March 25th, 2016
好中球は最も豊富な種類の白血球です。ここでは、密度勾配分離法によるヒト血液からの好中球の単離と、顆粒球経路に沿ったヒト前骨髄球(HL60)細胞の分化について説明します。抗リンパ腫薬に対するリンパ腫細胞の感受性に対するそれらの役割をテストするため。
これらの手順の全体的な目標は、密度勾配遠心分離によってヒトの血液サンプルから高度に精製された好中球を迅速に分離し、2つのDおよび3つのD細胞培養モデルを使用して、がん治療に対するリンパ腫細胞の感受性におけるそれらの役割を調査することです。これらの方法は、好中球を介した腫瘍細胞応答ががん治療においてどのような役割を果たすかなど、自然免疫系とがんとの間の相互作用に関する重要な質問に答えるのに役立ちます。密度勾配分離の主な利点は、細胞を機能変化刺激にさらすことなく、純粋な免疫細胞集団を短時間で分離できることです。
初代白血病細胞と好中球を単離するには、まず、慢性リンパ性白血病患者サンプルから採取した 15 ミリリットルの EDTA 処理血液を、個々の滅菌済み 50 ミリリットルのチューブに加えます。15ミリリットルのRPMIで血液を希釈します。次に、15ミリリットルの室温密度勾配溶液を血液の下に慎重にゆっくりと加え、層が混ざらないように注意します。
遠心分離によって細胞を分離した後、4つの異なるフェーズが見えます。上部に血小板と血漿、単核細胞の白いリング、密度勾配溶液、下部に顆粒球と赤血球。プラスチック製の牧草地ピペットを使用して、まず初代白血病細胞の白いリングを新しい50ミリリットルのチューブに移します。
カルシウムとマグネシウムを含む最大50ミリリットルのPBSで細胞を洗浄します。そして、5ミリリットルの新鮮なPBSで口蓋を再び懸濁します。次に、さらに45ミリリットルのPBSを細胞に加え、細胞を再度スピンダウンします。
2回目の洗浄後、完全なRPMI培地で口蓋を再度懸濁します。そして、生存可能な初代白血病細胞の数を数えます。次に、血小板血漿と密度勾配層を除去し、25ミリリットルのPBSと25ミリリットルの塩化ナトリウム溶液のデキストリンを顆粒球赤血球相に加えます。
チューブを反転して10回混合します。次に、細胞を室温で30分間沈静させます。平衡化の終了時に、上部赤血球の乏しい好中球層を滅菌済みの50ミリリットルチューブに移し、細胞をスピンダウンします。
5ミリリットルのPBSで口蓋を再懸濁し、45ミリリットルの赤血球溶解緩衝液で赤血球を溶解します。室温で暗所で15分間過ごした後、細胞を再度スピンダウンし、50ミリリットルのPBSで口蓋を洗浄します。洗浄の最後に、細胞を完全なRPMI培地に再懸濁し、生存可能な好中球の数をカウントします。
細胞の両方のグループをRPMI濃度の50マイクロリットルあたり300,000セルに希釈し、サンプルを適切な数の5ミリリットルファックスチューブに分割します。遠心分離後、FBSを添加した50マイクロリットルのPBSにペレットを再懸濁します。単離された細胞サブセットの純度を決定するには、初代白血病細胞の分量をAPCに結合した抗ヒトCD19抗体で標識し、精製した好中球の分量を抗ヒト抗体の混合物で標識します。表に記載されているように、摂氏4度の暗所で30分間
。インキュベーションの終わりに、500マイクロリットルのFBSサプリメントPBSで細胞を洗浄し、200マイクロリットルの新鮮なFBS PBSで口蓋を再懸濁します。次に、フローサイトメトリーにより細胞集団の純度を解析し、サンプルのカラーコンペンセーションに注意を払います。初代白血病細胞を自己ロジスト好中球と共培養するには、白血病細胞のミリリットルあたり200, 000細胞を単独で、または完全なRPMI培地の24ウェルプレートで自己ロジスト好中球と一緒に見てください。
細胞を慎重に混合します。次に、Bruttonのチロシンキナーゼ阻害剤で細胞を摂氏37度、CO2の5%で24時間処理します。翌日、5ミリリットルのプラスチック製ファックスチューブに細胞のアリカンを収集します。
次に、細胞をスピンダウンし、ペレットを1ミリリットルのFBS PBSで洗浄します。2回目の遠心分離後、製造元の指示に従って細胞にアニキシン5とヨウ化プロピジウムを標識し、室温の暗所で10分間使用します。次に、好中球と初代白血病細胞を、図示のゲーティング戦略を用いたフローサイトメトリーで解析します。
3 D 共培養をセットアップするには、50, 000 RL リンパ腫 b 細胞を単独で追加するか、滅菌 15 ミリリットルチューブで HL60 分化細胞と混合します。サンプルをスピンダウンし、開口部を2〜3ミリメートルにカットした1ミリメートルのピペットチップを使用して、300マイクロリットルの基底膜マトリックスにペレットを再懸濁します。次に、24ウェルプレートの各ウェルに300マイクロリットルの細胞をインキュベートし、摂氏37度とCO2の5%で30分間インキュベートします。
