Name: 核小体クロマチン組織に基づいてマウス洞卵母細胞の単離とキャラクタリゼーション (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-01-07T12:00:01.000+00:00
Duration: 7 min 16 s
Description: 学ぶマウス洞卵母細胞のクロマチン組織に基づく分離とSN・NSN型の識別法。Hoechst 33342染色を用いた生殖生物学・発生生物学の重要手法です。

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M.M.とC.A.R.は、パヴィアのFondazione IRCCS Ospedale San MatteoのMinistero della Salute, Ricerca Finalizzata/giovani ricercatori anno 2009の財政支援を認めています。M.M.とC.A.R.は、画像の準備を手伝ってくれたMarianna Longoに感謝します。

このプロトコルは、欧州（EU 2010分の63）、科学研究のために使用される動物の保護イタリア（2014分の26）法律の指針に従って実施されます。頸椎脱臼を安楽死は、卵巣の単離のために使用され、それは、この研究をカバーする承認されたプロトコルに記載されている個体を専門家によって行われ、訓練されます。 1.動物<ol><li>制御された温度および湿度の部屋で6週齢の雌マウスに大人3を維持（12Lの位相と：12Dおよび摂食自由摂取 ）。 </li><li>卵胞刺激ホルモン（FSH）の効果を模倣することにより卵胞の成長を刺激するために妊馬血清性性腺刺激ホルモン（PMSG）の2.5 IUを腹腔内にマウスを注入。後で洞卵母細胞の収集48時間のための卵巣を分離します。あなたの機関のガイドラインによると、以前にPMSGを注射したマウスを安楽死させる女性。 </li><li>すぐに体腔から卵巣を除去し、ペトリ皿の続きにそれらを置きますその後の卵母細胞の単離のためのM2培地をaining（セクション3を参照）。 <ol><li>無菌解剖ハサミを使用して、腹膜の切開に続いて腹壁をカバーする皮膚の切開を行います。膀胱から始まるV字形状を形成する、腹部を露出するように切開を開き、滅菌ピンセットを用いて、一方の側に勇気を移動させ、子宮管をローカライズ。 </li><li>腎臓の下方に位置する卵巣を観察します。滅菌ピンセットで各チューブを持ち、それらを解放するために卵巣の下部に小さな切開を行います。予め平衡化培地を含むペトリ皿の底に両方の卵巣を転送します。 </li></ol></li></ol> 2.ホルモンの準備<ol><li>適切な注入量0.1 1mlあたり2.5 IUホルモンの作用濃度を得るために、滅菌等張食塩水PMSG（異なるストック濃度で利用可能）を希釈します。 注：ホルモンソリューションを0.5 mlチューブに分注し、で保存する必要があります-2使用日まで0℃。 -20℃で3ヶ月よりも長い希釈アリコートを保管しないでください。解凍したら、シリアル注射が行われた場合、4℃のホルモンソリューションのアリコートを保存し、4日以内にそれらを使用しています。 </li></ol> 3.洞卵母細胞の分離 適切な卵母細胞の単離のために： <ol><li>卵母細胞の単離手順を開始する前に少なくとも1時間、5％CO 2、37℃でM2培地13（M2）を平衡化。 2ペトリ皿（35ミリメートル×10 mm）で、卵巣穿刺からの単離後の卵母細胞の転送のためにミネラルオイル（〜1.5ミリリットル）で覆われたM2の小滴を有する第二1（20μL）のためのM2の1ミリリットルのものを準備します卵巣（3.4から3.6を参照）。準備が使用されるようになるまで、5％CO 2、37℃のインキュベーター内で両方のペトリ皿にしてください。 </li><li>卵母細胞の単離手順中に実体顕微鏡を使用してください。 </li><li>ストレッチにより卵母細胞を収集するために、薄い口のガラスピペットを準備興ガラスパスツールピペットは、ブンゼンバーナーからの垂直燃焼（ 図1）を介して、（両手でピペットの先端を保持する）水平に保ちました。 <ol><li>ガラスが溶融し始めると、炎の外にピペットを取り、目的のピペットを得るために迅速に引き運動を行います。しっかりと長さと内部の毛細血管の直径を調整するための爪とピペットの狭い点に近い過剰ガラスをカット。細い毛細血管が卵母細胞の直径よりも僅かに大きい〜100μmの内径を有することを確認します（〜80ミクロン）。 </li><li>口のピペットには、適切なチップを使用して引っ張っピペットに吸引管の​​一端を接続し、歯とそれを確保、口の中にもう一方の端を置きます。 </li></ol></li><li>滅菌ピンセットを用いて卵巣を採取し、細胞培養用シャーレ（35ミリメートル×10ミリメートル）の底部にそれらを堆積させます。以前は、37℃で平衡化したM2の1mlでそれらをカバー、5％CO 2（ 図2）。 </li><li>ゆっくりM2（ 図3）で胞状卵母細胞を解放するために、滅菌インスリン注射針と卵巣の胞状卵胞を穿刺。 </li><li>そっと口は包細胞および他の可能性のある組織片（ 図4A）を削除し、以前に（胚培養に適したミネラルオイルで覆われたM2の小滴（20μL）の下でそれらを解決するための狭いパスツールピペットを通して卵母細胞をピペット準備; 図4B）。 注：これは、M2のいくつかの異なる滴を通して連続ピペットで卵母細胞の透明帯に接続されているすべての卵丘細胞を除去することが重要です。培地のpHの変化を避けるために、可能な限り迅速にこの手順を実行します。 </li></ol> Hoechst33342 4.胞状卵母細胞の染色注：洞卵母細胞は、SN（囲ま小体）、NSN（小体を囲まれていない）、またはに区別することができます他の中間形式で、Hoechst33342の超生体濃度（又は塩基の具体的な任意の他のマーカーAT）14で染色した後、それらのクロマチン組織に基づきます。 NSNがいない間、実際には、SN卵母細胞は、したがって、その名前、核小体の周りヘキスト陽性リングを示しています。 適切な卵母細胞染色のために： <ol><li>暗所で10分間、50 ngの/μLの濃度で超生体M2に希釈したHoechst33342（20μL）の液滴に口のピペットを用いて卵母細胞を転送します。 </li><li> Hoechst33342とのインキュベーションの後、クロマチン組織（SNまたはNSN）に基づいてソートするため、鉱物油で覆われたM2の小滴（5μL）の底に口のピペットを用いて各単一卵母細胞を転送します。卵母細胞のクロマチン構造を可視化するためにHoechst33342フィルタ（発光波長486ナノメートル）を装備した任意の蛍光顕微鏡を使用してください。 注：使用する蛍光顕微鏡の種類に応じて、私はtは、画像取得用のガラス底ペトリ皿を使用することが不可欠となることができます。 35mm皿のための試料ホルダーを装備した共焦点顕微鏡オリンパスFLUOVIEW Fv10iは0.17ミリメートルの標準的な厚さ0.13から0.21ミリメートル許容可能な範囲で、画像取得のための唯一のガラスボトムディッシュが必要です。 </li><li>そう、もはやよりも5〜10秒のために存在または核小体の周りにリングが存在しない場合（ 図5）を視覚化するのに十分な時間を卵母細胞エキサイト。 </li><li> 体外成熟を ​​誘導するか、または分子または細胞の解析のための適切な緩衝液中でそれらを保つために、5％CO 2、37℃でM2で、文化胞状SNとNSNの卵母細胞をソートした後。 </li></ol>

