Name: エレクトロポレーションおよび化学試薬の治療のための鶏胚からの全網膜の外植片 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-09-30T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 40 s
Description: 学ぶ 鶏胚から全網膜外植片を作製し、エレクトロポレーションでプラスミドDNAを導入する方法。神経発生や細胞周期制御の研究に有用で、発生生物学の理解を深める実験系として応用可能です。

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この作業は、Barncancerfonden (PR2013-0104)、Swedish Research Council (12187-18-3)、ögonfonden、Kronprinsessan Margaretas arbetsnämnd för synskadade、Synfrämjandets forskningsfond、St Eriks ögonsjukhus forskningsstipendierの支援を受けました。

このプロトコルは、「ビジョンと眼科での研究のための協会の実験動物の管理と使用に関する指針」の推奨事項に従って行われます。 1.卵取り扱いとアイコレクション<ol><li> 1週間以上、もはや用に12〜14℃の白色レグホン卵を保管してください。可能な場合は、受精卵を保存する冷蔵ワインクーラーを使用しています。 注意：より低い温度では死亡率を増加させながら、高い店の温度は、胚の異常な開発につながります。拡張ストレージ時間が死亡し、異常な開発の両方を向上させます。 </li><li>穏やかに24時間あたり5回の頻度でロッキングと37.5°Cで卵と60％の加湿卵インキュベーターをインキュベートします。 </li><li>希望胚年齢で卵のインキュベーターから培養した卵を削除します。 注：ニワトリ胚の年齢は、インキュベーションの時間として決定され、胚日（E）として、または段階として示される（ST）、ハンバーガーとハミルトン12で説明した発達段階の一連に従って。 </li><li>層流フード内で選択された卵を置きます。胚の汚染を避けるために70％エタノールで卵殻を拭きます。 注：滅菌溶液を無菌条件下ですべての手順を実施<url> https://www.jove.com/science-education/5030/making-solutions-in-the-laboratory&quot;lutions </url>そして、楽器。 </li><li>卵を開いてクラックするのは難しい表面に対してしっかりと卵の側をタップします。 100ミリメートルペトリ皿内のコンテンツを配置します。乾燥から組織を防止するために、予め温めた（37℃）1×PBSを含む35 mmのペトリ皿に胚を転送する小スプーンを使用します。 </li><li>層流フード内で両眼立体視の解剖顕微鏡上に胚組織を含む35ミリメートルペトリ皿を置きます。細かい鉗子で首をつまんで胚を刎ねると体を捨てます。 </li><li>切開目を作るために細かい鉗子を使用して、ラフ、口、目に腹。切開部位から開始し、全体の眼の周囲の組織を開いて涙。視神経をピンチオフし、目のソケットからそのまま目を削除します。制御または処置した眼のいずれかとして使用するために同じ胚からの左と右眼の両方を収集します。 </li><li>予め温めた（37℃）1×PBSを含む新しい35ミリメートルペトリ皿に目を転送するために、小さなスプーンを使用してください。 </li></ol>全網膜外植片の作製<ol><li>強膜原基を含む眼の周りのすべての組織を除去するために微細な鉗子を使用してください。 注：組織は、色素上皮そのまま（ 図1A-B）と硝子体とレンズで網膜を残して簡単に取り外します。 </li><li>神経網膜（ 図1C）を損傷することなく、眼の背側部分の色素上皮に小さな切開を挟ま細かい鉗子を使用してください。 </li><li>優しく色素上皮startiを開き引き裂く細かい鉗子を使用して、レンズと硝子体（ 図1D）に接続されている網膜全体を残して、切開部位でngの。色素上皮の除去を容易にするために、温かい（37℃）1×PBS中で目を離さありません。 注：色素上皮は、眼の前方領域であり、脈絡膜の亀裂に沿って、瞳孔の周りの毛様体に沿って具体的には、除去するのが困難な場合があります。したがって、色素上皮の一部が神経網膜（ 図1E-F）上に残してもよいです。 </li></ol>全網膜外植片の3治療<ol start="1"><li>全体の網膜の外植片のエレクトロポレーション 注：全体の網膜外植片のエレクトロポレーションはステップ2の後に直接実行することができます。 <ol><li> 1 DMEM：F12の栄養ミックス、10％のFBS、10 U / mlペニシリンストレプトマイシン、5μg/ mlのインスリン、および2mM L-グルタミン1を含む培地を準備します。 </li><li> 1.5ミリリットル使い捨てプラスチックキュベットをカット（12.5ミリメートル×12.5ミリメートルのx 45メートルM）（または微ブレードソーを用いて底部から）約8mmの300-400μlの溶液を保持することが可能な任意の小容器。 </li><li> 0.1μgの/μlの最終濃度に1xDPBSにおける選択肢のDNAプラスミドを希釈します。 </li><li> ST20のために15 Vにエレクトロと設定パラメータをオンにします - ST25（E3-E4）網膜とST26のための20のV - ST27（E5）網膜。 1秒間隔で50ミリ秒パルス長の5パルスにパルス繰り返しを設定します。両手が所定の位置に電極を保持するために必要とされるように床に足ペダルで制御することができるパルス発生器を使用してください。 </li><li>形の2パドル（フラット、円形DIAM 4 mm）の白金電極（ 図2A）は 、パルス発生器の出力ソケットに接続します。 注：このプロトコルで使用される白金電極は、大学のワークショップによって作られました。電極は、0.1ミリメートルの白金板」rondelles」（：950のPt / 5銅プラチナグレード）から作られました。接続0.8ミリメートルののwi再プラスチックチューブを用いて絶縁しました。 </li><li>慎重に網膜の外植片のための右先端開口サイズを取得するためにカットオフ先端を有するポリエチレンパスツールピペットを用いて、キュベット（または同等の小型容器）へのステップ2.3からの全網膜外植片を移します。網膜は、プラスチックに付着し、引き裂くする傾向があるとして、ピペットチップを使用しないでください。 </li><li>優しく引き裂きを回避するために、網膜に触れないように注意して網膜の外植片を取り巻く全体の1×PBSを除去するために、100μlのピペットを使用してください。 </li><li>全体の網膜の外植片をカバーするためにキュベットに100μlのプラスミド溶液を追加します。それがトップに浮上する場合は慎重にピンセットで網膜の外植片を押し下げます。キュベットの底にキュベットおよび視神経のいずれかの側を向くようにレンズを配置する鉗子又は電極を使用してください。 </li><li>組織に触れることなく、レンズと網膜（ 図2A）の背後にある負極の前で正極を配置します。 </li><li>フットペダルを押し下げて電流を適用します。成功した放電を示す電極での泡のために確認してください。 </li><li>網膜を損傷することなく、キュベットからすべてのプラスミドミックスを除去するために、100μlのピペットを使用してください。プラスミド混合物は、3〜5回再利用することができます。 </li><li>予め温めた（37℃）1×PBSでキュベットを埋めます。優しくキュベットの壁から網膜外植片を分離するために鉗子を使用してください。エレクトロポレーション後、網膜は、時にはそれがキュベットの壁に付着させる泡で覆われています。 </li><li>ウェルあたり1ミリリットル予め温め（37℃）培地を含む24ウェルプレートに全体の網膜の外植片を転送するためにポリエチレンパスツールピペットを使用してください。ウェルあたり1網膜外植片をインキュベートします。 </li><li> 24時間、5％CO 2で細胞インキュベーターの内部で、毎分50回転の一定速度で、回転子シェーカー上で37℃での網膜外植をインキュベートします。回転を培地にし、preveに最大の露出を確保することです24ウェルプレートの底に網膜のNT接着。 </li><li>ステップ4に進みます。 </li></ol></li><li>化学試薬を用いた全網膜外植片の治療 注意：全体の網膜の外植片の化学的処理は、ステップ2の後に直接実行することができます。 <ol><li> 1 DMEM：F12の栄養ミックス、10％のFBS、10 U / mlペニシリンストレプトマイシン、5μg/ mlのインスリン、および2mM L-グルタミン1を含む培地を準備します。 </li><li> 1ミリリットルにウェル当たり予め温め（37℃）培地を含む24ウェルプレートにステップ2.3から網膜外植片を転送するために、小さなスプーンを使用してください。ウェルあたり1網膜外植片をインキュベートします。 </li><li>化学試薬またはビヒクルを添加する前に5％CO 2での細胞培養器の内部で、50 rpmの一定速度で、回転子シェーカー上で37℃で60分間、全網膜外植片をインキュベートします。 </li><li>例えば、薬液を調製するCdk1 / 2阻害剤III、最終的にM期の進行13の阻害剤DMSO中、30μMの濃度。 </li><li>細胞インキュベーターから、全体の網膜の外植片を含む、24ウェルプレートを取り外します。 0.01％DMSO中300 nMのCdk1の/ 2阻害剤IIIの最終濃度で、その結果、網膜の中に直接化学試薬またはビヒクル（DMSO）の10μLを追加します。手動で、溶液中の化学試薬または車両の均一な分布を可能にするために、24ウェルプレートを回転させます。 </li><li>希望の時間（最大24時間）、5％CO 2のインキュベーターの内側に、毎分50回転の一定速度で、回転子シェーカー上で37℃での網膜外植片をインキュベートします。 </li><li>ステップ4に進みます。 </li></ol></li></ol> 4.固定全体網膜Eexplantsの凍結<ol><li>細胞インキュベーターから治療全体の網膜外植片を含む24ウェルプレートを取り外します。 </li><li> 1×PBSで1ミリリットル/ウェルの氷冷4％パラホルムアルデヒドを含む24ウェルプレートに網膜外植片を転送するために、小さなスプーンを使用してください。 Incuba15分間氷上でTE。 </li><li>網膜を洗浄するために1ミリリットル/ウェルの氷冷を1×PBSを含む24ウェルプレートに全体の網膜の外植片を転送するために、小さなスプーンを使用してください。氷上で10分間インキュベートします。 </li><li> 1ミリリットル/を1×PBSでよく氷冷30％スクロースを含む24ウェルプレートに全体の網膜の外植片を転送するために、小さなスプーンを使用してください。網膜の日胚に応じて1〜3時間、氷上でインキュベートします。 ST20について - ST25（E3）網膜は、1時間インキュベート、古い網膜は、スクロースより長いインキュベーション時間を必要としています。 </li><li>約500μlのクライオスタット凍結マウンティング培地を含むパラフィンフィルム上に全体の網膜の外植片を転送するために、小さなスプーンを使用してください。そっと小さなスプーンを使用して、凍結培地の網膜外植片を移動させることにより、できるだけ多くのショ糖、できるだけ削除します。 </li><li>凍結培地を含む埋め込む型に網膜外植を転送します。将来の切片を容易にするために、目の位置を調整します。 DRの全網膜外植片を含む埋め込む型を入れて中までのy氷は固体凍結されます。 -80℃で保存してください。 </li></ol>

