Name: チック小脳スライスと顆粒細胞前駆体の空間的にターゲットを絞ったエレクトロポレーションの ex vivo培養 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-12-14T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 2 s
Description: 学ぶ チック小脳スライスのex vivoエレクトロポレーション法。外部顆粒層を標的に遺伝子導入し、顆粒細胞前駆体の形態と挙動を観察・改変できます。発生神経生物学の研究に有用です。

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この記事で紹介した方法は、BBSRC BB / I021507 / 1（TB、RJTW）から資金提供を受け、仕事とMRC博士学生の身分（MH）から生じました。

注意：全ての実験は、キングスカレッジロンドン、英国、英国内務省動物保護ガイドラインに基づいて実施しました。 E14小脳の1解剖<ol><li>胚14日目に38℃で茶色の受精鶏卵をインキュベートします。 </li><li>卵のはさみを使用すると、 卵内ニワトリ胚を刎ねると氷冷PBS（ 図1A）を含むペトリ皿に頭を削除します。 </li><li>標準の鉗子を使用して、目と上顎の除去、組織を通ってそれぞれの目の後ろにすべての方法を切開を行います。すべての方法下顎（ 図1B）を除去咽頭を介して第2の切開を行います。 </li><li>標準の鉗子を使用して、（ 図1C）を 、それを剥がすことにより、頭蓋骨の表面からすべての皮膚を除去し、前頭葉と頭頂骨を削除し、脳を明らかにする。 </li><li>腹側面から、咽頭軟骨と補助間葉を削除します。 </li><li>背側面から、慎重にLY軟膜を損傷しないように注意しながら後脳、独立した脳全体（ 図1D）に間充織の背側を削除します。 </li><li>すべての方法中脳と後脳と小脳（ 図1E）を含む別々の後脳の間の組織を通して切開を行います。 </li><li>すべての方法小脳および後脳の翼板の両側接合部で組織を通って切開を行うことにより、解剖を通してPIAの整合性（ 図1F）を維持するために注意しながら、全体の小脳を削除します。形成脈絡叢（ 図1G）を取り外します。 </li><li>氷冷HBSSに解剖小脳を移動します。 </li></ol> E14小脳の2スライス培養<ol><li>開口部を広げるために切り取ら先端でヘラまたは3ミリリットルパスツールピペットを用いて組織チョッパーの無菌プラットフォームに全体小脳を転送します。ピペットを用いて余分な液体を除去します。 </li><li>トンで全体の全体小脳をカット彼は最大の50％で切削速度で設定組織チョッパーを用いて300μmの厚さで向きを必要としました。組織の完全性は、最も簡単に矢状セクションに保存されます。しかしながら、配向はまた、細胞分析のための重要な考慮事項（顆粒細胞の軸索は、プルキンエ細胞の樹状突起の平面に垂直な、横方向に実行しつつ、プルキンエ細胞の樹状突起はサジタル、整列されている）です。 </li><li> 3ミリリットルパスツールピペットを用いて、氷でスライスした小脳冷HBSSをカバーしています。 </li><li>カットチップを3ミリリットルパスツールピペットを用いて、氷冷新鮮なHBSSを含む60ミリメートルペトリ皿にHBSS中のスライスを転送します。 </li><li>光ファイバー光源で照明解剖顕微鏡下で、時計メーカーの鉗子を使用して、個々のスライスの分離を確保します。スライスが自分の組織の完全性および内外方向の位置に基づいて、エレクトロポレーションすることが確認します。 注：培養培地中でのインキュベーションをスライスに至るまで胚からの各解剖は約10〜20分間応じUPOを取りますn個の経験。