Name: COSMICと細胞の薬剤-DNA相互作用のゲノムワイドなマッピング（小分子の架橋は、クロマチンを分離するために） (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-01-20T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 5 s
Description: 学ぶCOSMIC法によるゲノムワイドなDNA標的小分子の結合プロファイル解析。ポリアミドなどの薬剤-DNA相互作用を直接測定し、作用機序の解明と新規治療薬設計に貢献する革新的なクロマチン分離技術です。

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私たちは、有益な議論をしてくださったアンサリ研究室のメンバーとパラメスワラン・ラマナサン教授に感謝します。この研究は、NIHの助成金CA133508およびHL099773、H.I.ロムネス教員フェローシップ、およびA.Z.A.G.S.E.へのW.M.ケック医学研究賞の支援を受けました。これは、NIH T32 GM07215の生化学および分子生物科学研修助成金のピーターソンフェローシップの支援を受けました。A.E.はMorgridge Graduate FellowshipとStem Cell and Regenerative Medicine Center Fellowshipの支援を受け、D.B.はNSFからのNSEC助成金の支援を受けました。

生きた細胞内の1架橋<ol><li> 〜2.5×10の7 H1細胞、または他の培養細胞で始まります。 注：H1細胞のこの数は、5〜10 cmのディッシュ（約40％の集密度）に相当します。 </li><li>多能性幹細胞をサポートする表面上にコーティングされた皿上E8培地中で細胞を成長させる（材料リストを参照）、および5％CO 2の加湿雰囲気中、37℃でそれらをインキュベートします。収穫細胞は酵素的に（材料リストを参照してください）​​。注：H1細胞は、90％の密集度を超えないようにしてください。密集度は、H1細胞の自発的な分化を誘導します。 、細胞をカウントし、細胞の余分な10 cmディッシュに成長し、セクション1.8から1.10に記載されているように、酵素的に細胞を持ち上げ、そして血球計数器でそれらをカウントします。 <ol><li>チェンらに記載されているようにE8培養培地を準備します。54 </li></ol></li><li>ポリアミドを追加する前に、真空トラップに取り付けたパスツールピペットで過ごし培養培地を除去します。などで新鮮な培地を追加erologicalピペットピペットディスペンサー（10 cmディッシュあたり8ミリリットル）。 注：細胞を破壊を避けるために、皿の側にメディアを追加します。この時点から以降早期の光架橋を避けるために、光から細胞を保護します。 </li><li>直接各皿の培地にピペット（DMSO中、400μMのポリアミド8μlの、400 nMの最終濃度）でポリアミドを追加します。メディアの中に均等にポリアミドを分散させる料理を渦巻。 注：濃度が変化しますが、何の細胞毒性は、選択された治療のために観察されないことを保証することができます。 </li><li> 5％CO 2の加湿雰囲気中で細胞を24時間37℃でインキュベートし、そしてそれらは、光から保護されていることを確認。 注：インキュベーション時間は、時間を横切って結合ポリアミドを測定するように変化させることができます。 </li><li>血清学的ピペットとピペットDISを用いて、4 mlのPBS（1.05ミリモルのリン酸二水素カリウム、155.17 mM塩化ナトリウム、2.97 mMリン酸ナトリウム二塩基性）で各10 cmディッシュを洗いますpenser。吸引しPBSおよび3ミリリットルE8培養培地を追加します。 </li><li>ライトが淡色表示して、5培養皿の蓋を外し、フードの外に平らな面に細胞を配置します。 λ&lt;300 nmの光をフィルタするために5培養皿の上にガラスフィルターを置きます。フィルターの上にUV光源を配置します。架橋試料を365 nmのUV照射（2.4ミリワット/ cm 2）を用いて30分。 注：架橋時間は、経験的に決定されるべきです。 </li><li>フードに培養皿をバック転送します。真空トラップに付着したパスツールピペットでメディアを吸引除去します。 4ミリリットルPBSで各10 cmディッシュを洗ってください。 PBSを吸引除去します。細胞を解離させるために10 cmディッシュあたりの細胞解離のための3ミリリットルの酵素を（材料リストを参照）を追加します。 37℃で5分間インキュベートします。 注： しない酵素を事前に温めます。 </li><li>皿当たり3ミリリットルE8メディア​​に酵素をクエンチ。転送は1 15mlのコニカルチューブに細胞を解離しました。 注：この時点から、氷の上に置いてセル以降。 </li><li> CentriFUGEを4℃で細胞を5分間、500×gで解離しました。酵素とメディアを除去するために上清を吸引。 注： 一時停止ポイント 。細胞は、後で後続の処理のために-80℃で保存し、液体窒素中で急速冷凍することができます。 </li></ol>クロマチンの2の単離<ol><li> 1.2ミリリットルCOSMICバッファを追加します（20 mMトリス - 塩酸[pHが8.1]、2mMのEDTA、150mMのNaCl、1％のTriton-X100、0.1％SDS）と上下ピペットを数回には、各サンプル中のため、細胞ペレットを再懸濁します1.2ミリリットルCOSMICバッファ。 <ol><li> PMSFおよびベンズアミジンおよびペプスタチン1.5μMため、1mMの最終濃度に新鮮な 133μlの100 mMのフェニルメチルスルホニルフルオリド（PMSF）のそれぞれ、100 mMのベンズアミジン、およびプロテアーゼ阻害剤ペプスタチン、150μMを追加します。 2アンバー1.7ミリリットルのマイクロチューブに細胞溶解物の分割ソリューション。 </li></ol></li><li>ソニケーター35分（上の10秒、10秒オフ、60％のパワー）と超音波処理は、100の間にゲノムを断片化しますND 500 bpの。 <ol><li>タンク内の水のレベルにマイクロ遠心チューブに平行なクロマチンの溶液のレベルを保持します。目視検査によって、このレベルを確認してください。 注：DNAを1.5％アガロースゲルで剪断したことを確認してください55 </li><li>経験的に超音波処理時間を最適化します。サンプルを冷却するためにリザーバ内に氷の最小量を使用し、氷がサンプルとカップホーンとの間で干渉していないことを確認します。 </li></ol></li><li>遠心サンプル12,000×gで10分。ピペットを用いて新たな琥珀色のマイクロ遠心チューブに移すことによって、水溶性のクロマチンを含有する水溶液を保存します。ペレットを廃棄します。 </li><li>新しいマイクロチューブにサンプルの110μlの（10％）を転送し、それを入力するDNAを標識します。 -80℃で保存してください。ステップ3.3で使用するために氷の上クロマチンサンプルの残りの部分を保存します。 </li></ol>リガンド-DNA架橋の3キャプチャ<ol><li> 60μLを分注するピペットを使用しstreptavi喧騒コーティングされたマイクロチューブ内の磁気ビーズが。 1ミリリットルにCOSMICバッファを追加し、室温で旋回装置5分に混ぜます。ビーズを捕捉するために2分をラック磁気分離に磁気ビーズを置きます。ピペットを用いてCOSMICバッファを削除します。 注：ビーズを乾燥させないでください。次のステップにすぐ進みます。 </li><li>ビーズへのクロマチンサンプル（〜1ミリリットル）（60μl）を加え、ビーズを再懸濁します。 4℃で回転させ、ロッキングミキサー上のストレプトアビジンでコーティングした磁気ビーズ、少なくとも4時間でクロマチンをインキュベートします。必要に応じて、サンプルのO / Nインキュベートします。 </li></ol>アフィニティー精製したDNAの単離4 <ol><li>非特異的相互作用を削除するには、次の洗浄バッファーで室温で7分間隔でビーズを洗浄します。各洗浄後にビーズを捕捉するために磁気分離ラックを使用してください。洗浄用緩衝液の各変化の後にビーズを再懸濁します。 </li><li>使用前に蒸留脱イオン水とフィルター（0.2ミクロン）で洗浄バッファーを準備します。秒4℃で保存の洗浄緩衝液1と2everalヶ月。毎日洗浄バッファー3新鮮な準備をします。