Name: 補因子再生と改善された再利用のためのアルギン酸ビーズでマルチ生体触媒の固定化 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-04-22T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 27 s
Description: 学ぶアルギン酸ビーズによるマルチ生体触媒の固定化法。Escherichia coliを用いた補因子再生とL-xylulose生産性向上、触媒の再利用性改善について解説。生体触媒工学の効率的アプローチを紹介。

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本研究は、文部科学省、科学技術（NRF-2013R1A1A2012159とNRF-2013R1A1A2007561）、建国大学、化学工学やMCubed省によって資金を供給、韓国の国立研究財団（NRF）を介して基礎科学研究開発プログラムによってサポートされていましたミシガン大学のプログラム。

1.全細胞生体触媒の調製注：組換えE. pET28a- SpNox 31またはpET28a- HjLAD 28を保有する 大腸菌細胞を、以下、Eと呼ばれています大腸菌SpNoxとE.大腸菌HjLAD、それぞれ。 <ol><li> E.の単一コロニーを接種しますルリア-ベルターニ（LB）培地3ml中の大腸菌 HjLADはカナマイシン（50μg/ ml）を補充し、37°C ​​の 、250rpmでインキュベーターシェーカーO / Nでインキュベートします。 </li><li> 50μg/ mlのカナマイシンを含有する新鮮なLB 200ml中に100とOD 600が 〜0.6に達するまで37 O C、250rpmでインキュベートする：1により培養を希釈します。 </li><li>培地に0.1mMのイソプロピルβ-D-チオガラクトピラノシド（IPTG）を添加することによりHjLADタンパク質発現を誘導し、16 O C、16時間、180rpmでインキュベートします。 <ol><li>また、25°Cの 、200 RPで誘導を行います6時間メートルL-キシルロース生合成（下記のステップ2）が同じ日に行われた場合。 </li></ol></li><li>誘導された大腸菌を収穫4 O℃で20分間、3200×gで遠心分離により大腸菌 HjLAD細胞上清を捨て、細胞ペレットを処理するために、ステップ2に進みます。 </li><li> E.のための1.4 -並行して、ステップ1.1を実行大腸菌 SpNox。 </li></ol>カップリングE.によるL-キシルロースの2生合成大腸菌 HjLADとE.補因子再生のための大腸菌 SpNox <ol><li> 大腸菌の細胞ペレットを再懸濁大腸菌 HjLADとE.コリ SpNox別々に50 mMトリス-塩酸緩衝液（pH 8.0）5.0 g乾燥細胞重量（gDCW）/ Lの細胞密度で。 注：gDCWから600nm（OD 600）で測定した光学密度との相関関係は、実験を容易にするために確立することができます。において使用される式異なる分光計によって異なる場合があります0.0965、 -このプロトコルは、1 gDCW / L = 0.722 * OD 600です。 </li><li> 5.0 gDCW / L Eの600μLをミックス大腸菌 HjLAD、5.0 gDCW / L E.600μlのコリ SpNox、20mMのNAD +を100μl、および14 mLの丸底チューブ内の2 MのL-アラビニトール150μlの50 mMトリス-塩酸（pH8.0）を550μlずつ添加することによって、2 mlまで反応容量をもたらします。 注二つ全細胞生体触媒量の比は、生成物の生合成を改善するために最適化することができます。記載されているシステム、Eの比率のための大腸菌 SpNox：E.コリ HjLAD = 1：1のLキシルロース生合成（ 図1B）のために最適であることが見出されました。 </li><li> 30 Oは C、8時間、200rpmで反応混合物をインキュベートします。 </li><li> 、4°Cので遠心分離後の上清を回収し3200×gで10分間aについてndは以下の手順3で説明したように、L-キシルロース生産を定量化するために進んでください。 </li></ol> L-キシルロース定量化のための3比色アッセイ<ol><li>吸引し1.5mlチューブにステップ2.4​​から収集した反応上清100μl。 </li><li>エタノールに溶解し、1.5％のシステインを50μl、70％硫酸を900μlの、および0.1％のカルバゾールの50μlを添加し、チューブを3回転倒混和します。 </li><li> 37 O C、20分間200rpmで反応混合物をインキュベートします。 </li><li>分光光度計を用いて560nm（560）で反応混合物の吸光度を測定します。 <ol><li> A 560読み取り値が1を超える場合、反応混合物を希釈します。 </li></ol></li></ol>アルギン酸カルシウムビーズにおける組換え全細胞触媒の4固定化<ol><li> 100mlの蒸留水に4gのアルギン酸ナトリウムを溶解します。 Sを加えることによりアルギン酸塩溶液を調製します塊の形成を回避するために水に憎悪アルギン酸。必要に応じて、混合液を加熱しました。 </li><li> 5.0 gDCW / L Eの600μLを追加大腸菌 HjLADおよび5.0 gDCW / L E.600μlの1.2ミリリットルの4％アルギン酸塩で大腸菌 SpNoxは、ステップ4.1で調製し、気泡の形成を避けるために、穏やかなピペッティングにより細胞およびアルギン酸塩を混ぜます。 </li><li>連続的に攪拌しながら100ミリリットルのビーカー中（のCaCl 2）溶液を注射針を用いて注射器にアルギン酸/細胞懸濁液を吸引し、0.3 M塩化カルシウムに滴下混合物を追加します。 注：アルギン酸塩の液滴が完全に水没するためのアルギン酸ビーズ形成のために使用される塩化カルシウム溶液の量が十分でなければなりません。また、注射針および塩化カルシウム溶液の表面との間の距離が均一に球状のビーズの形成を確実にするために最適な範囲内に維持されなければなりません。最適な距離範囲は、実験を決定することができます同盟国とは、針の内径に依存します。推定として、〜15±5cmの距離0.6 cmの（内径）注射針のために最適であることが見出されました。 </li><li>架橋およびゲルビーズの形成を可能にするために撹拌することなく室温で3時間- 2のためのCaCl 2溶液中のビーズを残します。 </li><li>慎重に50ミリリットルコニカルチューブに塩化カルシウム溶液を注ぐことにより、ビーズを乱すことなくのCaCl 2溶液をデカントし、そして別の50mlコニカルチューブに塩化カルシウム溶液中に残っているビーズを転送します。 </li><li>過剰のCaCl 2および非カプセル化細胞を除去するために3回の緩衝液を50mMトリス-HCl（pH8.0）10mlでビーズを洗浄します。 注意： 任意のステップで、それらを破裂するようにすることなどのビーズを遠心分離しません。 5分 - 溶液からビーズを分離するために、サスペンションは3静置することができます。ビーズを底部に沈降し、洗浄緩衝液をデカントすることができ別の容器に。 <ol><li>使用する洗浄緩衝液を廃棄しないでください。ステップ4.5から収集した使用済みのCaCl 2溶液で使用トリス塩酸洗浄緩衝液（30ミリリットル）をプールします。 </li></ol></li><li>非固定化されたE.ペレットプールされたのCaCl 2およびトリス塩酸溶液を遠心分離により大腸菌細胞を20分間3200×gでステップ4.6から収集しました。ステップ2.1で説明したように固定化効率を決定するために、gDCW / Lでペレット化し、非カプセル化された細胞の密度を計算します。 </li><li>チューブにステップ4.6から洗浄したビーズを転送します。手順2.2に従ってください - 3.4を細胞ペレットの代わりに、洗浄したビーズの全てを用いたL-キシルロース生合成を評価します。 </li></ol> L-キシルロース生産のための固定化生体触媒の5安定性アッセイ<ol><li>ステップ4.8からビーズを収集し、（ステップ4.6で説明したように）遠心分離することなく、50mMのトリス-HCl（pH8.0）緩衝液10mlで二回洗浄します。 </li><li>すべての使用3.4 - 工程2.2に記載のように洗浄したビーズの反応を実行します。 </li><li>生産サイクルの所望の数の5.2と各サイクルにおける反応上清中に産生さL-キシルロースの量を測定する - 繰り返して、5.1を繰り返します。 </li></ol>