その小脳を確保するために、一度に解剖いずれかを実行は、断頭し、ex vivoでの文化の間の最小時間を費やしています。 </li></ol>スライスの3エレクトロポレーション<ol><li>絶縁テープと60ミリメートルペトリ皿のベースにエレクトロのアノードを固定することにより、エレクトロポレーションチャンバーを構築します。電極を覆うHBSSの約1ミリリットルを追加します。 </li><li> HBSS中で覆われた電極の上に0.4μmのカルチャーインサートを置きます。カルチャーインサートは、必ずインサートと電極との接触が常にある作る電極上に載るようにします。 注：この設定では、スライスを持つカルチャーインサートは、回路を維持するが、カソードの空間的な標的化を可能にする、溶液の表面に載るます。 </li><li>転送特定されたスライス（培養インサートあたり最大5つの）カットの先端で3ミリリットルのパスツールピペットを用いて培養インサート上に。セパレートとsagitt培養インサート上に決済することができアル方向。 </li><li>スライスがもはや溶液中に浸されるようにピペットを用いて、過剰のHBSSを削除しません。 </li><li>スライスの標的領域の表面に20％速いグリーンで希釈した（1μg/μlの濃度で）P10ピペットチップ、ピペットDNAを使用。 20％速いグリーンは、粘性DNA溶液を保証し、法外DNAの広い分散を防ぐことができます。各スライス（ 図2B）に約5μlのDNA /ファストグリーンソリューションを追加します。 </li><li>希望の標的組織の上に陰極を配置し、3×10 V、10ミリ秒持続時間のパルスでエレクトロポレーション。組織と陰極の直接の接触を避けてください。代わりに、（実際に組織に触れることなく、可能な限り組織の近くに陰極を配置）伝導性を維持するために、液体の表面張力を利用します。 </li><li>必要に応じて、それぞれの個々の小脳スライスにEGLの複数の領域にDNA送達およびエレクトロポレーションを繰り返します。 </li><li>エレクトロポレーションが完了すると、転送培養inse30ミリメートルペトリ皿に室温。 </li><li>各培養物に、予め温めた培養培地1mlを加える（基礎培地イーグル、0.5％（w / v）のD - （+） - グルコース、1％のB27サプリメント、2mMのL-グルタミン、100 U / mlペニシリン、カルチャーインサート媒体と接触しているが、スライスは、それを浴びないように培養インサートの下に100μg/ mlのストレプトマイシン）。 </li><li>最大3日間37℃/ 6％CO 2で培養物をインキュベートします。培地新鮮予め温めた培地を用いて24時間毎の全てを交換してください。 </li><li>文化に続いて、文化上のスライスを修正することはありません培養培地と新鮮な30ミリメートル皿に4％パラホルムアルデヒド（または4℃でO / N）で1時間挿入します。 </li></ol>小脳スライスの4イメージング<ol><li>固定後、PBSで5分間、切片を3回洗浄します。 </li><li>かみそりの刃を使用して、スライスの周りに切断及びスライスし、それが接着されているインサートの領域を除去することにより培養インサートからそれぞれのエレクトロ培養小脳スライスを分析。行うカルチャーインサート表面からスライスを削除しようとしません。 </li><li>レーザー走査型共焦点顕微鏡を用いてマウント気泡を導入しないように注意しながら、カバースリップ下（必要な場合）、DAPIを含む封入剤の約1ミリリットル中のスライス、および画像。 注：イメージングパラメータは、エレクトロポレーションの構築に応じて変化し、個々のユーザーの裁量ですることができます。 </li></ol>