ピペットでサンプルから洗浄バッファーを追加し、削除します。 図 2及び図4は、洗浄液中に、それぞれ、1および3（5ミリモル）を加えます。サンプルは、さらに以下に記載の洗浄前にCOSMICバッファ（一回12時間、一回4時間）で2回洗浄することができます。 <ol><li>洗浄バッファー1（10mMのトリス-Cl [pHが8.0]、1mMのEDTA、3％SDS）で1回洗浄します。洗浄バッファー2（10mMのトリス-Cl [pH8.0の]、250mMのLiClを、1mMのEDTA、0.5％NP40、1％デオキシコール酸ナトリウム）で1回洗浄します。洗浄緩衝液で3回洗浄する（4 M尿素、10 mMのトリス-Cl [pH7.5の]、1mMのEDTA、0.1％NP-40）。トリスEDTA（TE）緩衝液（10mMトリス-Cl [pHが8.0]、1mMのEDTA）で2回洗浄します。 </li></ol></li><li>ピペットで200μlのTEバッファーにビーズを再懸濁します。捕捉されたDNAのこのサンプルは、アフィニティー精製（AP）DNAと呼ばれます。 </li><li> 10倍の架橋反転バッファ（100mMのトリス-Cl [pHが8.0]と入力し、AP DNAを補足、1 M KOH、4 mMの最終濃度が1Xに90℃で30分間インキュベート56,57のEDTA）。 注：254 nmのUV照射はソラレン架橋を逆にも使用することができ、58が、シクロブチルピリミジン二量体は、この波長での照射で形成され、DNAの下流の処理を妨害することができます。 </li><li> AP DNAは、マイクロチューブを室温で2分間ラック磁気分離のサンプルを含有し、ピペットで液体（DNA）を単離することを配置します。新しいアンバーマイクロ遠心チューブに（ビーズから解放されている）AP DNAを転送します。 注：目的のAP DNAは液体で、もはやビーズに付着されます。 </li><li>ピペットを用いて100μlのサンプルあたり約1μlの6NのHClを加えてpHを7に濃塩酸で入力し、AP DNAを中和してください。確認したサンプルをピペットでpH紙の上に〜0.5μLを加えて中和されている警告：濃HClを強い腐食性の酸です。あなたの機関によるとハンドル217;適切な個人保護具を使用するためのガイドライン。 </li><li>入力とAP DNAの両方に最終濃度μlの0.2μgの/へのRNase A（100 mg / mlの）を追加します。 37℃で1時間インキュベートします。入力とAPのDNAの両方に最終濃度μlの0.2μgの/にプロテイナーゼK（20 mg / mlの）を追加し、追加します。 55℃で1時間インキュベートします。 </li><li> DNA列のクリーンアップキット（材料リストを参照してください）でDNAを精製する。58μlのDNAグレードのH 2 O中の55溶出DNA -20または-80°Cで保存入力し、APサンプル</li><li>遺伝子座特異的プライマーを用いて、および/または次世代シークエンシングによって、定量的ポリメラーゼ連鎖反応（qPCR）によって、APのDNAを分析します。 95℃10分の1サイクルと、95℃20秒を40サイクル、54℃、56℃20秒、72℃40秒：定量PCRのために、次のパラメータを使用して遺伝子座あたり2μlのAP DNAを使用しています。 注：アニーリング温度は、使用されるプライマー対の融解温度に応じて変更されるべきです。アニーリングtemperatuを選択その再なし非特異的な増幅と定量サイクルを最小限に抑えることができます。 注：次世代シーケンシングによる分析のために、読み込みマッピングされた少なくとも10万ドルを目指しています。マッピングされた数は、AP DNAの量を増加させることによって、および配列決定の実行中に、より少ないサンプルを組み合わせることによって増加させることができる読み取ります。詳細は、感度を向上させる読み込みます。 ChIP-seqの分析のための標準パッケージ（例えば、ホーマー、59 MACS、60とSPP 61）は 、COSMIC-seqのデータを扱います。ゲノム配列決定のChIP-seqのとを含む、次世代シーケンシングに頼る他の方法と同様に、反復領域は、アライメントとアセンブリ内の曖昧さを作成するため、技術的な課題のままです。 </li></ol>

