Name: マウス前立腺マイクロ解剖と外科的去勢 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-05-11T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 49 s
Description: 学ぶマウス前立腺マイクロ解剖と外科的去勢の手法。個々の前立腺腺を分離し、ホルモン変化の影響を詳細に観察できます。前立腺がんや去勢抵抗性の研究に応用可能です。

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この原稿の数値の一部は寛大バートO.ウィリアムスの研究室によって提供されました。著者は、国立癌研究所によってサポートされていU54CA143803、CA163124、CA093900、およびCA143055を付与します。

このプロトコルは、ジョンズ・ホプキンス大学施設内動物管理使用委員会によって設定されたガイドラインを満たし、次の。 1.マイクロ解剖マウス前立腺<ol><li>二酸化炭素窒息または施設の動物の管理と使用のガイドラインに従った代替承認の方法により、マウスを安楽死させます。 </li><li> 4足のそれぞれを通ってピンを置くことによって、解剖ボードに仰臥位でマウスをピン。 </li><li> 70％エタノールで腹部をスプレーします。 </li><li>鉗子で下腹部の皮膚を持ち、皮膚を介してカットし、ペニスの開口部に約1cmの前方を腹膜するはさみを使用して、任意の臓器を切らないように注意してください。 </li><li>腹腔を露出させ、アップ腹部の両側胸郭に、下腹部から皮膚及び腹膜を切り取ります。 </li><li>膀胱と尿生殖路を特定し、優しく側に脂肪および他の器官を動かすことによって、それらを公開。 </li><li> USIngの鉗子、グリップ尿道に近いベースでの輸精管を、そしてそれを離れて引き裂きます。 </li><li>反対輸精管で繰り返します。 </li><li>同時に膀胱下の尿道と腹側前立腺（膀胱のベース下の約1cm）を切断するはさみを使用しながら、慎重にグリップ、膀胱を鉗子を使用して、それを引き上げます。 注：膀胱がプルアップされているように、（膀胱、尿道のセクション、すべての前立腺葉、および精嚢を含む）全体の尿生殖路は、それが付属します。多少の抵抗があるかもしれません。 </li><li>約5〜10 mLのリン酸緩衝生理食塩水（PBS）を含む60〜100ミリメートルペトリ皿に尿生殖路（UGT）を配置します。 </li><li>解剖顕微鏡下でプロトコルの残りの部分を実行します。 2細かい鉗子、それぞれの手で1を使用してください。 「鉛筆のような」鉗子を持ち、それらを安定するように、作業台の上に腕を休ませます。 </li><li>膀胱があるようUGTを位置決めするために微細なピンセットを使用して上、尿道が下向きされ、精嚢は、膀胱のいずれかの側に配置されています。 </li><li>グリップ1鉗子、慎重に任意の前立腺組織を離れて引き裂くことなく、他の鉗子で脂肪を引き離すと尿道。注：脂肪は周囲の組織に比べて「ピカピカ」が表示されます。 </li><li>脂肪が除去されると、前立腺の2腹葉間結合組織を引き裂くとそれらを分離するために鉗子を使用しています。 </li><li> 、腹側ローブの1を削除グリップに先端付近の単一腹葉を1鉗子を使用し、可能な限り尿道に近いベースでそのローブグリップに他の鉗子を使用します。まだ葉の基部を把持しながら、グリップに尿道を他の鉗子を使用します。しっかりと、滑らかな動きで離れて尿道から葉を引き出します。何の前立腺組織は尿道に添付残っていないことを確認してください。次の実験段階に応じて、適切な培地に葉を置きます。 <ol><li> Sを固定し、パラフィンに埋め込むには組織学的分析のための十分な、10％中性緩衝ホルマリン（NBF）8に葉を配置します。 </li><li>凍結保存のために、このような10月のように、メディアを凍結し、8を区画に葉を置きます。 </li><li>培養のために単一細胞を単離するための冷PBSで葉を置くか9フローサイトメトリー。 </li></ol></li><li>他の腹葉と繰り返し手順1.15。 </li><li>必ず精嚢を穿刺しないようになって、静かに精嚢から葉を引っ張るために鉗子を使用して、前葉の1を削除します。ローブは精嚢から独立していると、ステップ1.15で腹葉と同じ方法でそれを削除します。 </li><li>他の前方ローブと繰り返し手順1.17。 </li><li>背側前立腺が表示されていることなどの上に残存尿生殖路を反転します。 </li><li> 2背外側ローブともローブとtとの結合組織の間の結合組織を引き裂くために鉗子を使用し、背外側ローブの1を削除するには彼は精嚢領域を後方。ステップ1.15で腹葉と同様の方法で葉を削除します。 </li><li>他の背外側葉と繰り返し手順1.20。 </li></ol> 2.去勢手術注：これは生存の手術なので、無菌状態、麻酔、および疼痛管理は、このプロトコルの倫理的、正常に完了することが重要です。すべての機関の動物の管理と使用のガイドラインに従ってください。低体温症を防ぐために、外科手術の際に、このような再循環水ブランケットとして、外部熱源を使用してください。それは胸骨横臥位を維持するのに十分な意識を取り戻したまで無人の動物を放置しないでください。完全に回復するまで、他の動物の会社に手術を受けた動物を返さないでください。手術で使用する前に、すべての手術器具をオートクレーブ。 <ol><li>清潔、無菌の表面に適切な措置（ 例えば 2％吸入イソフルラン）を用いてマウスを麻酔し、メートルを配置仰臥位でウーズ。注：例えば、ケタミンのような代替的な麻酔法を、承認された動物プロトコルに応じて、また使用され得ます。 </li><li>つま先をつまんで、マウスの反射神経をチェックしてください。マウスが反応しない場合は、次のステップに進みます。それが反応しない場合は、1-3分待ってから再度確認してください。電気かみそりで手術領域を剃ります。 </li><li>無菌的に交互に70％エタノールおよびヨウ素のスクラブや制度獣医学のスタッフやIACUCによって推奨される手順を用いてマウスの腹部を準備します。 </li><li>滅菌メスを使用して、下腹部の正中線に皮膚を介して陰茎に約1.5センチ前方を1センチメートル縦切開を行います。 </li><li>腹膜を介して小切開（&lt;1センチ）ことを確認し、任意の臓器を切らないように注意してください。 </li><li>滅菌ピンセット、グリップ腹膜のカットエッジを使用し、下に腹膜腔を見ることができるように静かに持ち上げます。 </li><li>別の滅菌ピンセットを使用して、目に到達電子膀胱に対する横腹腔とグリップ左右いずれかの睾丸脂肪パッド、。精巣は、同様に出てくるまで、腹膜および皮膚内の開口部を介して脂肪パッドを引き出します。このステップの間に、他の組織や臓器を傷つけないように注意してください。 </li><li>焼灼ペンを使用して、精巣を保持している脂肪パッドを切断。焼灼ペンノートと精巣動脈を通ってゆっくりとカット：精巣動脈が速すぎてカットされている場合、そこにあまりにも多くの出血であってもよく、マウスを安楽死させなければならないことがあります。 </li><li>脂肪パッドと動脈が切断されると、精巣および脂肪パッドを削除します。 </li><li>繰り返して、他の精巣で2.6から2.9を繰り返します。注：精巣を除去するための別の方法は、はさみで血管を切断し、その後、精巣動脈を外科的に結紮することです。 </li><li>腹膜は、吸収性縫合糸で閉じ縫合糸。 </li><li>ステープル皮膚は、外科的創傷クリップで閉じました。 </li><li>痛みを管理するための鎮痛剤を投与し、そして場所5-10分間暖かいケージのクリーンケージにマウス。痛みや出血の兆候についてマウスを監視します。 </li></ol>

