2016年8月24日
本研究の目的は、ラットの脂肪と砂糖の新規摂取後のドーパミン経路と端末サイトにおける同時変化を測定するために、携帯のc-fosの活性化を使用して、信頼性の高い免疫組織学的手法を描くことで報酬関連の分散型の脳のネットワークを識別することです。
この実験プロトコルの全体的な目標は、VTAとその主要な中脳症DA投影ゾーンが、コーン油、グルコース、フルクトース、またはサッカリン溶液の新規摂取後に座標および同時のc-Fos活性化を示すかどうかを判断することです。この方法は、モチベーションなどの神経生物学分野の重要な質問に答え、口当たりの良い刺激に応答して複数の脳部位が協調的に活性化されるかどうかを特定するのに役立ちます。この技術の主な利点は、確立された行動アッセイ、細胞活性化技術、および統計分析を組み合わせることです。
装置をセットアップするには、ロバーストッパー付きの校正済み遠心分離管と45度の角度の金属製シッパーチューブを使用して、ラットに提示された溶液を正確に測定します。ピンと張った金属スプリングでホームケージに固定し、キャリブレーションが見えるようにします。トレーニングの3〜5日前に、ラットへの餌の配給を制限して、ラットの体重を元の体重の85%に減らし、溶液を消費するモチベーションを高めます。
その間、ラットが短い遅延で後続のテストソリューションをサンプリングする確率を最大化するために、1時間のセッションで、動物に0.2%サッカリンを含む10ミリリットルの事前トレーニング溶液を動物に4日間提供します。各セッションの前後にチューブの重量を量り、吸気測定値を取得します。次に、6つの解のうちの1つを受け取ったサブグループで5日目に摂取テストを実行します。
ラットが短い遅延で溶液をサンプリングすることを確認し、この要件が満たされない場合は被験者を研究から除外します。組織を準備するには、動物を犠牲にした後、頭蓋骨から脳をすばやく取り出します。ロンゲールを使用して、脳から骨を後方から前に向かって慎重に割って取り除きます。
小脳の下の領域で作業し、ロンジャーが骨と髄膜の間にいることを確認します。頭蓋骨の上部と側面を取り除いたら、小さなヘラを使って脳を基部から持ち上げ、小さなハサミで脳神経を切り取ります。次に、脳を4%パラホルムアルデヒド溶液に摂氏4度で一晩固定します。
翌日、脳が容器の底に落ち着くまで、脳を室温のショ糖溶液に入れます。その後、嗅球を取り外します。その後、小脳と橋を切除します。
次に、尾部をミクロトームのステージに固定した状態で脳を冠状に装着し、40mirometersの冠状切片を切断します。この手順では、切片を5ミリリットルの5%正常ヤギ血清と0.2%トリトンx-100のPBSで1時間処理します。.次に、処理した切片を一次抗体と4°Cで36時間インキュベートし、1ミリリットルのPBSを含むウェルでインキュ
ベートします。36時間後、毎回10分間、5ミリリットルのPBSで切片を3回すすぎます。次に、1ミリリットルのPBSを含むウェルで、二次抗体と切片を室温で2時間インキュベートします。その後、切片を5ミリリットルのPBSで毎回10分間3回すすぎます。
次に、すすぎた切片を市販のアビジン西洋ワサビペルオキシダーゼ混合物で2時間インキュベートします。2時間後、切片を5ミリリットルのPBSで3回、毎回10分間すすぎます。その後、過酸化水素の存在下で切片をDABと5〜10分間反応させます。
その後、VTA切片をチロシンヒドロキシラーゼ抗体と5ミリリットルのPBS中でインキュベートし、摂氏4度で一晩インキュベートすることにより、VTA切片を二重標識します。翌日、切片を5ミリリットルのPBSで3回、毎回10分間すすぎます。その後、二次抗体と切片を5ミリリットルのPBSで室温で2時間インキュベートします。
2時間後、切片を5ミリリットルのPBSで3回、毎回10分間すすぎます。二次抗体ペルオキシダーゼ複合体を用いて抗体を可視化するには、DABと0.3%硫酸ニッケル溶液の組み合わせと5〜10分間反応させます。ソフトウェアアイコンをダブルクリックしてセルをカウントします。
メニューバーに移動し、[取得]、[ライブイメージ]の順にクリックします。その後、関心領域にピントを合わせ、画面をクリックして参照点を設定します。次に、グリッドツールバーに移動し、[グリッドの表示]と[グリッドラベルの使用]をクリックします。
あらかじめ決められたトレースで関心領域の輪郭を描きます。次に、関心のある各領域のすべてのセルをカウントし、左側のサイドバーで[プラス]を選択して、c-Fosセルのカウントを登録します。定義された暗赤色の円が観察された場合、c-Fosに陽性のセルを考えます。
各サイトについてこのプロセスを繰り返し、各関心領域の各セクションの 2 人の無知な評価者の評価者間の信頼性が常に 0.8 を超えることを確認します。その後、関心領域内のc-Fos陽性ニューロンを数えます。VTAのTH陽性細胞とTH陰性細胞にc-Fos免疫反応性が存在するかどうかを描写します。
この画像は、脂肪または糖の摂取が、扁桃体全体、基底外側、および中枢皮質内側扁桃体のサブエリアでc-Fosの活性化を異なる方法で増加させることを示しています。この画像では、コーン油、グルコース、フルクトースの摂取に曝露された動物で実際の扁桃体c-Fosの活性化が観察されました。VTAにおけるC-Fosの活性化は、コーン油と水にばく露された動物でも観察されました。
黒色の矢印は、代表的な二重標識のTH c-Fos陽性細胞を示し、灰色の矢印は代表的なc-Fosのみの細胞を示します。一度習得すると、このテクニックは適切に実行すれば、3〜4週間で実行できます。この手順を試行する際には、正確な方法論、保管、およびカウントに従うことを忘れないでください。
ご覧いただきありがとうございます、そしてあなたの実験に頑張ってください。
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本研究は、ラットにおける脂肪および糖の摂取後のドーパミン経路におけるc-fos活性化を免疫組織化学的手法で測定することにより、報酬に関連する脳ネットワークを特定することを目的としています。
中脳辺縁系および中脳皮質ドーパミン経路におけるc-Fos活性化を同時に検出することで、嗜好性栄養素の摂取に対する分散的な神経応答を精密にマッピングすることが可能になります。このアプローチは、報酬に関連する神経生物学的メカニズムのターゲットバリデーションにおける予測信頼性を高め、中枢神経系(CNS)創薬における早期段階のリスク低減を支援します。本手法による定量的かつ多部位のリードアウトは、神経精神疾患および代謝研究プログラムにおける堅牢なポートフォリオの優先順位付け(トリアージュ)とトランスレーショナルな連続性を促進します。
本手法は、仮説に基づいた神経活性化のマッピングを可能にすることで、ターゲットの検証とトランスレーショナルバイオマーカーの開発の両方を支援し、創薬から前臨床に至る一連の流れ(discovery-to-preclinical continuum)に統合されます。