Name: 油中水型エマルジョン：疎水性顔料と水溶性クロロフィル結合タンパク質を組み立てるための新しいシステム (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-03-21T14:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 26 s
Description: 学ぶ油中水型エマルジョンを用いた水溶性クロロフィル結合タンパク質と疎水性顔料の組み立て法。タグ付けや固定化を必要とせず、クロロフィル-タンパク質相互作用の研究と新規複合体構築に応用可能です。

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DNは、EU FP7プロジェクトのPEPDIODE（GA 256672）とREGPOT-2012-2013-1（GA 316157）、およびイスラエル科学財団からの個人研究助成金（第10分の268）からの支援を認めています。我々は、共焦点顕微鏡画像を撮影するための教授シュムエルルビンスタイン、工学応用科学の学校、ハーバード大学、ケンブリッジMA、USAに感謝します。

1.準備クロロフィル株価ソリューション<ol><li>重要なステップ：光損傷を最小限にするために、化学フードで、緑色光（520 nm）の下や暗所でのクロロフィルの準備のすべての手順を実行します。必ず、ストレージ用の顔料を凍結する前に、窒素またはアルゴンを追加します。全ての溶媒は分析グレードであることを確認してください。 </li><li>チラコイド膜にのみクロロフィルaを含有する凍結乾燥スピルリナプラテンシス細胞または他のシアノバクテリア細胞の約5mgを秤量し、乳鉢と乳棒を使用してそれをつぶします。 </li><li>負荷は、ガラスカラム上に細胞を破砕し、カロテノイドを除去するために約50〜100mlの％アセトンので洗います。溶出グリーン/オレンジ部分を破棄します。 注：オレンジ画分を100mlのアセトンで溶出されていない場合には、緑色の画分が溶出し始めるまでアセトンで細胞を洗浄し続けます。 </li><li> 100％のメタノールを使用してExchangeアセトンとクロロフィルaを含む緑色画分を収集します。溶出したFRACTの体積イオン50-100 mlの間で変化してもよいです。初めに、溶出画分を溶出の終わりに薄緑色に変化する暗緑色を持っています。溶出画分の色は薄緑色に変わったら溶出を停止します。 </li><li>抽出物が完全に乾燥するまでロータリーエバポレーターを用いてメタノールを蒸発させます。この溶液に熱を加えないでください。エバポレーターの水浴温度が30℃を超えないようにしてください。 注：蒸発時間が蒸発するメタノール画分の量に依存し、10〜60分の間で変化してもよいです。完全にエキスを乾燥させることが重要です。 </li><li>ジエチルエーテル（約5〜10 ml）を少量の乾燥抽出物から顔料を溶解し、脱脂綿でろ過します。顔料が完全にフィルタリングする前に、エーテル中に溶解されていることを確認してください。 </li><li>顔料は（10月30日分）完全に乾燥するまで、ジエチルエーテルを蒸発させます。 注：乾燥顔料はでパージし、で窒素またはアルゴン下に保持することができます-20℃で、さらに処理するまで暗いインチ</li><li>ないすべてが完全に中断されていても、100％メタノール（約1ml）の可能な最小量に乾燥顔料を溶解します。この溶液にアセトンの4ミリリットルを追加し、完全に顔料を溶解させるために穏やかにガラスをフリック。 </li><li>パスツールピペットを用いて、DEAEカラム上に静かにサンプルをロードし、100％アセトンで平衡化したセファロース。 </li><li> 100％アセトンでカロテノイド（橙黄色帯）を溶出します。 1（v / v）のアセトン/メタノール混合物：その後、3とクロロフィル（緑帯）溶出します。 注：アセトン、アセトン/メタノール混合物の体積がカラムに充填セファロースDEAEの容積とほぼ同等です。 </li><li>溶離液17として2ジクロロメタン/ n-ヘキサン/イソプロパノール/メタノール（v / v）の混合物：25：5クロロフィル68を用いた薄層クロマトグラフィーにより純度を確認。 </li><li>クロロフィルaが完全に乾燥するまで（ロータリーエバポレーターを用いて溶媒を蒸発させ、10-60分）。 注：乾燥クロロフィル窒素またはアルゴンでパージし、暗所に-20℃でアルゴン雰囲気下で保存することができます。 </li><li> 100％エタノール2〜4 ml中の乾燥クロロフィルaを再溶解することによりクロロフィルに原液を準備します。 注：663 nmでのクロロフィルaの吸光係数は74400センチメートル-1 M -1（83.3センチメートル-1（mg / mlで）-1）エタノールです。典型的なストック溶液を、25mM（23 mg / mlで）の濃度に対応する1860のODを持っている必要があります。クロロフィルの10倍モル過剰の対と混合して有機相の5ミリリットル、及び水相の結果の1ミリリットル中WSCP 1mgを含有するエマルジ ​​ョンに、この株式の20μLを追加しますWSCP。 </li></ol> 2.エマルジョンの有機相を準備注：エマルジョンの有機相（v / v）のスパン80 4.5％を含有する鉱油で構成され、0.4％（v / v）のツイーン80。 <ol><li> Tの50ミリリットルチューブ0.2グラムを計量、80スパン80を1.8g、および鉱油38gのをWEEN。