Name: ヒト間葉系幹細胞（MSC）の免疫調節特性の評価 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-12-24T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 20 s
Description: 学ぶヒト間葉系幹細胞の免疫調節特性評価法。末梢血白血球との共培養系とCFSEラベリングを用いて、白血球増殖と特定サブ集団への影響を解析し、治療応用への可能性を明らかにする。

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この作業は、NHRIからの助成金(CS-104-PP-06からB.L.Y.)によって部分的に支援されました。

施設内倫理委員会によって承認された患者のインフォームドコンセントは、ヒト細胞の使用を取得する必要があります。 ヒト末梢血単核細胞（PBMC）の1の密度勾配分離<ol><li> 25ミリリットルのピペットで50mlチューブに全血をヘパリン化25ミリリットルを追加します。 <ol><li>リン酸緩衝生理食塩水（PBS）25mlで細胞を希釈します。 </li></ol></li><li>新しい50mlのチューブにフィコール - パック密度勾配の15ミリリットルを追加し、チューブを傾けながら、全血のない混合を伴うがないように、非常にゆっくりと慎重に、密度勾配の上に希釈した細胞懸濁液の25ミリリットルを追加密度勾配、 すなわち 、血液の密度勾配界面の乱れ。 </li><li>遠心分離（20℃）ブレーキなし温度制御スイングバケットローターで30〜40分間グラム×400で、ステップ1.2からサスペンション。 注：3つの異なる層を遠心分離した後に明らかであるべきである：目プラズマであること電子上層;下部透明層は、フィコール - パーク密度勾配です。薄い、中間の細胞層はPBMCをさ</li><li>吸引し、単核細胞 （すなわち、リンパ球、単球、および血小板）の間期層を乱さないように注意して、パスツールピペットで吸引することにより、上層を捨てます。 </li><li>慎重に新しい50mlの遠心管に10 mlピペットでこの単核細胞層を収集します。 </li><li> 20mlのPBSでチューブを埋める、よく混ぜ、20℃で10分間、300×gで遠心します。遠心分離後、上清を完全に削除します。 </li><li> 20℃で10〜15分間200×gで細胞をPBS 20ml中のペレットと遠心機を再懸濁します。遠心分離後、上清を完全に削除します。 注：このステップは、血小板-不要内のPBMCですが削除されます。このステップは、血小板の完全な除去を確実にするために繰り返すことができます。 </li><li>特定の集団のない選択がされていない場合1mlのを停止するセル数16を実行した後の培養のための所望の白血球完全培地中、再懸濁細胞ペレット（10％ウシ胎児血清（FBS）、1％L-グルタミン、およびRPMI-1640培地中に1％のペニシリン/ストレプトマイシン）次のステップに進む前に、10 7のPBMCあたりの媒体。 </li></ol>白血球集団の2磁気標識（特定の集団の選択が必須でない場合は、ステップ4に進んでください） <ol><li>完全に10分と上清を除去し、300×gで遠心分離PBMC懸濁液。 </li><li> 10 7全細胞あたりのPBS80μlの再懸濁細胞ペレット。 </li><li> 10 7全細胞あたりの指定された磁気ビーズを20μl（単球を単離するための、すなわち、CD14磁気ビーズ、Tリンパ球の単離のためのCD4磁気ビーズ）を追加します。 </li><li>よく混合し、冷蔵庫で2〜8℃で15分間インキュベートします。 </li><li>洗浄するために10 7個の細胞あたりのPBS 1〜2 mlを加え、遠心10分間、300×gで。 </li><li>吸引し上清を完全にし、PBS500μlの10 8細胞まで再懸濁します。 </li></ol>白血球亜集団の3磁気選択注意：磁気ビーズセパレータと列の様々なメーカーの数から細胞表面マーカーによって白血球の特定の集団を単離するために利用可能です。分離は、1つまたは少数の正のマーカーにするか、不要な集団の枯渇後にネガティブ選択により基づく正の選択によって行うことができます。 （ すなわち、単球のためのCD4 + Tヘルパーリンパ球のために、またはCD14）は、1つのマーカーを使用して、正の選択を実行する一般的なアプローチは、以下に概説します。 <ol><li>準備し、製造元の指示に従って分離カラムを含むプライム磁気分離器。 </li><li>ラベルされたPBMCのサンプルを含むチューブを適用します。積極標識し、ラベル付け解除の収集のための2つの15ml遠心チューブを提供製造業者の指示に従って、細胞画分を編</li><li> 10 7細胞あたり1mlの培地を用いて、細胞数を15カウントおよび白血球完全培地中で正に選択白血球（ すなわち、CD4 + Tリンパ球またはCD14 +細胞）を再懸濁します。 </li></ol>増殖の評価のための白血球の4 CFSE染色注：CFSEは広くインビボおよびインビトロ 試験の両方のために、免疫学的研究において使用されています。私たちのプロトコルは、MSC / PBMC（または他の白血球）の相互作用のin vitroでの研究のために最適化されています。 CFSE in vitroでラベリングを行うに関わる一般的な手順は似ていますが、プロトコル14の具体的な用量およびタイミングの違いがあるかもしれません。これは、おそらくCFSE蛍光シグナルの強度に影響を与える可能性が使用される、多くの要因、 すなわち、使用される特定の細胞タイプ、細胞数とすることができます。 <ol&gt; <li> 10μM（CFSE-作業溶液）の所望の使用濃度になるようにPBSにCFSEストック溶液（10 mm）を希釈します。 CFSE-ワーキング溶液で標識するために10 7 細胞 （すなわち、PBMCを、またはT細胞）を準備します。 </li><li> 10分間、300×gで遠心分離し、細胞ペレットを得、上清を吸引します。 </li><li>穏やかに予め温めた（37°C）CFSE加工液1mlで細胞を再懸濁し、37℃で10分間細胞をインキュベートします。 </li><li>過剰CFSEを洗浄するために、予め冷却（4℃）RPMI培地を10％FBSを含有する（体積で）10倍で細胞懸濁液を希釈します。 5分間300×gの遠心分離により細胞を沈殿物と上清を捨てます。二回以上このようにして細胞ペレットを洗浄します。 </li><li>遠心分離によって細胞を再ペレット化し、細胞数15を数えます 。 1ミリリットル新鮮予め温め白血球完全培地中10 7細胞（PBMCまたはT細胞のいずれか）を再懸濁します。 </li></ol> Mの5共培養白血球や白血球の活性化とのSC <ol><li>せいぜい30分間37℃でプレ暖かいMSC完全培地（10％FBS（最適なMSCの成長のためにテスト済み）、1％L-グルタミン、およびDMEM低グルコース培地中で1％のペニシリン/ストレプトマイシン）。 </li><li> 24ウェルプレート中のMSCの完全培地1ml中の50,000個の細胞（MSC密度：25,000細胞/ cm 2）での種子のMSC 37℃のインキュベーター内の添付ファイルのO / Nのため、幹細胞を可能にするには、80％コンフルエンスに到達します。 </li><li>シードされたMSCの番号に基づいて、培地を吸引し、、CFSE標識したPBMCを追加（以前に標識してください上のプロトコル手順4を参照）で白血球完全培地1ml中（24ウェルプレートに、前日に播種）培養したMSCへ午前1時10分（細胞比）のPBMCに対するMSCの共培養比率。 </li><li>ウェルあたり1 mlの白血球完全培地の全容量中10μg/ mlの最終濃度まで、マイトジェンのフィトヘマグルチニン（PHA）、非特異的な白血球の活性化剤を加えます。 <ol><li> Alternativエリーは、特にTリンパ球の活性化のために刺激するために、α-CD3 / 28マイクロビーズを使用して、1のビーズ対Tリンパ球の比率を得るために、2つの細胞の共培養に追加する：1。 </li></ol></li><li>ネガティブコントロールのために、プレート50万のPBMC /ウェル（または特定のエフェクター白血球の人口;細胞密度25万白血球/ cm 2）でのみ1ミリリットル白血球完全培地を含む24ウェルプレート中、陽性対照のために、加えて、よくのPBMC /同じ数のメッキを10μg/ mlの最終濃度にPHAを加えます。 </li><li>第3回と共培養実験の5日目に、フルオレセインに適した488 nmの励起および発光フィルターを備えたフローサイトメトリー分析によって17（丸底チューブに入れ）CFSE標識白血球の増殖を評価。 注：フローサイトメトリー分析のために細胞内サイトカイン染色はまた、Mo等の白血球のサイトカイン発現プロフィールの変化を評価するために、この時点でこれらのCFSE標識白血球に行うことができますMSCのことでdulated。 CFSEは、フルオレセインのフィルタ適切に評価されているので、様々なサイトカインを評価するために選択された抗体は、フルオレセインまたは類似のスペクトル（クロロフィルタンパク質複合体（PerCPを）ペリジニンすなわち、フィコエリトリン）以外の蛍光色素にコンジュゲートされる必要があります。 </li></ol> 6.バリエーション：エフェクター抑制アッセイ磁気ビーズ選択、MSCによって誘発される免疫調節白血球活性化CFSE標識エフェクターCD4 + T細胞上の<ol><li> 6ウェルプレート中のMSCの完全培地3ml中250,000細胞（MSC密度：25,000細胞/ cm 2）での種子のMSC 37℃のインキュベーター内の添付ファイルのO / Nのため、幹細胞を可能にするには、80％コンフルエンスに到達します。少なくとも3つの6ウェルプレートは、亜集団の選択のための十分なMSC-共培養したPBMCを確保するために必要です。 </li><li>培地を吸引し、2.5×10 6細胞/ウェル（細胞密度でステップ1の通りが、6ウェルプレートで分離されたPBMCを追加25万ルを白血球完全培地3mLでukocytes / cm 2）でした。 37℃のインキュベーター中で48〜72時間のための共培養。 </li><li>磁気ビーズ選択セクション2-3のとおり、MSCによって誘発される免疫調節白血球（ すなわち、CD14 +細胞 ）の特定の集団を。 注：フローサイトメトリー分析のために細胞内サイトカイン染色は、白血球のサイトカイン発現プロフィール、 すなわち、の発現の変化を評価するために、この時点で行うことができるインターロイキン10などのMSCによって変調されます。 </li><li>様々な比でビーズ選択MSC誘導性の白血球：白血球完全培地1ml中の24ウェルプレート内のセクション2-4に従って生成されたCFSE標識同種CD4 + T細胞（250,000細胞/ cm 2のT細胞の密度）が追加しますすなわち、1：10、1：5,1：2、及び1：1（セルのセルに）比。 </li><li> 1：CD4 + T細胞を刺激するために、1のビーズ対細胞比を得るために、α-CD3 / 28共役マイクロビーズを加えます。 </li><li>ネガティブコントロール、プレート5の場合24ウェルプレート中0万CD4 + T細胞/ウェル（T細胞密度250,000細胞/ cm 2）でのみ1 mlの白血球完全培地と。 1：ポジティブコントロールのために、CD4 + Tの同じ数をメッキに加えて細胞/ウェルを、1のビーズ対細胞比を得るために、α-CD3 / 28共役マイクロビーズを追加します。 </li><li>共培養の3 日目に、フルオレセインに適した488 nmの励起および発光フィルターを備えたフローサイトメトリー分析により、16（丸底チューブに入れ）CFSE標識CD4 + T細胞の増殖を評価します。 </li></ol>

