定性的および定量的検出のためのアッセイおよびタンパク質の抗菌薬のキャラクタリゼーション

これらの実験の全体的な目標は、酵素の抗菌活性を迅速にスクリーニングし、特性評価することです。マイクロスライド拡散および色素放出アッセイは、目的の病原性細菌などの特定の標的に対して溶解活性を持つ新しい抗菌薬の機能的発見に有用です。これらの技術の主な利点は、実行が簡単で、実験パラメータのバリエーションに柔軟性があり、ほとんどの微生物学研究室で一般的に見られる実験装置で実行できることです。

マイクロスライド拡散アッセイを開始する前に、評価する抗菌酵素の濃度は、製造元のプロトコルに従って、BCAタンパク質アッセイキットを使用して決定する必要があります。PBSを反応バッファーとして使用して、抗菌酵素の段階希釈を行います。タンパク質を個々のマイクロチューブに分注し、PBSを使用して容量を20ミリリットルに調整します。

次に、0.25グラムのアガロースを50ミリリットルのPBSに溶解して、0.5%アガロース溶液を調製します。アガロースが完全に溶解するまで、この溶液を沸騰するまで加熱します。溶融プロセス中に失われた水を重量で測定し、溶液に戻します。

アッセイのインキュベーション中に細菌の増殖を汚染しないようにするには、アガロース溶液に15マイクロリットルの10%アジ化ナトリウムを水に加え、水浴中で溶液の温度を摂氏50度に調整します。生細胞を基質として使用する場合は、アガロース溶液からアジ化ナトリウムを省略します。加熱死滅した細菌基質を氷上で解凍します。

細菌基質を12ミリリットルのアガロース溶液に再懸濁して、2.0マクファーランド当量濁度基準の濁度とほぼ一致させます。溶液を通して白い背景に黒い線を視覚化し、おおよその濁度が達成されるまでアガロースに細菌基質を追加することで、溶液の濁度を比較します。すぐに、しかし慎重に、アガロース基質溶液の3ミリリットルを各マイクロスライドにピペットで移し、溶液がマイクロスライドからオーバーフローしないようにします。

スライドが固まったら、直径4.8mmのコルクボーラーを使用して、各マイクロスライドのアガロース基板層に3つのウェルを打ち抜きます。調整した各タンパク質の段階希釈液を20マイクロリットルずつそれぞれのウェルに加えます。ウシ血清アルブミンをネガティブコントロールウェルで使用します。

ポジティブコントロールとして、リゾチームなどの基質に適した既知の細菌溶解酵素を使用します。スライドを摂氏37度、または酵素の最適な活性温度の湿度チャンバーでインキュベートします。インキュベーションの長さは、抗菌酵素の濃度と比活性によって異なります。

一般的な反応時間は約16時間です。インキュベーションが完了したら、間接光の下でスライドを観察し、現像中のアッセイの画像を撮影します。焦点距離約30cmで60mmレンズのデジタル一眼レフカメラを使用します。

次のセグメントで示す色素放出アッセイでは、基質はRemazol Brilliant Blue R色素またはRBBに共有結合しています。このプロトコルは、200ミリモルのRBB溶液を作成することから始めます。1.25グラムのRBBを新たに調製した水酸化ナトリウム溶液に溶解します。

次に、加熱死滅した細菌細胞を30ミリリットルのRBB溶液中に0.5グラム湿重量の濃度で再懸濁します。精製されたペプチドグリカンの場合、ペプチドグリカンを30ミリリットルのRBB溶液中に0.3グラムの湿重量の濃度で再懸濁します。.その後のステップは同じであるため、使用する基質に関係なく、標識は細菌細胞のみに対して示されます。

反応混合物を回転プラットフォーム上で摂氏37度で6時間インキュベートし、穏やかに混合します。6時間後、反応混合物を摂氏4度のインキュベーターに移し、穏やかに混合しながらさらに12時間インキュベートします。インキュベーションが完了したら、染色した基質を3000 x gで30分間遠心分離して回収します。

基質ペレットから色素溶液をデカントします。ペレットをタイプIの水に完全に再懸濁した後、遠心分離します。この方法で色素標識細胞に3〜5回水をやって、非共有結合の可溶性色素を基質から除去します。

