Name: キャピラリーチューブ、Creamatocritによって乳脂肪含量の推定を用いたラットにおける牛乳コレクション (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-12-16T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 38 s
Description: 学ぶラットの手動搾乳法とクリマトクリットによる乳脂肪推定法。単独研究者が特殊装置なしで実施でき、母親の栄養状態が乳汁組成と子の発達に与える影響を解明する研究に応用できます。

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この作品は、自然科学とカナダの工学研究評議会（RGPIN 238382から2011）およびヘルスリサーチ（MOP115076）のカナダの研究所からの助成金を介してサポートされていました。ヘザー・ポールは、自然科学とカナダの工学研究審議会大学院奨学金とアルバータ革新健康ソリューション奨学金によってサポートされていました。ミーガン・ハラムは、自然科学と工学研究評議会大学院奨学金、フレデリック・バンティングとチャールズベストカナダ大学院奨学金、およびアルバータ州の小児病院研究所研修遺伝学賞、子どもの発達、および健康によってサポートされていました。

このプロトコルは、カルガリー大学の動物実験委員会によって承認され、 実験動物の管理と使用に関する指針に準拠しました。 子孫から1.個別のダム<ol><li> 12を搾乳する前に、5分の最小のための彼女の子孫からダムを区切ります。 注：ダムは、しかし長い4時間以上の分離の期間は、乳組成物14 を変更することができる 、分離1,6,13後5-6時間までに搾乳することができます。分離時間はミルク収集量12に影響を与えるようには見えないが、それは、一貫した分離時間は、研究を通じて維持されることをお勧めします。授乳15全体に変更されることがあり乳組成物は、そのための試みは、一貫性のあるミルクのコレクションの一日を維持するためになされるべきです。最大の牛乳生産は、泌乳14日目12で発生することが示唆されています。 </li><li>温暖化室を使用して、子犬が適切な体を維持することができる確実temperatu搾乳手順の間、母親の存在なしに再。 注：以下に示す研究では、搾乳は、したがって、何の温暖化室は使用されなかった、ダムは約22週齢で子孫21日齢時、離乳で実施しました。 </li></ol> 2.セットアップと準備<ol><li>搾乳手順に必要なすべての材料を収集します。 注：すべての材料は、材料や機器の表に記載されています。 </li><li>搾乳が行われ、アンダーパッド吸収性ベンチでパッドをカバーするベンチに加熱パッドを配置します。 </li><li>麻酔システムを設定します。システムに十分な酸素や開始前イソフルランを持っていることを確認してください。マシンへの最初の麻酔導入のために使用される麻酔マスクを取り付けます。近くの初期麻酔マスクと異なる場合、麻酔の維持のために使用されるマスクを配置します。 </li><li>オキシトシン1 mlシリンジに、25G針を取り付け無菌技術を用いて注入。 </li><li>母体の体温は搾乳手順の間に維持されるように、加熱パッドをオンにします。注：あまりにも高温になり、やけどを起こさないパッドを確実にするために加熱パッドの温度を監視します。あるいは、特定の温度に設定することができる加熱手術台などの熱源を使用します。 </li></ol> 3.イソフルランを使用してダムを麻酔<ol><li>酸素タンクを開き、毎分1リットル（千CC）への流れを向けます。イソフルランの流れをオンにして、5％に設定されています。注意：麻酔薬の直接吸入を避け、麻酔蒸気の蓄積を防ぎます。 </li><li>ダムを麻酔。 </li><li>必要に応じて、吸収ベンチパッドの上にダム仰向けに配置し、メンテナンスマスクに切り替え。