インキュベーションの終了時に、各ウェルに1ミリリットルの完全RPMI培地を追加し、2日ごとに培地を交換しながら、threeD培養物をさらに7日間インキュベーターに戻します。5日目に、10ナノモルのインクリスチンを培養物に加えます。1週間の培養後、培地を吸引し、1ミリリットルの氷冷PBSでそれぞれを2回よく洗います。
次に、3ミリリットルの氷冷PBSとEDTAを各ウェルに加え、200マイクロリットルのピペットチップでウェルの底をこすり落とし、ゲルを取り外します。プレートを氷の上で30分間静かに振ってください。次に、細胞懸濁液を個々の滅菌15ミリリットルチューブに移し、氷上でさらに30分間穏やかに振とうします。
均質な細胞懸濁液の外観を確認します。次に、細胞をスピンダウンし、続いてPBS洗浄を行い、FBSを使用して新鮮なPBSにペレットを再懸濁します。最後に、先ほど実証したように、適切な抗体と生存率色素で細胞を標識し、図示のゲーティング戦略を使用してフローサイトメトリーでRLおよびHL60分化細胞を分析します。
単離された細胞集団のすべてのイベントをフローサイトメトリーで解析すると、この分離法により、初代白血病細胞集団を発現する高純度のシングルピークCD19が得られることが実証されています。また、純粋な好中球集団の90%以上が、白血球の一般的な抗原CD45、および成熟好中球によって発現されるCD15およびCD16抗原に陽性でした。好中球co培養物からの初代白血病細胞の歩行は、好中球がチロシン阻害剤イブルチニブに対する細胞生存に保護効果を発揮し、初代白血病細胞単独の培養と比較して生存可能な初代白血病細胞の数が有意に多いことを示しています。
分化したHL60細胞は、好中球よりも3次元培養で安定しています。顆粒球発生の誘導後、これらの細胞は未分化HL60細胞よりも小さく、CD11BおよびCD38を高レベルで発現します。分化したHL60細胞も多葉の核を示します。
これらの細胞は、単独で培養されたビンクロスチン処理リンパ腫細胞と比較して、ビンクロスチン処理後の3つのD co培養における生存可能なRL細胞の数が有意に多いRL細胞に対して保護効果を示します。一度習得すれば、密度勾配遠心分離法は90分で完了することができます。これらの技術は、開発後、がん生物学の分野の研究者が、前臨床モデルや患者サンプルにおける腫瘍悪性腫瘍に対するさまざまな白血球の影響を調査する道を開きました。
このビデオを見れば、単核細胞と好中球を迅速かつ確実に単離する方法、抗がん剤に対する腫瘍細胞の応答を媒介する好中球の影響を分析する方法、および3次元co培養のセットアップ方法について十分に理解できるはずです。
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この記事では、密度勾配分離を用いたヒト血液からの好中球の分離と、HL60細胞の顆粒球系への分化について説明します。この研究は、抗リンパ腫薬に対するリンパ腫細胞の感受性における好中球の役割を調査することを目的としています。
Understanding neutrophil-mediated modulation of lymphoma cell sensitivity to therapeutic agents addresses a critical gap in tumor microenvironment research. This method enables rapid isolation of functional neutrophils from patient samples, supporting mechanistic de-risking in immuno-oncology target validation. The approach provides predictive confidence for evaluating how innate immune cells influence therapeutic response in preclinical models.
The method fits within the discovery continuum from target validation through lead identification to preclinical evaluation by enabling immune-contextualized drug sensitivity testing.