AZAは、Vista Motif, LLCとWINStep Forwardの個人事業主です。

従来のChIPの主な課題の1つは、適切な抗体の同定です。ChIPは抗体の品質に大きく依存し、ほとんどの市販抗体はChIPに受け入れられません。実際、Encyclopedia of DNA Elements(ENCODE)コンソーシアムは、市販の抗体のうちChIPアッセイに適しているのはわずか20%であることを発見しました。50 COSMICでは、抗体はストレプトアビジンに置き換わります。ポリアミドはビオチンで官能基化されているため、抗体の代わりにストレプトアビジンを使用してポリアミド-DNA架橋を捕捉します。ビオチンとストレプトアビジンの間の相互作用は、自然界で知られている最も強いものの1つであり、抗体とそのリガンドとの相互作用の1000〜100万倍強力です。62 この堅牢な相互作用とストレプトアビジンの固有の安定性を利用して、捕捉されたポリアミド-DNA架橋を抗体を変性させる過酷な洗浄にさらします。これらの洗浄により、COSMICのバックグラウンド信号が減少します。さらに、ヒストンなどのビオチン化タンパク質は、これらの過酷な条件下で DNA から展開および解離します。63,64</...

人体内の各セルを作るための情報は、DNAにコードされています。その情報を選択的に使用することは、細胞の運命を支配します。転写因子（TFS）は、ゲノム中の遺伝子の特定のサブセットを表現するために、特定のDNA配列に結合するタンパク質であり、TFの誤動作を発達障害、癌、および糖尿病を含む、疾患の広い配列の発現に連結されています。1,2私たちは、選択的ゲノムに結合し、遺伝子調節ネットワークを調節することができる分子の開発に興味を持っていました。 ポリアミドは、N個の -methylpyrroleで構成され、Nライバル天然の転写因子。3-6これらの分子は、DNAの副溝内の特定の配列に結合特異性および親和性を有するDNAを標的とすることができる分子を-methylimidazole合理的に設計されています。4,5,7 -11ポリアミドは、両方の抑制に用いられ、特定のグラムの発現を活性化されていますエン。4,12-19また興味深い20-24抗ウイルス及び抗がん12,13,25-30特性を有しています。ポリアミドの1つの魅力的な特徴は、31,32メチル化とヒストンタンパク質9,10,33に巻き付けているDNA配列にアクセスする能力です。 DNA結合分子の総合的な結合特異性を測定するために、私たちの研究室では、同族のサイト識別子（CSI）メソッドを作成しました。34-39ためのin vitro特異性（genomescapes）に基づいて結合部位の予測発生は、ゲノム上に表示することができますin vitroでの結合強度が会合定数に正比例する（K A）。34,35,37これらgenomescapesは、ゲノム全体のポリアミド占有への洞察を提供しますが、生細胞内で結合を測定するポリアミドが課題でした。 DNAはしっかりと結合サイトのアクセシビリティに影響を与える可能性が核にパッケージされています。 Aポリアミドにこれらのchromatinized DNA配列のccessibilityは謎のまま。 最近では、小分子および核酸の間の相互作用を研究する多くの方法が出現している。40-48化学的親和性のキャプチャと超並列DNAシーケンシング（CHEM-SEQ）は、このような技術の一つです。 CHEM-配列は、リガンド-標的相互作用を捕捉するために、関心のゲノム標的と関心の小分子のビオチン化誘導体に小分子を架橋させるために、ホルムアルデヒドを使用しています。48,49 ホルムアルデヒドは、偽陽性を生成することができます間接的な相互作用にリードを架橋する。50私たちはこれらのいわゆる「ファントム」のピークを排除するために光架橋剤とクロマチン（COSMIC）、51を分離するための新しい方法、小分子の架橋を開発した。50開始するには、我々は、設計およびポリアミドの三官能性誘導体が合成されました。これらの分子は、DNA結合POLを含まyamide、光架橋（ソラレン）、および親和性ハンドル（ビオチン、 図1）。三官能性ポリアミドと、我々は共有結合365 nmの紫外線照射、DNAに損傷を与えたり、非ソラレン系架橋を誘導しない波長のポリアミド-DNA相互作用をキャプチャすることができます。51次に、我々はゲノムを断片化し、厳しい、セミ下で撮影DNAを精製非共有結合しているDNAを減少させるための条件を-denaturing。そこで、CHEM-配列に関連する方法として、宇宙観が、DNAのより直接的な読み出しをターゲットに。重要なことには、弱い（K 10 3〜10 4 M -1）DNA用ソラレンの親和性はしない検出衝撃ポリアミド特異。51,52富化DNAフラグメントは、定量的ポリメラーゼ連鎖反応51のいずれかにより分析することができる（COSMIC、定量PCR）または、次世代シーケンシング53（COSMIC-SEQ）によります。これらのデータは、インターリガンドの公平な、ゲノム誘導設計を可能にそれらの所望のゲノム遺伝子座を持って行動し、オフターゲット効果を最小化します。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/53510/53510fig1.jpg"/> 図1.生理活性ポリアミドおよびCOSMIC方式 。 （A）ヘアピンポリアミド1 - 2の標的DNA配列5&#39;-WACGTW-3 &#39;。リニアポリアミド3から4ターゲット5&#39;-AAGAAGAAG-3 &#39;。 N-メチルイミダゾールのリングは、明確にするために太字されています。オープンと黒丸はそれぞれ、N個の -methylpyrrole と N -methylimidazoleを表します。広場は3クロロチオフェンを表し、ダイヤモンドは、βアラニンを表します。ソラレンおよびビオチンは、それぞれ、P及びBで示されています。 （B）COSMIC方式。細胞は、ポリアミドの三官能性誘導体を用いて処理されます。 365 nmのUV照射で架橋した後、細胞を、LでありますysedゲノムDNAを剪断します。ストレプトアビジン被覆磁気ビーズは、ポリアミド-DNA付加体を捕捉するために添加されます。 DNAが放出され、定量PCR（定量PCR）によって、あるいは、次世代シーケンシング（NGS）によって分析することができる。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53510/53510fig1highres.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a>