著者らは開示するものは何もない。

ここで報告プロトコルは、解剖電気穿孔とひよこから胚14日目小脳のスライスを培養するための方法を説明します。このプロトコルは、個々の小脳ローブの孤立したターゲティングを含むEGLの小さな焦点領域にエレクトロポレーションのターゲティングが可能。これは、高解像度と利便性で遺伝子解析とイメージングを可能にし、低コストでげっ歯類43-47で確立された技術と比較。このような分析が原因変更がEGLに影響を与える可能性があるということを意味し、拡張発育期間、マウスでEGL-特異的な遺伝子ターゲッティング可能性の不足、及び菱形リップとEGLの間の分子メカニズムの共通性、 インビボで現在は不可能です彼らは菱形リップ神経発生に影響を与え、EGLの形成49を無効にするので生物学は頻繁に分析することができません。私たちのシステムは、このようにEGL sに遺伝子改変をターゲットの面で大きな進歩を表していますpecifically、そして我々はそれがこのような非モデル哺乳類や爬虫類など多分比較関心のひよこを越えて他の種に適用されます期待しています。 ...

小脳は、後脳の前方端に座って、成熟した脳内の感覚と運動処理の統合を担当するだけでなく、高い認知過程1を規制です。哺乳類や鳥類では、成人の脳におけるニューロンの半分以上が生産する開発中に、前駆細胞の大規模なトランジット増幅の産物を精巧な形態を有し、重く葉状されます。小脳は、何世紀にもわたって、および分子時代の神経生物学者のための調査の対象となっている、同様に重要な注目を集めています。これは、本質的に興味深い生物学だけでなく、それが頻繁にそのような最も一般的な小児の脳である自閉症スペクトラム障害2と最も顕著に小脳癌、髄芽腫3、などの発達の遺伝的障害を含む、ヒトの疾患に関与しているという事実だけでなく、関連します腫瘍。重要なことは、WH内の優れたモデル系でありますICHは、脳の発達4中に運命の割り当てと神経新生を研究します。近年では、それはまた、脊椎動物系統5-10横切っ見小脳形態の巨大な多様性のために、脳の発達の比較研究のためのモデル系として確立されています。 小脳は、後脳11でrhombomere 1の背側半分から発達と発達二つの主要な前駆細胞集団、菱形リップと脳室帯から構成されています。菱形リップは、屋根板との国境で後脳の神経上皮の背部の周りに延びます。これは、小脳12-14のグルタミン酸作動性ニューロン興奮性の発祥の地です。脳室帯は最も顕著に抑制GABA作動性小脳ニューロン、大プルキンエニューロン14,15を生じさせます。その後、開発中（マウスでは約胎生13.5から、ひよこ16でE6）、グルタミン酸作動PROGENitorsは菱形リップから接線方向に移動して、前駆細胞の軟膜層を形成：二前駆ゾーンは外部顆粒層（EGL）と呼ばれます。これは、成熟した脳で見つかった顆粒ニューロンの膨大な数につながる大規模なトランジット増幅を受け、この層です。 EGLでの増殖は、長い細胞周期出口に切り替え、中央に外側EGL層からの出口に関連している前駆細胞の神経分化と、菱形リップ 17から接線方向の移行から得られるサブ軟膜の場所にリンクされていますEGL 18。内側-外側軸における有糸分裂後の顆粒細胞の広範な接線方向の移行は、成熟した小脳皮質の内側顆粒層への最終的な放射状の移行前に、ミドルとインナーEGL 19で発生します。小脳表面上の菱形リップからの細胞の移動は、軟膜20-22からCXCL12シグナリングに依存しています</sup&gt;と顆粒細胞は、CXCL12受容体CXCR4を発現します。彼らの接線方向の移行は、このような阻害介在ニューロン集団に23-25 ​​の移行新皮質の接線方向のそれを彷彿とさせます。興味深いことに、電子顕微鏡の研究17は、増殖形態を持つEGL細胞が哺乳類の大脳皮質26の基底前駆細胞を連想させるようにして増殖能力を有する細胞の挙動を結ぶ、軟膜の接触を維持することを示唆しています。これは、個別の細胞外環境によって定義され、顆粒の前駆体は、異なる遺伝子発現シグネチャ18を持っているされている3つの副層へのEGLの前述の層別化に反映されています。 oEGLにおける前駆細胞の増殖は、前駆細胞を個別に遺伝的にマウスでは胚発生の末端で標識されたとき、彼らは250〜500グラムの有糸分裂後の中央値の平均を生じさせるようなクローンサイズの正規分布で発生ranuleニューロン27,28。増殖は、プルキンエニューロン29-32の根底にあるから分裂促進Shhシグナル伝達に依存しています。 SHHに応答する能力は 、in vitro およびin vivo 33 34,35 の両方において 、転写因子のAtoh1の細胞自律的な発現に完全に依存することが示されています。同様に、細胞周期の出口と分化は、おそらくのAtoh1 37の直接のリプレッサーである下流の転写因子NeuroD1 36の発現に依存することが示されています。 細胞周期出口38〜42の細胞生物学的基礎を解読で、この進歩し、かなりの進歩にもかかわらず、意思決定の根底にある基本的な分子機構（複数可）は、細胞周期を終了し、差別化ニューロンへの前駆から移行すること、およびインナーEGLならびに後、スイッチの関連する有糸分裂後の接線方向の移行ラジアル移行に、完全には理解のまま。これは、EGLの実験的扱いにくさの大部分は次のとおりです。同じ神経性分子の多くが菱形リップで以前顆粒前駆体の生活の中でも極めて重要であるため、それが遅れて開発している、と遺伝的に標的にすることは困難。この問題を克服するために、多数の著者は、げっ歯類43-48で出生後の小脳を対象とする方法として in vivo および ex vivoエレクトロポレーションで開発しています。ここでは、コストと利便性の面で顕著な利点を表すEGLを研究するために、ニワトリにex vivoでのエレクトロポレーションの使用を開拓します。私たちのエレクトロポレーションの方法とひよこのex vivoでのスライス培養小脳組織は、EGLの増殖のピークで組織胚の日から解剖14雛を使用しています。この方法は、独立して菱形リップのEGLの遺伝子ターゲティングを可能にし、顆粒からの移行の遺伝的解剖のための段階を設定します小脳における分裂停止後の顆粒ニューロンの前駆。