著者には、競合する金融利益を宣言しません。論文は、アルギン酸ビーズに固定化された結合された全細胞生体触媒システムを生成するための詳細な方法論を報告することを目指しています。科学的なノベルティは以前の研究16に報告されています。

最近の技術の進歩は、バイオテクノロジー産業における市場価値の緩やかな上昇をもたらし、組換え生物学的治療薬の商業化の急増を有効にしています。そのような進歩は、スケーラブルな産業システム38の確立に大きな期待を示している組換え微生物中で代謝工学の出現です。ほとんどのプロセスと同様に、遺伝子操作された微生物により産生された組換え生体分子の成功した商業化には ​​、システム39の製造歩留まりに大きく依存します。これは、生体触媒酵素の定方向進化は、生体触媒活性の3を改善するために実施されている「ブルートフォース」遺伝学39、の急速な発展につながっています。しかしながら、このような酸化還元経路のような特定の代謝経路のために、単なる生体触媒の改善はOTHの有意な効果により生産の経済化に影響を与えることは十分ではありません高価な補因子などの必須の反応要件、えー。このようなシステムのスケールアップは、さらに改善された生体触媒を用いて、唯一の製造コストを増大させるために役立ちます。このように、追加の戦略的な方法は、補因子の化学量論比を含む生物反応の実用化のために必要とさ...

