Name: 生細胞共役ポリマーにより電気的活動の光制御 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-01-28T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 16 s
Description: 学ぶ、生細胞共役ポリマーを用いた可視光刺激による細胞膜電位の光制御法。遺伝子導入不要で高時空間分解能を実現し、オプトジェネティクスの代替技術として神経科学・細胞生物学研究に応用可能です。

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この作業は、プロジェクトFP7-PEOPLE-212-ITN 316832-OLIMPIAを通じてEUによって支援されました。 
Telethon - イタリア (助成金 GGP12033 と GGP14022), Fondazione Cariplo (助成金 ID 2013-0738).

光活性基板の作製<ol><li> 20グラム/ LのP3HT濃度でクロロベンゼン中：PCBM溶液（1 / wの1：）P3HTを準備します。 60℃で少なくとも4時間、マグネチックスターラーを用いて溶液を混合します。各基板を用意するために、溶液の150μlの量を考えてみましょう。 </li><li>クリーンITO被覆ガラススライド超音波処理器で脱イオン水、アセトンおよびイソプロパノールの連続したバス付き（R S = 10Ω/□、18×18ミリメートル2、厚さ170ミクロン）（ステップごとに10分）。窒素銃でカバーガラスを乾燥させます。 10分間、100Wの電力でプラズマクリーナーでサンプルを入れてください。 </li><li>スピンコーティングにより洗浄された基板上に活性層の薄膜を堆積させます。 <ol><li>ダイヤモンドチップを用いて、ITO被覆された基材の同一の横方向寸法に顕微鏡用スライドガラス（厚さ≈1 mm）を切断します。ホットプレートからPCBM溶液と、それは周囲温度まで冷却してみましょう：P3HTを削除してください。 </li><li> 2-STを設定EPSスピンコータープログラムは、i）800 rpmで30秒; ⅱ）1,600 rpmで30秒。スピンコーターのチャック上にスライドを配置し、それを修正するために真空を開始します。上を向いITO被覆側で、スライドした後、洗浄した基板上に、アセトンのドロップを入れてください。過剰のアセトンを取り除くためにスピンコーターの回転を開始します。 </li><li> （1.3.2で説明したのと同じプロトコルを使用する）基板上にPCBM溶液と、再びスピンコーターを開始：P3HTの150μLを入れてください。 </li><li>スピンコーターが終了した後、サンプルを除去し、慎重にスライドガラスからコーティングされた基板を取り外します。アセトンに浸した綿棒クリーンルームでの基板の裏面を清掃してください。 注：使用するまで光活性基板は暗箱で数日間保存することができます。より長い期間のために、不活性ガスでグローブボックスに保管してください。 </li></ol></li></ol>細胞培養培地および電気生理学ソリューションの作製<ol><li>完全増殖培地（CGM）のための準備をHEK-293細胞：ダルベッコのイーグル培地（DMEM）、10％ウシ胎児血清（FBS）を補充していない熱不活性化を、100 U / mlペニシリンおよび100μg/ mlストレプトマイシンを改変。 4℃で0.2μmのろ過システムや店舗を有する媒体を滅菌します。 </li><li> 135のNaCl、5.4のKCl、5 HEPES、10グルコース、1.8のCaCl 2、1のMgCl 2：超純水（MM中の濃度）で細胞外溶液を準備します。 NaOHでpHを7.4に調整します。 4℃で0.2μmのろ過システムや店舗で溶液を滅菌します。 </li><li>超純水で細胞内液を調製し（MM中の濃度）：12のKCl、125 K-グルコン酸、1のMgCl 2、0.1のCaCl 2、10 EGTA、10 HEPES、10 ATP-のNa 2。 ATP-のNa 2は、熱に敏感であることに注意してください、最後に追加します。 NaOHでpHを7.4に調整します。 -20℃で0.2μmのろ過システム、1ミリリットルチューブ中のアリコートとストアで溶液を滅菌します。 </li></ol> 3.メッキHEK-293細胞アクティブ基板上<ol><li>ガラスビーカーアルミニウムまたは閉じたペトリ皿で​​覆い、殺菌のため2時間120℃のオーブンに入れて光活性基板を配置します。以降、この瞬間から、無菌状態ですべての操作を実行します。無菌フード内のサンプルを入れて、彼らがクールダウンしましょう​​。 </li><li>コー​​ト接着層と光活性基板は、表面疎水性を減少させると、細胞接着を促進します。 <ol><li> P35ペトリ皿または6マルチウェルプレート内のアクティブ基板を配置します。共役ポリマー層の疎水性を考えると、サンプルを修正して解決策を閉じ込めるためにも、ポリジメチルシロキサン（PDMS）を作ります。 <ol><li>粘性スラリーを得るために、ガラス棒で1割合：10にPDMSと触媒を混合します。 </li><li>各ウェルの半分をカバーするのに十分な量を分配する、6マルチウェルプレート中のスラリーを注ぎます。 </li><li> RTでPDMS重合を待ちます。 </li><li> obtaのため途中で硬化PDMSをカットポリマー試料の同じ次元の正方形ining。 </li><li>少なくとも30分間、70％エタノール - 水混合物中に浸漬することによってPDMSウェルを滅菌します。 </li></ol></li><li>よくPDMSを使用している場合は、ウェルの細胞培養後、PDMSを除去する際に、全層の剥離を防止するために、先の尖ったピンセットでも全体の国境に沿って光活性層を傷つけます。 </li><li>フィブロネクチン溶液（PBS中の2mg / L）を用いて、各サンプルの表面全体を覆​​います。 PDMSはよく（：15x15 mm 2のウェルのクリアな表面）を使用する場合、サンプルあたり500〜750μlの間の容積は、通常は十分です。よくPDMSがなければ、フィブロネクチン溶液約2mlを完全にサンプルを浸すために必要です。溶液を添加しながら、基板が浮いていないことに注意を払います。少なくとも1時間、37℃でサンプルをインキュベートします。 </li><li>ガラスピペットを用いてフィブロネクチン溶液を除去し、2mlのPBSで1回洗浄。 </li></ol></li><li> PL完全増殖培地中/ cm 2に15,000細胞の密度で、フィブロネクチン処理サンプルのHEK-293細胞を食べました。よくPDMSが使用されている場合はそれ以外のCGM 2〜3mlのが必要であり、各サンプルのCGMの750-1,000μLの容量を使用してください。 24〜48時間37℃で細胞を、5％CO 2でインキュベートします。 </li></ol> 4.光刺激プロトコルおよび電気生理学的測定<ol><li>熱化するために37℃の水浴中で細胞外溶液を入れ、 、細胞内液を解凍する34ゲージの針で1mlシリンジにそれを入れて、ATPの分解を回避するために氷と接触してそれを維持します。 </li><li>慎重にPDMSを取り除くだけでなく存在する場合、インキュベーターから細胞で被覆された基板を取ります。ガラスピペットを用いて、増殖培地を除去し、細胞外液でサンプルをすすいでください。細胞の剥離を避けるために、ゆっくりと進みます。 </li><li>外solutioと電気ステーションのサンプルホルダーにデバイスを入れてnおよび基準電極。 （理想的な抵抗値が範囲2-4MΩである）プラーとパッチクランプ用の新鮮なガラスマイクロピペットを準備します。細胞内溶液でピペットの半分を記入し、マイクロマニピュレータにマウントします。 </li><li>デバイス上のパッチにする健康な細胞を探します。光活性基板の望ましくない励起を回避するために、顕微鏡照明装置の前に長波長通過フィルタ（例えば、カット波長λ= 750nmの可視で吸収性ポリマーに使用することができる）を配置し、撮像のためにIR照射を用います。 </li><li>選択したセルにパッチを適用し、顕微鏡（ 図1）の蛍光励起経路を介して試料に光を提供することにより、光刺激のための目的のプロトコルを適用します。パッチクランプのプロトコルの詳細な説明は、参照20で見つけることができます。 <ol><li>マイクロメートルマニピュレータを用いて細胞膜に近接してパッチピペットを置きます。位置決め時、overpressur適用先端に付着した汚れを避けるために、ピペットに電子。ピペットは、セルの上に数ミクロンであるべきです。 </li><li>パッチ管理ソフトウェア上のピペット抵抗を制御して細胞膜に向かってピペットを下げ始めます。ピペット抵抗は1MΩ程度増加しているときは、ピペットと細胞膜との間のギガシールを形成するために、穏やかな吸引を適用しながら、ピペットからの過度の圧力を削除する（ すなわち、測定された抵抗は1GΩ以上の値に増やす必要があります） 。 </li><li>シールの安定化を助けるために（HEK293細胞のために-40 mVでの電位を使用することができます）、予想される細胞静止電位に近いピペットに負の電位を適用します。パッチアンプおよび/またはパッチ・制御ソフトウェア上の相対的なコマンドを使用して、ピペット容量による容量トランジェントを補正してください。 </li><li>短いと、強い吸引パルスを印加することによって、細胞質への電気的アクセスを可能にするために、膜を破りますピペットへ。細胞膜電位を追跡するために、（セル内に注入電流なしで、すなわち、I = 0）電流クランプモードにパッチアンプを設定します。セル電位が安定しているかどうかを確認するために数分を待ちます。 </li><li>細胞に所望の照明プロトコルを適用し、膜電位への影響を記録します。 注：照明は、顕微鏡のアーキテクチャに応じて、底部または上部のいずれかからのサンプルに送達することができます。 <ol><li>井戸活性材料によって吸収された励起波長を選択します。 P3HTのため：PCBMブレンド、450〜600 nmの範囲の波長を使用することができます。適当な光励起密度は10〜100の範囲ミリワット/ mm 2としています。 注：光がオフにされるまで長時間照明で（ミリ秒以上のパルスの数百）持続的な過分極が観察されている間（10〜20ミリ秒以下）の光の短いパルスは、細胞の一過性脱分極が生じます。 </li></ol></li&gt; </ol></li></ol>