よく、すべての成分を混合し、氷上で冷却します。 注：有機相は、一週間まで4℃で保存することができます。 </li></ol> 3.エマルジョンの水相を準備注：エマルジョンの水相は、精製WSCP、またはWSCPを過剰発現する細菌の粗抽出物のいずれかで構成されてもよいです。 <ol><li>精製WSCPを含む水相を調製しました。 <ol><li> 0.3から0.6のODまで37℃でLB培地1LにWSCPプラスミド12を含む大腸菌 BL21細菌を成長させます。 </li><li> 1mMのIPTGを添加することによってタンパク質発現を誘導します。誘導後12から16時間、30℃で細菌を成長させます。 </li><li> 4℃で10分間、5000×gで遠心分離によって収穫細菌。 </li><li>氷の上にバッファと超音波処理の結合にペレットを溶解させる（上30秒、15秒オフ、5回）。の250ミリリットルの遠心分離から得られたペレットのための緩衝液10mlを使用しますタンパク質を過剰発現する細胞を含むLB培地。 注：精製方法に応じて、結合緩衝液は、100mMのリン酸緩衝液（pH7.2）または50mMのトリス、pH7.5で、500mMのNaCl、5mMのEDTAから構成されてもよいです。 </li><li> 4℃で30分間12,000×gで細胞溶解物をスピンダウン。 </li><li>アフィニティークロマトグラフィーによってWSCPを精製します。 WSCPに融合したタグに応じて、製造業者の指示に従って、タンパク質精製のための適切な市販のアフィニティークロマトグラフィーシステムを使用して組換えタンパク質を精製します。 </li><li>エマルジョン調製のために、50 mMの中の精製WSCPリン酸緩衝液、pH 7.8を使用します。再構成のために使用される最終的なタンパク質の量がバッファの1ミリリットル当たり0.5〜1.0ミリグラムであることを確認してください。 </li></ol></li><li> WSCPで、粗細菌溶解物を含む水相を調製しました。 <ol><li> OD 0.3から0.6まで、37℃でLB培地250ml中のプラスミド発現WSCPを含む大腸菌 BL21細胞を成長させます。 </li><li>でタンパク質発現を誘導します1mMのIPTGおよび30℃で一晩細菌を増殖します。 </li><li> 4℃で10分間5,000×gでの遠心分離によって菌体を回収。 </li><li> 4℃で30分間、12,000×gで50 mMリン酸ナトリウム緩衝液pH 7.8、超音波処理（上の30秒、15秒オフ、三回）遠心1-2 ml中にペレットを溶解します。 </li><li> 50mMリン酸ナトリウム緩衝液pH 7.8の0.875 mlの上清0.125 mlと混合して、エマルジョンの水相を調製します。 </li></ol></li></ol>エマルジ ​​ョン中のクロロフィルAとWSCPの4アセンブリ<ol><li>ガラスバイアルへの転送油、界面活性剤混合物の5ミリリットルを、氷上にそれを冷却します。ピペッティングの前に、有機相のすべてのコンポーネントが完全に混合されていることを確認し、界面活性剤や鉱物油との間には相分離はありません。 </li><li>有機相の5ミリリットルにセクション3のように調製した氷冷水相の1ミリリットルを追加します。 </li><li>氷上で9,500 rpmで2分間、組織ホモジナイザーを用いて、両相を混ぜます。</li><li>重要なステップ：上のこの段階から、光損傷を最小限にするために、緑色の光（520 nm）の下にあるすべてのさらなるステップを実行します。 25 mMのクロロフィルストック溶液20μlを加えるエマルジ ​​ョンに（項1.13を参照してください）。フリックとガラスバイアルを反転させて分散させます。クロロフィルが均等にエマルジョンで配布されていることを確認します。 </li><li>暗所で氷上で1〜2時間乳剤をインキュベートします。 </li><li>有機相からエマルジョンおよび独立した水滴を打破するために、室温で5分間、14,000×gで1.5ミリリットルプラスチックチューブと遠心分離機にエマルジョンを転送します。 注意：アセンブリが​​成功した場合、下層の水相は、緑の色を持っている必要があります。 </li><li>上部の油相を廃棄し、鉱油を1ml加えます。ボルテックスによって、あるいは完全にチューブを反転することによってペレット化し、エマルジョンとよくミネラルオイルを混ぜます。室温で5分間、14,000×gでサンプルをスピンダウン。水性および鉱山労働者を分離する明確なメニスカスまで、この手順を繰り返します中間エマルジョンなしアル油相が得られます。 </li><li>化学フード内で、この手順を実行します。水、ミネラルオイル相が明確に分離された後、ミネラルオイルを除去し、水飽和ジエチルエーテルを1ml加えます。ボルテックスし、室温で5分間、14,000×gでサンプルをスピンダウン。二回、この手順を繰り返します。 </li><li> 2回目の遠心分離後、ジエチルエーテルを除去し、フード内で5-20分間開いたチューブを残します。 </li><li>最後に、脱塩カラムにWSCP /クロロフィル複合体を含有する水相をロードし、さらなる実験のための適切な緩衝液で溶出します。 注：タンパク質は、リン酸と広範囲のpH（6.0-7.5）でトリス緩衝液中で安定しています。試料は、1ヶ月まで、光から保護して4℃で保存することができます。 </li></ol>

