Name: コンプリートの蛍光タイムラプスイメージング S。ベネズエラライフサイクル (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-02-28T15:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 30 s
Description: 学ぶ蛍光タイムラプス顕微鏡法でStreptomyces venezuelaeの完全なライフサイクルを観察する方法です。マイクロ流体デバイスを用いて発芽、栄養成長、胞子形成の動的プロセスをリアルタイムで可視化し、細菌の発生生物学研究に応用できます。

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著者は、顕微鏡の技術支援を提供してくださったグラント・カルダー、プロトコルに関するコメントを提供してくださったマット・ブッシュ、そしてツァイスの広視野顕微鏡を購入してくださったジョン・イネス・センターに感謝します。この研究は、BBSRC助成金BB/I002197/1(M.J.B.へ)、BBSRC研究所戦略プログラム助成金BB/J004561/1からジョン・イネス・センターへ、スウェーデン研究評議会助成金621-2010-4463(K.F.へ)、レオポルディーナ・ポスドク・フェローシップ(S.S.へ)によって資金提供されました。

フレッシュSの1の単離ベネズエラ胞子および使用済培養液の調製<ol><li> divIVA-mCherryをPが のFtsZ -ひずみSV60 [attBで φBT1 :: pSS209（Pの divIVAの10μlの胞子を、60μlのR2の微量元素溶液（TE）を補充した30ミリリットルマルトース酵母エキス、麦芽エキスを接種する（MYM）培地、 -ftsZ-ypet）]。一貫性のある成長と細胞の胞子形成のために、バッフル付きフラスコまたは十分な通気を可能にするために、スプリングが含まれているフラスコを使用します。 </li><li> 30℃で35-40時間、および250 rpmのための培養細胞。 </li><li>液体マウントされ、位相差顕微鏡により細胞を調べます。この時点で、菌糸体断片および胞子が表示されます。 </li><li>菌糸体と、より大きな細胞断片をペレット化するために1分間400×gで卓上遠心機で遠心1ミリリットルの細胞。 </li><li>約300μlの上清の共同を転送新しい1.5 mlチューブに胞子の懸濁液をntaining、氷上に保ちます。ステップ1.7の残りの培養液を保管してください。 </li><li>胞子をMYM-TE 1:20希釈（最終濃度：0.5〜5×10 7胞子/ ml）を、必要になるまで氷上で維持する（ステップ2.3参照）。 注： ストレプトミセスに胞子形成を誘発する正確な条件は、胞子形成培養物から任意の未知の細胞外シグナルを含む、使用済みMYM-TE媒体を使用して、理解されていないが、胞子形成を刺激します。 </li><li>胞子および菌糸体断片の自由であるMYM-TE費やし得るために、残りの培養液の10ミリリットルを濾過滅菌します。滅菌0.22μmのシリンジフィルターを使用して、転送は、滅菌15mlチューブにMYM-TEを過ごしました。 </li><li>同様の成長条件を使用して、追加の実験を行うことになっている場合は4℃で数日のために準備を過ごしたMYM-TEを保管してください。 </li></ol>マイクロ流体デバイスの作製注：各マイクロ流体ナンプラーをteが行わなければ、4つの独立した実験まで可能になります。実験を設定する際に、未使用のフローチャンバーの汚染を避けるために、滅菌溶液と労働条件を使用しています。 <ol><li>マイクロ流体プレートから出荷溶液を除去し、滅菌MYM-TEでウェルをすすぎます。 </li><li> 6へのウェル2にMYM-TE費やしウェル1および300μLを入口に300μlのMYM-TEを追加します。 </li><li>負荷40μlをレーン「A」のセルローディングウェル8のステップ1.6から胞子を希釈し、指示を製造に係るプレートにマニホールドを密封します。 </li><li>ウェルあたり2分間6 psiで5に入口ウェル1からの媒体を流すことによって、マイクロ流体制御ソフトウェアを起動し、適切なプレートタイプを選択し、プライム流路と培養室にフロープログラムを設定します。 </li><li>発芽および細胞の栄養成長を可能にするために、6時間、入口ウェル1からMYM-TEを流れる：マイクロ流体制御ソフトウェアでは、実験のためのフロープロトコルを作成します。スイッチその後、実験の残りの時間のためだけでなく、2〜5からの使用済みMYM-TEの灌流に。実験中（約9μlの培地/時間に相当）6 psiで流れ圧力を一定に保ちます。ステップ3.5の後にフロープログラムを起動します。 </li></ol>顕微鏡とタイムラプスプロトコルの3セットアップ注：このメソッドは、sCMOSカメラ、メタルハライドランプ、ハードウェアのオートフォーカス、96ウェルプレート用ステージホルダーと環境チャンバを装備した完全電動および自動化倒立広視野顕微鏡に実装されました。 <ol><li>実験を開始した後、オートフォーカスの問題を防止するために、予め30℃に環境チャンバをあらかじめ温め。必要な時間は、使用環​​境室、顕微鏡や暖房システムに依存します。実験前の夜システムを加熱するために開始します。 </li><li>顕微鏡と顕微鏡検査の自動化と制御softwaをオンにします再。このような100X、1.46 NA油DICの目標として最適な信号の収集と空間分解能、高開口数（NA）油浸対物レンズを使用してください。蛍光黄色と​​赤の蛍光タンパク質融合体の微分干渉コントラスト（DIC）画像と画像を取得するために、適切なフィルタおよび二色性ミラーを選択します。 </li><li>客観的にイマージョンオイルの滴を置き、画像取得時のセルにフォーカスを改善するために、マイクロ流体板上に撮像窓の下に液浸流体を追加します。慎重に倒立顕微鏡のステージ上にシールマイクロ流体デバイス（ステップ2.5）をマウントします。プレートがしっかりとステージホルダーに配置され、実験の過程にわたってシフトしないことを確認してください。 </li><li>オリエンテーションのために埋め込まれた位置マーカーを使用して焦点にマイクロ流体培養室の撮像窓を持参してください。に対応し、トラップサイズ5を有する第一のフローチャンバー（ラベル「A」）の一番左の部分に焦点を合わせます0.7ミクロンのトラップの高さ。 </li><li>マイクロフルイディクス・ソフトウェアでは、入口ウェル8からロードセル15秒4 psiで。撮像窓全体にステージを移動させることにより、培養チャンバー内の細胞密度を確認してください。何の胞子がトラップされなかった場合は、セルの負荷ステップを繰り返すまたは代わりに所望の細胞密度が達成されるまで（2048 X 2048ピクセルの撮像窓あたり1-10胞子）負荷圧力および/または時間を増加させます。培養室の過負荷を避けます。 私たちは通常、 ストレプトミセスを撮像するためのトラップサイズ5を使用しますが、我々はまた、4と3は、セルロードプロセスを最適化する上で追加の提案を供給業者のマニュアルを参照してくださいサイズトラップとの良好な結果を得た：注意してください。 </li><li>ステップ2.5からの制御ソフトウェアのフロープログラムを起動し、マイクロ流体板は、画像取得を開始する前に、顕微鏡ステージで1時間熱平衡化することができます。 </li><li>顕微鏡制御ソフトウェアでは、ミューを取るために多次元の取得を設定時間をかけて複数のステージ位置でltiple画像： <ol><li>自動保存の場合：画像ファイルの自動保存のためのディレクトリを指定します。 </li><li>イルミネーションの設定については、事前に各特定の構築物のための最適な照明設定を決定します。 