<ol><li>Muramatsu, T., Mizutani, Y., Ohmori, Y., Okumura, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+three+nonviral+transfection+methods+for+foreign+gene+expression+in+early+chicken+embryos+in+ovo%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+Biophys+Res+Commu%22%5BJournal%5D)">Comparison of three nonviral transfection methods for foreign gene expression in early chicken embryos in ovo.</a> Biochem Biophys Res Commu. 230, 376-380 (1997).</li>
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<li>Kohl, A., Hadas, Y., Klar, A., Sela-Donenfeld, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Axonal+patterns+and+targets+of+dA1+interneurons+in+the+chick+hindbrain%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosc%22%5BJournal%5D)">Axonal patterns and targets of dA1 interneurons in the chick hindbrain.</a> J Neurosc. 32, 5757-5771 (2012).</li>
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<li>Thangaraj, G., Greif, A., Layer, P. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simple+explant+culture+of+the+embryonic+chicken+retina+with+long-term+preservation+of+photoreceptors%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+eye+re%22%5BJournal%5D)">Simple explant culture of the embryonic chicken retina with long-term preservation of photoreceptors.</a> Exp eye re. 93, 556-564 (2011).</li>
<li>Shirazi Fard, S., All-Ericsson, C., Hallbook, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+heterogenic+final+cell+cycle+of+chicken+retinal+Lim1+horizontal+cells+is+not+regulated+by+the+DNA+damage+response+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Cycl%22%5BJournal%5D)">The heterogenic final cell cycle of chicken retinal Lim1 horizontal cells is not regulated by the DNA damage response pathway.</a> Cell Cycl. 13, 408-417 (2014).</li>
<li>Shirazi Fard, S., Thyselius, M., All-Ericsson, C., Hallbook, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+terminal+basal+mitosis+of+chicken+retinal+Lim1+horizontal+cells+is+not+sensitive+to+cisplatin-induced+cell+cycle+arrest%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Cycl%22%5BJournal%5D)">The terminal basal mitosis of chicken retinal Lim1 horizontal cells is not sensitive to cisplatin-induced cell cycle arrest.</a> Cell Cycl. 13, 3698-3706 (2014).</li>
<li>Hamburger, V., Hamilton, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+series+of+normal+stages+in+the+development+of+the+chick+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Morphol%22%5BJournal%5D)">A series of normal stages in the development of the chick embryo.</a> J. Morphol. 88, 49-92 (1951).</li>
<li>Gavet, O., Pines, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Activation+of+cyclin+B1-Cdk1+synchronizes+events+in+the+nucleus+and+the+cytoplasm+at+mitosis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Bio%22%5BJournal%5D)">Activation of cyclin B1-Cdk1 synchronizes events in the nucleus and the cytoplasm at mitosis.</a> J Cell Bio. 189, 247-259 (2010).</li>
<li>Sauer, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitosis+in+the+neural+tube%5BTitle%5D)+AND+%22J+Comp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Mitosis in the neural tube.</a> J Comp Neurol. 62, 377-405 (1935).</li>
<li>Baye, L. M., Link, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interkinetic+nuclear+migration+and+the+selection+of+neurogenic+cell+divisions+during+vertebrate+retinogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosc%22%5BJournal%5D)">Interkinetic nuclear migration and the selection of neurogenic cell divisions during vertebrate retinogenesis.</a> J Neurosc. 27, 10143-10152 (2007).</li>
</ol>