ペダル反射の欠如によって麻酔を確認してください。 </li><li>麻酔の維持のために2〜3％のイソフルランの流れを減らします。継続ドを確保するための手順を通じてダムを監視呼吸のPRESSIONは発生しません。注：一度麻酔下で、ダムの目が乾燥や傷​​になってから目を防ぐために、無菌の目の潤滑剤を使用して保護する必要があります。 </li></ol> 4.オキシトシン注射液<ol><li>オキシトシンを確認します（20 USP単位/ ml）を、その有効期限を経過していません。 /アルコールクレンジングパッドを拭き、滅菌アルコールでオキシトシンのバイアルを消毒します。 </li><li>無菌技術を使用して、シリンジ内にオキシトシンの2 IU（0.1 ml）を描きます。搾乳される各ダムのための新しい針と注射器を使用してください。 注：オキシトシンの投与量は、一般的に1の単回注射から5 IU 1,6,12,16の範囲。あるいは、4 IU / kg体重の投与量は、12を使用することができます。難易搾乳が発生した場合2 IUの単回投与は、一回繰り返すことができます。 </li><li>腹腔内にオキシトシンを注入。角度で、針が頭の方を向いて腹部の右下の象限に針を挿入します15〜30°の、約0.5cmの深さです。 </li><li>注射前に、負圧を確保するために、プランジャーを後方に引いて。任意の流体（血液、尿、腸の内容物など ）が注射器内に吸引されている場合は、針を削除し、新しい針と注射器で注入を試みます。何の流体が吸引されていない場合はオキシトシンを注入し、すぐにバイオハザード容器に針と注射器を廃棄します。 </li><li>ミルクレットダウンを刺激するオキシトシンのために約5〜15分待ちます。 </li></ol>搾乳サイトの5準備<ol><li>牛乳が収集されるからサイト/乳首を選択してください。乳は、任意の乳頭12から回収することができます。 </li><li>毛皮は、牛乳の吸い上げによるサンプル収集の難しさを引き起こす可能性があるとして慎重に、トリマーで搾乳される乳首の周りに毛皮を削除します。穏やかな - 乳首の周りの皮膚は非常に敏感で、乾燥していてもよく、のような傷や涙の影響を受けやすいです。 </li><li>乳首iの滅菌必要じゃないが、毛を除去した後、必要に応じて、ぬるま湯で乳首をきれいに。複数のサイトのような少なくとも二つの部位を調製するミルクコレクションのために必要とされてもよいです。 注：ミルク分析は、微生物プロファイリングが含まれる場合は、乳頭領域は、ヨウ素5に滅菌を必要とするかもしれません。 </li></ol> 6.ミルクコレクション<ol><li>静かに手動でコレクションのミルクを排出、乳首の根元を絞ります。 注：ミルク分析は、微生物プロファイリングが含まれている場合は、ミルクの最初の数滴は廃棄されるべきです。 </li><li>毛細管を充填し、毛細管内にミルク液滴を集めます。大容量（例えば、50μl）を収容するキャピラリーチューブは、プロセスを容易にします。 注：ミルクを収集することが困難に遭遇した場合には、オキシトシンの第二の用量を投与することができます。これは、投与量は4 IUの合計を超えないことをお勧めします。 </li><li>により滅菌マイクロチューブに毛細管からミルクを分配します毛管作用を介して毛細管から引き出されているミルクを観察する - マイクロ遠心チューブの側面に乳首からミルクを引き出すために使用された管の端部に触れます。 注：1 mlシリンジに取り付けた18 G針を使用してチューブに引き込まれていないミルクを「吹き飛ばし」。 </li><li>継続的に痛みや呼吸抑制の兆候がダムを監視し、それに応じてイソフルランの流れを調整します。 </li><li>このセクションで説明するように、十分なミルクが選ばれたミルク分析のために収集されるまで、ミルクを収集し続けます。 creamatocritとタンパク質濃度の決意は、以下に説明するために、ミルクの0.25ミリリットルを収集します。 