DIC 150ミリ秒、YFP 250ミリ秒、RFP 100ミリ秒：概説実験のために、以下の露光時間を使用します。 </li><li>時系列の場合：シーケンス内の所望の時点で画像を取得する時系列を設定します。 S.のライフサイクルを撮像しますベネズエラ 、24時間かけて40分の時間間隔を選択します。 </li><li>ステージの位置やオートフォーカスの場合：対象の各撮影位置の舞台と店舗ステージ位置を移動させることにより、培養室をスキャンします。シングルステージの位置は、光退色最小限に抑え、phototoxicity.Typicallyは12ポジションまで使用するのに十分に離れて配置されていることを確認してください。遅い焦点ドリフトを補正するために、各時点でオートフォーカスのルーチンを実行します。顕微鏡制御ソフトウェアで利用可能な場合、「ハードウェアのオートフォーカスにより局所的な表面更新」へのオートフォーカス方式を設定します。選択されたステージ位置のZ座標が確認されると、ハードウェアのオートフォーカスを有効にします。 </li></ol></li><li>顕微鏡制御ソフトウェアのタイムラプス実験を開始します。 </li><li>すべてのステージの位置は、後のポイントで焦点に残っていることを確認してください。数時間かけて実行してタイムラプス実験のために、私たちは時折、オートフォーカスを使用していても、ステージのドリフトを観察します。ステージ位置をリフォーカスする必要がある場合は、適切な時点で実験を停止し、フォーカスを調整し、定義された撮影時間間隔（ステップ3.7.3）内で実験を再起動します。時系列を連結する方法については、ステップ4.3を参照してください。 </li><li> 24-30時間後に画像取得を停止するか、関心領域内の菌糸が胞子に分化したとき（DICイメージシリーズを参照してください）​​。ソフトウェアでフロープログラムを停止し、マイクロ流体デバイスを分解。 </li><li>短期STOの中古マイクロ流体板を準備激怒。に残っているMYM-TEを削除し、6によく1からMYM-TEを費やし、空の廃棄物ウェル7とセルの負荷も8無菌条件下で、レーン「A」の再充填使用ウェルおよび未使用レーンのウェル（ &quot;B&quot;滅菌リン酸緩衝生理食塩水（PBS）でプレート上の「D」）。 4℃で乾燥し、ストアからそれを防ぐためにパラフィルムでプレートを密封します。 </li></ol>フィジーのソフトウェアを使用したタイムラプスムービーの4世代注：我々は、さまざまな商用フリーソフトウェアパッケージはZenBlue、をMetamorph、ICY、イメージプロ（ImagePro）またはImageJを含むタイムラプス顕微鏡画像を処理するために利用可能であることに注意してください。ここでは、ImageJのに基づいてオープンソースの画像処理プログラムであるフィジー、に焦点を当て、かつ、既に有用なプリインストールされているプラ​​グインの数を提供します。 <ol><li>フィジーがインストールされているコンピュータへのあなたのタイムラプス実験から転送イメージングデータ。 </li><li>プログラムを起動して、＆用いた撮像ファイルをインポート＃34;ファイル]&gt; [インポート]&gt; [バイオフォーマット」。かでは単にフィジーにイメージングファイルをドラッグして「バイオフォーマットインポートオプション各照明チャンネルに別々の画像スタックを取得するために分割チャンネル &quot;&quot;、ボックスにチェックを入れ、「（DIC 、RFP、YFP）。 </li><li>オプション：（DIC、RFP、YFPチャンネルごとに、起因するリフォーカス（ステップ3.9）に、画像取得中の破損に起因する個別の時系列をマージし、それぞれの画像スタックを開き、実行する「イメージ&gt;スタック&gt;ツール&gt;を連結する」ために）。 </li><li>画像スタックをスクロールすることにより、時系列データの品質を評価します。時間をかけてフォーカスに滞在菌糸、ショーの菌糸の成長を探し、最終的に胞子（DICスタック）を形成します。それぞれ、栄養または胞子形成菌糸（YFPスタック）内の単一の環または複数、梯子状の構造を形成する菌糸先端にDivIVA-mCherryを（RFPスタック）とのFtsZ-YPetの予想細胞内局在を調べます。 </li><li>下流processiのための関心領域を分離画像のngの。タイムラプス顕微鏡は、多くの場合、フィジーでの処理が遅くなることがあり、大きなファイルを生成します。したがって、特定し、関心領域（ROI）を分離し、画像スタックのこの小型版で、さらに画像処理ステップを実行するようにすることをお勧めします。 <ol><li>メニューで「長方形選択」ツールを選択し、開発菌糸が画像シリーズ全体のROIで囲まれているようにDICの画像スタック内の長方形のROIを描きます。 </li><li> 「Ctrlキー」+「Shiftキー」+「D」とROI-スタックを複製します。 </li><li> YFPの画像スタックの名前バーをクリックして選択し、「編集&gt;選択&gt;選択を復元する」YFPスタック内の同じ位置決幅にスタック元DICから前の長方形の選択範囲を復元し、「Ctrlキー」でROIを複製するには、メニューに+「Shiftキー」+「D」。 </li><li> RFPスタックこのプロセスを繰り返します。 </li></ol></li><li> 3画像スタックトンに画像を合わせますO時間をかけてxy平面内のステージのドリフトを除去します。 DICスタック内の最後のフレームにスクロールして、メニューから「プラグイン&gt;登録&gt; StackReg&gt; Ri​​gedBody」を選択します。 RFPとYFPの画像スタックに対して、この手順を繰り返します。必要であれば、ステップ4.5.1-4.5.3を繰り返すことでROIをトリミング。 </li><li>オプション： &quot;&gt;プロセスコントラストを高める」「明るさとコントラストツールを調整する」（「Ctrlキー」+「Shiftキー」+「C」）または選択で各画像スタックのために、手動で明るさとコントラストを調整して、メニューからと「ノーマライズ」を適用しますスタック内のすべての画像へのコマンド。後者のコマンドは、ピクセル値を変更し、従って下流の画像解析に影響を及ぼし得ることに留意すべきです。 </li><li>オプション：「コンバイン&gt;画像&gt;スタック&gt;ツール」プラグインを使用して、水平または垂直（4.11を参照して、RGBファイル形式に変換）個々のスタックを結合します。 </li><li>スケールバー（「分析&gt;ツール&gt;スケールバー」）と時間スタンパを追加（＆＃34;画像&gt;スタック&gt;タイムスタンパ」）。 </li><li> 「.TIFF」形式の画像シーケンスとして修正された画像スタックを保存します。映画を生成するには、「.AVI」として保存します。 「バイオ・フォーマット&gt;バイオフォーマット輸出」プラグインを使用して、QuickTime形式で別の方法として、輸出画像シリーズと「.MOV」ファイルの種類を選択します。 </li><li> 、単一のフレームから画像を取得し、目的のフレームを選択し、画像の &quot;Ctrl&quot; + &quot;Shiftキー」+「D」を複製します。 「RGB」または「8ビット」の下の &quot;&gt;画像&gt; RGBカラーまたは8ビットを入力」と「.TIFF」として画像を保存するために、得られた画像の種類を変更します。 注：フィジーは、さらに注釈を付けるための追加機能が多数用意されていますまたはプロセスのタイムラプスシリーズ。詳細情報（http://fiji.sc/Fiji）のためのフィジーオンラインサポートにアクセスしてください。 </li></ol>