著者らは、競合する金銭的利益はないと宣言している。

この作品では、切開、エレクトロポレーションまたは化学的処理、およびニワトリ胚からの全体の網膜の外植片を培養するための詳細なプロトコルが提示されています。このプロトコルは、迅速、簡単であり、高い成功率と再現性の両方を可能にします 結果。 全網膜外植片のエレクトロポレーションは、対象の遺伝子構築物を発現する細胞の大部分を生成します。これは、正確に電極を配置することと定義されるDNAプラスミド濃度に網膜の特定の部分を露出することが容易です。このアプローチは、 卵内電気穿孔と比べて一般的に高い成功率と網膜における遺伝子機能を研究するための信頼性の高い方法を可能にする。全体の網膜外植も与える化学試薬の規定された濃度を含む培地に網膜を露出させることが可能となります神経網膜中の試薬 ​​の均一な分布。プロトコルを組み合わせを可能にします網膜が最初にエレクトロポレーションした後の物質で処理するトリートメント。処置群および対照眼の双方が同一の胚から収集することができ、独立して扱われるので、個々の胚間の変動の影響を...

網膜は中枢神経系の一部であり、その相対的な簡単さと十分に特徴付け細胞構造、中枢神経系の発達を研究するための人気のあるモデルです。ニワトリ胚の眼は、胚の残りの部分に比べて相対的に大きいです。従って、このような注射またはエレクトロポレーションなどの実験操作のための卵内に容易にアクセスでき、網膜細胞や生体内で発生生物学に関する知識を得るための優れたツールとして機能します。実験は、エレクトロポレーション、反復注射、または組み合わせた実験操作と同様に侵襲的であるとき、これらの主要な利点にもかかわらず、胚の生存率は低くすることができます。 卵内ニワトリ胚へのDNAプラスミドのエレクトロポレーションは重要であり、十分に確立された技術1です。これは、神経細胞の標識化を可能にする細胞の運命の追跡だけでなく、中央NERVにおける神経管OUのシステムは、それがインビボでタンパク質機能を解析するための異所性の遺伝子発現を可能にします。技術は、3後脳、および4網膜、神経管2の研究のために使用されてきました。 卵内胚網膜のエレクトロポレーションは、in vivoでの状況に関連したいくつかの実験の困難を持っています。胚の頭蓋折りたたみに起因する目の位置は、心臓に比較的近いです。この接近は、エレクトロポレーション後の心停止のリスク、および胚の年齢とともにリスク増加が増加します。また、目にアクセスするために、それによって出血、奇形およびその後の生存率減少のリスクを増加させる、胚の膜を開くことが必要です。既知の表現型の結果なしで、多くの場合、新たなDNAプラスミドをテストし、最適化する場合、これらの制限はあっても、経験豊富な実験者のための方法の有効性とパワーを減少させることができます。このプロトコルは、Wの文化の中で提示したよう削除色素上皮と神経網膜全体として形成された孔網膜外植は、OVOのアプローチで補完する効率的な方法です。 化学試薬の眼内注射は 、OVO で実行するのが比較的容易です。しかし、神経網膜内注射、試薬の有効かつ正確な濃度は、完全に制御することが困難な場合があります。注入量は、漏れに変えることができ、注射の正確な部位は、眼内の試薬の分布と硝子体を通して拡散の両方に影響を与える可能性があります。酵素阻害剤のための、すなわち、用量応答曲線を決定する際の変動は、結果の解釈のために主要な影響を有することになります。特に効果が小さく、効果の時間窓が狭い場合。血流を介し潜在的な全身作用のために、OVOの実験で行うときにまた、唯一の目には、各胚から使用することができます反対側の眼へ。開発および処置および対照胚は、追加実験の変動につながる可能性の間の個体差を検討する際に年齢のマッチングが重要です。 これらの理由のために、ニワトリ胚の網膜外植片に基づく方法卵EXは、神経網膜を均一に露出し、 インビトロで実験条件を制御することが可能で、開発されました。現在のプロトコルは、以前のプロトコル5-9に基づいて開発されました。ステージからの網膜外植体（ST）、ST31〜20（3胚日[E]）は、（E7）は、ニワトリ胚を培養し、解剖し、エレクトロポレーション定義DNAプラスミドの濃度または化学試薬の規定された濃度を含有する培地に曝露しました。ここで紹介するプロトコルは成功し、このようなKU55933、SB 218078、およびNSC 109555 DITOなどのDNA損傷経路の調節因子を含む、いくつかの異なる化学試薬を使用して、最近の出版物に実装されましたこのようするCdk1 / 2阻害剤III 10,11としてsylate、および細胞周期、。