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開示するものは何もありません。

MSCの免疫調節特性は、これらの幹細胞の多系統能力よりも急速に臨床使用に変換されています18-20。したがって、MSCと白血球の共培養技術および免疫機能を評価するためのアッセイは、効果的な治療適用を最適化するために、これらの特性に関与する特定のメカニズムをさらに説明するために重要です。 
これらのアッセイを成功させるための最も重要な技術的側面の1つは、ヘパリン化全血サンプルの開始細胞数と密度勾配分離後のPBMC純度に依存する適切なPBMC数を持つことです(ステップ1.3)。全血と密度勾配が混ざらないように、全血を密度勾配に慎重に重ねることは、赤血球と血小板を確実に除外するために重要です。もう一つの重要な考慮事項は、強力な増殖のためにエフェクター白血球を適切に活性化する必要性であり、そうでなければ抑制を識別することは困難です。これは純度だけでなく、アッセイの技術的専門知識に加えて、個人差、保存手順、採血から実験までの時間などの変数によって影響を受ける可能性のあるヒト白血球の開始の品質にも依存します。個人差の問題は解決できないため、MSCは初代単離細胞であるため、...

ヒト間葉系幹細胞（MSC）は、いくつかのextramesodermal系統5と同様に、骨、軟骨、および脂肪組織1-4の近軸中胚葉系統に分化することができる体細胞前駆細胞です。まず成人の骨髄から分離され、これらの多前駆細胞は現在臨床応用9-12に非常に適して表示され、強力な免疫調節特性を有することが示され、予想外に、多くの組織6-8で発見されています。免疫調節作用に関与する詳細なメカニズムは、積極的に特定の疾患実体の効果的なアプリケーションのために検討されています。免疫調節を評価するための最も簡単な方法の一つは、エフェクター白血球増殖13の抑制のための評価によるものです。刺激または活性化されると、このようなTリンパ球や単球などのほとんどのエフェクター白血球がprodigiously増殖します。免疫調節機能を評価することができるときの抑制増殖が明らかです。 伝統的に、エフェクター白血球の増殖は、DNAへの[3 H]チミジンの取り込みを検出することにより評価しました。しかしながら、この方法は、放射線及び使用後の廃棄の問題、ならびに必要に応じて複雑な装置に起因する重大な欠点を有します。細胞増殖を評価するための非放射性アッセイがあるが、カルボキシフルオレセインスクシンイミジルエステル（CFSE）アッセイは、複数の細胞型を含む共培養実験に特に有用である特定の細胞集団の同定を可能にするような他の利点を有します。 CFSEは、フローサイトメトリー分析によって評価することができる蛍光細胞の色素です。細胞が分裂するように、この細胞の標識の強度が比例し減少します。これは、全体的な細胞増殖の決意を可能にするだけでなく、蛍光がDETに困難になる前に8分割までの細胞分裂の数を評価するためにできるだけでなく電気ショック療法背景信号に対して。また、蛍光CFSEの安定性は、細胞が何ヶ月14までの視覚化することができるように標識された細胞のin vivoでの追跡が可能になります。 このアッセイはまた、磁性ビーズの表面マーカーの選択を行うことにより、CD14 +単球 15を生成する （IL-10）エフェクター白血球またはMSCによって誘導される免疫白血球、インターロイキン10などの特定の集団の免疫調節機能の特定のタイプを評価するために変えることができます前または適切な共培養後に目的の細胞集団。我々のプロトコルは、エフェクター白血球上のMSCの免疫調節効果を評価する基本的なアッセイ（フロー・チャートを図1に示す）と同種CD4 +エフェクター Tリンパ球上のMSCによって誘導される白血球の免疫調節の評価のためのこの基本的なアッセイの変形（図示フローチャートを説明します図4で）。