最終洗浄では、色素放出アッセイで使用するペレット部分を1.5ミリリットルのマイクロチューブに移します。最後の洗浄の上清は透明で、基材は青色のままである必要があります。染色した基材は、使用準備が整うまで、20°Cの最小限の水に懸濁して保管してください。

色素放出アッセイの準備として、凍結染色した基質を室温に戻して、酵素について経験的に決定されたアッセイバッファーで2回洗浄します。この場合、PBSが使用されます。必要な基質懸濁液の量を計算するには、200 μLの反応量に実施する色素放出アッセイの数を掛けます。

基材懸濁液を調製するには、まず染色した基材を適切な量のPBSに加えます。1対1の希釈を行い、PBSをブランクとして使用して、595ナノメートルの光学密度の初期測定を行います。595ナノメートルで光学密度が2.0に達するまで、染色した基質を懸濁液に徐々に追加します。

このデモンストレーションでは、色素放出アッセイを使用して、タンパク質抗菌剤の最適なインキュベーション条件を決定します。まず、プロトコールのテキストに記載されているように、PBSを使用して濃度を1ミリグラム/ミリリットルに調整することにより、ストックタンパク質抗菌懸濁液を調製します。次に、ストックタンパク質抗菌懸濁液を1マイクロリットルあたり100ナノグラムの濃度に希釈します。

この濃度により、アッセイ反応に添加された体積あたり1マイクログラムのタンパク質の最終反応質量が得られます。評価する熱範囲について、0.5ミリリットルのマイクロチューブで反応アッセイを実施します。各熱条件について、調製した基質懸濁液200マイクロリットルに10マイクロリットルのストックタンパク質を添加します。

サーマルサイクラーで8時間インキュベートし、1時間に1回反転して混合します。インキュベーション後、各マイクロチューブに25マイクロリットルのエタノールを加えて反応を停止します。未消化の不溶性基質を除去するには、3000 x gで2分間遠心分離します。

その後、未消化基質のペレットを乱さないように注意しながら、反応混合物ごとに150マイクロリットルの反応上清を96ウェル平底マイクロプレートに移します。酵素活性を定量化するには、マイクロプレート分光光度計を使用して、595ナノメートルで上清の吸光度を測定します。標識基質から上清に放出される可溶性色素による吸光度の増加は、酵素活性の定量的測定です。

マイクロスライド拡散アッセイを使用して、熱死したサルモネラ菌全細胞基質に対する未知のタンパク質抗菌剤の活性を定性的に評価しました。抗菌剤はウェルAからFまで増加して添加され、PBSはネガティブコントロールに使用されました。6時間後、各井戸の周囲に形成された明確な加水分解ゾーンのサイズが観察されました。

酵素活性が高いと、より大きなゾーンに定性的に関連し、酵素活性が低いと、より小さなゾーンに定性的に関連しています。定量的色素放出アッセイを使用して、タンパク質抗菌剤の最適な反応温度を決定しました。反応上清中の青色の量や、595ナノメートルでの吸光度測定から導き出される活性単位からわかるように、摂氏35度が最適な温度です。

色素放出アッセイは、枯草菌の熱死基質に対する未知のタンパク質抗菌剤の活性範囲を決定するためにも使用されました。α-キモトリプシンの活性範囲と比較すると、未知の抗菌酵素は基質に対してほぼ2倍の親和性を持っていることが明らかになりました。さらに、α-キモトリプシンの活性は約0.3マイクログラムで横ばいになり始めますが、未知の酵素の活性はすべての酵素量で上昇し続けました。

一度習得すれば、マイクロスライド拡散アッセイは30分以内に完了することができます。色素放出アッセイは1時間以内に完了します。各アッセイのインキュベーション時間は、酵素活性とその濃度によって異なります。

これらの手順を拡張して、緩衝液のpHや塩分濃度などの反応の側面を操作することにより、抗菌酵素の酵素活性に影響を与える化学的影響を決定するために色素放出法を変更することができます。このビデオを見れば、マイクロスライド拡散および色素放出アッセイを使用して、酵素の抗菌活性を迅速にスクリーニングし、特性評価する方法を十分に理解できるはずです。