注：ミルクレットダウンが遅くなるか、選択したサイトが十分に牛乳を追放しない場合、別の搾乳サイトを使用してください。動物当たりの乳の約2.5 mlで最大17、または乳頭あたり0.5 mlまで収集することができます。著者は、O、麻酔下の合計時間は約45〜60分に制限されることをお勧めします搾乳の45分rは。 </li><li>新鮮な牛乳サンプルからcreamatocrit測定用マイクロヘマトクリット管にミルクを収集し、粘土シーラントでチューブの端部をシールします。ダムIDでミクロヘマトクリットチューブにラベルを付け、直立ミルク試料を保存します。 </li><li>搾乳が完了すると、イソフルランと酸素の流れをオフにします。ダムからマスクを外し、目を覚ましまでダムの監視を継続します。それは完全に意識されていない場合、ダムが吸引さまたは復元中のダムの目を傷から寝具を防止するために、ケージの寝具ではなく直接よりも、回復期間中に、吸収ベンチパッドの上に置かれるべきであることをお勧めします。 注：それは胸骨recumbancyを維持するのに十分な意識を取り戻したまで無人ダムに放置しないでください。 </li><li>更なる分析が必要とされない場合は、-80℃でミルクを凍結。他の人はミルクが-20℃18で3時間まで4℃で、または5ヶ月間保存することができることを示唆しています。 </li></ol> 7. Creamatocrit測定<ol><li>ミルクcreamatocrit（ミルク試料中のクリームの割合）19を計算することにより、ミルク中の脂肪含量を推定します。 注：母乳で測定が新鮮または凍結のいずれかミルクがcreamatocrit測定のために使用することができることを実証している、しかし、新鮮な牛乳は、より高度に脂質濃度11（R = 0.90対R = 0.92）相関しています。解凍したミルクはcreamatocrit 11値でわずかな減少と関連しているようcreamatocrit測定のための新鮮または凍結したミルクの使用は、研究全体の一貫性が保たれるべきです。 </li><li>新鮮な牛乳の場合、ミクロヘマトクリット管に乳首からミルクのサンプルを収集します。少なくとも¾フル（約15〜20μl）を記入してください。また、よく混合した後、キャピラリーチューブに採取した試料からの新鮮な牛乳を描きます。粘土シーラントで終了をシール。 </li><li>で、ヘマトクリットスピナーに毛細管を配置密封端遠心機はバランスが取れて確保し、外側に向かって指しています。 </li><li>ヘマトクリットスピン（13,700×gで120秒）を開始します。 注：スピン時間や速度は使用遠心分離機のモデルに応じて変更されることがあります。 </li><li>スピンが完了した後に遠心分離機からチューブを外し、creamatocritを算出するための測定を行います。クリーム層と透明層内に試料の分離を観察します。 </li><li>測定し、チューブ内の流体の合計の長さと脂肪（クリーム）の長さノギスや定規を使用したレイヤを記録します。 注：（クリーム層/ミルク列の全長の長さ）として算出したミルク試料19内のクリーム層の割合は、100（ 図1A）xとcreamatocritが発現されます。次のようにcreamatocrit測定から脂肪濃度及びエネルギー値を計算する：脂肪濃度（g / L）=（creamatocrit（％） - 0.59）/0.146（ 図1B）19。エネルギー値（KCアル/ L）+ 290（66.8 * creamatocrit（％）（ 図1C）= 19。 </li></ol> 8.タンパク質濃度の決意<ol><li>タンパク質標準としてウシ血清アルブミンを用いて、例えば、ローリー法6のような標準的なタンパク質アッセイを用いて、全乳タンパク質の濃度を決定します。 注：乳タンパク質の測定値がアッセイの標準曲線内に入るようにするためのミルクの希釈が必要であり得ます。 </li></ol>