<ol><li>Bush, M. J., Tschowri, N., Schlimpert, S., Flärdh, K., Buttner, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((c-di-GMP+signalling+and+the+regulation+of+developmental+transitions+in+streptomycetes%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">c-di-GMP signalling and the regulation of developmental transitions in streptomycetes.</a> Nat. Rev. Microbiol. 13, 749-760 (2015).</li>
<li>Jakimowicz, D., van Wezel, G. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+division+and+DNA+segregation+in+Streptomyces.%3A+how+to+build+a+septum+in+the+middle+of+nowhere%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Cell division and DNA segregation in Streptomyces.: how to build a septum in the middle of nowhere?</a> Mol. Microbiol. 85, 393-404 (2012).</li>
<li>McCormick, J. R., Flärdh, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Signals+and+regulators+that+govern+Streptomyces+development%5BTitle%5D)+AND+%22FEMS+Microbiol.+Rev%22%5BJournal%5D)">Signals and regulators that govern Streptomyces development.</a> FEMS Microbiol. Rev. 36, 206-231 (2012).</li>
<li>Flärdh, K., Richards, D. M., Hempel, A. M., Howard, M., Buttner, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+apical+growth+and+hyphal+branching+in+Streptomyces%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Regulation of apical growth and hyphal branching in Streptomyces.</a> Curr. Opin. Microbiol. 15, 737-743 (2012).</li>
<li>Hempel, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Ser%2FThr+protein+kinase+AfsK+regulates+polar+growth+and+hyphal+branching+in+the+filamentous+bacteria+Streptomyces%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U+S+A%22%5BJournal%5D)">The Ser/Thr protein kinase AfsK regulates polar growth and hyphal branching in the filamentous bacteria Streptomyces.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 109, E2371-E2379 (2012).</li>
<li>Fuchino, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamic+gradients+of+an+intermediate+filament-like+cytoskeleton+are+recruited+by+a+polarity+landmark+during+apical+growth%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Dynamic gradients of an intermediate filament-like cytoskeleton are recruited by a polarity landmark during apical growth.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 110, E1889-E1897 (2013).</li>
<li>Holmes, N. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coiled-coil+protein+Scy+is+a+key+component+of+a+multiprotein+assembly+controlling+polarized+growth+in+Streptomyces%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Coiled-coil protein Scy is a key component of a multiprotein assembly controlling polarized growth in Streptomyces.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 110, E397-E406 (2013).</li>
<li>McCormick, J. R., Su, E. P., Driks, A., Losick, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Growth+and+viability+of+Streptomyces+coelicolor.+mutant+for+the+cell+division+gene+ftsZ%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Growth and viability of Streptomyces coelicolor. mutant for the cell division gene ftsZ.</a> Mol. Microbiol. 14, 243-254 (1994).</li>
<li>Margolin, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FtsZ+and+the+division+of+prokaryotic+cells+and+organelles%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Mol.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">FtsZ and the division of prokaryotic cells and organelles.</a> Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 6, 862-871 (2005).</li>
<li>Grantcharova, N., Lustig, U., Flärdh, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamics+of+FtsZ+assembly+during+sporulation+in+Streptomyces+coelicolor+A3%282%29%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Dynamics of FtsZ assembly during sporulation in Streptomyces coelicolor A3(2).</a> J. Bacteriol. 187, 3227-3237 (2005).</li>
<li>Richards, D. M., Hempel, A. M., Flärdh, K., Buttner, M. J., Howard, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanistic+basis+of+branch-site+selection+in+filamentous+bacteria%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Comput.+Biol%22%5BJournal%5D)">Mechanistic basis of branch-site selection in filamentous bacteria.</a> PLoS Comput. Biol. 8, e1002423(2012).</li>
<li>Hempel, A. M., Wang, S. B., Letek, M., Gil, J. A., Flärdh, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assemblies+of+DivIVA+mark+sites+for+hyphal+branching+and+can+establish+new+zones+of+cell+wall+growth+in+Streptomyces+coelicolor%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Assemblies of DivIVA mark sites for hyphal branching and can establish new zones of cell wall growth in Streptomyces coelicolor.</a> J. Bacteriol. 190, 7579-7583 (2008).</li>
<li>Wolanski, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Replisome+trafficking+in+growing+vegetative+hyphae+of+Streptomyces+coelicolor+A3%282%29%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Replisome trafficking in growing vegetative hyphae of Streptomyces coelicolor A3(2).</a> J. Bacteriol. 193, 1273-1275 (2011).</li>
<li>Jyothikumar, V., Tilley, E. J., Wali, R., Herron, P. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Time-lapse+microscopy+of+Streptomyces+coelicolor.growth+and+sporulation%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Environ.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Time-lapse microscopy of Streptomyces coelicolor.growth and sporulation.</a> Appl. Environ. Microbiol. 74, 6774-6781 (2008).</li>
<li>Willemse, J., Borst, J. W., de Waal, E., Bisseling, T., van Wezel, G. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Positive+control+of+cell+division%3A+FtsZ+is+recruited+by+SsgB+during+sporulation+of+Streptomyces%5BTitle%5D)+AND+%22Genes.+Dev%22%5BJournal%5D)">Positive control of cell division: FtsZ is recruited by SsgB during sporulation of Streptomyces.</a> Genes. Dev. 25, 89-99 (2011).</li>
<li>Glazebrook, M. A., Doull, J. L., Stuttard, C., Vining, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sporulation+of+Streptomyces+venezuelae.+in+submerged+cultures%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Gen.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Sporulation of Streptomyces venezuelae. in submerged cultures.</a> J. Gen. Microbiol. 136, 581-588 (1990).</li>
<li>Bibb, M. J., Domonkos, A., Chandra, G., Buttner, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+the+chaplin+and+rodlin+hydrophobic+sheath+proteins+in+Streptomyces+venezuelae.is+controlled+by+sigma%28BldN%29+and+a+cognate+anti-sigma+factor%2C+RsbN%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Expression of the chaplin and rodlin hydrophobic sheath proteins in Streptomyces venezuelae.is controlled by sigma(BldN) and a cognate anti-sigma factor, RsbN.</a> Mol. Microbiol. 84, 1033-1049 (2012).</li>
<li>Al-Bassam, M. M., Bibb, M. J., Bush, M. J., Chandra, G., Buttner, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Response+regulator+heterodimer+formation+controls+a+key+stage+in+Streptomyces+development%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Genet%22%5BJournal%5D)">Response regulator heterodimer formation controls a key stage in Streptomyces development.</a> PLoS Genet. 10, e1004554(2014).</li>
<li>Bush, M. J., Bibb, M. J., Chandra, G., Findlay, K. C., Buttner, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genes+required+for+aerial+growth%2C+cell+division%2C+and+chromosome+segregation+are+targets+of+WhiA+before+sporulation+in+Streptomyces+venezuelae%5BTitle%5D)+AND+%22MBio%22%5BJournal%5D)">Genes required for aerial growth, cell division, and chromosome segregation are targets of WhiA before sporulation in Streptomyces venezuelae.</a> MBio. 4, e00684-e00613 (2013).</li>
<li>Tschowri, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tetrameric+c-di-GMP+mediates+effective+transcription+factor+dimerization+to+control+Streptomyces+development%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Tetrameric c-di-GMP mediates effective transcription factor dimerization to control Streptomyces development.</a> Cell. 158, 1136-1147 (2014).</li>
<li>Mirouze, N., Ferret, C., Yao, Z., Chastanet, A., Carballido-Lòpez, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MreB-Dependent+Inhibition+of+Cell+Elongation+during+the+Escape+from+Competence+in+Bacillus+subtilis%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Genet%22%5BJournal%5D)">MreB-Dependent Inhibition of Cell Elongation during the Escape from Competence in Bacillus subtilis.</a> PLoS Genet. 11, e1005299(2015).</li>
<li>Zopf, C. J., Maheshri, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acquiring+fluorescence+time-lapse+movies+of+budding+yeast+and+analyzing+single-cell+dynamics+using+GRAFTS%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Acquiring fluorescence time-lapse movies of budding yeast and analyzing single-cell dynamics using GRAFTS.</a> J. Vis. Exp. (e50456), (2013).</li>
<li>Meniche, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subpolar+addition+of+new+cell+wall+is+directed+by+DivIVA+in+mycobacteria%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Subpolar addition of new cell wall is directed by DivIVA in mycobacteria.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 111, E3243-E3251 (2014).</li>
<li>Donovan, C., Schauss, A., Kramer, R., Bramkamp, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chromosome+segregation+impacts+on+cell+growth+and+division+site+selection+in+Corynebacterium+glutamicum%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Chromosome segregation impacts on cell growth and division site selection in Corynebacterium glutamicum.</a> PLoS One. 8, e55078(2013).</li>
<li>Rojas, E., Theriot, J. A., Huang, K. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Response+of+Escherichia+coli.+growth+rate+to+osmotic+shock%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Response of Escherichia coli. growth rate to osmotic shock.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 111, 7807-7812 (2014).</li>
<li>Flärdh, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Essential+role+of+DivIVA+in+polar+growth+and+morphogenesis+in+Streptomyces+coelicolor+A3%282%29%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Essential role of DivIVA in polar growth and morphogenesis in Streptomyces coelicolor A3(2).</a> Mol. Microbiol. 49, 1523-1536 (2003).</li>
<li>Sliusarenko, O., Heinritz, J., Emonet, T., Jacobs-Wagner, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+subpixel+precision+analysis+of+bacterial+morphogenesis+and+intracellular+spatio-temporal+dynamics%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">High-throughput subpixel precision analysis of bacterial morphogenesis and intracellular spatio-temporal dynamics.</a> Mol. Microbiol. 80, 612-627 (2011).</li>
<li>Young, J. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measuring+single-cell+gene+expression+dynamics+in+bacteria+using+fluorescence+time-lapse+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Measuring single-cell gene expression dynamics in bacteria using fluorescence time-lapse microscopy.</a> Nat. Protoc. 7, 80-88 (2012).</li>
<li>Carpenter, A. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CellProfiler%3A+image+analysis+software+for+identifying+and+quantifying+cell+phenotypes%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biol%22%5BJournal%5D)">CellProfiler: image analysis software for identifying and quantifying cell phenotypes.</a> Genome Biol. 7, R100(2006).</li>
<li>Kuru, E., Tekkam, S., Hall, E., Brun, Y. V., Van Nieuwenhze, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthesis+of+fluorescent+D-amino+acids+and+their+use+for+probing+peptidoglycan+synthesis+and+bacterial+growth+in+situ%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Synthesis of fluorescent D-amino acids and their use for probing peptidoglycan synthesis and bacterial growth in situ.</a> Nat. Protoc. 10, 33-52 (2015).</li>
<li>Szafran, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Topoisomerase+I+%28TopA%29+is+recruited+to+ParB+complexes+and+is+required+for+proper+chromosome+organization+during+Streptomyces+coelicolor.+sporulation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Topoisomerase I (TopA) is recruited to ParB complexes and is required for proper chromosome organization during Streptomyces coelicolor. sporulation.</a> J. Bacteriol. 195, 4445-4455 (2013).</li>
</ol>