<table><tbody><tr><td>フェニルメチルスルホニルフッ化物(PMSF)</td><td>任意のソース</td><td></td><td></td></tr><tr><td>、ベンザミジン</td><td>、任意のソース</td><td></td><td></td></tr>、<tr><td>ペプスタチン</td><td>、任意のソース</td><td></td><td></td></tr><tr><td>、プロテイナーゼK</td><td>、任意のソース</td><td></td><td></td></tr><tr><td>、Dynabeads MyOne、ストレプトアビジン、C1</td><td>、ライフテクノロジー</td>ズ<td>、65001</td><td></td></tr>、<tr><td>PBS、pH 7.4</td>、<td>ライフテクノロジー</td><td>ズ、10010-023</td><td>他のソースは、</td></tr><tr><td>StemPro Accutase細胞解離試薬</td><td>ライフテクノロジー</td><td>A1110501</td><td></td></tr><tr><td>QIAquick PCR精製キット</td><td>Qiagen</td><td>28104</td><td>我々は、成功したDNAカラムの他のメーカーを試している使用することができます。</td></tr><tr><td>TruSeq ChIPサンプル調製キット</td><td>イルミナ</td><td>IP-202-1012</td><td>このキットは、次世代シーケンシング用のCOSMIC DNAの調製に使用できます</td></tr><tr><td>マトリゲル基底膜マトリックス</td><td>BDバイオサイエンス</td><td>356231</td><td>H1 ESCの</td></tr><tr><td>pH紙</td>、<td>任意のソース</td><td></td><td></td></tr><tr><td>、琥珀色、微量遠心チューブ</td><td>、任意のソース</td><td></td><td></td></tr>、<tr><td>微量遠心チューブを成長させるために、プレートをコーティングするために使用されます</td><td>任意のソース</td><td></td><td></td></tr><tr><td>、パイレックスフィルター</td><td>、任意のソース</td><td></td><td>、パイレックス、ベーキングディッシュ、適切な</td></tr><tr><td>qPCRマスターミックス</td>、<td>任意のソース</td><td></td><td></td></tr>、<tr><td>RNase</td><td>、任意のソース</td><td></td><td></td></tr><tr><td>、HCl(6 N)、</td><td>任意のソース</td><td></td><td></td></tr><tr><td>、10cm、組織培養ディッシュ</td><td>、任意のソース</td><td></td><td></td></tr><tr><td>、血清学的ピペット</td><td>、任意のソース</td><td></td><td></td></tr><tr><td>パスツールピペット、</td><td>任意のソース</td><td></td><td></td></tr><tr><td>、ピペットチップ</td><td>、任意のソース</td><td></td><td></td></tr><tr><td>、15mlコニカルチューブ、</td><td>任意のソース</td><td></td><td></td></tr><tr><td>遠心分離機</td><td>、任意のソース</td><td></td><td></td></tr>マイクロ<tr><td>遠心分離機</td><td>、任意のソース</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ニューテーター</td><td>、任意のソース</td><td></td><td></td></tr><tr><td>磁気セパレーションラック</td><td>任意のソース</td><td></td><td></td></tr><tr><td>UVソース</td><td>CalSun</td><td>B001BH0A1A</td><td>他のUVソースを使用できますが、架橋時間は経験的に最適化する必要があります</td></tr><tr><td>Misonix Sonicator</td><td>Qsonica</td><td>S4000 with 431C1カップホー</td>ン <td>他のソニケーターを使用できますが、超音波処理条件は経験的に最適化する必要があります</td></tr><tr><td>加湿CO2インキュベーター</td><td>任意のソース</td><td></td><td></td></tr><tr><td>真空出口付き生物学的安全キャビネット、</td><td>任意のソース</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