3 -微生物を使用する還元全細胞生体内変化は、商業的および治療 ​​的に重要な生体分子1の化学酵素合成のための普及した方法となっています。 7 -それは孤立した酵素の使用に比べていくつかの利点、特にコストのかかる下流の精製工程の排除と長寿命4のデモを提示します。補因子は、生成物の形成に必要とされる生体触媒の経路のために、全細胞系は、安価な電子供与共基質5,8,9の添加によってその場での補因子再生に提供する可能性を有します。 13 -しかし、この容量が希少または高価な補基質10の化学量論的濃度を必要とする反応のために減少します。一緒に細胞全体の貧しい再利用して、これはスケーラブルで連続のproduの確立を妨げますctionシステム。これらの補因子依存性生物変換のための全細胞システムの戦略的な改変は、前述の制限を克服するために必要とされます。具体的には、協働して動作する全細胞生体触媒の組み合わせは、有意に保有酵素14の生産性及び安定性を高めることが示されています。多くの場合、商業的に実行可能な製品の大量生産を可能にするために重要であり、これらの因子は、共固定化生体触媒微生物15によってさらに最適化することができます。我々は最近、L-キシルロース生産の16のための補因子再生と生体触媒の固定化の両方を可能にする、シンプルで再利用可能な全細胞生体触媒システムを開発しました。この研究では、このシステムは、改善された生体内変換歩留まりと生体触媒の再利用のために、これら2つの戦略を適用する実験手順を説明するための例として使用しました。 L-キシルロースは、CLAに属し生物学的に有用な分子のssは希少糖と命名します。希少糖は、自然の中で非常にまれにしか発生しないユニークな単糖類または糖誘導体であるが、生物活性分子17,18における認識要素として重要な役割を果たしています。彼らは、甘味料、機能性食品からの潜在的な治療薬19に至るまでのさまざまなアプリケーションを持っています。 Lキシルロースは、複数のαグルコシダーゼの潜在的な阻害剤として使用することができ、また、肝炎または肝硬変17,20の指標として用いることができます。全細胞系におけるLキシルロースをキシリトールの高効率変換をパントエアで以前に報告されているが21,22、 アルカリゲネス属 アナナティス 。 701B 23、 バチルス・淡蒼球 Y25 24,25および大腸菌（Escherichia coli）26。 E.で大腸菌は、しかしながら、それは唯一の原因で1よりも初期のキシリトール濃度の潜在的阻害効果に低い（&lt;67 mM）のキシリトール濃度26を使用して達成されましたキシリトール-4-デヒドロゲナーゼ活性21,26上の00 mMの。キシルロースおよびキシリトールの間の熱力学的平衡を強くキシリトール25,27の形成に有利に働くことが示されています。さらに、キシルロース収率は、 その場 で補因子再生系の非存在下で供給されなければならない高価な補因子の量によって制限されます。一緒に、これらの要因は、L-キシルロース生合成のための持続可能なシステムにスケーリングするための可能性を制限します。 これらの制限を克服し、L-キシルロース生体内変換の収率を改善するために、補因子再生の戦略は、結合された全細胞生体触媒システムを確立することにより最初に使用しました。具体的には、 ハイポクレアジェコリーナ （HjLAD）、菌類のL-アラビノース異化経路中の酵素からのL-アラビニトール4-脱水素酵素（EC 1.1.1.12）は、L-キシルロース28,29にL-アラビニトールの変換を触媒するために選ばれました。多くの生合成酵素と同様に、主要なlimitatioHjLADのNは、この変換を実行するために高価なニコチンアミドアデニンジヌクレオチド補助因子（NAD +、NADHの酸化型）の化学量論量を必要とすることです。 化膿連鎖球菌 （SpNox）で見つかったNADHオキシダーゼは、高い補因子再生活性30,31を表示することが示されています。 SpNox、Eのこの属性を利用してLキシルロースの産生のためHjLADを発現する大腸菌細胞は、Eに結合されました図1（a）に示す結合された反応によって示されるL-キシルロース生産を後押しするNAD +の再生のためにSpNoxを発現している大腸菌細胞。最適な条件と150 mMのL-アラビニトールの初期濃度を使用して下に、最大Lキシルロース収率は、このシステムは、はるかに効率的な文献に報告されたものよりも製造、96％に達しました。 全細胞固定化の戦略がさらに結合されたbiocatalytの再利用性を高めるために、次の使用しましたICシステム。全細胞固定化のために一般に使用される方法は、高分子ネットワーク32内の架橋/捕捉およびカプセル化を固体マトリックスにリンク吸着/共有結合が含まれます。これらのアプローチの中で、細胞の固定化のための最も適切な方法は、カルシウムアルギネートビーズ中のカプセル化です。その穏やかなゲル化特性、不活性水性マトリックスおよび高気孔率は、カプセル化された生物学的製剤33の生理学的特性と機能を維持するのに役立ちます。 E.両方を含むため、結合された生体触媒システム大腸菌 HjLADまたはSpNoxをL-キシルロース生産の複数のサイクルを有効にするには、アルギン酸カルシウムビーズに固定化した保有する細胞（ 図2）【選択固定化生体触媒システムは、7サイクル後の最初のサイクルの変換収率の65％を維持し、良好な動作安定性を実証しました連続的な再使用、フリー電池システムは、ほぼ完全にその触媒活性を失っています。

<table><tbody><tr><td>LBブロス&nbsp;</td><td>シグマ アルドリッチ</td><td>L3022-6X1KG</td><td></td></tr><tr><td>カナマイシン</td><td>フィッシャー</td><td>BP906-5</td><td></td></tr><tr><td>イソプロピル &β;-D-チオガラクトピラノシド (IPTG)</td><td>シグマ アルドリッチ</td><td>I6758-10G</td><td></td></tr><tr><td>トリスベース</td><td>フィッシャー</td><td>BP1521</td><td></td></tr><tr><td>B-ニコチンアミド アデニン ジヌクレオチド水和物</td><td>シグマ アルドリッチ</td><td>N7004-1G</td><td></td></tr><tr><td>L-アラビニトール</td><td>シグマ アルドリッチ</td><td>A3506-10G</td><td></td></tr><tr><td>L-システイン</td><td>シグマアルドリッチ</td><td>168149</td><td></td></tr><tr><td>硫酸</td><td>シグマアルドリッチ</td><td>320501-500ML</td><td></td></tr><tr><td>カルバゾール</td><td>シグマアルドリッチ</td><td>C5132</td><td></td></tr><tr><td>エタノール&nbsp;</td><td>フィ</td><td>ッシャーBP2818-4</td><td></td></tr>アル<tr><td>ギン酸ナトリウム</td><td>シグマAldrich</td><td>W201502</td><td></td></tr><tr><td>塩化カルシウム二水和物</td><td>シグマAldrich223506-500G</td><td></td><td></td></tr><tr><td>エクセラE24シェーカーインキュベーターニュー</td><td>ブランズウィックサイエンティフィック</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ケアリー60UV-Vis分光光度計</td><td>アジレントテクノロジー</td><td></td><td></td></tr><tr><td>遠心分離機5810R</td><td>エッペンドロフ</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ビーカー</td><td>フィッシャー</td><td></td><td></td></tr><tr>シ<td>リンジ</td><td>フィッシャー</td><td></td><td></td></tr>ニー<tr><td>ドル</td><td>フィッシャー</td><td></td><td></td></tr>パイオニア<tr><td>分析および精密計量天秤</td><td>オーハウス</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