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</ol>

著者らは開示するものは何もない。

細胞のインビトロ光刺激のために報告されたプロトコルの重要なステップは、主に、感光性ポリマーの選択、熱殺菌パラメータ、強度と光刺激の持続時間を懸念します。 P3HT：それは良い時間的および電気化学的安定性を保証するため、PCBM薄膜は、ここで選択しました。しかし、人はいないすべての光感受性ポリマーは、照射時に22具体的には、アナログ性能を提供できることに気付くべきです。また、この場合、パラメータは、ポリマー光電子機能のかなりの低下をもたらさない熱滅菌を選択。通知は、しかし、その場合には、滅菌法または熱処理パラメータは、ポリマー特性に対する可能な効果を慎重に評価しなければならない、変更されました。これは、UV露光が急激共役損失、不可逆ポリマーの漂白及び分解をもたらすことが、例えば、知られています。さらに、別のアニーリング温度および持続時間は、電荷輸送特性に負の効果を、ポリマー表面の異なる形態的秩序をもたらし得ます。光励起プロトコルのパラメータも慎重に評価する必要があります：100 mWの/ cm 2であり、および/ ​​または長期の刺激上記の励起密度は、簡単にポリマー分解と光刺激...

正確な空間的及び時間的分解能で細胞活性を操作する可能性は、神経科学研究および神経学的および精神医学的障害の治療における重要な戦略を表す。1従来の方法は、近接してまたはと接触して配置された電極を使用して細胞の電気刺激に基づいています（ インビボ脳組織、単一細胞、セルラーネットワーク、脳切片）は、異なる複雑さのものとすることができる標的システム、2。過去世紀の間、パッチクランプ、金属と基板と一体型の電極の使用は、単一ニューロンのニューラルネットワークの機能メカニズムの生理学および病態生理学の詳細な画像を提供してきました。しかし、電気刺激が重要な制限を受けます。最初のものが原因容易に適合させることができない電極とそれらの固定形状の物理的寸法、一般的に貧しい空間分解能に関係しています生物学的組織のような複雑な組織化システムに関する。また、電極インピーダンスおよび刺激および記録システム間のクロストークに関連する問題は、測定値の最終的な信号対雑音比を劣化させることができる。3一方、刺激のための光の使用は、多くの制限を克服するのを助けることができます電気的なアプローチの。まず第一に、それが可能な特定の細胞型、あるいはサブ細胞区画を標的とするようになって、今までにない空間（&lt;1ミクロン）と時間分解能（&lt;1ミリ秒）を提供しています。それは目的の組織との物理的接触を回避し、記録から刺激をdisentanglesので加えて、非常に非侵襲的です。また、光の強度および波長の両方を正確に調整することができるので、多様な刺激のプロトコルを適用することができる。3,4 しかし、動物細胞の大部分は光に特定の感度を提示しません。光学stimulatioのためのいくつかの戦略nはこのように、いずれかの近く、または細胞内の光に敏感な分子メディエーターを利用し、又は細胞に近い外部に配置された光活性デバイスを使用して提案されています。前者は、可視光や赤外線（IR）光だけでなく、光切断/光異性化化合物または感光性分子アクチュエータ（光遺伝学）の遺伝子発現のいずれかを使用することによって、刺激等の内因性のメカニズムを指します。後者のクラスは、無機ナノ/マイクロ粒子または光伝導性のシリコン基板を使用して達成外因性の刺激のための技術を含む。