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</ol>

著者は開示するものは何もありません

このプロトコルは、マウス洞のGV卵母細胞を分離し、分類するために使用される方法について説明します。いくつかの例外を除いて、下線する特段の重要なステップはありません。 A）卵母細胞の活力を維持し、b）に用いられる培地中のpH変化を避ける：まず：にこの手順は、可能な限り迅速に実行する必要があります。第二：卵母細胞は、IVMおよびIVFは、次の手順がある場合は特に、クロマチン損傷および卵母細胞のその後の死を回避するために、Hoechst33342に（5-10秒）簡単に励起されるべきです。現在までのところ、これはSNとNSNマウス胞状卵母細胞をソートする最も簡単な方法です。 Hochest33342が雌マウスにSNとNSN卵母細胞を特徴付けるための効率的な方法（および他の哺乳動物の実験室モデル）であることが証明されているが、それはすることはできません、残念ながら、不妊治療のためにヒトでの胞状卵母細胞をソートするために使用されます。 未成熟卵母細胞のインビトロ成熟を ​​日常的に過度にヒトに使用されるので、それはめざ...

卵巣の胞状コンパートメントから分離された胞状十分に成長した卵母細胞（GV、卵核胞）は日常、などなど、さまざまな目的に使用されている例えば、中期II段階まで体外成熟の背後に分子・細胞メカニズムの研究。 その美しい外観で最も胞状卵母細胞にもかかわらず、すべてではないが、減数分裂を完了し、胚盤胞段階に到達することができます。受精が3-5が発生した場合 、実際には、人間1,2を含む多くの哺乳動物種において、それらのおよそ30％が、2細胞期で、その開発を逮捕します。今日までに、いくつかのパラメータは、そうすることができないものから胚発生を維持することができる卵母細胞を区別するために使用されます。 例えば、クレシルブルー染色（BCB）はBCB +またはBCB-染色に関連し、このソート方法の有用性はあるが、グルコース-6-リン酸デヒドロゲナーゼの活性に基づいて、卵母細胞を分類するための有効な方法であり、まだ研究室に依存6-8。 もう一つのよく確立された方法は、彼らのクロマチン組織に存在する：（Hoechst33342のような）任意のDNAインターカレー色素で染色した場合、胞状卵母細胞の70％が核小体の周りの色素陽性リングを示し、小体（SN）囲ま呼ばれ、残りの30％ながら、より多くの斑点陽性シグナルを示し、仁（NSN）3-5囲まれていないと呼ばれています。最近では、ことを示した細胞質格子9（のCPL、哺乳動物の卵母細胞および胚の両方で母体由来のmRNAとリボソームのための重要な貯蔵部位）の不在10との存在と一緒（のCPL形成の11のために必須）MATERのダウンレギュレーション、その細胞質9,12における脂肪滴は、2細胞期を超えて進行するNSNの卵母細胞の無力に関連する他の原因であることができます。 残念ながら、いくつかのテクニックが胞状SNとNSN卵母細胞とをソートするために適用することができ、このため、（核染色、固定手順や口のピペットとの操作なし）少ない侵襲的方法の開発は、ヒトおよび動物の両方の胚発生の速度を向上させることが非常に重要になる可能性があります。 本稿では、詳細簡単かつ迅速プロトコルは、広告ソートSNと雌マウスからNSN胞状卵母細胞を単離するために使用し、それは女性の配偶子形成、卵成熟と胚発生の研究に興味を持つすべての科学者にアドレス指定されています。

<table><tbody><tr><td>PMSG</td><td>Sigma</td><td>G4527</td><td></td></tr><tr><td>EmbrioMax M2</td><td>Millipore</td><td>MR-015-PD</td><td></td></tr><tr><td>Hoechst33342</td><td>Thermo Scientific</td><td>62249</td><td></td></tr><tr><td>Mineral Oil</td><td>Sigma</td><td>M8410</td><td></td></tr><tr><td>細胞培養ディッシュ 35mmx10mm</td><td>コーニング</td><td>430165</td><td></td></tr><tr><td>&micro;-ディッシュ 35mm、高ガラス底</td><td>Ibidi</td><td>81158</td><td></td></tr><tr><td>ピペットパスツールホウケイ酸</td><td>コーニング</td><td>7095D-9</td><td></td></tr><tr><td>校正済みマイクロピラリーピペット</td><td>シグマ</td><td>A5177</td><td></td>用アスピレーターチューブアセンブリ</tr></tbody></table>

核小体クロマチン組織に基づいてマウス洞卵母細胞の単離とキャラクタリゼーション

Isolation and Characterization of Mouse Antral Oocytes Based on Nucleolar Chromatin Organization