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</ol>

著者らは、開示すること、関心の競合がありません。全ての動物実験は、CCAC承認されたプロトコルに従って行いました。

幼少期発達研究への関心が高まるにつれ、母乳成分の調査が増加しています。新生児期の唯一の栄養源として、牛乳に含まれる生理活性化合物は、特に腸と免疫の健康の観点から、理想的な成長と発達に不可欠です3。ここで提示する方法は、オリゴ糖プロファイリング6などの下流分析に十分な量で授乳ラットから乳汁を収集する単純で非侵襲的な方法です。この方法は、特殊な真空装置を必要とせず、一人で行うことができる。 
このプロトコルは授乳中の 1 つの時点で使用することを目的としていますが、他のプロトコルは研究を通じて連続的な母乳収集を実施しました12,15。ただし、連続搾乳は牛乳組成に影響を与える可能性があるため17、研究者は、関心のある結果に基づいて、研究に最適な牛乳収集の頻度と数を決定することをお勧めします。さらに、他の人はラットの搾乳手順中に注射可能な麻酔薬を使用していますが14,17、このプロトコルは、イソフルランを使用したラットの麻酔を含む。イソフルランは吸入可能な麻酔薬であり、その利点には...

ミルクは乳児の成長と発展の1,2のためのエネルギーや栄養素を提供し、新生児の哺乳動物のための唯一の栄養源です。ミルクは、主に、細胞、脂質、およびタンパク質1で構成されている間、それはまた、酵素、炭水化物、ホルモン、抗体、成長因子、サイトカイン、エキソソーム、マイクロベシクル、及びそのような低分子RNAを含む子孫の若年期の発達を調節する生物活性化合物の多数を含んでいますマイクロRNA 1,2として。幼児は病気2を受けにくい母乳証拠と相まって免疫子孫と腸の健康3の確立に母乳の基本的な役割は、人生の早い段階で病気のプロセスに関連付けられたミルク成分と関与する分子メカニズムを識別することの重要性を強調して彼らの行動です。開発ラットは早い段階で、栄養様々な生理学的、および化学的介入の効果を調べるための人気モデルであります-Life開発4。ラットのミルクの分析は、したがって、母体および子孫の健康に新たな洞察を提供してもよいです。 現在の科学の進歩は今健康と病気の特定の乳成分の効果の詳細な調査のための機会を増やしています。例えば、牛乳細菌プロファイルのシークエンスが幼児の腸5の初期の腸の植民地化におけるそれらの役割を解明した、ミルクオリゴ糖の質量分析は、母体の食事6、中に分泌マイクロRNAの深いシーケンシングを介しミルクオリゴ糖プロフィールの変更への洞察を提供してきました母乳の脂肪球は、遺伝子転写、代謝、および免疫機能7の可能な役割を強調しています。 ラットモデルは、母体の研究8,9で使用される最も人気のあるモデル生物の1つを表します。一つの利点は、唯一approximat持続が短い妊娠及び授乳期間であり、エリー21日各;したがって、授乳に妊娠の開始からの合計時間は貴重なデータを生成することができる時間の短い期間を示します。マウスと比較してラットの大きなサイズは、ミルクのコレクションとの関連で、ミルクおよびミルクの収集の容易さの体積に対して有意な利点を提供し得ます。マウスでの牛乳の生産は、例えば、より多くのミルク10を生成する重いマウスを用いた全体重に依存するように思われます。 ここでは、授乳中のラットからミルクを手動で収集するための一般的な説明が提供されています。このプロトコルは、最小限の設備を必要とする、非侵襲性で、安価で、さらに下流の分析のためにミルクの適切なボリュームを収集するために使用することができます。簡単に言えば、ダムはミルクレットダウンは、オキシトシンによって刺激され、イソフルランで麻酔され、ミルクはミルクのマニュアル発現によりキャピラリーチューブに回収されます。最後に、ミルクの2つの主要コンポーネントは、簡単なdescriptio脂肪とタンパク質であるとして、creamatocrit測定値11及び標準的なタンパク質アッセイを使用して総タンパク質濃度の定量化を用いて、乳脂肪含有量を推定するnが示されています。

<table><tbody><tr><td>機器 - 搾乳</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1 ml シリンジ</td><td>BD-Canada</td><td>309602</td><td></td></tr><tr><td>25 G 針</td><td>BD-Canada</td><td>305122</td><td></td></tr><tr><td>18 G 針</td><td>BD-Canada</td><td>305196</td><td></td></tr><tr><td>50 &mu;l マイクロディスペンサー キャピラリーチューブ</td><td>フィッシャーサイエンティフィ</td>ック <td>21-169D</td><td></td></tr><tr><td>オキシトシン (20 USP 単位/ml)</td> <td>Bimeda-MTC</td><td>1OXY015</td><td></td></tr><tr><td>PPC 獣医イソフルラン吸入麻酔薬、250 ml</td><td>フレゼニウス カビ</td><td>M60302</td><td>獣医師の注文で使用</td></tr><tr><td>滅菌アルコール準備パッド</td><td>Dukal</td><td>853</td><td></td></tr><tr><td>吸収ベンチ アンダーパッド</td><td>VWR</td><td>82020-845</td><td></td></tr><tr><td>Maxi-Therm ハイパー/低体温ブランケット</td><td>シンシナティ サブゼロ</td><td>274</td><td></td></tr><tr><td>げっ歯類麻酔器 気化器付き</td><td>Benson Medical Industries Inc.</td><td></td><td>個々の研究所のニーズに応じて</td></tr><tr><td>、アニマルマスクベン</td><td>ソンメディカルインダストリーズ株式会社</td><td>50100/50102</td><td></td></tr><tr><td>マイクロ遠心チューブ</td><td>Axygen</td><td>MCT-060-C</td><td></td></tr><tr><td>ChroMini プロフェッショナル トリマー</td><td>Wahl</td><td></td><td></td></tr><tr><td>機器 - Creamatocrit</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>StatSpin SafeCrit プラスチック マイクロヘマトクリット チューブ (未処理)</td><td>Fisher Scientific</td><td>22-274-914</td><td></td></tr><tr><td>Critoseal毛細管の密封剤の皿VWR</td><td></td><td>470161-478</td><td></td></tr><tr><td>StatSpin CritSpinのMicrohematocritの遠心分離機</td><td>のベックマン・コールター、Inc</td><td>X00-004999-001</td><td></td></tr></tbody></table>