5にもかかわらず、すべてのこれらのシステムは、明るい側面と欠点を有します。特に、可視範囲内の細胞の内因性の吸収が弱く、信頼性がなく、反応性酸素種の同時発生は、細胞に有害であり得ます。一般に、IRは、吸水による局所的な熱的加熱を誘導するために使用されるが、水の吸光係数が小さくなり、従ってSTを要求していますチョロン赤外光（数十からW / mm 2の数百）標準的な顕微鏡光学系を経由して提供することは困難であり、 生体内でのアプリケーションのための安全性の問題を引き起こすことがあります。一方、光スイッチング可能ケージング化合物は、時間制限された作用を有し、しばしば、限られた組織浸透に配信しにくいUV光を必要とします。加えて、それらは、照射された領域外の光分解により活性化化合物の拡散の問題に悩まされています。最後に、optogeneticツールは、科学者が特定の細胞亜集団とサブコンパートメントを標的とすることが許されており、急速に神経科学の研究における重要な技術の一つとして浮上しています。しかし、ウイルスベクターにより外来性DNAセグメントを挿入すると、特にヒト患者への適用の観点から、重要な安全性の問題が発生します。これらの理由から、5,6、セル光学的操作が可能な新しい材料やデバイスの研究は非常にホットな話題です。 最近、小説効率的に細胞の電気的活動の調節に光刺激を伝達することができる感光性共役ポリマーの使用に基づくアプローチが、提案されています。ポリマー光励起（CSPP）技術による細胞の刺激は、有機半導体の典型的な多くのキー可能な機能を活用する：彼らは、可視域の光に対して本質的に敏感である; 7彼らは、生体適合性柔らかく順応性であり、その機械的柔軟性は、組織との親密なインタフェースを可能にしますin vitroおよびin vivoの両方8-10。それとは別に、彼らは簡単に機能をプロービングし、センシング、よりよい生きている細胞とのインタフェースに適応するために、具体的な励起を可能にするために官能化することができる。11,12はまた、彼らは組み合わせに最適です、電子だけでなく、イオン輸送をサポート電子広告の生物学の。13,14興味深いことに、彼らは外部バイアスFを適用する必要がなくなり、太陽光発電モードで動作することができますまたは効率的な細胞光刺激。15 CSPP技術の信頼性は、以前に一次ニューロン、15,16アストロサイト、17の二次電池線 18と外植網膜組織を含む、いくつかのシステムで実証されている。本研究では16、必要なすべてのステップは、光に敏感なバイオポリマーを製造するためにインビトロ系の光刺激のためのインターフェース19は、詳細に記載されています。作用する試験事例、地域規則的ポリ（3-ヘキシルチオフェン）（RR-P3HT）、電子供与体として機能し、かつフェニルC61 - 酪酸メチルエステル（PCBM）の典型的な有機光起電性ブレンド、など電子受容体が使用されます。生物系として、ヒト胚性腎臓（HEK-293）細胞が使用されます。電気生理学的測定を介した細胞活性の相対的な記録と光刺激プロトコルの例が提供されます。 説明プラットフォーム適切に要求された細胞培養プロトコル、めっき手順及び時間を変えることによって（ただし、一般有効であり、それは容易に（適切液調製工程と、堆積パラメータを調整することによって）、他の共役ポリマーの使用に拡張することができる、異なる細胞型細胞播種および増殖）と異なる刺激プロトコル（光波長、刺激頻度および期間、光励起密度）のため。

