胞を使用する準備ができるまで、Pカルシウムとマグネシウムを含むDPBSに保存し、摂氏37度で5%二酸化炭素で3時間インキュベートして、細胞が腹側基質に付着できるようにします。次に、サンプルを12ウェルプレートの新しいウェルに移します。
ピンセットを使用して、背側基質を細胞上に慎重に重ねます。次に、1ミリリットルの培地を追加します。ワッシャーの重量により、背側基板が浮くのを防ぎます。
サンプルを5%の二酸化炭素で摂氏37度に戻し、週に2回培地を交換して、サンドイッチのような培養物内の細胞移動を研究します。先に示したように腹側と背側の基質をフィブロネクチンでコーティングした後、ガラスカバー上のシード細胞を高密度で滑り込ませ、サンプルをインキュベートし、細胞が合流するのを待ちます。次に、ピペットチップを使用して細胞単層を引っ掻き、ギャップで区切られた2つの細胞集団を作成します。
腹側に着座した基質を、タイムラプス取得に適しており、背側基質が内部に収まるのに十分な大きさの新しいウェルに入れます。次に、前に示したようにピンセットで、背側基質を細胞に重ね、培地を補充します。サンプルをタイムラプス顕微鏡の下に置き、20分ごとにギャップクロージャーの画像をキャプチャします。
画像Jのmito BOなどのソフトウェアを使用して、サンドイッチのギャップクロージャを分析します。文化のように。硫酸塩は、背側受容体が刺激される時間と背側相互作用の特性に大きく依存します。
例えば、ここで見られるように、ハイドロゲルなどの他の3Dシステムと同様に、背側エレクトロスピニングPLLAファイバーは、フィブロネクチンでコーティングされている場合、細胞のアライメントを指示しますが、BSAのような非接着性タンパク質でコーティングされている場合には、細胞のアライメントを指示しません。さらに、プレーンな背側PLLAを用いたサンドイッチ様培養は、C 2つのC 12細胞を用いた筋形成レベルの増加を引き起こしました。これは背側の生物学的刺激にも依存します。
このビデオで示されているように、異なる背側タンパク質との相互作用により異なる分化率が得られるため、創傷治癒アッセイでサンドイッチのような培養物内を移動する線維芽細胞は、細胞に比べて細長い形態を採用し、移動距離が短くなります。3Dフィブロネクチンおよびコラーゲンゲルと同様の2D基質上で培養します。サンドイッチのような培養は、2D条件と比較して細胞媒介性ECM再編成を増加させます。
このプロセスは、背側の機械的刺激と細胞骨格の安定性に依存しています。BLEsのような収縮性抑制剤の使用がプロセスを妨げたので S 大丈夫ですので、このビデオを見た後、サンドイッチのような培養物を組み立てる方法について明確に理解しているはずです。この手法は、疾患モデル、開発研究、薬物試験への応用を含め、反応医療やがんのための微小環境のような3Dを設計することができます。
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このプロトコルでは、2Dおよび3Dの細胞環境を橋渡しするためのサンドイッチ様培養の構築について概説します。これらのエンジニアリングシステムは、さまざまな生物学的アッセイに適用可能です。
サンドイッチ様培養は、両面からの受容体刺激を可能にすることで、過度に簡略化された2Dモデルと複雑な3Dシステムとの間のトランスレーショナルギャップを解消します。この手法は、既存の2D解析ワークフローとの互換性を維持しつつ、生理学的妥当性を向上させます。また、in vivoでの細胞外マトリックス相互作用を模倣した調整可能な微小環境を提供することで、ターゲットバリデーションや表現型スクリーニングにおける初期段階のメカニズム的なリスク低減を支援します。
この手法は、ターゲットバリデーションアッセイを強化し、リード化合物同定前のバイオマテリアルと細胞の相互作用における構造活性相関研究を可能にすることで、初期のディスカバリーワークフローに統合されます。