<table><tbody><tr><td>McIlwain組織チョ</td><td>ッパーMickle Laboratory Engineering Ltd</td><td></td><td>300 &mu;m で最良の結果が得られます。</td></tr><tr><td>基礎ミディアムイーグル(ギブコ)</td><td>ライフテクノロジー</td>ズ<td>41010-026</td><td></td></tr><tr><td>L-グルタミン</td><td>シグマ</td><td>G7513</td><td></td></tr><tr><td>ペニシリン/ストレプトマイシン</td><td>シグマ</td><td>P4333</td><td></td></tr><tr><td>0.4 &mu;m カルチャーインサート</td><td>ミリポア</td><td>PICM0RG50</td><td></td></tr><tr><td>TSS20 オボダインエレクトロポレーター&nbsp;</td><td>Intracel</td><td>01-916-02</td><td>エレクトロポレーションには3 x 10 V、10 msecパルスを使用します。</td></tr></tbody></table>

チック小脳スライスと顆粒細胞前駆体の空間的にターゲットを絞ったエレクトロポレーションの ex vivo培養

Ex Vivo Culture of Chick Cerebellar Slices and Spatially Targeted Electroporation of Granule Cell Precursors

小脳外顆粒層（EGL）は、脳の発達で最大のトランジット増幅のサイト、および神経増殖および分化を研究するための優れたモデルです。また、その増殖能力の進化の変更は、小脳脊椎動物の脳のEVO-DEVO研究のための優れたモデルを作り、羊膜における小脳のサイズの劇的な拡大を担当しています。 EGLを構成する細胞は、小脳顆粒前駆細胞は、また、髄芽腫のための最も一般的な小児神経腫瘍の起源の有意な細胞を表します。トランジット増幅後、顆粒の前駆体は、彼らが成熟した哺乳動物の脳における最大のニューロン集団を表す小脳の内部顆粒層に半径方向に移動します。ひよこでは、EGLの増殖のピークは妊娠の第2週の終わりに向かって発生します。この層での遺伝子改変を標的とするために増殖のピークは、我々は、胚14日目のニワトリ胚から小脳スライスのex vivoでのエレクトロポレーションを介して、遺伝子操作のための方法を開発しました。この方法は、 インビボでの顆粒ニューロンの発達のいくつかの重要な局面を再現すると、小脳顆粒細胞の増殖および分化の、ひいては小脳の開発、展開、および疾患の完全な理解を生成するのに有用であろう。