補因子再生と改善された再利用のためのアルギン酸ビーズでマルチ生体触媒の固定化

Immobilization of Multi-biocatalysts in Alginate Beads for Cofactor Regeneration and Improved Reusability

我々は最近改善された生産収量と持続的な合成のための補因子再生と生体触媒の固定化の機能を備えた、シンプルな再利用可能と連結された全細胞生体触媒システムを開発しました。本明細書に記載さ2 E.から成るこのようなシステムの開発のための実験手順であります機能的に相補的な酵素を発現する大腸菌株 。一緒に、これらの二つの酵素はバイオ反応の生成物の収率を改善するため、高価な補因子の再生を仲介する協同機能することができます。また、アルギン酸カルシウムビーズ中の全細胞のカプセル化によって結合された生体触媒システムの固定化形態を合成する方法が報告されています。一例として、我々は、Eが結合することによって、L-アラビニトールからLキシルロースの改良された生合成を提示します大腸菌細胞が酵素のL-アラビニトール脱水素酵素やNADHオキシダーゼを発現しています。最適条件下で、150の初期濃度を用いmMのL-アラビニトール、最大Lキシルロース収率は、文献に報告されたものよりも高い96％に達しました。結合した全細胞生体触媒の固定化された形態は、遊離細胞系がほぼ完全に触媒活性を失っている間、連続した再使用の7サイクル後の最初のサイクルで得られた収率の65％を維持し、良好な動作安定性を示しました。したがって、ここで報告された方法は、L-キシルロースの工業生産だけでなく、一般的には補因子の使用を必要とする他の付加価値化合物の改善に役立つ可能性が2つの戦略を提供します。

補因子再生を有効にするには、L-キシルロース合成はE.を含む結合された全細胞生体触媒システムで行いました大腸菌 HjLADとE.コリ SpNox細胞 。様々なパラメータの最適化に続いて、このシステムの再利用は、アルギン酸カルシウムビーズ（ 図2）の中に固定化することにより改善されました。 カップリング E. によって補因子再生を伴うL-キシルロース生産 大腸菌 HjLAD と E.コリ<...

提示例としてL-キシルロースの生産を使用して、補因子再生と改善された再利用のための共固定化全細胞生体触媒のためのプロトコルです。補因子再生の機能的相補酵素を表す2 大腸菌株を結合することによって達成されます。全細胞生体触媒の固定化は、カルシウムアルギネートビーズ中の細胞のカプセル化により達成されます。

We have recently developed a simple, reusable and coupled whole-cell biocatalytic system with the capability of cofactor regeneration and biocatalyst ...