著者らは開示するものは何もない。

ストレプトマイライフサイクルのタイムラプス顕微鏡は、過去に技術的に困難となっています。ここでは、発生プログラム（ 図2）を介して進行を視覚化し、トレースを助けるために細胞極性マーカーDivIVAと細胞分裂タンパク質のFtsZに蛍光タンパク質融合を使用して完全なライフサイクルの生細胞イメージングを実行するための堅牢なプロトコルを提示します。 この方法の中心には、Sの栽培です（MYM-TEを過ごした）使用済み培地で一定の媒体灌流および通常の増殖培地（MYM-TE）の交換を可能にするマイクロ流体デバイスでベネズエラ 。栄養豊富な培地の連続供給は栄養growtを刺激するのに対し、培養条件の変化は、胞子形成を促進し、使用済み培地中の任意のまだ正体不明の細胞外シグナル（ 例えば 、クオラムセンシングシグナル）などの井戸のような栄養ダウンシフトので記載されているプロトコルには重要ですほとんど胞子形成とH（データは示さず）。従って、この微小流体システムにおいて細胞を培養することは、多くの実験的な柔軟性を提供し、培養条件の変化に応答して、細菌増殖の変化の長期的モニタリングを可能にするため、アガロース上で細胞を培養することに優れています。マイクロ流体プレートは単一の使用のために設計されているが、細胞を接種されていない流路は、その後の実験に使用することができます。私たちは長い時間のために開かれてきたプレートにマニホールドを密封する問題を経験しているように私たちは、一週間以内に、マイクロ流体板のすべてのチャネルを使用することをお勧めします。 実験を設定する際に、我々は、生殖管が（データは示していない）出現する前に凍結グリセロールストック由来する胞子は、少なくとも6時間を要したのに対し、新たに調製された胞子が、フローチャンバーにロードされる二時間以内に発芽することを見出しました。発芽中のこの遅延は、実験の長さを拡張し、を妨害することができます機器の可用性と実験条件。発芽管の開発と成長のための十分な栄養素を提供するために、少なくとも3時間MYM-TEの灌流を用いた実験を開始することも重要です。実験は栄養成長を研究するために設計されている場合MYM-TEによる灌流は、最初の3時間を超えて拡張することができます。胞子は、出発物質の好ましい選択を提供するが、短い菌糸断片はまた、マイクロ流体板にロードすることができます。しかし、剪断された菌糸体を使用して、積載効率が低く重要であり、多くの場合、非胞子形成変異体を検査するときの制限を提示することができるいくつかのロードを実行する必要があります。かかわらず使用接種物の種類の、メディア拡散を妨害し、画像解析を複雑にすることができ、迅速な過密につながるとして、胞子または菌糸断片と培養室をオーバーロードしないことが重要です。 レポータータンパク質の建設を計画することが重要ですcarefuLLY ストレプトミセスにおける蛍光タイムラプスイメージングで使用するため。標的タンパク質と蛍光レポーターおよびN末端またはC末端融合の選択肢の間のリンカーの長さが重要になる場合があります。また、撮影頻度及び露光時間を含む最適な実験条件は、それぞれの蛍光タグ化タンパク質のために予め決定される必要がある。S.低レベルで発現される蛍光標識したタンパク質を撮影するときに問題となる可能性があり、緑/黄色のチャネルでベネズエラ菌糸展示自家蛍光。また、発芽初期栄養成長段階の間、S.、ということに留意すべきですベネズエラは、短波長光（ 例えば 、CFPへのタンパク質融合物を使用する場合）に特に敏感です。 細菌の生細胞イメージングのためのイメージング技術と、蛍光レポーターシステムの継続的な進歩にもかかわらず、ソフトウェアパッケージのほとんど（ 例えば MicrobeTracker、Schnitzelcデータセットのこれらの種類のその後の自動処理のためのells、CellProfiler）は多細胞のライフスタイル27-29と糸状菌由来画像の解析をサポートしていません。従って、 ストレプトマイセスおよび他の糸状菌からの撮像データの定量的なハイスループット分析のための適切なアルゴリズムを開発する必要があります。 要約すると、ここで説明する作業は、Sの計り知れない可能性を示していますなぜなら、液体中に胞子を形成する能力の属のための新しいモデル発達システムとして、 ベネズエラ 。マイクロ流体培養装置は、不慣れなユーザーのために使用するのは簡単です。これは、動的なタンパク質の局在化、偏成長、およびunigenomic胞子の鎖に多細胞菌糸体の形態学的分化を含むストレプトマイライフサイクル、中央細胞生物学的プロセスを研究するための優れたプラットフォームを提供します。また、この実験セットのuPはまた、ペプチドグリカン合成またはヨウ化プロピジウム及び4を監視するための蛍光D -アミノ酸&#39;、6-ジアミジノ-2-フェニルインドールなどの培養条件を交互に必要とする開発中のイベント、または蛍光色素の使用を調査するために魅力的な出発点を提供します染色体組織30,31を可視化する（DAPI）。

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Mark Buttner
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Mark J. Buttner

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The middle initial J. has been added to author Mark Buttner.

Erratum: Fluorescence Time-lapse Imaging of the Complete S. venezuelae Life Cycle Using a Microfluidic Device