cosmicと細胞の薬剤-dna相互作用のゲノムワイドなマッピング（小分子の架橋は、クロマチンを分離するために）

Genome-wide Mapping of Drug-DNA Interactions in Cells with COSMIC (Crosslinking of Small Molecules to Isolate Chromatin)

ゲノムは、最も効果的な化学療法剤のいくつかの標的であるが、これらの薬剤の多くは、用量を制限する毒性および多くの有害な副作用をもたらすDNA配列特異性を欠いています。配列特異的な小分子でゲノムをターゲットに増加し、治療指数、より少ないオフターゲット効果を有する分子を可能にすることができる。N -methylpyrrole / N -methylimidazoleポリアミドは合理的に絶妙な精度で特定のDNA配列を標的とするように設計することができる分子です。そして、最も自然な転写因子とは異なり、ポリアミドは、親和性の損失なしにメチル化及びchromatinized DNAに結合することができます。ポリアミドの配列特異性が広く、同族サイトの識別（CSI）で、伝統的な生化学的および生物物理学的ア ​​プローチを用いてインビトロで研究されているが、細胞内のゲノム標的に結合するポリアミドの研究では、とらえどころのないまま。ここでは、方法、イゾラへの小分子の架橋を報告テクロマチン（COSMIC）が、それは、ゲノム全体のポリアミド結合部位を特定します。 COSMICは、クロマチン免疫沈降（チップ）と同様であるが、2つの重要な点で異なる：（1）光架橋剤は、結合事象ポリアミドの選択的、時間的に制御された取り込みを可能にするために用いられ、（2）ビオチン親和性ハンドルがポリアミドを精製するために使用され非共有結合しているDNAを減少させる半変性条件下-DNA複合体。 COSMICは、ポリアミドおよび他のゲノム標的の化学療法薬のゲノムワイドな結合事象を明らかにするために使用することができる一般的な戦略です。

不均一なゲノム断片化と他の変数を説明するために、精製されたDNAは常にインプットDNAの基準に対して正規化する必要があります。関心対象の遺伝子座に特異的なプライマーを使用することができます。また、陰性対照として、分子が結合すると予想されていない遺伝子座を分析するために有用です。我々は、365 nmの光（ 図2）の照射によりポリアミド占有で&gt; 100倍の増加を参照してください。 濃縮されたDNAはまた、次世代シークエンシングによって分析することができます。 ChIPのDNAが用意されているようなDNAは、（例えば、市販サンプルプレップキットで、材料リストを参照してください）と同じ方法で配列決定のために用意されています。でも次世代シーケンシングで、我々はまだ我々はポリアミドが拘束されることを期待するところの遺伝子座でDNAの濃縮を確認するために、定量PCRを使用しています。一度、配列決定、生DNAは、ゲノムに整列され、密度トレースは、チップ・配列データを分析するように設計された同一のソフトウェア（ 図3）</st...

ゲノム標的分子の直接の標的を同定することは、主要な課題です。 DNA結合分子はゲノムを従事する方法を理解するために、我々は、クロマチン（COSMIC）を単離するための小分子の架橋に依存する方法を開発しました。

COSMICと細胞の薬剤-DNA相互作用のゲノムワイドなマッピング（小分子の架橋は、クロマチンを分離するために）

The genome is the target of some of the most effective chemotherapeutics, but most of these drugs lack DNA sequence specificity, which leads to ...