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</ol>

著者は、彼らが競合する金融利害関係を持たないことを宣言します。

私たちの目標は、疎水性の顔料と水溶性クロロフィル結合タンパク質の組み立てのための新しい一般的なシステムを開発することでした。ここでは、W / Oエマルションに基づいて、新たな再構成システムは、組換えE.で表現芽キャベツ、カリフラワー、わさびとバージニアpepperweedからWSCPアポタンパク質のアセンブリのために働くことが証明の一般的なアプローチであることが示されています大腸菌 。ここでの結果は、クロロフィルの10倍モル過剰のWSCPの1ミリグラムの再構成から提示されています。しかし、再構成は、別のクロロフィル/タンパク質のモル比についてWSCPのより低い濃度を使用することも可能です。私たちは、W / Oエマルションに組み立てることができたタンパク質の最小量は、タンパク質の比に顔料が5ごとに異なる​​可能性がありながら、100μgのだった：1と20：1まで。また、水相の体積を50μlまで下げることができます。本研究ではクロロフィルAとWSCPのアセンブリが提示されています。しかし、組み立てることも可能です他の疎水性Chl類、Bchl類及びその誘導体とWSCP。現在、我々はそのよう...

このようなクロロフィル（Chl類）、バクテリオ（Bchl類）およびカロテノイドのような疎水性顔料は、電子輸送、及び光エネルギーの取り込みと転送を行う光合成反応中心と集光性タンパク質中の主要な補因子です。反応中心およびCH1結合集光複合体の大部分は膜貫通タンパク質です。非酸素発生型光合成緑色硫黄細菌1,2のFenna-マシューズ-オルソン（FMO）タンパク質、および渦鞭毛藻類3のペリジニン-クロロフィルタンパク質（PCP）は、水溶性の集光タンパク質の例外的な例です。水溶性クロロフィル結合タンパク質（WSCPs） アブラナ科 、 タデ 、 アカザ科のとヒユ科の植物は4、5は、別のユニークな例であり、まだFMOとPCPとは対照的に、これらは、光の収穫にも主要な光合成反応のいずれかの中にも関与しています、およびそれらの正確なPHYsiological機能はまだ5-8不明です。彼らの高クロロフィル結合親和性はChl類及びクロロフィル誘導体の9,10の一過性の担体として示唆された機能につながっています。あるいは、WSCPが損傷を受けた細胞内でChl類を捕捉する役割を果たし、クロロフィルによって誘発される光酸化損傷7,11-13から保護するという仮説が立てられました。最近では、それはプロテアーゼ阻害剤としてのそのWSCP機能を提案し、草食性の間に役割を果たしているだけでなく花の開発14の間の細胞死を調節しました。 WSCPsは、それらの光物理的特性に応じて2つの主なクラスに分けられます。最初のクラス（クラスI、 例えば シロザから）は、照明時に光変換を受けることができます。クラスII、さらなるクラスIIa族に細分化されている（ 例えば 、 キャベツ、ダイコンから）光変換5,10を受けないアブラナ属植物からWSCPsおよびIIb（ 例えば 、 マメグンバイナズナから</eM&gt;）。 Lepidiumのvirginicumからクラス第IIb WSCPの構造は2.0Å分解能8のX線結晶学によって解決しました。これは、タンパク質サブユニットは、疎水性コアを形成する対称​​ホモ四量体を明らかにしています。各サブユニットは、単純なcore.This内の4つの密に詰まったChl類の密な配置になり、単一のクロロフィルは、すべてのクロロフィルの配置がWSCPsクロロフィル - タンパク質複合体の結合および組み立てを研究するための潜在的に有用なモデルシステム、および隣接Chl類の効果を作る結合しそして個々のChl類のスペクトルと電子物性上の​​タンパク質環境。