放線菌は休眠、unigenomic胞子1-3に多細胞、栄養捕捉菌糸体から形態的分化を含む複雑な発達サイクルを特徴とする土壌中に生息する細菌です。 有利な増殖条件下で、典型的なストレプトミセス胞子は、一つまたは二つの生殖管（ 図1）を押し出すことによって発芽し始めます。これらの管は、先端延長によって細長く、栄養菌糸として知られる分岐した菌糸のネットワークへと成長します。極性成長と菌糸の分岐が不可欠なタンパク質DivIVAによって指示されます。このコイルドコイルタンパク質は伸びる先端4-7で新しい細胞エンベロープ材料の挿入のために重要であるpolarisomeを、と呼ばれる大きな細胞質複合体の一部です。栄養成長の間に、菌糸のフィラメントは、いわゆるクロス壁8の不定期の形成による区分化になります。これらのクロス壁の形成は、再<html>帖のFtsZ、ほとんどの細菌9における細胞分裂に不可欠であるチューブリンのような細胞骨格タンパク質。 ストレプトマイセスでは、しかし、これらの植物の交差壁が収縮し、細胞-細胞分離につながらない、したがって、菌糸塊が相互接続された合胞体区画のネットワークとして残ります。十分に理解されていない栄養制限及び他の信号に応答して、特殊な気菌糸は栄養菌糸体から脱却し、空気3に成長します。これらの構造の勃起が長いマルチゲノム気菌糸が等しいサイズのunigenomic prespore区画の数十に分けになっている間、開発の生殖期を、開始します。この大規模な細胞分裂事象は、単一胞子形成菌糸2,10内の複数のFtsZリングの同期収縮によって駆動されます。形態学的分化は休眠、厚肉、着色された胞子の放出によって完成されます。 トン &quot;FO：キープtogether.withinページ=&quot; 1 &quot;&gt; <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/53863/53863fig1.jpg" /> 図1： 固体培地上で ストレプトマイライフ サイクルこれはSの古典的研究に基づくライフサイクルのモデルです寒天プレート上で増殖しているコエリカラー 。胞子の細胞の開発は、菌糸の分岐ネットワークを形成するために、先端延長によって成長する1または2発芽管の形成から始まります。栄養菌糸の極性成長と分岐がDivIVA（赤）によって指示されます。栄養クロス壁の形成はのFtsZ（緑）が必要です。栄養素制限と他の信号に応答して、気中菌糸が立設されています。空中成長の逮捕は、しっかりと箱状presporeの区画に胞子形成菌糸を区分胞子形成セプタムを生じさせるのFtsZリング、ラダーの組み立てと調整されています。これらの区画は、厚い胞子壁を組み立て、最終的にreleaされています成熟した着色された胞子としてのsed。 ストレプトマイライフサイクルの重要な発生事象は十分1,3を特徴とします。しかし、まだ何の不足などタンパク質の局在ダイナミクス、染色体移動および発生の制御、細胞分裂などの分化を支える細胞内プロセスへの洞察を提供するために、蛍光タイムラプス顕微鏡を用いる細胞生物学的研究があります。 ストレプト開発のライブセルイメージングが原因ライフサイクルの複雑さと、生物の生理学的特性の挑戦でした。栄養成長と胞子形成隔形成の初期段階でのこれまでの研究では、酸素透過イメージングチャンバーを採用し、または顕微鏡ステージ11-15上のストレプトミセスセリカラーのアガロースサポート成長しています。これらの方法は、しかしながら、多くの要因によって制限されます。一部のシステムでは、唯一の細胞増殖ANの短期的なイメージングを可能にします細胞の前にDの蛍光タンパク質は、不十分な酸素供給に苦しむかによる菌糸の開発の3次元パターンに焦点面の外に成長します。長期的なイメージングが可能である場合には、アガロースパッド上で細胞を培養すると、細胞が代替増殖またはストレス条件に曝露することができないため、実験の柔軟性を制限し、アガロースパッドにおける媒体からのバックグラウンド蛍光が大幅に弱い蛍光を監視する能力を制限します信号。 ここでは、優れた精度と感度との完全なストレプトマイライフサイクルの生細胞イメージングのためのプロトコルについて説明します。蛍光広視野顕微鏡（図2）に接続されたマイクロ流体デバイスにストレプトミセスを成長させることにより、私たちは今までの30時間の時間をかけて発芽、栄養成長と胞子形成隔壁形成をモニターすることができます。これは非常に新しいモデル生物ストレプトミセスの使用によって促進されます</em&gt;のベネズエラは、それは、液体培養でほぼ完全に胞子形成し、それによって、古典的なモデル種S.の限界を克服するため、固形培地16-20にのみ胞子形成コエリカラー 、。栄養成長と胞子形成を視覚化するために、我々を共発現は、蛍光細胞極性マーカーDivIVAと重要な細胞分裂タンパク質のFtsZのバージョンをタグ付け。 我々が正常マイコバクテリア、 大腸菌 、 コリネバクテリウム・グルタミカム、枯草菌および酵母21-25のために使用された市販のマイクロ流体デバイスを使用しています。システムは、単一の焦点面に細胞を捕捉し、異なるリザーバからの培養培地の連続的なかん流を制御することができます。詳細なプロトコルでは、我々はSを露出させるためにこの機能を活用します胞子形成を促進するための栄養ダウンシフトに栄養菌糸体をベネズエラ 。 プロトコルデスクライブ全体ストレプトマイライフサイクルの生細胞イメージングのためのものであるが、特定の発達段階は特に重要である場合、代替メディア条件や顕微鏡の設定を選択することができます。 <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/53863/53863fig2.jpg" /> 図2： 回路図は、実験的な作業の流れを描きました 。プロトコルで説明した3つの主要なステップが示されています。まず、胞子及び使用済み培地は、静止期培養物から調製されます。第二に、新鮮な胞子はマイクロ流体システム及びSにロードされていますベネズエラは、最適な成長温度を維持するために、インキュベーションチャンバーを完全に自動化された倒立顕微鏡を使用して発達ライフサイクル全体を通して結像されます。第三に、得られたタイムラプスシリーズを分析し、オープンソースソフトウェアフィジーを使用して処理されます。