本実験手順の全体的な目的は、アルギン酸ビーズに固定化した結合全細胞バイオ触媒システムを用いることで、生産収率の向上と再利用性を実証することです。これが私の研究テーマであり、バイオ触媒の固定化、安定性、コファクターの再生、および全細胞バイオ触媒といった、バイオカタリシス分野における重要な課題に取り組んできました。本手法の主な利点は、コファクター依存性経路による多くの重要なバイオ分子の生産性を向上させるための、シンプルかつ柔軟なアプローチを提供できる点にあります。本プロトコルでは、2種類の組換えE coli株を使用します。NADHオキシダーゼを発現するSpNOx E coliと、L-アラビニトール脱水素酵素を発現するHjLAD E coliです。本手順は両方のE coli株で共通であるため、ここではHjLAD E coliのみを用いて実演します。15 µg/mLのKet-A-My-Sinを添加した3 mLのLB培地に、HjLAD E coliのシングルコロニーを接種し、振盪インキュベーターで一晩培養します。翌日、この培養液を15 µg/mLのKet-A-My-Sinを含む200 mLの新鮮なLB培地で100倍に希釈し、OD 600が約0.6に達するまで37 °C、250 RPMで培養します。培養液に0.1 mMのIPTGを添加し、25 °C、200 RPMで6時間培養することで、HjLADタンパク質の発現を誘導します。3200 ×g、4 °Cで20分間遠心分離し、誘導後の細胞を回収します。上澄み液を除去し、次のセグメントで示す方法で細胞ペレットの処理を進めます。この手順を開始するために、HjLAD E coliとSpNox E coliの細胞ペレットを、それぞれ50 mM Tris-Hclバッファーを用い、細胞密度5 g dry cell weight/Lで懸濁します。14 mLの丸底チューブに、5 g dry cell weight/LのHjLAD E coliを600 µL、5 g dry cell weight/LのSpNOx E coliを600 µL、20 mMのNAD+を100 µL、および2 MのL-aribinitolを150 µL混合します。50 mMのTris-HClを550 µL添加し、反応液量を2 mLにします。反応混合物を30 °C、200 RPMで8時間インキュベートします。8時間後、混合物を3200 ×g、4 °Cで10分間遠心分離し、反応上清を回収します。比色法によりL-xyluloseの産生量を定量するため、回収した上清100 µLを1.5 mLチューブに分注します。1.5% cysteine 50 µL、70% sulfuric acid 900 µL、およびエタノールに溶解した0.1% Kar-Piz-All 50 µLを加え、チューブを3回反転させて緩やかに混合します。反応混合液を37 °C、200 RPMで20分間インキュベートします。分光光度計を用いて、反応混合液の560 nmにおける吸光度を測定します。4%アルギン酸溶液を調製し、固定化プロトコルを開始します。0.8 gのアルギン酸ナトリウムを20 mLの蒸留水に加え、混合物を加熱してアルギン酸ナトリウムを溶解させます。4%アルギン酸溶液1.2 mLに、乾燥菌体重量5 g/LのHjLAD E coliを600 µL、および乾燥菌体重量5 g/LのSpNOx E coliを600 µL加えます。気泡の形成を避けるため、緩やかにピペッティングして菌体とアルギン酸を混合します。均一なサイズ、形態、および剛性を持つアルギン酸ビーズを確実に形成させるには、細胞懸濁液を十分な量の塩化カルシウム溶液に、最適な距離からゆっくりと一滴ずつ滴下し、すべてのビーズが浸るようにすることが重要です。ニードルを使用してシリンジにアルギン酸細胞懸濁液を吸引し、連続的に攪拌しながら、100 mLビーカーに入れた0.3 M塩化カルシウム溶液にこの混合液を滴下します。架橋反応を進行させるため、ビーズを攪拌せずに室温の塩化カルシウム溶液中で2〜3時間静置します。ビーズを乱さないように注意しながら、塩化カルシウム溶液を15 mLコニカルチューブに慎重に注ぎ、デカンテーションします。残ったビーズを別の50 mLコニカルチューブに移します。過剰な塩化カルシウムとカプセル化されなかった細胞を除去するため、50 mM Tris-HCl緩衝液でビーズを洗浄します。ビーズに10 millilitersの緩衝液を加え、懸濁液を3〜5分間静置します。ビーズが底に沈殿したら、緩衝液を別の容器にデカンテーションして除去します。この手順で、ビーズを3回洗浄します。いずれの工程においても、ビーズを遠心分離しないでください。破裂する恐れがあります。使用済みのTris-HCl洗浄バッファーは廃棄しないでください。先に回収した塩化カルシウム溶液を含む、使用済みの洗浄バッファー30 millilitersを吸い出します。回収した塩化カルシウムおよびTris-HCl溶液を3200 ×gで20分間遠心分離し、固定化されていないE coli細胞をペレット化します。洗浄後のビーズをチューブに移します。続いて、細胞ペレットの代わりに洗浄後のビーズをすべて用いて、細胞ペレットで実演した手順に従いL-xyluloseの生物合成能を評価します。L-キシロース生産用固定化バイオカタリストの安定性を評価するために、形成後のビーズを回収します。そして、前述した通り、遠心分離を行わずに10 mLの50 mM Tris-HCl緩衝液で2回洗浄します。洗浄したすべてのビーズを用いて、前述した手順に従いL-キシロース生産反応を行います。前述した方法と同様に、比色法を用いてL-xyluloseの生成量を定量します。目的の生産サイクル数分だけL-xylulose生成反応を繰り返し、各サイクルにおける反応上清中のL-xylulose生成量を測定します。この連結全細胞バイオカタリシスシステムにより、L-xyluloseの生成が促進されます。150 millimolarのL-aribinitolの初期濃度から開始し、HjLAD E coliバイオキャタリストのみを用いた場合、L-xyluloseの収率は79%でした。対照的に、HjLAD E coli細胞とSpNOx E coli細胞を1:1の比率で用いた場合、L-xyluloseの収率は96%となりました。バイオキャタリストの固定化効率に影響を与えるパラメータを評価した結果、アルギン酸ナトリウム濃度を1%から3%の範囲で増加させると、効率が向上することが明らかになりました。しかしながら、アルギン酸ナトリウム濃度が2%を超えると、L-キシルロースの収率が低下します。アルギン酸ナトリウム濃度を2%としたとき、固定化およびL-キシルロース収率における塩化カルシウムの最適濃度は0.3 molarであると決定されました。続いて、バイオカタリストの再利用性を評価しました。このグラフでは、固定化および遊離の共連結全細胞バイオカタリストを7サイクル連続で再利用した際のL-xylulose生成量が、それぞれ濃い灰色と薄い灰色で示されています。固定化共連結全細胞バイオカタリストによる最大L-xylulose収率は、遊離共連結全細胞システムよりも低いものの、固定化によって再利用性は向上しています。7サイクルの連続再利用の終了時点で、固定化バイオカタリストは安定性を維持し、初期のL-xylulose収率の65%を保持していました。この手法の開発後、バイオカタリシス分野の研究者は、全細胞バイオカタリストの収率や、コファクターが関与する主要な反応を探索することが可能になりました。