このセクションでは、胚の14日目のニワトリからスライスエレクトロポレーションおよび小脳の文化を使用して得ることができる結果の例を示します。小脳の解剖は 、図1に示され、セットアップのエレクトロポレーションチャンバーは、図2に示されている。我々は、それが成功したin vitroで （ 図3A）、その構造や細胞形態を保持して培養小脳スライスを、エレクトロポレーションとすることが可能であることを示しています。個々フォリアをターゲットにエレクトロポレーションが容易（ 図3B）が達成されます。我々は成功し、図3D（ii）の小脳細胞における機能のための可能なゲノム領域をテストするために、レポーターは彼らの行動（ 図3C）を観察するために構築物で細胞を標識する）EGL細胞に異なるプラスミドの数をエレクトロポレーションし、それが可能私で...

小脳外顆粒層は、脳の発達で最大のトランジット増幅のサイトです。ここでは、胚の14日目のニワトリ胚からex vivoでエレクトロポレーションおよび小脳スライスの文化を使用して、増殖のピーク時にこの層に遺伝子改変をターゲットにするプロトコルを提示します。

The cerebellar external granule layer (EGL) is the site of the largest transit amplification in the developing brain, and an excellent model for studying ...

この手順の全体的な目的は、ニワトリ小脳の外顆粒層に遺伝子改変を標的化し、ex vivoの設定で顆粒細胞の形態と挙動を観察、検討、および改変することです。この手法は、神経前駆細胞がどのように移動、増殖、および分化するかなど、発生神経生物学分野における重要な疑問を解決するのに役立ちます。この技術の主な利点は、研究に伴うコストと利便性の面で大きなメリットがあることです。この手法はニワトリの顆粒形成に関する知見を提供しますが、爬虫類や哺乳類などの他のモデル生物にも適用可能です。まず、受精した茶色の鶏卵を38°Cの卵・胚培養器に入れ、胚齢14日まで育成させます。胚齢14日目に、卵に開口部を作って胚を露出し、in ovoでニワトリ胚を脱頭します。実体顕微鏡下で、氷冷PBS containingが入ったペトリ皿に頭部を置きます。標準的なピンセットを使用して、各眼の後方を組織的に切開し、眼と上顎を除去します。次に、咽頭まで完全に2回目の切開を行い、下顎を除去します。次に、標準的なピンセットを使用して、頭蓋骨表面の皮膚を剥離して取り除きます。続いて、前頭骨と頭頂骨を取り除き、腹側から脳を露出させます。咽頭軟骨および補助的な間葉組織を取り除きます。次に、脳を背面側に上にして置き、pを傷つけないように注意しながら、後脳の背面にある間充織を慎重に取り除きます。続いて、中脳と後脳の間の組織を完全に切開し、小脳を含む後脳を切り離します。小脳の両側接合部および後脳のaller plateにおいて、組織を完全に切開します。解剖の間、PIAの完全性を維持するように注意しながら、小脳全体を取り出します。最後に、形成中の脈絡叢を除去し、解剖した小脳を氷冷HBSSに移します。スパチュラまたは先端を切断した3 mLのパステールピペットを使用して、小脳全体を組織チョッパーの滅菌プラットフォームに移動させます。開口部を広げるため、ピペットを使用して余分な液体を除去します。組織チョッパーの切断速度を最大値の50%に設定します。その後、3 mLのパスチャープレットピペットを使用して、小脳を必要な方向から300 micrometersの厚さで切断します。切断した小脳を冷えたHBSSで覆います。次に、先端をカットした3Lのパステールピペットを用いて、HBSSと切片を20 mLの氷冷HBSSを含む60 mmペトリ皿に移し、ファイバー optic光源で照らされた解剖顕微鏡下にペトリ皿を置きます。その後、時計職人用ピンセットを使用して脳組織の切片を1枚ずつ分離し、組織の完全性と正中外側方向の位置に基づいて、エレクトロポレーションを行う切片を特定します。