<table><tbody><tr><td>Ficoll-Paque PLUS</td><td>GE Healthcare</td><td>71-7167-00 AG</td><td>末梢血単核細胞(PBMC)の単離のための密度の壮大な</td></tr>もの<tr><td>Vibrant CFDA-SE Cell Tracer Kit (CFSE)</td><td>Life Technologies</td><td>V12883</td><td>細胞分裂の検出のための細胞ラベル</td></tr><tr><td>Phytoagglutinin (PHA)</td><td>Sigma</td><td>L8902</td><td>ヒトPBMCの活性化</td></tr><tr><td>Dynabeads Human T-Activator CD3/28</td><td>Life Technologies</td><td>111.32D</td><td>ヒト T リンパ球、例えばCD4+ T 細胞、CD8+ T 細胞、etc.</td></tr><tr><td>autoMACS&trade;セパ</td><td>レーターMiltenyi Biotec</td><td>autoMACS&trade;セパレータ</td><td>磁気ベースのセルセパレータ</td></tr><tr><td>autoMACS&reg;カラム</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-021-101</td><td>分離カラム</td></tr><tr><td>CD14 マイクロビーズ、ヒト&nbsp;</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-050-201</td><td>PBMCs CD4マイクロビーズ、ヒトからのCD14+ヒト単球およびマクロファージの正の選択</td></tr>のために<tr><td>&nbsp;</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-045-101</td><td>CD4+ PBMCからのヒトTリンパ球の正の選択のために</td></tr><tr><td>RPMI 1640 Medium</td><td>Life Technologies</td><td>11875</td><td>ヒトPBMC/白血球培養培地</td></tr><tr><td>DMEM、低グルコース、ピルビン酸</td><td>Life Technologies</td><td>11885</td><td>ヒト間葉系幹細胞(MSC)培養培地</td></tr>L<tr><td>-グルタミン</td><td>Life Technologies</td><td>25030-081</td><td>MSC完全培地</td></tr><tr><td>ペニシリン/ストレプトマイシン</td><td>のサプリメント Life Technologies</td><td>15070-063</td><td>PBMC/白血球およびMSC完全培地</td></tr><tr><td>ウシ胎児血清(FBS)</td><td>1)ハイクロン、MSC培養用&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;2) Life Technologies, for all other cells (i.. PBMC, specific leukocyte population)</td><td>1) SH30070.03M 2) 10091-148</td><td>MSC in vitro</td></tr><tr><td>24ウェル細胞培養プレート</td><td>Corning</td><td>COR3524</td><td>Co-culture plate</td></tr><tr><td>50 ml 遠心分離チューブ</td><td>Corning</td><td>430291</td><td>Ficoll-Paque PLUS</td></tr><tr><td>15 ml 遠心分離チューブによる全血からの PBMCS の分離&nbsp;</td><td>Corning</td><td>430766</td><td>標識細胞画分と非標識細胞画分のコレクション</td></tr><tr><td>丸底チューブ</td><td>BD Falcon&nbsp;</td><td>352008</td><td>フローサイトメトリー解析のための細胞の収集</td></tr></tbody></table>

ヒト間葉系幹細胞（msc）の免疫調節特性の評価

Assessment of the Immunomodulatory Properties of Human Mesenchymal Stem Cells (MSCs)

多系統のヒト間葉系幹細胞(MSC)の免疫調節特性は、広範囲の免疫関連疾患に対する臨床使用に非常に関連性があるようです。そのメカニズムはますます解明されつつあり、本稿では、エフェクター白血球増殖の抑制をアッセイすることにより、MSC免疫調節を評価するための基本的な実験について述べる。活性化を表すために、白血球の増殖はいくつかの技術によって評価することができ、このプロトコルでは、蛍光細胞色素カルボキシフルオレセインスクシンイミジルエステル(CFSE)を使用して、その後のフローサイトメトリー分析で白血球を標識する方法について説明します。この技術は、放射能を伴わない増殖だけでなく、発生した細胞分裂の数も評価できるだけでなく、増殖細胞の特定の集団や細胞内サイトカイン/因子発現の同定も可能にします。さらに、このアッセイは、MSCとの共培養に先立って、単一の末梢血単核細胞集団の磁気ビーズ表面マーカー選択により、エフェクター白血球の特定の集団を評価するように調整することができます。この共培養アッセイの柔軟性は、MSCと白血球との間の細胞相互作用の研究に役立ちます。