また、人工光合成素子で集光モジュールに使用することができる人工のクロロフィル結合タンパク質を構築するためのテンプレートを提供することができます。 植物から精製された複合体は常にクロロフィルaの異なる組み合わせで四量体の不均一な混合物が含まれているため、ネイティブWSCPsの厳密な研究が実現可能ではありませんそして、クロロフィルbの9。したがって、 インビトロで Chl類と組換え的に発現WSCPsを組み立てるための方法が必要とされます。これは、 インビトロ組立体15が示されたチラコイド膜とアポタンパク質とを混合することによってそれができないだけで、水溶液中で顔料と水溶性のアポタンパク質を混合することによってin vitroで複合体をアセンブルすることができるChl類のごくわずかな水溶解度挑戦しているがこの方法は、チラコイド内のネイティブChl類の存在に限定されています。シュミットら 。組換えにより大腸菌にヒスチジンタグ付きタンパク質を発現させることによってカリフラワー（CaWSCP）からWSCPで、いくつかのクロロフィルとのBchl誘導体を組み立てる上で報告大腸菌は、Ni-アフィニティーカラム上にそれを固定化し、洗浄剤11中に可溶化クロロフィル誘導体を導入します。 A.からの組換えWSCPsのに成功しました再構成シロイヌナズナ 6、および芽キャベツ（BoWSCP）、日本の野生ダイコン（RshWSCP）AN同様の方法により、Dバージニアpepperweed（LvWSCP）も報告されました。 ここでは、小説、タンパク質をタグ付けを必要としないWSCPとChl類を組み立てるまたは固定化するための一般的な、簡単な方法を提示します。これは、鉱油中の水​​溶性アポタンパク質のそれらの水溶液からエマルションを調製するに依存しています。タンパク質は、このように体積比16に非常に高い表面積を有する油中水型（W / O）微小液滴中に封入されています。疎水性の補因子は、次いで、油中に溶解され、容易に油相から液滴に導入されます。我々は、組換えE.で表現WSCPアポタンパク質のいくつかの変異体の組立方法を使用してについて報告しますクロロフィルを持つ大腸菌 。我々は、新規のクロロフィル結合タンパク質を開発するためのスクリーニング系として使用することができるWSCP過剰発現細菌の粗溶解物からアセンブリを示します。

<table><tbody><tr><td>鉱物油</td><td>Sigma</td><td>M5904</td><td></td></tr><tr><td>Span80</td><td>Sigma</td><td>85548</td><td></td></tr><tr><td>Tween80</td><td>Sigma</td><td>P8074</td><td></td></tr><tr><td>Bio-Scale Mini Profinity eXact Cartridges</td><td>Bio Rad</td><td>10011164</td><td>ネイティブシーケンスによる WSCP 精製用アフィニティークロマトグラフィー。</td></tr><tr><td>His Trap HF column</td><td>GE Healthcare Life Science</td><td>17-5248-02</td> His-tag DEAE Sepharose Fast Flow <td>を用いたWSCP精製用アフィニティークロマトグラフィー</td></tr><tr><td></td><td>GE Healthcare Life Science</td><td>17-0709-01</td><td>クロロフィル精製用クロマトグラフィー担体</td></tr></tbody></table>