この手順の全体的な目的は、細胞内におけるポリアミドおよびその他のDNA標的低分子化合物のゲノムワイドな結合プロファイルを決定することです。この手法は、ゲノム情報をDNA標的分子の設計に活用することで、薬剤DNA化学の分野を前進させるのに役立ちます。本技術の主な利点は、リガンドとDNAの直接的な相互作用を測定することで、ゲノムに作用するリガンドの作用機序に関する知見を得られる点にあります。最も成功している治療薬の中には、DNAに結合してゲノム取引を妨害する低分子化合物があります。この手法はポリアミドの研究のために開発されましたが、他のクラスのDNA標的分子にも適用可能です。本実験に使用する細胞は、多能性幹細胞を支持する表面コーティングが施された10 cmディッシュを用い、5%二酸化炭素濃度の加湿雰囲気下、37 °CのE8培地で培養します。ポリアミドを添加する前に、使用済みの培地を除去し、10 cmディッシュあたり8 mlの新鮮な培地を加えます。これ以降は、早期の光架橋を防ぐため、細胞を遮光して保護してください。ピペットを用いて、各ディッシュの培地にポリアミドを直接添加します。ディッシュを swirling して、ポリアミドを培地中に均一に分散させます。細胞を 37 °C、5% 二酸化炭素含有の加湿条件下で 24 時間、遮光してインキュベートします。翌日、セロロジカルピペットとピペットディスペンサーを用いて、10 cm ディッシュ each を 4 ml の PBS で洗浄します。PBSを吸引し、3 mlのE8培地を加えます。照明を暗くし、セルをフード外の平らな場所に置き、5枚の培養皿の蓋を取り除きます。波長が300 nanometers未満の光を遮断するため、5枚の培養皿の上にガラスフィルターを設置します。UV光源をフィルターの上に置きます。365ナノメートルのUVA照射を用いて、サンプルを30分間クロスリンクさせます。UVA照射後、培養皿をフードに戻します。バキュームトラップに接続したパスツールピペットで培地を吸引し、各10 cmディッシュを4 mlのPBSで洗浄します。PBSを吸引し、10 cmディッシュあたり3 mlの細胞解離用酵素を加えます。室温で5分間インキュベートします。1ディッシュあたり3 mlのE8 Mediaを加え、酵素反応を停止させます。解離した細胞を1本の15 mlコニカルチューブに移します。ここからの操作は、細胞を氷上に置いて行ってください。解離させた細胞を500 x g、4°Cで5分間遠心分離します。上清を吸引し、酵素と培地を除去します。クロマチン単離の手順を開始するために、新鮮なプロテアーゼ阻害剤を含むcosmic bufferを調製します。100 mM PMSF、100 mM ベンザミジン、および 150 µM ペプスタチンプロテアーゼ阻害剤を、それぞれ 12.1 µL ずつ Cosmic 基礎バッファーに新しく添加します。細胞ペレットに 1.2 ml の Cosmic バッファーを加え、ピペッティングを数回繰り返して再懸濁させます。その後、細胞懸濁液を 2 本の 1.7 ml 遮光マイクロ遠心チューブに等分します。ソニケーターを用いてソニケーションを行い、ゲノムを100から500 base pairsのサイズに断片化します。マイクロ遠心チューブ内のクロマチン溶液の液面が、リザーバー内の水面と平行になるようにしてください。この液面を視覚的に確認します。超音波処理時間は経験的に最適化されており、出力60%で、10秒間のONと10秒間のOFFを繰り返し、35分間処理します。サンプルの冷却にはリザーバーに最小限の氷を使用し、氷がサンプルとカップホーンの間に挟まって干渉しないようにしてください。超音波処理が完了したら、サンプルを12 000 gで10分間遠心分離します。可溶性クロマチンを含む水溶液を新しい遮光マイクロ遠心チューブに移して保存します。ペレットは廃棄してください。サンプルの110 µLまたは10%を新しいマイクロ遠心チューブに移します。「input DNA」としてラベルを貼り、80 °Cで保存します。クロマチンサンプルの残りは、本プロトコルの次のステップで使用するため、氷上で保存してください。リガンド-DNA架橋を回収するために、クロマチンサンプルの残りをストレプトアビジンコート磁気ビーズに加え、混合物を再懸濁させます。クロマチンとビーズを、回転式ロッキングミキサーを用いて4 degrees Celsiusで少なくとも4時間インキュベートします。必要となる洗浄バッファーは、脱イオン蒸留水を用いて調製し、使用前に0.2 micrometerフィルターでろ過してください。バッファー1および2は4 degrees Celsiusで数ヶ月間保存可能ですが、バッファー3は毎日調製して使用してください。