<ol><li>Siegel, R. L., Miller, K. D., Jemal, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cancer+statistics%5BTitle%5D)+AND+%22CA+Cancer+J+Clin%22%5BJournal%5D)">Cancer statistics.</a> CA Cancer J Clin. 65 (1), 5-29 (2015).</li>
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<li>Lukacs, R. U., Goldstein, A. S., Lawson, D. A., Cheng, D., Witte, O. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation%2C+cultivation+and+characterization+of+adult+murine+prostate+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Isolation, cultivation and characterization of adult murine prostate stem cells.</a> Nat Protoc. 5 (4), 702-713 (2010).</li>
<li>Michiel Sedelaar, J. P., Dalrymple, S. S., Isaacs, J. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Of+mice+and+men--warning%3A+intact+versus+castrated+adult+male+mice+as+xenograft+hosts+are+equivalent+to+hypogonadal+versus+abiraterone+treated+aging+human+males%2C+respectively%5BTitle%5D)+AND+%22Prostate%22%5BJournal%5D)">Of mice and men--warning: intact versus castrated adult male mice as xenograft hosts are equivalent to hypogonadal versus abiraterone treated aging human males, respectively.</a> Prostate. 73 (12), 1316-1325 (2013).</li>
<li>Wang, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+luminal+epithelial+stem+cell+that+is+a+cell+of+origin+for+prostate+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">A luminal epithelial stem cell that is a cell of origin for prostate cancer.</a> Nature. 461 (7263), 495-500 (2009).</li>
<li>Pascal, L. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((5alpha-Reductase+inhibition+coupled+with+short+off+cycles+increases+survival+in+the+LNCaP+xenograft+prostate+tumor+model+on+intermittent+androgen+deprivation+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">5alpha-Reductase inhibition coupled with short off cycles increases survival in the LNCaP xenograft prostate tumor model on intermittent androgen deprivation therapy.</a> J Urol. 193 (4), 1388-1393 (2015).</li>
<li>Shen, M. M., Abate-Shen, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+genetics+of+prostate+cancer%3A+new+prospects+for+old+challenges%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+Dev%22%5BJournal%5D)">Molecular genetics of prostate cancer: new prospects for old challenges.</a> Genes Dev. 24 (18), 1967-2000 (2010).</li>
</ol>

著者は、彼らが競合する金融利害関係を持たないことを宣言します。

前立腺顕微解剖は、マウス前立腺（ 図1）の葉特有の実験および分析を可能にします。遺伝子操作マウスモデルにおいて、表現型は、他で見られないもので葉に見られます。また、組織学的分析のために、このプロトコルは、純粋な前立腺組織の最大量は節中に存在する他の尿生殖路組織せず、切片と染色することができることを保証します。最後に、単一細胞実験のために、このプロトコルは、ほぼ純粋な前立腺細胞の単離を可能にします。上皮細胞濃縮キットはさらに、間質細胞から前立腺細胞を浄化することができます。顕微解剖に制限は解剖顕微鏡を用いて、解剖顕微鏡を覗きながら細かい鉗子を使用するために必要な学習曲線を含みます。また、前立腺組織は、顕微解剖が不要になって、UGTの一環として、組織学のために区分することができます。しかし、全体のUGTを切片の欠点はということです他の組織は、それがのようにきれいではない作り、セクションに存在するであろう。また、単一の前立腺細胞集団を生成するために、ローブは、汚染を避けるために、UGTから分離しなければなりません。 去勢手術は、多くの前立腺研究室のための...