図1は、実験の全体的なスキーマを示し、 図2は、位相差倒立顕微鏡によって可視化のような種々の細胞培養条件の外観を示しています。 PBMCおよび白血球が小さな丸い非付着細胞であるのに対し、MSCは、線維芽細胞、紡錘状形態を有する接着性の細胞です。これらの二つの形態学的に異なる細胞型が明らかに共培養に見ることができます。アッセイの終了時に、PBMCを（またはleuckotyes）は、フローサイトメトリーのために吸引される際に付着したMSCが誤って評価するには問題があってはならない、（不良による添付ファイルまたは積極的な吸引により脱落する、すなわち ）含まれていても、分析これらの細胞を以降のPBMC /白血球分画をCFSEで標識されるであろう。全く増殖が存在しない場合には、CFSE標識細胞のヒストグラムの結果は、1つの高度に陽性の鋭いピークとして見られます。活性化が発生した場合しかし、増殖は明らかBとは明らかであろう損失及び蛍光強度の左シフト（ 図3）とyの複数の小さなピーク。増殖の抑制が発生したときに右の鋭さに右と増加にピークのシフトによって証明されるように、 ...

ヒト間葉系幹細胞（MSC）の免疫調節特性は、臨床応用のため、ますます関連現れます。蛍光色素カルボキシフルオレセインスクシンイミジルエステル（CFSE）で前染色MSCおよび末梢血白血球の共培養系を用いて、我々は、エフェクター白血球の増殖および特定の亜集団におけるMSCの免疫調節のインビトロ評価を記載します。

ヒト間葉系幹細胞（MSC）の免疫調節特性の評価

The immunomodulatory properties of multilineage human mesenchymal stem cells (MSCs) appear to be highly relevant for clinical use towards a wide-range of ...

この実験の全体的な目的は、ヒト間葉系幹細胞（MSC）の免疫調節能を評価することです。この手法は、治療への応用が期待されるヒト間葉系幹細胞の免疫調節に関与するメカニズムを解明するのに役立ちます。この技術の主な利点は、エフェクター白血球の増殖と細胞分裂回数の両方を評価できることであり、これにより手順が適切に実施されることが示されます。私の研究室の技術者が、PBMCを分離するために、まず50 mLコニカルチューブ内で、ヘパリン処理した全血サンプル25 mLを25 mLのPBSで希釈します。次に、新しい50 mLチューブにFicoll-Paque密度勾配液を15 mL加えます。その後、チューブを傾けた状態で、希釈した細胞懸濁液を密度勾配の上にゆっくりと重層させます。注意深く操作することで、層の混ざり合いを防ぎます。本実験において最も重要なステップの一つは、密度勾配を乱さずに血液を層状に重層させることです。これにより、単離したpbmcの高純度を確保し、赤血球による汚染を低減させることができます。次に、遠心分離により細胞を分離します。3つの異なる層が明確に現れるはずです。上層の血漿層、下層の Ficoll 密度勾配層、そしてその中間に薄い PBMC 層が形成されます。PEピペットを用いて、界面層を吸引しないように注意しながら上層を除去します。次に、10 mLピペットを用いてPBMCを50 mLコニカルチューブに慎重に移します。細胞を20 mLのPBSで混合し、遠心分離して密度勾配の残渣を除去します。次に、血小板を除去するために、ペレットをさらに 20 milliliters の PBS で洗浄します。2回目のペレットを、1 × 10⁷ cells/milliliter の濃度になるように完全白血球培地で再懸濁します。MSCと白血球の共培養を準備するために、完全MSC培地を 37 °C で 30 分以内に予熱します。次に、24ウェルプレートの各ウェルに、完全MSC培地1 mLあたり5 × 10⁴個のMSCを播種し、37 °Cで一晩培養して細胞を接着させ、コンフルエンシーが80%に達するようにします。翌朝、培地を吸引除去し、完全白血球培地1 mLを用いて、適切な数のCFSE標識PBMCをMSCに添加します。MSCとPBMCの比率を1:10とし、完全白血球培地1 mLあたり10 µgのPHAを用いて細胞を活性化させます。次に、共培養の3日目と5日目に、適切な数の共培養物をラウンドボトムのファルコンチューブに移し、フローサイトメトリー解析によってCFSE標識白血球の増殖を評価し、エフェクター抑制アッセイを行います。まず、先ほど実演したように、2.5 × 10⁶個のpBMCを250,000個のMSCと共培養し、MSC-pBMC共培養系を構築します。これは、サブポピュレーション選択

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学と感染症

このビデオでは、間葉系幹細胞(MSC)がエフェクターT細胞の増殖に及ぼす免疫調節効果を調査するためのin vitroアッセイを実演しています。このアッセイには、MSCとPBMCの共培養が含まれ、単球集団が免疫調節表現型を獲得するように誘導し、インターロイキン-10(IL-10)の分泌につながります。活性化されたCD4+...