<table><tbody><tr><td>rr-P3HT</td><td>Sigma Aldrich</td><td>698989-5G</td><td></td></tr><tr><td>ITOコーティング基板</td><td>Nano-CS</td><td>IT10300100</td><td></td></tr><tr><td>Fibronectin</td><td>Sigma Aldrich</td><td>F1141</td><td></td></tr><tr><td>クロロベンゼン</td><td>Sigma Aldrich</td><td>319996</td><td></td></tr><tr><td>PCBM</td><td>Nano-C</td><td>Nano-CPCBM-BF</td><td></td></tr><tr><td>アセトン&nbsp;</td><td>シグマ アルドリッチ</td><td>270725</td><td></td></tr><tr><td>イソプロピルアルコール</td><td>シグマ アルドリッチ</td><td>563935</td><td></td></tr><tr><td>HEK 細胞</td><td>LGC 標準 srl</td><td>ATCC-CRL-1573</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>シグマ アルドリッチ</td><td>H0887</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>シグマ アルドリッチ</td><td>P5244</td><td></td></tr><tr><td>E-MEM</td><td>LGC 標準 srl</td><td>ATCC-30-2003</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>シグマAldrich</td><td>E8008-FBS</td><td></td></tr> <tr><td></td><td>LGC規格srl</td><td>ATCC-30-2020</td><td></td></tr></tbody></table>

生細胞共役ポリマーにより電気的活動の光制御

Optical Control of Living Cells Electrical Activity by Conjugated Polymers

有機半導体と生体組織との間のハイブリッド界面は、in-vitroおよびin-vivoアプリケーションのための新しいツールを表しています。特に、共役ポリマーは、優れた生体適合性、優れた機械的特性、安価で容易な加工技術、軽くて薄く柔軟な基板への堆積の可能性など、生体システムの基質としていくつかの最適な特性を示します。これらの材料は、神経プローブ、神経活動の励起と記録のためのトランジスタ、薬物放出のためのバイオセンサーやアクチュエーターなどの細胞インターフェースに採用されています。最近の実験では、細胞の電気的活動の全光変調に共役ポリマーを使用する可能性も示されています。一次神経細胞ネットワーク、星状細胞、二次系統細胞など、いくつかのinvitro研究例が報告されています。また、有機高分子によるシグナル光伝達は、縮退した網膜の光感受性を回復させることが示されており、将来的には人工網膜プロテーゼに利用できる可能性が示唆されています。全体として、光感受性共役ポリマーは、細胞活動の光学調節のための新しいアプローチを表しています。
この作業では、生細胞の光学励起のための生体高分子界面を製造するために必要なすべてのステップが説明されています。アクティブインターフェースの機能は、光刺激を細胞膜電位の調節に変換することです。インビトロ研究に有用な研究事例として、ポリチオフェン薄膜を機能的な光吸収層として用い、その界面の生体成分としてヒト胚性腎臓(HEK-293)細胞を用いることが挙げられます。異なる持続時間の光パルスによる刺激による細胞膜電位の成功した制御の実例が提供されています。特に、細胞膜に対する脱分極効果と過分極効果の両方が、光刺激の持続時間に応じて達成できることが示されています。報告されたプロトコルは一般的に有効であり、他の生物学的製剤に直接拡張することができます。