<table><tbody><tr><td>1xPBS(タブレット)</td><td>ライフ</td><td>テクノロジー18912-014</td><td></td></tr><tr><td>10x DPBS</td><td>ライフ</td><td>テクノロジー14080-048</td><td></td></tr><tr><td>100 mmシャーレ</td><td>VWR</td><td>734-0006</td><td></td></tr><tr><td>100 &mu;l ピペットチップ</td><td>VWR</td><td>613-0798</td><td></td></tr><tr><td>1.5 ml 使い捨てプラスチックキュベット</td><td>Thomas Scientific</td><td>8495V01</td><td></td></tr><tr><td>24 ウェルプレート</td><td>Sigma Aldrich</td><td>D7039</td><td></td></tr><tr><td>35 mm シャーレ</td><td>VWR</td><td>391-1998</td><td></td></tr><tr><td>70% エタノール</td><td>Solveco</td><td>1054</td><td></td></tr><tr><td>Cdk1/2 阻害剤 III</td><td>217714</td><td>Calbiochem</td><td>300 nM 0.01%DMSO</td></tr><tr><td>細胞培養インキュベーター</td><td>サーモフォーマ</td><td></td><td></td></tr><tr><td>解剖顕微鏡</td><td>ライカ</td><td></td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>ライフテクノロジー</td>ズ <td>41966-029</td><td></td></tr><tr><td>電極</td><td></td><td></td><td>プラチナ、カスタムメイド</td></tr><tr><td>エレクトロスクエアポレーター ECM 830</td><td>ハーバード装置</td> F12 栄養ミックス ライフサイエンス テクノロジーズ<td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td>31331-028</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Life Technologies</td><td>16140-071</td><td></td></tr><tr><td>鉗子</td><td>AgnThos</td><td>0108-5-PS</td><td></td></tr><tr><td>凍結培地 NEG50</td><td>Cellab, Sweden</td><td>6502</td><td></td></tr><tr><td>GFP 発現 DNA プラスミド (pZGs)</td><td></td><td></td><td></td></tr>加<tr><td>湿インキュベーター</td><td>Grumbach Brutgeraete GmbH, Asslar, Germany</td><td>8204</td><td></td></tr><tr><td>インスリン</td><td>シグマ アルドリッチ</td><td>I9278-5ML</td><td></td></tr><tr><td>L-グルタミン</td><td>ライフ テクノロジー</td><td>ズ 25030024</td><td></td></tr><tr><td>封付媒体 プロロング ゴールド DAPI</td><td>ライフ テクノロジー</td><td>ズ P36935</td><td></td></tr><tr><td>パラフィン フィルム</td><td>VWR</td><td>291-1214P</td><td></td></tr><tr><td>パラホルムアルデヒド</td><td>シグマ アルドリッチ</td><td>16005-1KG-R</td><td></td></tr><tr><td>ピール ア ウェイ 埋め込み金型&nbsp;</td><td>シグマアルドリッチ</td><td>E6032</td><td></td></tr><tr><td>ペニシリンストレプトマイシン</td><td>ライフサイエンステクノロジー</td><td>ズ15140-122</td><td></td></tr><tr><td>ホスホヒストン3(PH3)&nbsp;</td><td>ミリポア</td><td>06-570</td>希釈<td>1/4,000</td></tr><tr><td>プラチナ電極(「ロンデル」からカスタムメイド)</td><td>Sargenta</td><td>390-R(ロンデラー)</td><td>直径:4mm、厚さ0.1mm</td></tr>の<tr><td>プラティマン電極&nbsp;</td><td>Sonidel</td><td>CUY700P4L</td><td>直径:4 mm</td></tr><tr><td>ポリエチレンパスツールピペット</td><td>VWR</td><td>612-2853</td><td></td></tr>ロー<tr><td>テーターシェー</td><td>カーVWR</td><td>444-2900</td><td></td></tr><tr><td>スモールスプーン</td><td>VWR</td><td>231-2151</td><td></td></tr>ショ<tr><td>糖</td><td>VWR</td><td>443815S</td><td></td></tr><tr><td>ホワイトレグホーン卵</td><td></td><td></td>地元の<td>サプライヤー</td></tr><tr><td>ワインクーラーWineMaster</td><td>24、Caso, ベルリン, ドイツ</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

エレクトロポレーションおよび化学試薬の治療のための鶏胚からの全網膜の外植片

Whole Retinal Explants from Chicken Embryos for Electroporation and Chemical Reagent Treatments

網膜は、発展途上の中枢神経系のための優れたモデルです。 OVO / in vivoでの実験操作のための目のサイズが大きいと、最も重要なアクセシビリティ鶏胚網膜汎用性と非常に効率的な実験モデルを作成します。鶏の網膜は眼内注射またはエレクトロポレーションによって卵内標的にするのは簡単ですが、網膜内の試薬 ​​の効果的かつ正確な濃度は、完全に制御することが困難な場合があります。これは、眼または物質の不均一な拡散の正確な注射部位、漏れの変動に起因し得ます。さらに、このようなエレクトロポレーションなどの侵襲的な操作後の奇形や死亡の頻度はかなり高いです。 このプロトコルは、ニワトリ胚から全網膜の外植片を培養する技術OVO EXを記述し、試薬に網膜の制御された露光のための方法を提供します。プロトcolが実験的に、解剖操作、ニワトリ胚の培養全体の網膜の外植する方法について説明します。外植片は、約24時間培養することができ、例えば、エレクトロポレーションのような別の操作に付すこと。主な利点は、実験は、胚の生存に導入試薬の濃度を変化させると効果的な濃度を決定し、最適化するために制御することができる依存しないことです。さらに、この技術は、その高い実験成功率とともに、迅速、安価であり、それは再現性を保証します 結果。それは卵内行われた実験に優れた補完するものとして機能していることを強調すべきです。