電極のアノードを60 mmペトリ皿の底部に固定して、エレクトロポレーションチャンバーを構築します。絶縁テープを使用し、電極を覆うようにHBSSを約1 mL加えます。次に、0.4 µmの培養フィルターを配置します。HBSSで満たされた電極の上に挿入します。先端を切断した3 mLのパステールピペットを使用して、特定したスライスを1インサートあたり最大5枚まで、培養インサート上に移します。その後、スライスを分散させ、培養基材の上に落ち着かせます。矢状面に沿って挿入します。ピペットを用いて、脳切片から余分な培地を除去します。インサートが電極に接触するように配置し、静置させます。このセットアップにおいて、スライスを入れたカルチャーインサートを培地表面に浮かべることで、回路を維持しつつ、カソードの空間的なターゲット設定を可能にします。P 10 ピペットチップを用い、20% fast green で希釈した 5 µL の DNA を、各スライスの標的領域の表面にピペッティングします。fast greenを添加することで、DNA溶液に十分な粘性が備わり、DNAが広く拡散するのを防ぎます。次に、目的の標的組織にカソードを配置し、試料に電解処理を行います。カソードを組織にできるだけ近づけて配置し、組織に直接触れないようにしてください。必要に応じて、各小脳切片の外顆粒層の複数の領域でエレクトロポレーションを繰り返します。完了後、培養インサートを30 mmのペトリ皿に移します。各培養物のインサートの下に、あらかじめ温めておいた培養液を1 mL加えます。インサートが培地上に浮いていないことを確認してください。培養インサートは培地に接している必要がありますが、スライスが培地に浸かってはいけません。培養液をすべて交換しながら、最大3日間培養します。培養後、24時間ごとにあらかじめ加温した新鮮な培地で培地交換を行います。培養インサート上のスライスを、4%パラホルムアルデヒドを含む30 mmディッシュに移し、1時間固定します。パラホルムアルデヒドを培養物の上に加えるようにしてください。固定後、挿入します。スライスをPBSで5分間ずつ3回洗浄します。その後、眼科用剪刀を用いて、電穿孔および培養した各小脳スライスを培養容器から切り出します。各スライスを切り出し、インサートの付着部位と共に除去します。インサート表面からスライスを剥がそうとしないでください。気泡が入らないように注意しながら、任意のマウント剤約1 mLを用いて、カバーガラスの下にスライスを封入します。スライドが乾燥したら、スライドを回収し、レーザースキャニングを用いて撮影します。共焦点顕微鏡によるcalbindin染色です。ここでは、コントロールGFPプラスミドをエレクトロポレーションした培養1、2、3日後のE 14小脳組織の染色結果を赤色で示しています。カルビンジンの染まり方が一貫していることは、組織の完全性がin vitroでの培養において少なくとも3日間維持されていることを示しています。ここでは、外顆粒層のさまざまな部位に電気穿孔法で導入されたRFPおよびGFPコードプラスミドの低倍率画像を示します。GFPプラスミドは、アスタリスクで示された単一の領域を標的としています。ここでは、8 0 1エンハンサーによって駆動されるGFPをコードするコンストラクトを外顆粒層にエレクトロポレーションした例を示します。8 0 1の発現により、外顆粒層内の顆粒細胞前駆細胞が定義されます。in vitroで3日後には、さまざまな細胞形態が明確に観察でき、細胞の挙動をモニタリングすることが可能です。このビデオを視聴することで、さまざまな遺伝学的ツールを用いて個々の小脳スライスを電極法で処理し、顆粒細胞の発達を観察および操作する方法について十分に理解できるはずです。この手順に続き、組織の構造的完全性や、プルキンエ細胞やベルグマングリアなどの異なる細胞型の相対的な位置に関するさらなる疑問を解消するために、免疫組織化学などの他の手法を実施することができます。習得すれば、適切に行った場合に12個のニワトリ胚に対して約2時間でこの手法を完了させることが可能です。

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