油中水型エマルジョン：疎水性顔料と水溶性クロロフィル結合タンパク質を組み立てるための新しいシステム

Water in Oil Emulsions: A New System for Assembling Water-soluble Chlorophyll-binding Proteins with Hydrophobic Pigments

クロロフィル（Chl類）およびバクテリオ（Bchl類）は光合成集光と電子輸送を行う主要な補因子です。これらの機能は、批判的に大規模と精巧なマルチサブユニット膜貫通タンパク質複合体内での特定の組織に依存します。これらの複合体は、太陽エネルギーの変換を促進する方法を分子レベルで理解するためには、蛋白質顔料、および顔料色素相互作用、励起ダイナミクスへの影響を理解することが不可欠です。このような理解を得る一つの方法は、単純な水溶性組換えタンパク質とChl類の複合体を構築し、研究することによってです。しかし、水溶性タンパク質に親油性Chl類及びBchl類を組み込むことは困難です。また、疎水性の顔料と水溶性タンパク質のアセンブリのために使用することができない一般的な方法は存在しません。ここでは、お尻を可能にする、油中水型エマルジョンに基づく単純かつ高スループットのシステムを示します疎水性のChl類と水溶性タンパク質のembly。新しい方法は、クロロフィルとアブラナ科植物 （WSCP）の水溶性クロロフィル結合タンパク質の組換え型を組み立てることによって検証されました。私たちは、クロロフィルの成功アセンブリをE.を表現WSCPの使用して粗溶解物を実証します新規な水溶性のクロロフィル結合タンパク質のための、およびクロロフィル-タンパク質相互作用及び組立プロセスの研究のための遺伝子スクリーニングシステムを開発するために使用することができる大腸菌細胞。

組換えWSCPアポタンパク質は、前のセクションで説明したプロトコルに従って、W / Oエマルション中のクロロフィルAを用いて組み立てました。プロトコルは純粋WSCPs、または溶解物大腸菌細胞WSCPを過剰発現する（ 図1）のいずれかを含有する水相を用いて実施されました。プロトコルは速く、簡単で、組織ホモジナイザーを除き、特別な装置を必要としません。 クロロフィルの吸光度およびCDスペクトルは、4組換えWSCPの変異体、すなわちRshWSCP、CaWSCP、BoWSCPとLvWSCPの複合体は、これらは、それぞれのネイティブ複合体10,18の以前に報告されたスペクトルとバンドの形状や位置が類似している。図2に示します。 19。これらの結果は、W / Oエマルション系で再構成WSCP /ク...

この原稿は、油中水型エマルジョンに基づく疎水性顔料と水溶性タンパク質を組み立てるための単純かつ高スループットの方法が記載されています。私たちは、Eで表したアブラナ属植物の組換え水溶性クロロフィル結合タンパク質（WSCPs）の4種類でネイティブクロロフィルの組み立て方法の有効性を実証します大腸菌 。

Chlorophylls (Chls) and bacteriochlorophylls (BChls) are the primary cofactors that carry out photosynthetic light harvesting and electron transport. ...