このプロトコルは、マウスの胞状GV(胚小胞)卵子を分離し、体外成熟(IVM)および体外受精(IVF)後に胚盤胞段階まで発達する(SN、囲まれた核小体)またはできない(NSN、囲まれない核小体)として分離し、特徴付けるための簡単で迅速な方法を説明しています。これは、Hoeschst33342(または他のDNAインターカレート色素)を使用して、SN卵子のリングを示す核小体のヘテロクロマチンに結合することができます。これは、最終的にIVMまたはIVFの手順に使用できる両方の胞状卵子を選別する最も簡単で迅速な方法を表しています。
簡単に説明すると、プロトコルは次のステップから構成されています：卵胞の成長を刺激するためのホルモン注射;生殖器の生殖器からGV段階での卵子の分離;生殖器に滅菌針で卵子を穿刺することによる卵子の分離;卵子の口ピペッティングのための薄いガラスピペットの準備;超生命的な濃度で調製されたHoechst33342による卵子の選別;IVM、IVF、またはその他の分子/細胞分析。
残念ながら、より侵襲性の低い技術を用いてSNとNSNの卵子を選別する証拠はまだほとんどありません。それらが特定されれば、人間の生殖補助医療に適用される可能性がありますが、修正すべきいくつかの側面があります。今日まで、この技術は、絶滅危惧種と経済的関心を持つ種の両方でIVMおよびIVFの成功手順を劇的に増加させる潜在的な意味を持っています。

以下の写真は、Hoechst33342を用いて卵母細胞「ソートにピペットの準備から始めて、マウスの卵巣から胞状卵母細胞を単離するために使用する方法を示しています。この方法は非常に簡単で、CO 2インキュベーター、実体顕微鏡およびHoechst33342の観察のために正しいフィルターを備えた蛍光顕微鏡を備えた任意の実験室で行うことができます。図1は、ピペットの準備の最初のステップを示しています。ガラスのような溶融し、柔らかくなり始める、ピペットの両端を同時に、ピペットは炎から取り出されなければならない、引き離すとする必要があります。適切に較正場合代わりに、ガラスキャピラリーは、同じ方法またはマイクロピペットプラーを使用して引っ張ることができます。それが薄すぎると、卵母細胞は、小さなキャップの内側に断片化することができる：それは右の毛細管径の右口のピペットを持っていることは非常に重要であるため、これは重要なステップでありますそれはあまりにも大きい場合、卵母細胞を移動させるときillary、数分後に死亡し、卵母細胞を含む培...

ここでは、核小体の組織に基づいて、マウス胞状卵母細胞の特徴付けのためのプロトコルを提示します。

This protocol describes a simple and quick method to isolate and characterize mouse antral GV (Germinal Vesicle) oocytes as able (SN, Surrounded ...