<table><tbody><tr><td>B04A CellAsic ONIXプレート 細菌細胞用</td><td>メルク・ミリポア</td><td>B04A-03-5PK</td><td>マイクロ流体培養プレート</td></tr><tr><td>CellAsic ONIX マイクロ流体灌流システムおよびONIX FG (バージョン5.0.2)</td><td>メルク・ミリポア</td><td>EV-262</td><td>最新のONIXバージョン(2015年7月)とプログラムの使用方法は、こちらでご覧いただけます: http://www.merckmillipore.com</td></tr><tr><td>Axio Observer.Z1 Microscope</td><td>Zeiss</td><td>431007-9902-000</td><td>全自動倒立広視野顕微鏡</td></tr><tr><td>インキュベーター XL multi S1 温度モジュール S1 加熱ユニット付 XL S2</td><td>ツァイス</td><td>411857-9061-000</td><td>顕微鏡を囲む環境チャンバー</td></tr><tr><td>プランアポクロマート 100倍/1.46 油 DIC対物レンズ</td><td>ツァイス</td><td>420792-9800-000</td><td></td></tr><tr><td>オクラ FLASH 4 V2</td><td>浜松ホトニクス(株)</td><td>C11440-22CU</td><td></td></tr><tr><td>イルミネーターHXP 120V</td><td>ツァイス</td><td>423013-9010-000</td><td></td></tr><tr><td>FLフィルターセット46 HE YFPシフトフリー</td><td>ツァイス</td><td>489046-9901-000</td><td>蛍光フィルターセット、励起500/25 nm、発光535/30 nm</td></tr><tr><td>FLフィルターセット63 HE RFPシフトフリー</td><td>ツァイス</td><td>489063-0000-000</td><td>蛍光フィルターセット、励起572/25 nm、発光629/30 nm</td></tr><tr><td>マルチウェル用取り付けフレームK-Mプレート</td><td>ツァイス</td><td>000000-1272-644</td><td>マイクロ流体プレート用ステージホルダー</td></tr><tr><td>ゼンプロ 2012</td><td>ツァイス</td><td>410135-1002-120</td><td>顕微鏡制御ソフトウェア</td></tr><tr><td>ゼンモジュール タイムラプス</td><td>ツァイス</td><td>410136-1031-110</td><td>タイムラプス顕微鏡実験を設定するソフトウェアモジュール</td></tr><tr><td>ゼンモジュール タイル/ポジション</td><td>ツァイス</td><td>410136-1025-110</td><td>特定のステージ位置を保存するソフトウェアモジュール(XZYの)</td></tr><tr><td>フィジー</td><td>のオープンソースソフトウェアパッケージ</td><td>http://fiji.sc/Fiji</td><td>Generation of time-lapse movies</td></tr><tr><td>Maltose-Yeast Exctract-Malt Extract(MYM) 4 g Maltose 4 g 酵母抽出物 10 g 麦芽抽出物 50 % の水道水と 50 % の逆浸透水を使用して 1 L H2O を加え、100 個あたり 200 ml の R2 微量元素溶液を補給しますオートクレーブ後</td><td></td><td></td>ml <td>S. venezuelae SV60</td></tr><tr><td>R2 微量元素溶液 (TE) 8 mg ZnCl2 40 mg FeCl3-6H2O 2 mg CuCl2-2H2O 2 mg MnCl2-4H2O 2 mg Na2B4O7-10H2O 2 mg (NH4)6Mo7O24-4H2O 200mlを加えて H2O オートクレーブを加えて4oC</td><td></td><td></td><td>で保存 0.002容量をMYM</td></tr><tr><td>PBS(リン酸緩衝生理食塩水)</td><td>Sigma</td><td>P4417-100TAB</td><td>B04Aプレートの未使用レーンのインレットウェルを補充し、短期保存用のプレートを準備するために使用されます。</td></tr><tr><td>0.22 以上mシリンジ</td><td>フィルターSatorius stedim</td><td>16532-K</td><td>使用済みMYM-TE</td></tr><tr><td>SV60</td><td>ジョンイネスセンター株コレクション</td><td></td><td>S.ベネズエラ株divIVA-mcherryおよびftsZ-ypet</emを発現する株の調製></td></tr></tbody></table>

コンプリートの蛍光タイムラプスイメージング<em&gt; s。ベネズエラ</emマイクロ流体デバイスの使用&gt;ライフサイクル

Fluorescence Time-lapse Imaging of the Complete S. venezuelae Life Cycle Using a Microfluidic Device