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Research

JoVE Journal

Chemistry

化学

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このプロトコルは、細胞を固定化するアルギネートの急速な物理的ゲル化による細胞封入方法を示す。得られたマイクロビーズは、時間をかけてアミロイドβの制御および持続的な分泌を可能にし、インビトロおよびインビボモデルで分泌されたアミロイドβの効果を研究するために使用することができる。...

アルツハイマー病のモデリングに用いられるアミロイドβ分泌アルギン酸マイクロビーズの製造

ここでは、3D培養条件でのブタ卵母細胞のカプセル化のための2つのプロトコルを示します。第1に、cumulus-oocyte複合体(COC)はフィブリンアルギン酸ビーズにカプセル化される。第2に、フッ素化エチレンプロピレン粉末粒子(マイクロバイオリアクター)で封入される。両システムは、3D組織を維持するために最適な条件を保証します。...

ポルシン卵母細胞カプセル化のためのタンパク質分解アルギン酸ヒドロゲルおよび疎水性マイクロバイオリアクター

学ぶアルギン酸ビーズによるマルチ生体触媒の固定化法。Escherichia coliを用いた補因子再生とL-xylulose生産性向上、触媒の再利用性改善について解説。生体触媒工学の効率的アプローチを紹介。

補因子再生と改善された再利用のためのアルギン酸ビーズでマルチ生体触媒の固定化

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