本手法の全体的な目的は、水に不溶なクロロフィルを水溶性タンパク質の結合部位に組み込むことを可能にすることです。この方法により、クロロフィルと組換えタンパク質の複合体形成が可能となり、クロロフィルとタンパク質の相互作用に関する厳密な研究ができるとともに、新規なクロロフィルタンパク質複合体を構築するための新たな可能性が開かれます。本手法の主な利点は、タンパク質へのタグ付けや固定化を必要としないことです。したがって、本手法はスクリーニングアッセイに適しています。手順のデモンストレーションは、私の研究グループのポストドクであるDominica Bednarczykが行います。以下のストックソリューションを調製する際は、光損傷を最小限に抑えるため、クロロフィル調製のすべての工程を化学薬品用フード内の緑色光下または暗所で行ってください。色素を凍結保存する前には必ず窒素またはアルゴンを添加し、すべての溶媒が分析グレードであることを確認してください。まず、チラコイド膜にクロロフィルaのみを含む凍結乾燥したSpirulina platensis細胞またはその他のシアノバクテリア細胞を約5g量り取り、乳鉢と乳棒を用いて粉砕します。クロロフィル抽出における重要なステップは、シアノバクテリア細胞が十分に凍結乾燥されていることを確認すること、およびアセトンによる数回の洗浄によってDEAE-Sepharoseから水分を完全に除去することです。破砕した細胞をガラスカラムに充填し、100%アセトン約50-100 millilitersを用いて組織を洗浄し、カロテノイドを除去します。洗浄後、溶出したオレンジ色から緑色の画分は廃棄してください。実際の色は、シアノバクテリアの培養株や増殖条件によって、オレンジ色から緑色まで異なります。アセトンを100%メタノールに置換し、クロロフィルaを含む緑色の画分を回収します。溶出液の色が濃緑色から淡緑色に変わったら、溶出を停止します。次に、30°Cを超えないウォーターバスを備えたエバポレーターを用いて、抽出物が完全に乾くまでメタノールを蒸発させます。その後、少量のジエチルエーテルを用いて乾燥抽出物から色素を完全に溶解させ、その溶液を脱脂綿でろ過します。その際、さらに少量のエーテルを用いて脱脂綿に付着した色素を洗い流してください。ジエチルエーテルを蒸発させ、色素を完全に乾燥させます。ここで中断する場合は、乾燥させた色素を窒素またはアルゴン雰囲気下、20 degrees Celsiusの暗所で、次の工程まで保存してください。クロロフィルaの調製に進む場合は、乾燥した色素を最小限の量の100%acetoneに部分的に溶解させ、その後、懸濁液に4 millilitersのacetoneを加え、フラスコを回旋させて色素を完全に溶解させます。パステールピペットを使用して、100%アセトンで平衡化したDEAE-Sepharoseカラムにサンプルを静かにロードし、100%アセトンでカロテノイドを溶出させます。次に、アセトンとメタノールの3:1（容量比）混合液を用いて、クロロフィルaを溶出させます。溶出中に実際の色素の色を観察するために、懐中電灯で短時間カラムを照らしても構いません。薄層クロマトグラフィーを用いて、ジクロロメタン、ヘキサン、イソプロパノール、メタノールの体積比 68:25:5:2 の溶離液でサンプルを溶出させ、クロロフィル a の純度を検証します。次に、エバポレーターを用いて、クロロフィル a が完全に乾燥するまで溶媒を留去します。クロロフィル a ストック溶液を調製するには、乾燥したクロロフィル a を 2-4 milliliters の 100%methanol に再溶解させます。エマルションの有機相を調製するため、50 milliliterのチューブにTween 80を0.2 grams、Span 80を1.8 grams、およびミネラルオイルを38 grams量り取ります。これらの成分を十分に混合し、溶液を氷上に置いて冷却します。精製された水溶性クロロフィル結合タンパク質（WSCP）を含む水相を調製するため、WSCP遺伝子を保持するE.coli BL21細菌を1 literのLB培地を用いて37 degrees Celsiusで培養し、OD600を0.3から0.6まで増殖させます。1 millimolar IPTGを添加してタンパク質発現を誘導し、細菌を30 degrees Celsiusで12-16時間培養した後、5000 G、4 degrees Celsiusで10分間遠心分離して細菌を回収します。アフィニティークロマトグラフィーに適したバッファーを用いてペレットを溶解し、細菌懸濁液をより小さなチューブに移して氷上で超音波処理します。ライセートを遠心分離して回収した後、製造元の指示に従い、タンパク質精製に適した市販のアフィニティークロマトグラフィーシステムを用いて、タグ付き組換えWSCPタンパク質を精製します。