キャピラリーチューブ、creamatocritによって乳脂肪含量の推定を用いたラットにおける牛乳コレクション

Milk Collection in the Rat Using Capillary Tubes and Estimation of Milk Fat Content by Creamatocrit

ミルクは、生まれたばかりの哺乳類の唯一の栄養源として、子孫の成長と発達に必要な栄養素とエネルギーを提供します。また、新生児の発達に大きな影響を与える膨大な数の生理活性化合物も含まれています。乳成分の分析は、母親の代謝と健康を子孫の成長と発達と結びつける主要な要因を解明するのに役立ちます。実験用ラットは、母体研究の一般的なモデル生物であり、ラットのミルクは、母体のさまざまな生理学的、栄養学的、および薬理学的介入がミルク成分に及ぼす影響を調べるために使用できます。ここでは、授乳中のラットから手動でミルクを採取する簡単な方法で、単一の研究者が行うことができ、特殊な真空装置や吸引装置を必要とせず、その後の下流分析に十分なミルクを提供する方法について説明する。クリームマトクリットとして知られる、牛乳サンプル内のクリームの割合を測定することにより、牛乳の脂肪含有量を推定する方法も提示されます。これらの方法は、最終的には、母子の健康に関する洞察を深め、子孫の適切な成長と発達に関与する母性要因を解明するために使用できます。

ミルクは、コントロールを消費しウィスターダム（約22週齢、350〜400グラムを秤量）（AIN-93G、n = 5）を、高タンパク質から離乳時に説明したように収集された（40％カゼイン重量/重量、N = 5）しました、または高いプレバイオティクス繊維（21.6％重量/重量、1：オリゴフルクトース及びイヌリンの1の比率、N = 4）妊娠中や授乳を通してダイエット。オキシトシン投与量は、IU 2でした。ミルクは、キャピラリーチューブを用いて回収し、一本のチューブは、その後に係る脂肪濃度及びエネルギー値を推定するために使用されたcreamatocrit（ 図1A）を決定するためにヘマトクリットスピンナーを用いて紡糸した：脂肪濃度（G / L）=（creamatocrit（％ ）-0.59）/0.146（ 図1B）。エネルギー値（キロカロリー/ L）= 290 +（66.8 * creamatocrit（％）（ 図1C）は、19。乳タンパク質濃度をBio-Rad DCタンパク質アッセイ（ 図2）を用いて測定...

牛乳は新生児の主要な栄養源です。乳成分の分析は、子孫の健康に影響を与える母体要因についての洞察を提供する可能性があります。このプロトコルは、授乳中のラットからミルクサンプルを採取する手動の方法を説明しています。これは、その後、さらなるダウンストリーム分析に使用できます。

キャピラリーチューブ、Creamatocritによって乳脂肪含量の推定を用いたラットにおける牛乳コレクション

Milk, as the sole source of nutrition for the newborn mammal, provides the necessary nutrients and energy for offspring growth and development. It also ...