単一細胞レベルでの生物学的プロセスの生細胞イメージングは、細菌細胞の細胞内組織に関する現在の理解に役立っています。しかし、胞子形成糸状細菌Streptomycesの発生を支える細胞生物学的プロセスを研究するためのタイムラプス顕微鏡の応用は、技術的な困難によって妨げられてきました。
ここでは、新しいモデル種であるStreptomyces venezuelaeを、倒立蛍光広視野顕微鏡に接続された市販のマイクロ流体デバイスで成長させることにより、これらの制限を克服するためのプロトコルを提示します。古典的なモデル種であるStreptomyces coelicolorとは異なり、S. venezuelaeは液体中で胞子を形成するため、マイクロ流体成長チャンバーを適用して、長期間にわたるS. venezuelaeの細胞発生と分化を培養し、顕微鏡で監視することができます。形態学的変化のモニタリングに加えて、蛍光標識された標的タンパク質の時空間分布もタイムラプス顕微鏡で視覚化できます。さらに、マイクロ流体プラットフォームは、マイクロ流体チャンバー内のS.ベネズエラの胞子形成を刺激するための詳細なプロトコルで使用される培地を交換するための実験的な柔軟性を提供します。S. venezuelaeのライフサイクル全体の画像は、特定の間隔で取得され、オープンソースソフトウェアであるFijiで処理されて、記録された時系列の動画が生成されます。

全体Sの成功した生細胞イメージングベネズエラのライフサイクルは、発芽、栄養生長および胞子形成（ 図3、映画1）の主要な発達段階を含む連続時系列が得られます。ライフサイクルを通して進行の可視化は、さらにDivIVA-mCherryをとのFtsZ-YPetの別個の細胞内局在性によって強化されています。発芽し、栄養成長の間に、DivIVA-mCherryを排他的に新たに分岐点（ 図4A）を形成する成長菌糸のヒントやマークに蓄積します。これらの結果は、DivIVA 12,26の以前に報告された細胞内の位置決めと一致しています。対照的に、のFtsZ-YPetは成長菌糸体（ 図4B）で不規則な間隔で単環様構造を形成します。これらの構造はinterconnの形成をもたらす、非収縮栄養クロス壁の合成のための足場を提供しますected菌糸のコンパートメント8。胞子形成菌糸に菌糸の成長、細胞分化が極性DivIVA-mCherryを病巣の消失によって見えるようになり、極性成長の逮捕とのFtsZ-YPet蛍光の同時増加（ 図4C）。菌糸を胞子形成では、のFtsZ-YPetの局在パターンは劇的に変化します。第一螺旋のFtsZ-YPetフィラメントは菌糸に沿って転倒し、その後、突然、ほぼ同期イベントでは、これらのヘリックスは規則的な間隔のFtsZ-YPetリングのはしごに合体します。ここに記載された実験条件下では、これらの均等に分散のFtsZ-YPetはしごは約2時間持続します。最後に、胞子形成セプタムは、微分干渉コントラスト（DIC）画像（ 図4D）で識別可能になり、最終的に新しい胞子が放出されます。 提供フィジーのソフトウェアを用いて画像処理を記述し、その後のプロトコル<html>取得されたタイムラプスシリーズ（動画1）から公開の映画を生産する方法のTEPバイステップで解説。 <img alt="図3" src="/files/ftp_upload/53863/53863fig3.jpg" /> 図3：Sの代表的なタイムラプス蛍光顕微鏡シリーズからのスナップショットイメージ ベネズエラ 産蛍光標識のFtsZ（緑）、DivIVA（レッド）マージされた画像の選択されたフレームがある示され（上部パネル：RFP-YFP-DIC、下のパネル：DIC）。発芽、栄養成長と胞子形成を含むストレプトミセスのライフサイクルを可視化します。画像はムービー1時間から採取した時間である：分。スケールバー=5μmである。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53863/53863fig3large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> D / 53863 / 53863fig4.jpg &quot;/&gt; 図4： ストレプトマイライフ サイクル の成功タイムラプスシリーズの代表的な結果 DivIVA-mCherryをの（A）ローカライズ。 RFPとDICチャネルのマ​​ージされた画像とムービーの1から2以降の時点のスナップショットが示されています。 DivIVA-mCherryを、新しい菌糸のブランチサイト（充填された矢印の頭）をマークし、極性成長（オープン矢印ヘッド）を指示するために菌糸の先端に局在します。スケールバー=10μmの（B）のFtsZ-YPetローカリゼーション栄養成長（矢じり）の間。 FtsZ-YPetは（DIC、下のパネル）を収縮しない単一のリング状の構造（上パネル）を形成します。胞子形成隔壁形成時の（C）のFtsZ-YPet（緑）の局在。 （：分時間）DivIVA-mCherryを病巣は、下記に示す経過時間と、赤で示されています。スケールバー：5μmです。 （D）（C）からの胞子形成菌糸のDIC画像を対応する形を示します最終的には胞子の連鎖（右画像）に成熟可視胞子形成隔壁（左画像）とprespore区画のエーション。時間は時間である：分。スケールバー=5μmである。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53863/53863fig4large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="ムービー1からフレーム" src="/files/ftp_upload/53863/53863mov1.jpg" /> ムービー1： ライフサイクル ベネズエラストレプトミセス のタイムラプス蛍光顕微鏡シリーズ映画がマージされたRFP-YFP画像（左）と対応する微分干渉コントラスト（DIC）画像（右）から構成されています。 DivIVA-mCherryを、緑色、赤色とのFtsZ-YPetに示されています。単一のフレーム間の時間間隔は40分です。スケールバー=10μmである。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53863/movie1.mov" target="_blank">THIを表示するには、こちらをクリックしてください。</a>Sムービー。

Streptomycesは、細胞生物学的手段による研究が実験的に困難であった複雑なライフサイクルによって特徴付けられます。ここでは、マイクロ流体デバイスでStreptomyces venezuelaeを成長させることにより、全ライフサイクルの蛍光タイムラプス顕微鏡検査を行うためのプロトコルを紹介します。

コンプリートの蛍光タイムラプスイメージング<em&gt; S。ベネズエラ</emマイクロ流体デバイスの使用&gt;ライフサイクル

Live-cell imaging of biological processes at the single cell level has been instrumental to our current understanding of the subcellular organization of ...