バッファーを50 millimolarリン酸バッファー pH 7.8に交換し、精製WSCP濃度を0.5 to 1 milligram per milliliterに調整して、エマルションの水相を調製します。WSCPを含む細菌粗溶解液を含む水相を調製するには、WSCP発現プラスミドを保持するE.coli BL21細胞を250 millilitersのLB中、37 degrees Celsiusで対数増殖期まで培養します。1 millimolar IPTGを添加してタンパク質発現を誘導し、細菌を30 degrees Celsiusで一晩培養します。翌日、細菌細胞を回収した後、1-2 mLの50 mM リン酸ナトリウム緩衝液（pH 7.8）を用いてペレットを溶解させます。次に、超音波処理を行った後、溶解液を12,000 G、4 °Cで30分間遠心分離します。0.125 mLの上清と0.875 mLの50 mM リン酸ナトリウム緩衝液（pH 7.8）を混合し、エマルションの水相を調製します。クロロフィルaを含むエマルション中でWSCPを構築するには、十分に混合したオイル・界面活性剤混合液5 millilitersをガラスバイアルに移し、氷上で冷却します。調製直後の氷冷した水相1 milliliterを加え、組織ホモジナイザーを用いて氷上で9, 500 RPMで2分間処理し、両相を混合します。ここからのすべての工程は、光損傷を最小限に抑えるため緑色光下で行い、エマルションに25 millimolarのクロロフィルaストック溶液20 microlitersを加えます。ガラスバイアルを軽く叩いたり反転させたりして分散させ、クロロフィル a がエマルション中に均一に分布するようにし、その後、暗所の氷上で1-2時間インキュベートします。エマルション調製における重要なステップは、混合前に水相と有機相の両方を冷却することです。次に、エマルションを分解して有機相から水滴を分離させるため、エマルションを1.5 mLプラスチックチューブに移し、室温で14,000 Gにて5分間遠心分離します。上層のオイル相を廃棄し、下層に1 milliliterのミネラルオイルを加えて、ボルテックスミキサーで攪拌するかチューブを反転させて十分に混ぜ合わせます。サンプルを遠心分離した後、上層のオイル相を取り除き、水相とミネラルオイル相の間に中間エマルションがなく、明確な界面（メニスカス）が形成されるまで、ミネラルオイルの添加と遠心分離を繰り返します。次に、水相に1 milliliterの水飽和ジエチルエーテルを加えます。次に、サンプルをボルテックスした後、室温で14,000 Gにて5分間遠心分離します。3回目の遠心分離後、ドラフト内でジエチルエーテルを除去し、チューブの蓋を開けたまま5〜20分間放置します。最後に、WSCP-クロロフィルa複合体を含む水相を脱塩カラムにロードし、以降の実験に適したバッファーで溶出させます。サンプルは遮光し、4 °Cで最大1か月間保存してください。本ビデオで説明するプロトコルを用いて、リコンビナントWSCPアポタンパク質を水およびオイルエマルション中でクロロフィルaとともに組み立てました。ここに、4種類のリコンビナントWSCPバリアントを用いたクロロフィルa複合体の吸光度およびCDスペクトルを示します。得られた結果は、バンド状の末端位置において、それぞれの天然複合体に関して以前に報告されたスペクトルと同様でした。この図は、WSCP発現細胞のライセートにおいて、水相が緑色を呈していることから、WSCPとクロロフィルaの正の会合が起こっていることを示しています。この結果は、WSCPとクロロフィルの正の会合を判定するための迅速なスクリーニングシステムとして、水・油エマルションが有用であることを実証しています。本研究で示したように、WSCPを含むライセートの液滴は、共焦点顕微鏡画像において特徴的なクロロフィルa蛍光を示します。これは、WSCP-クロロフィル複合体の正常な形成を水液滴内で直接検出できることを意味しており、水・油エマルションを用いたスクリーニングシステムの基盤となる可能性があります。この手法を習得し、適切に実施すれば、5時間で完了させることができます。本手順を実施する際は、クロロフィルを光や酸素にさらすことなく、迅速に操作することが重要である点に留意してください。本手法の開発により、クロロフィルの電気分解的および分光学的特性に対するタンパク質環境の影響を調査するために用いられる、広範な水溶性クロロフィル結合タンパク質を調製することが可能となりました。本ビデオを視聴することで、シアノバクテリアからクロロフィルを抽出・精製し、水と油のエマルションを用いて水溶性タンパク質に組み込む方法について十分に理解できるはずです。エーテル、メタノール、アセトンなどの有機溶媒を取り扱う際は有害な可能性があるため、本手順の実施中は常に化学薬品用フード内で作業するなど、適切な予防措置を講じることを忘れないでください。

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