本手順の目的は、乳組成のラボ分析のために、授乳中のラットから手動で乳を採取する方法を解説することです。この手法は、母親の食事が乳組成にどのように影響するかなど、母子保健分野における重要な問いに答えるために活用できます。本手法の最大の利点は、特殊な真空装置や吸引装置を用いることなく、単一の研究者で実施できる点にあります。まず、搾乳を開始する前に、親マウスを子から少なくとも5分間離します。次に、ここに示すように、搾乳手順に必要なすべての資材を揃えます。その後、加熱外科手術台の上に吸収性ベンチパッドを置くか、別途ヒートパッドを使用して、搾乳中の親マウスの体温低下を防ぎます。次に、処置前に麻酔システムに十分な酸素とイソフルランがあることを確認します。その後、導入麻酔に使用するマスクを装置に取り付け、維持用のマスクを近くに準備します。酸素タンクを開き、流量を1 L/minに設定します。次に、イソフルランのフローを開始し、流量を5%に設定します。麻酔が完了したら、ダムを維持用マスクに切り替えます。足底反射が消失していることを確認し、十分に麻酔がかかっていることを確かめてください。その後、ダムを吸収ベンチパッドの上に背臥位で配置します。イソフルランの流量を2〜3%まで下げます。処置の間、母マウスを絶えず観察し、疼痛や呼吸抑制を避けるため、必要に応じてイソフルランの流量を調整してください。次に、滅菌アルコール綿またはクレンジングパッドを使用してオキシトシンのバイアルを消毒し、25G針を装着した1 mLシリンジでオキシトシン0.1 mLを吸引します。その後、母マウスの腹部右下腹面に、頭方向へ15〜30度の角度で、深さ約0.5 cmまで針を刺入します。注入前にプランジャーを引いて、陰圧になっていることを確認します。液体が吸引されない場合は、オキシトシンを注入し、直ちに針と注射器をバイオハザード容器に廃棄してください。オキシトシンが乳汁分泌を刺激するまで、約5〜15分間待ちます。この間に、乳集するための乳頭を選択します。被毛がある場合、サンプルの採取が困難になる可能性があるため、トリマーを用いて選択した乳頭の周囲の毛を慎重に除去してください。その後、乳頭をぬるま湯で洗浄します。乳汁採取に複数の部位が必要となる場合があるため、少なくとも2か所の部位を準備します。乳汁が分泌されたら、乳頭の基部を軽く絞り、手動で乳汁を排出させます。採取には、50 µLのキャピラリーチューブを用いて乳汁の滴を回収します。キャピラリーチューブがいっぱいになったら、乳頭から採取に使用したチューブの先端を滅菌マイクロ遠心チューブの壁面に接触させ、乳を分注します。次に、1 mLシリンジに取り付けた18ゲージの針を用いて、チューブ内に回収されなかった乳を押し出します。十分な量の乳が集まるまで、乳の採取とマイクロ遠心チューブへの移送を繰り返します。選択した解析において、母動物が麻酔下にある合計時間は1時間未満に抑えるようにしてください。採乳が完了したら、イソフルランと酸素の供給を停止し、母動物からマスクを取り外します。母動物が胸立位を維持できる十分な意識を取り戻すまで、監視を続けてください。これ以上の分析が不要な場合は、ミルクを-80°Cで凍結保存します。CCR測定の準備として、Tetから15〜20 µLのミルクをマイクロヘマトクリット管に直接分注します。その後、管の端を粘土状のシーラントで密封します。キャピラリーチューブの封止部分が外側を向くようにヘマトクリットスピナーにセットし、遠心機がバランスしていることを確認します。次に、サンプルを13,700 ×gで2分間遠心分離します。遠心分離が完了したら、チューブを遠心機から取り出します。試料がクリーム層と透明層に分離したことを確認します。定規またはノギスを用いて、チューブ内の液体の全長と脂肪層（クリーム層）の長さを測定し、記録します。これらの情報を用いて、付随するテキストプロトコルに従ってCCRを算出し、妊娠および授乳期の食餌が乳組成にどのように影響するかを判定します。高タンパク質食、高プレバイオティクス食物繊維食、または対照食を摂取させたウスター種雌親から、離乳時に乳サンプルを採取した。高プレバイオティクス食物繊維食を摂取した雌親から採取した乳では、数値的にCヘマトクリット値、脂肪濃度、およびエネルギー値が最も高かった。しかし、タンパク質に関しては、これらの差に統計的な有意差は認められなかった。しかしながら、高タンパク質食を摂取させた母動物から採取した乳は、最も高いタンパク質濃度を示しました。もっとも、この差についても、同様に統計的な有意差は認められませんでした。この手法に習熟し、正しく実施すれば、母動物の麻酔開始から1時間以内に完了させることができます。この手順を行う際は、処置後の麻酔下で呼吸抑制が起こっていないか、母ラットを継続的に監視することが重要です。乳汁のオリゴ糖組成の決定など、さらなる疑問を解消するためには、質量分析法などの他の手法を用いることができます。このビデオを視聴することで、授乳中のラットから手動で乳汁を採取する方法について十分に理解できたはずです。

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