細胞はP3HTで簡単に培養することができる：PCBM基質、（記載のプロトコルのステップ3.2で使用されるフ​​ィブロネクチンのような）適切な接着層が堆積されることを条件とします。 P3HT：可視スペクトルの緑の部分でPCBMの光吸収ピーク;しかしながら、他の感光性共役ポリマーは、好ましい光刺激波長範囲（ 図2）によれば、選択することができます。これらの基板の生体適合性は、HEK-293のような細胞株18,21と、だけでなく、神経細胞15とアストロサイトの初代培養だけではなく実証されている、P3HT上で培養した健康的なHEK-293細胞の17典型的な顕微鏡写真：PCBM膜が示されています図3に 。光活性基質によって媒介細胞の光刺激は、光刺激の持続時間に応じて、細胞膜上の様々な効果をもたらすことができる。18を光パルスの開始時には、（約3 mVでの強度と約1秒の持続時間）速いスパイクは、細胞膜電位記録（ 図...

有機半導体ポリマーの使用に基づく、可視光によるin-vitro細胞培養の電気的活動の刺激方法が説明されています。

Hybrid interfaces between organic semiconductors and living tissues represent a new tool for in-vitro and in-vivo applications. In particular, conjugated ...

本手法の全体的な目的は、可視光パルスによる刺激に応じて細胞膜電位を制御することです。光変換プロセスは、光感受性共役ポリマーによって媒介されます。本手法は、生細胞の活性を光学的に制御するためのオプトジェネティクスや熱刺激などの既存手法に代わる有用な選択肢となるため、技術分野における新しいツールを提供します。この手法の主な利点は、あらゆる電気生理学的手法に迅速に統合できること、空間および時間分解能を高く維持できる可能性があること、そして侵襲性を低減できることです。さらに、光遺伝学で必要となる遺伝子導入を回避することが可能です。本稿では、in vitro 細胞培養の光刺激に関する当手法について説明します。しかし、これはin vivoへの応用という興味深い可能性をもたらすかもしれません。本手順の実演は、それぞれ生物学的および物理化学的な背景を持つ当研究室のポストドクター、Caterina BossioとSusana Vaquero Morataが行います。まず、P3HTとPCBMをクロロベンゼン中で相対濃度1:1で混合し、光感受性共役ポリマー溶液を調製します。溶液をマグネチックスターラーを用い、60 °Cで少なくとも4時間混合します。次に、酸化インジウムスズ（ITO）コートガラススライドを、超音波洗浄機にて脱イオン水、アセトン、イソプロパノールの順にそれぞれ10分間浸漬して洗浄します。カバーガラスを窒素ガンで乾燥させた後、プラズマクリーナーで基板を処理します。洗浄後、スライドをスピンコーターのチャックに、ITOコーティング面を上にしてセットします。次に、P3HT PCBM溶液150 µLをスライドに滴下し、サンプルをスピンコートします。スピンコート終了後、サンプルを取り出し、アセトンに浸したクリーンルーム用スワブで基板の背面を洗浄します。光活性基材を蓋付きの耐熱容器に入れ、120 °Cで2時間加熱して滅菌します。その後、サンプルを滅菌フードに移して冷却させます。これ以降は、サンプルの無菌状態を維持してください。光活性基板を6ウェルプレートに配置します。共役ポリマー層の疎水性を考慮し、サンプルを固定するためのポリジメチルシロキサンウェルを作成し、付属のテキストプロトコルに従って溶液を封じ込めます。次に、光活性基板をプレートのウェルに配置し、各サンプルの表面全体をPBS中の2 mg/Lフィブロネクチン溶液 500〜750 µLで覆います。サンプルを37°Cで少なくとも1時間インキュベートします。インキュベート後、ガラスピペットを用いてフィブロネクチン溶液を除去し、基材を2 mLのPBSで1回洗浄します。まず、1ウェルあたり合計750〜1,000 µLの完全増殖培地を加えます。次に、光活性基板の1平方センチメートルあたり15,000個のAGK293細胞を各ウェルに播種します。その後、細胞を24〜48時間インキュベートします。フィブロネクチンのような適切な接着層が堆積されていれば、光活性基板上で細胞を容易に培養することが可能です。