このプロトコルは、ニワトリ胚からの全体の網膜の外植片の準備（ 図1A-F）および培養について説明します。このプロトコルが正常にST31にST20（E3）の胚からの全体の網膜外植（E7）のために使用されています。 全網膜外植片へのDNAプラスミドのエレクトロポレーションは、網膜前駆細胞の標識および追跡のためにまたは過剰発現の異なる遺伝子産物のことができます。エレクトロポレーション実験のために、色素上皮を慎重ST25（E4 1/2）胚の除核眼から削除されました。全網膜外植片を、次いでDNAプラスミド溶液を含むキュベットに入れ、電極（ 図2A）に沈めた後、電流を印加しました。培養の24時間後、GFP陽性細胞は、無傷の網膜（ 図2B）の大部分が見えました。切片後、単一のGFP +細胞を簡単に網膜（FIのapico-基底軸に沿って検出されましたグレ2C）。エレクトロポレーションは、プラスミドを占有し、レポーター遺伝子を発現する大網膜の領域をもたらしました。エ...

このプロトコルは、解剖実験的に操作し、ニワトリ胚の培養全体の網膜外植する方法について説明します。高い成功率、有効性と再現性をエレクトロポレーションおよび/ ​​または試薬物質、 すなわち、酵素阻害剤のためのプラスミドの効果をテストするために必要な場合、外植片培養は便利です。

The retina is a good model for the developing central nervous system. The large size of the eye and most importantly the accessibility for experimental ...