本手順の全体的な目的は、将来的な胚発生を完全に維持できる能力に基づいて、クロマチン構造からマウス卵胞液充満卵胞（ antral follicles）由来の卵母細胞を特性評価するために必要なすべての工程を詳述することである。この手法は、哺乳類卵巣の卵胞液充満腔に存在する2種類の卵母細胞、すなわち核小体が囲まれたSN（surrounded nucleolus）型と、核小体が囲まれていないNSN（non-surrounded nucleolus）型の区別および単離方法など、発生生物学分野における重要な疑問への回答に役立つ。卵巣を採取するには、まず3〜6週齢の雌マウスに2.5 international unitsの妊馬血清ゴナドトロピンを腹腔内投与（IP）することから始める。2日後、採取の約1時間前に、1枚の滅菌ペトリ皿にM2培地を満たし、2枚目のペトリ皿にM2培地を20 µLずつ数滴滴下して、各液滴を1.5 mLのミネラルオイルで覆います。その後、すべてのペトリ皿を37 °C、5% CO2インキュベーターに移し、培地を平衡化させます。次に、滅菌済み解剖用ハサミを使用して、最初にホルモンを注射したマウスの腹壁を覆う皮膚を切開し、続いて腹膜を切開します。滅菌ピンセットを使用して腸管を脇に寄せ、膀胱からV字型に伸びる卵管を確認します。腎臓の下にある卵巣を特定した後、一方の卵管を把持し、組織の底部を小さく切開して対応する卵巣を切り離します。同様の手順を繰り返してもう一方の卵巣を採取し、両方の卵巣をあらかじめ平衡化したM2培地を満たしたペトリ皿に入れます。卵胞腔卵子を単離する前に、ガラス製パステールピペットの両端を掴み、ブンゼンバーナーの炎の上に水平に保持して、ガラス製マウスピペットを作成します。ガラスが溶け始めたら、ピペットを炎から離し、素早く左右に引き離します。爪を使用して、ピペットの細い部分に近い余分なガラスをしっかりと切り落として先端を短くし、内径が約100 micronsの毛細管にします。適切なピペット径を選択することが重要です。径が狭すぎると、卵母細胞が詰まったり断片化したりして死滅してしまいます。その後、ピペットの未加工端をアスピレーターチューブに接続します。次に、卵巣を1 mLの平衡済みM2培地を含むペトリ皿に移し、滅菌済みのインスリン注射針を用いて卵巣の antral follicles（胞状卵胞）を慎重に穿刺します。放出された卵母細胞をマウスピペットで穏やかに回収し、その際、卵胞細胞やその他の組織片を吸引しないように注意してください。その後、各卵母細胞を平衡済みM2培地のドロップ間で素早くピペッティングし、透明帯に付着しているすべての cumulus cells（卵丘細胞）を除去します。卵母細胞の除細胞が完了したら、新鮮な平衡化M2培地の各ドロップの底に、卵母細胞を慎重に沈降させます。卵母細胞を染色するため、マウスピペットを用いて、M2培地で希釈した20 µLのHoechst 33342ドロップに細胞を移します。次に、ミネラルオイルで覆われた5 µLのM2培地ドロップを含む新しいシャーレに卵母細胞を移し、各ドロップの底に卵母細胞が個別に沈降するように注意してください。すべての卵母細胞を移し終えたら、ディッシュを蛍光顕微鏡の下に置き、核小周囲にリングが存在するかどうかを確認できるまで短時間だけ細胞を励起させます。長時間露光させるとクロマチンが損傷し、卵母細胞が死滅する可能性があるため、過剰な露光にならないよう注意してください。SNおよびNSN卵母細胞を識別した後、クロマチン構造に基づいて、目的の下流解析に適した試薬が入った対応するペトリ皿に細胞を分取します。クロマチン構造を確認するためのHoechst 33342染色は、本手順においておそらく最も重要なステップです。5〜10秒間の励起があれば、各卵母細胞の核小を囲むクロマチンの有無に基づいて卵母細胞を分取するのに十分なはずです。この手法を習得し適切に実施すれば、3時間以内に完了させることができます。この手順を行う際は、室温で作業すること、および卵巣と卵細胞の両方を慎重に扱うことが重要です。この手順の後、卵細胞は体外成熟および体外受精に使用できます。この技術の開発により、哺乳類の卵巣に存在する2種類の胞状卵胞卵細胞をどのように認識し、区別するかという、発生生物学分野で未解決であった問いに対する答えを研究者が導き出す道が開かれました。このビデオを視聴することで、口ピペットの自作方法と使用方法、および Hoechst 33342 染色による卵胞液中の卵母細胞の分離および選別方法について十分に理解することができます。動物や細胞を扱う際は、個人用保護具の着用や滅菌済み器具の使用など、特別な予防策が必要であることを忘れないでください。

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Developmental Biology

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近赤外フェムト秒レーザーを用いた中期I期にマウス卵母細胞の細胞質微小管組織化中心の枯渇を可能にする最適化されたプロトコルを提示します。...

マウス卵母細胞における細胞質微小管組織化中心の多光子レーザーアブレーション

このプロトコルはマウス卵母細胞系の核形そして内部膜のない細胞小器官に対する細胞骨格の物理的な影響を文書化するために実験フレームワークを提供する。このフレームワークは、他の細胞タイプやコンテキストでの使用にも適合させることができます。...

マウス卵母細胞核の細胞骨格に基づく攪拌を空間スケールで捉える

シナプスと組換えの減数分裂エラーは、哺乳類の卵母細胞に共通しています。これらのプロセスに関与するタンパク質の厳密な分析は、卵子形成がどのように、そしてなぜしばしばうまくいかないのかを理解するために不可欠です。ここで紹介する技術により、組換えとシナプスを包括的にモニタリングし、マウスの卵子の質を評価することができます。...

シナプシスおよび組換えの評価のためのマウス卵母細胞からの減数分裂染色体スプレッドの調製

学ぶマウス洞卵母細胞のクロマチン組織に基づく分離とSN・NSN型の識別法。Hoechst 33342染色を用いた生殖生物学・発生生物学の重要手法です。

核小体クロマチン組織に基づいてマウス洞卵母細胞の単離とキャラクタリゼーション

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