まず、付属のテキストプロトコルに従って、細胞外液と細胞内液の両方を調製します。これらの溶液を0.2 micronフィルターでろ過して滅菌します。その後、細胞外液を37 °Cの水槽に入れて予熱します。また、1 mLのシリンジに細胞内液を満たし、34ゲージの針を取り付けます。ATPの分解を防ぐため、細胞内液は氷に接した状態で保持してください。次に、インキュベーターから細胞コーティング済みの基材を取り出し、PDMSウェルを慎重に取り除きます。次に、ガラスピペットで培地を除去し、細胞の剥離を防ぐため、細胞外液でサンプルをゆっくりと洗浄します。各ウェルに細胞外液を 3 mL 加え、プレートを電気生理学装置のサンプルホルダーに移動させます。セットした後、検査対象のウェルに参照電極を挿入します。次に、マイクロピペットプラーを用いて、パッチクランプ用の新しいガラス製マイクロピペットを作製します。ピペットの半分まで細胞内液を満たします。マイクロマニピュレーターを使用して、パッチピペットを選択した細胞膜の至近距離に配置します。ポジショニングの間は、チップに汚れが付着するのを防ぐため、ピペットに過剰圧をかけます。ピペットを細胞から数ミクロンの位置まで近づけ、パッチコントロールソフトウェアでピペット抵抗を確認しながら、細胞膜に向かってゆっくりとピペットを下げます。ピペット抵抗が約1 MΩまで上昇したところで過剰圧を解除し、緩やかな吸引を加えて、ピペットと細胞膜の間にギガシールを形成させます。次に、シールの安定化を助けるため、ピペットに-40 mVの負電位を印加します。ピペット容量に起因する容量性過渡現象を、パッチクランプアンプおよび/またはパッチコントロールソフトウェアの相対コマンドで補正します。ピペットに短時間で強力な吸引パルスを加え、細胞膜を破壊して細胞質への電気的アクセスを可能にします。次に、パッチクランプアンプをカレントクランプモードに設定し、細胞に電流が注入されないようにします。カレントクランプモードで細胞膜電位を追跡し、電位が安定するまで数分間待ちます。安定後、細胞下の光活性膜に450から600ナノメートルの範囲の光を照射し、所定の照明プロトコルを細胞に適用します。光による膜電位への影響を記録します。10から20ミリ秒程度の短い光パルスは細胞の一過性の脱分極を引き起こし、一方で数百ミリ秒オーダーの長時間照射では、光を消灯するまで持続的な過分極が観察されます。光活性基質を介した細胞の光刺激は、光刺激の持続時間に応じて、細胞膜に異なる影響を及ぼす可能性があります。ここに示されているような急峻なスパイクの後には、数十ミリ秒オーダーの過渡的な脱分極が続きます。短光パルスの場合、光がオフになると逆の挙動が観察されます。これらの信号は、光吸収後の局所的な加熱による膜容量の変化に起因すると考えられています。長時間にわたって光照射を行うと、初期の脱分極は細胞の過分極へと変化します。この現象もまた熱的な要因によるものですが、この場合は、温度上昇によって誘発されたイオンチャネルのコンダクタンスの変化に伴う膜平衡電位の変動に関連しています。この手法は非常に柔軟であり、例えば、光毒性ポリマー、作製プロセス、または光照射プロトコルを変更することで、特定の実験の個別のニーズに適応させることが可能である点に留意することが重要です。ただし、プロトコルを変更する前に、まず活性ポリマーの生体適合性、滅菌プロセスへの適応性、電気化学的安定性および時間的安定性といった重要な特性を確認する必要があります。このビデオを視聴することで、導電性ポリマーと生細胞との間のハイブリッド界面を実現する方法と、それを細胞活性の光学的制御に利用する方法について十分に理解できたはずです。本手法は、神経科学におけるin vitro研究の補完的なツールとなるだけでなく、in vivoへの応用においても新たな展望を開くものであると確信しています。しかしながら、プロトコルを洗練させるには、材料科学者、神経科学者、物理学者、および医師による強力な共同努力が不可欠である。

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Research

JoVE Journal

Bioengineering

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