この蛍光タイムラプス顕微鏡法のプロトコルの全体的な目的は、胞子形成を行う糸状細菌Streptomyces venezuelaeにおける、発生と細胞分化の基礎となる生物学的細胞プロセスを研究するための手法を提供することです。本手法は、動的なタンパク質の局在化、極性成長、および胞子形成時の隔壁形成など、Streptomycesのライフサイクルにおいて中心的な細胞生物学的プロセスを研究するための優れたプラットフォームを提供します。この手法の最大の利点は、Streptomyces venezuelaeが液体中で胞子形成を行うため、マイクロ流体デバイス内で細胞を培養し、ライフサイクル全体を顕微鏡でモニタリングできることです。この手法は、多中心的な菌糸体から胞子鎖への分化をライブセルイメージングすることを可能にするため、Streptomyces venezuelaeが本属における新たな開発システムとして極めて大きな可能性を秘めていることを示しています。まず、添加剤を加えた増殖培地30 millilitersに、イメージング対象となるS.venezuela株の胞子10 microlitersを接種します。細胞の安定した増殖と胞子形成を実現するため、十分な通気を確保できるバッフル付きフラスコまたはスプリング入りのフラスコを使用してください。細胞を30°C、250 RPMで35時間から40時間培養します。準備が整うと、液滴封入位相差顕微鏡によって菌糸片と胞芽を確認できるはずです。培養液1 mLを卓上遠心機を用いて400 ×gで1分間遠心分離し、菌糸および大きな細胞断片をペレット化します。次に、胞子懸濁液を含む上清を約300 µL取り、新しい1.5 mLチューブに移して氷上に置きます。残りの培地は後のステップで使用するためにとっておきます。続いて、添加剤入り増殖培地を用いて胞子を1：20に希釈し、使用するまで希釈した胞子を氷上で保持します。残りの培地を50 mLビーカーに注ぎ、シリンジで10 mL分を吸い上げ、滅菌済みの22 µmシリンジフィルターを用いて、残りの培地をろ過滅菌します。これは、胞子や菌糸断片を含まない、成分添加済みの使用済み増殖培地を得るためです。同様の増殖条件下でさらなる実験を行う場合は、ろ過した使用済み成分添加増殖培地を4 °Cで数日間保存してください。各マイクロ流体プレートは、最大4つの独立した実験に使用可能です。未使用のフローチャンバーへの汚染を防ぐため、実験のセットアップ時には滅菌溶液および滅菌条件下で作業してください。まず、マイクロ流体プレートから輸送溶液を除去することから始めてください。次に、ウェルを滅菌済みのサプリメント添加増殖培地で洗浄します。洗浄後、ウェル1の入口にサプリメント添加増殖培地を300 microliters、ウェル2から6に使用済みのサプリメント添加増殖培地を300 microlitersずつ加えます。続いて、希釈した胞子40 microlitersをレーンAのウェル8にロードし、製造元の指示に従ってマニホールドをプレートに密封します。マイクロ流路制御ソフトウェアを起動し、適切なプレートタイプを選択します。流路および培養チャンバーをプライミングするため、インレットウェル1から5まで、各ウェルにつき6 psiで2分間培地を流すフロープログラムを設定します。その後、補完された増殖培地を6 psiでインレットウェル1に6時間流します。これにより、発芽と栄養成長が促進されます。6時間後にプログラムを切り替え、使用済みの補充成長培地を、実験の残りの期間、6 psiでウェル2から5に流すように設定してください。あらかじめ環境チャンバーを30 °Cに予熱しておきます。次に、顕微鏡と顕微鏡制御ソフトウェアを起動します。高開口数油浸対物レンズをセットし、微分干渉（DIC）画像および黄色蛍光タンパク質および赤色蛍光タンパク質融合物の画像を取得するための適切なフィルターとダイクロイックミラーが配置されていることを確認します。対物レンズと、マイクロ流路プレート上のイメージングウィンドウ底部に、浸油を1滴ずつ滴下します。密封したマイクロ流体デバイスを倒立顕微鏡のステージ上に慎重に設置し、固定します。組み込まれている位置マーカーを使用して、マイクロ流体培養チャンバーのイメージングウィンドウに焦点を合わせます。Aと表記された第1流路チャンバーの最左端に焦点を合わせ、その後、トラップ高さ7 µmに対応するサイズ5のトラップまでステージを移動させます。マイクロ流体ソフトウェアを用いて、インレットウェル8から4 psiで15秒間細胞をロードするようにシステムを設定します。プロセス完了後、ステージをイメージングウィンドウ上で移動させ、培養チャンバー内の細胞密度を確認します。胞子がトラップされていない場合は、細胞ロードの手順を繰り返すか、あるいはイメージングウィンドウあたり1〜10個の胞子という目的の細胞密度が得られるまで、ロード圧力および/または時間を増やしてください。培養チャンバーに過剰な負荷をかけないよう注意してください。次に、制御ソフトウェアで事前に作成したフロープログラムを開始し、画像取得を開始する前に、マイクロ流体プレートを顕微鏡ステージで1時間加熱平衡化させます。顕微鏡制御ソフトウェアにおいて、まず画像ファイルの自動保存用ディレクトリを指定し、複数のステージ位置で時間経過とともに複数の画像を撮影する多次元取得の設定を行います。次に、照明設定に移動し、各構成物に対してあらかじめ決定した最適な照明設定を入力します。続いて、24時間にわたって40分ごとに画像を撮影するタイムシリーズを設定します。ステージ位置を決定しオートフォーカスを設定するために、培養チャンバーをスキャンし、目的とする各イメージング位置のステージ位置を保存します。光退色と光毒性を最小限に抑えるため、ステージの各測定位置を十分に離して配置してください。選択したステージ位置のZ座標が確認できたら、ハードウェアオートフォーカスを有効にします。その後、顕微鏡制御ソフトウェアでタイムラプス実験を開始してください。24〜30時間後、または関心領域の菌糸が胞子に分化した時点で画像取得を停止します。次に、ソフトウェアのフロープログラムを停止し、マイクロ流体デバイスを分解します。インレットウェル、ウェストウェル、および細胞ロードウェルから残りの培地を除去し、使用済みのマイクロ流体プレートを短期間保存できるように準備します。次に、レーンAの使用したウェルおよび未使用レーンのウェルに、滅菌PBSを満たします。最後に、プレートの乾燥を防ぐため、パラフィルムで密封します。その後、プレートを4°Cで保存してください。S.venezuelaのライフサイクル全般にわたる生存細胞イメージングに成功したことで、発芽、栄養成長、胞子形成という主要な発達段階を含む連続的なタイムシリーズが得られました。発芽または栄養成長の間、DivIVA-mCherryは成長中の菌糸先端にのみ集積するか、あるいは新たに形成される菌糸の分岐点に標識されます。対照的に、FtsZ-YPetは、成長する菌糸体の中で不規則な間隔で単一のリング状構造を形成します。これらの構造は、非構成的な栄養菌糸の隔壁合成の足場となり、相互に接続された菌糸区画の形成へと導きます。分生子形成菌糸においては、FtsZ-YPetの局在パターンが劇的に変化します。まず、らせん状のFtsZ-YPetフィラメントが菌糸に沿って転がります。その後、ほぼ同時進行的に、これらのらせん構造が合体し、等間隔に配置されたFtsZ-YPetリングの梯子状構造へと変化します。最終的に、微分干渉コントラスト（DIC）画像で胞子形成隔壁が確認できるようになり、やがて新しい胞子が放出されます。この手法は、Streptomycesの全ライフサイクルのライブセルイメージングを行うための堅牢なプロトコルを提供します。このマイクロ流路システムは使いやすく設計されています。本実験系は実験上の柔軟性に優れ、長期的なモニタリングが可能です。また、変化する培養条件に反応して起こる特定の発生事象の調査や、蛍光色素を用いてペプチドグリカン合成をモニタリングし、あるいは染色体構成を可視化するための優れた出発点となります。

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免疫学と感染症

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コンプリートの蛍光タイムラプスイメージング

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