白血球増殖に対する単球の免疫調節影響を評価するためのIn vitroアッセイ

ここでは、ヒトの骨髄(hBM)から中胚葉前駆細胞（MPCs）を単離するための最適化された、再現性の高いプロトコルについて説明します。MPCは、フローサイトメトリーおよびネスチン発現によって特徴付けられました。その結果、血管新生能を保持しながら、指数関数的に増殖するMSC様細胞培養を生じさせる能力が示されました。...

ヒト骨髄から単離することMesangiogenic前駆細胞（MPCは）

間葉系幹細胞/間質細胞(MSC)の治療可能性は十分に文書化されていますが、患者のために細胞を準備する最善の方法は依然として議論の余地があります。ここでは、実験的および臨床的な応用のために、ゼノフリー条件下でプライミングされたMSCの治療用球状凝集体または「スフェロイド」を効率的に生成および投与するためのプロトコルを伝達します。...

異種非含有条件下での3次元培養における治療間葉系幹/間質細胞の生産と管理（MSC）スフェロイドプライム

間葉系幹細胞 (MSC) の小さい割合 (1-5%) が静脈注射または腹腔内炎症コロン1,2ホーム大腸炎症モデルにおけるマウスの調査は示した。本研究は、MSCs...

実験的炎症性腸病気のマウスモデルで使用するため、腸管へのホーミングを増加するヒト間葉系幹細胞の超音波ガイド下心臓内注射

ここでは、機能、契約、心筋細胞のような細胞を生成するために若いヒト間葉系幹細胞源の心臓微分の潜在性を効率的に活用する方法を提案するの in vitro...

体外ヒト間葉系幹細胞の心筋細胞のような細胞への分化

ここで提示されるプロトコルは、pH感受性蛍光分子に結合された非オプゾン化酵母(zymosan)粒子のマクロファージ(MΦ)食作用の間葉幹細胞(MSC)媒介性調節の動的画像を定量化し、生成するプロトコルです。...

間葉系幹細胞のマクロファージ食前細胞の調節;定量とイメージング

脂肪組織は、間葉系幹細胞の優れた供給源です。ここでは、スイスのマウス精巣上体脂肪組織からの脂肪組織由来幹細胞(ADSC)の段階的な抽出、培養、および特性評価をもたらします。...

マウス精巣上体脂肪組織からの間葉系幹細胞の単離、In vitro拡大、および特性評価

このプロトコルでは、ヒトiPS細胞を間葉系間質細胞(MSC)に分化させるための2つの代表的な方法を説明し、比較します。単層法は、低コスト、操作の簡便さ、骨形成の分化の容易さを特徴としています。胚様体(EB)法は、時間消費が少ないという特徴があります。...

ヒト人工多能性幹細胞から間葉系間質細胞への分化のための2つの代表的な方法の比較

不均一なヒトUC-MSCを構成する3つの主要なサブグループの1つであるBAMBI高MFGE8高 MSCの単離は、このサブタイプの特性と機能を完全に理解するために役立ち、特定の疾患における臨床効果を改善するための将来の応用に役立ちます。ここでは、BAMBIの高MFGE8高...

ヒトBAMBI高MFGE8高 臍帯由来間葉系間質細胞の単離

ここでは、効率的に拡大し、精製ヒトNK細胞の数が多いし、その機能を評価する方法を説明します。...

拡大、精製、及びヒト末梢血NK細胞の機能的評価

学ぶヒト間葉系幹細胞の免疫調節特性評価法。末梢血白血球との共培養系とCFSEラベリングを用いて、白血球増殖と特定サブ集団への影響を解析し、治療応用への可能性を明らかにする。

ヒト間葉系幹細胞（MSC）の免疫調節特性の評価

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