クロマチンとストレプトアビジンコート磁気ビーズのインキュベーションが完了したら、洗浄バッファー1でサンプルを7分間洗浄します。サンプルを磁気分離ラックに設置してビーズを回収し、洗浄バッファー1を除去します。洗浄バッファー2を加え、さらに7分間洗浄します。次に、wash buffer 3を用いて、1回につき7分間、2回洗浄します。最後に、TE Bufferで2回洗浄します。最終のTE Buffer洗浄後、ビーズを200 microlitersのTE Bufferに再懸濁します。この回収されたDNAサンプルは、アフィニティー精製DNAまたはAP DNAと呼ばれます。次に、インプットDNAおよびAP DNAに10xクロスリンク解除バッファーを加え、最終濃度を1xにします。90°Cで30分間インキュベートします。AP DNAを含むマイクロ遠心チューブを磁気分離ラックに置き、室温で2分間静置した後、AP DNAを含む液を新しい琥珀色のマイクロ遠心チューブに移します。Input DNAおよびAP DNAを中和した後、両方のDNAサンプルにRNase Aを最終濃度0.2 µg/µLになるように加えます。37 °Cで1時間インキュベートします。1時間後、Input DNAおよびAP DNAの両方にProteinase Kを加え、最終濃度を0.2 micrograms per microliterにします。55 degrees Celsiusで1時間インキュベートします。その後、Input DNAおよびAP DNAをDNAカラム精製キットで精製し、DNAグレードの水で溶出します。解析の準備が整うまで、DNAを20または80 degrees Celsiusで保存します。アフィニティー精製DNAは、常にInput DNAのリファレンスに対して標準化する必要があります。遺伝子座特異的プライマーを用いた定量PCRの代表的な結果では、365 nanometerの光による照射後、ポリアミドの占有率が100倍以上に増加することが示されています。濃縮されたDNAは、次世代シーケンシングによって解析することも可能です。シーケンシング後、生のDNAリードをゲノムにアライメントし、密度トラックを作成します。この例では、AAGリピートを標的とするように設計されたLinear Polyamide 4の密度トラックを示しています。細胞内におけるポリアミド分布の解析により、広範囲の親和性にわたるクラスター化した結合部位が、細胞内での占有率を最も正確に予測することが明らかになりました。in vitroでの同族部位同定データを用いて、ゲノム全域の結合スコアを算出するアルゴリズムが開発されました。これらのバイオリンプロットは、ゲノム全域におけるポリアミド2およびポリアミド4の結合予測スコアを示しています。ポリアミド4の代表的なゲノムスケープも示されています。このスコアリング法により、低および中親和性の配列を複数持つ遺伝子座は、高親和性の配列を少数持つ遺伝子座と同程度のポリアミド占有率を示すことが明らかになりました。習熟すれば、適切に実施することでこの手法は2日間で完了させることができます。この手順を行う際は、DNAの精製が完了するまでサンプルを遮光することが重要です。本手順に続いて、RT-PCRやRNase Cなどの他の手法を用いることで、結合が遺伝子発現に及ぼす影響など、さらなる疑問を明らかにすることが可能です。このビデオを視聴することで、polyamideのゲノムワイドな結合プロファイルをマッピングするためのcosmicの使用方法について、十分な理解が得られるはずです。

genome-wide-mapping-drug-dna-interactions-cells-with-cosmic

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私たちは、ネイティブのγH2A.Xクロマチン免疫沈降(ChIP)を通じて、一般的な脆弱部位のブレークを検出するための迅速かつ効率的な方法を提示します。このアプローチにより、従来のγH2A.X...

ネイティブγH2Aによる一般的な脆弱サイトブレークのキャプチャ。X ChIPの

学ぶCOSMIC法によるゲノムワイドなDNA標的小分子の結合プロファイル解析。ポリアミドなどの薬剤-DNA相互作用を直接測定し、作用機序の解明と新規治療薬設計に貢献する革新的なクロマチン分離技術です。

COSMICと細胞の薬剤-DNA相互作用のゲノムワイドなマッピング（小分子の架橋は、クロマチンを分離するために）

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