この手順の全体的な目的は、ニワトリ胚からの網膜インプラント全体を実験的に解剖し、操作および培養することです。まず、ニワトリ胚から両眼を採取し、ペトリ皿に配置することでこれを達成します。次のステップでは、微細ピンセットを用いて強膜および色素上皮を除去します。次に、網膜外植片全体に対し、平板円形電極を用いてプラスミドDNAのエレクトロポレーションを行います。最後に、24ウェルプレートに入れ、インキュベーター内で培養液を用いて網膜外植片をインキュベートします。最終的に、網膜インプラント全体を固定し、凍結切片を作成し、免疫蛍光顕微鏡法で解析して網膜ニューロンを可視化します。in OVO電気手術などの既存の手法に対する本手法の主な利点は、迅速かつ容易に実施でき、再現性のある結果が得られることです。この手法は、培養後の酵素阻害剤や細胞周期を標的とする遺伝子産物などの特定の化学試薬によって神経発生がどのように影響を受けるかといった、中枢神経系発達分野における重要な疑問を解決するのに役立ちます。目的の胚齢の卵をラミナーフローフード内に置き、胚の汚染を防ぐために卵殻を70% ethanolで拭きます。卵の側面を硬い表面に強く叩きつけて殻を割り、中身を100 millimeterのペトリ皿に移します。組織の乾燥を防ぐため、小さなスプーンを使用して胚を37 degrees Celsiusに予熱したPBSを含む35 millimeterのペトリ皿に転移させます。次に、胚を脱頭し、胚組織が入った35 mmのペトリ皿を、層流クリーンベンチ内の実体顕微鏡に置きます。微細ピンセットを用いて、眼の下側にある口から切開します。切開部位から、眼全体を囲む組織を切り開きます。次に、視神経を摘み切り、眼球を眼窩から取り出します。同一の胚から左眼と右眼の両方を回収し、それぞれをコントロール群または処置群として使用します。微細鑷子（ピンセット）を用い、小さなスプーンで眼球を、あらかじめ温めておいたPBSを入れた新しい35 millimeterのペトリ皿に移します。強膜上の組織を含む、眼の周囲の組織をすべて除去します。次に、神経網膜を損傷しないように注意しながら、眼の背側にある色素上皮に小さな切開を入れます。その後、切開部位から色素上皮をゆっくりと裂いて開きます。水晶体と網膜全体を硝子体に付着させたままにします。色素上皮を取り除きますが、眼の前方領域にある瞳孔周囲の毛様体および脈絡膜裂に沿った部分は除去が困難であるため、注意して作業してください。電極のスイッチを入れ、ハンバーガーおよびHamiltonステージの電圧を、ステージ20〜25の網膜の場合は15 Vに、ステージ26〜27の網膜の場合は20 Vに設定します。次に、パルス繰り返し回数を50ミリ秒のパルス5回に設定し、パルス間隔を1秒にします。両手で電極を固定する必要があるため、床置きのフットペダルで操作可能なパルスジェネレーターを使用してください。特製のパドル型白金電極2本を、パルスジェネレーターの出力ソケットに接続します。ここに示した電極は、0.1 mmの白金板で製作し、0.8 mmの接続線は絶縁処理を施した。プラスチックチューブを用いて、先端を切断したポリエチレン製パストゥールピペットで、網膜剥離組織全体を慎重に容器へ移す。網膜はプラスチックに付着して裂けやすいため、ピペットチップの使用は避けること。次に、100 µL ピペットを使用して、網膜外植片の周囲にある PBS を慎重にすべて取り除きます。網膜を破裂させないよう、網膜に触れないように注意してください。希釈したプラスミド溶液を 100 µL 加え、網膜外植片全体が溶液で覆われていることを確認します。網膜剥離片が浮き上がった場合は、ピンセットでそっと押し下げてください。ピンセット電極を用いて、レンズがveteのいずれかの側を向くように配置し、視神経をveteの底方向に向けてください。次に、組織に触れないように、陽極をレンズの前に、陰極を網膜の後ろに配置します。フットペダルを押し込んで電流を流し、電極に気泡が発生していることを確認して、正常に放電されたかを確認します。100 µL ピペットを使用して、網膜を傷つけないように注意しながら、qve からプラスミドミックスをすべて取り除きます。プラスミドを除去した後、プラスミドミックスは3回から5回まで再利用可能です。あらかじめ温めておいたPBSをveteに満たします。ピンセットを用いて、retinal explanをveteの壁面から慎重に剥離させます。次に、ポリエチレン製パステットピペットを使用して、retinal explan全体を、1 mLの温めた培地が入った24ウェルプレートに移します。1ウェルにつき、網膜外植片を1つだけ培地でインキュベートします。網ymethyl外植片を、50 RPMの一定速度で回転させるロータリーシェーカーを用い、37 °C、5% CO2の条件下でインキュベートします。回転させることで、培地への曝露を最大限にし、網膜が24ウェルプレートの底面に付着するのを防ぎます。24時間の培養後、エレクトロポレーションによって広範な網膜領域がプラスミドを取り込みレポーター遺伝子を発現したため、無傷の網膜の大部分にGFP陽性細胞が確認されました。切片作成後、網膜のACO基底部軸に沿って単一のGFP陽性細胞が容易に検出されました。網膜組織片全体を、さらに約24時間長く培養することが可能です。培養時間は、発生の遅延、形態的な奇形、アポトーシス、そして最終的には網膜の崩壊を招く可能性があります。24時間培養した全網膜外植えの切片をリン酸化ヒストンH3で免疫染色したものがここに示されており、赤色チャンネルで表示されています。リン酸化ヒストンH3は、G2/M期の後半にある細胞を標識します。pH3陽性細胞は網膜の頂端側に認められ、これは正常な網膜の発達と一致しています。ここで示されているように、この発達はCDK1/2阻害剤の添加によって遮断することが可能です。イメージングの4時間前に阻害剤でインキュベートしたところ、発達後の網膜におけるpH3陽性細胞数が大幅に減少しました。この手法は、新規DNAプラスミドからの報告された遺伝子発現の調査や、DNA損傷経路および細胞周期の調節因子を含む化学試薬による網膜外植片の処理に有効に活用されてきました。本手順の後、結果をさらに確認するために、in ovo 電電操作などの他の手法を実施することができます。

whole-retinal-explants-from-chicken-embryos-for-electroporation

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

発生生物学

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エレクトロポレーションおよび化学試薬の治療のための鶏胚からの全網膜の外植片

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