前立腺は、米国における男性の癌の最も一般的な部位です。ほぼ22万男性毎年前立腺癌と診断され、約27,000人の男性は、自分の病気1に屈するます。男性は米国1における前立腺癌の診断の1 7の生涯リスクを持っています。良性前立腺肥大（BPH）、前立腺の年齢関連非癌性拡大は、80 2以上の男性の80％に影響を及ぼし、また広範な条件である。このように、前立腺はかなりの研究の焦点です。 マウスモデルは、前立腺3の疾患を研究するために広く用いられています。全体的に、マウスの前立腺は、ヒト腺4の優れた代表であるが、マウスとヒトの前立腺解剖学と生理学5の類似点と相違点があります。両種では、前立腺が尿道を取り囲む、膀胱の基部に位置しています。ヒト前立腺腺は、単一のLOです中央、トランジション、周辺機器、および前部線維筋間質：4つのゾーンに分け、こと。前側、腹、および背外側：これとは対照的に、マウスの前立腺は尿道の周りの異なる位置に3対になった葉で構成されています。 1、それは1：マウス6で4細胞レベルでは、主な違いは、ヒトにおける細胞比率を管腔する基底細胞が約1であることです。マウス間質は、ヒトへの相対的なマウスでも異なっている - 筋層は、マウス前立腺における非常に薄いですしながら、人間は、より広範な平滑筋を持っています。マウス前立腺の適切な識別、解剖、およびハンドリングは、マウスの前立腺研究に不可欠です。 ホルモンのレベルが大幅にヒトとマウスの両方で前立腺の開発と恒常性に影響を与えます。エストロゲンは、前立腺の発達7において役割を果たすと思われるが、前立腺における最も重要なホルモンはテストステロンです。テストステロンは腺開発ANのために不可欠ですDのメンテナンス。物理的または化学的のいずれかに続いて去勢、成人前立腺apoptose内腔側細胞の約90％、および腺が収縮します。テストステロンを去勢条件下で個体に再導入された場合、前立腺全容量に自分自身を再生することができます。テストステロンはまた、アンドロゲン除去療法が一般的に使用される治療戦略である理由である、前立腺癌を駆動するように思われます。しかし、多くの前立腺癌は、アンドロゲン除去に耐性になります。また、前立腺癌の治療のためのアンドロゲン枯渇療法を受けている男性は去勢、再生条件のサイクルを受けます。マウスでは、外科的去勢は、テストステロンを再導入することにより、前立腺のホルモン再生と共に、去勢抵抗性前立腺に対するテストステロンの循環の影響を研究すると重要なツールです。 この記事では、我々が議論し、locatすることにより、適切な技術のデモンストレーションを行いますeおよびマイクロ解剖マウスの前立腺を、同様にマウスを去勢外科的します。

<table><tbody><tr><td>外科用具</td><td>Roboz</td><td>各種</td><td></td></tr><tr><td>ホルムアルデヒド</td><td>シグマ</td><td>F8775</td><td></td></tr><tr><td>OCT 中</td><td>型 VWR</td><td>25608-930</td><td>凍結するにはドライアイスの上に置く必要があり、-80 >C</td></tr><tr><td>PBS</td><td>ライフテクノロジー</td><td>ズ10010</td><td></td></tr><tr><td>イソフルラン</td><td>ジョンズホプキンス</td><td></td><td></td></tr>オンライン焼<tr><td>灼ペン</td><td>メドライン</td><td>ESCT002</td><td></td></tr><tr><td>シルク縫合</td><td>ADサージカル</td><td>M-S330R19</td><td></td></tr><tr><td>外科創傷クリップ</td><td>ロボズ</td><td>RS-9265</td><td></td></tr>からも入手可能</tbody></table>

マウス前立腺マイクロ解剖と外科的去勢

Murine Prostate Micro-dissection and Surgical Castration

マウスモデルは、前立腺癌やその他の疾患の研究に広く使用されています。マウスは前立腺を研究するための優れたモデルであり、ヒトの前立腺の発達と病気の発見の代理として使用されてきました。前立腺マイクロダイセクションは、他の組織の汚染がない場合で、葉特異的な前立腺の解剖学、組織学、および細胞特性の一貫した研究を可能にします。テストステロンは前立腺の発達と病気に影響を与えます。アンドロゲン除去療法は前立腺がん患者によく見られる治療法ですが、多くの前立腺腫瘍は去勢抵抗性になります。マウスモデルの外科的去勢は、去勢抵抗性および前立腺のホルモン生物学の他の側面の研究を可能にします。この手順は、テストステロンの再導入、または前立腺のホルモン再生、前立腺の幹細胞系統を研究するための強力な方法と組み合わせることができます。前立腺顕微解剖と外科的去勢を組み合わせることで、前立腺の発達と疾患に関する堅牢で一貫した研究のための多くの機会が開かれます。この原稿では、実験用マウスにおける前立腺顕微解剖と外科的去勢のプロトコルについて説明します。

すべての6前立腺葉前立腺顕微解剖（ 図1）を介してマウスから除去しました。完全な尿生殖路（UGT）は、すべての前立腺葉、膀胱、精嚢、尿道（ 図1a）で構成されています。輸精管が尿道に付着するが、前立腺顕微解剖は不要であり、したがって、尿道（ 図1B-1C）を切断することによって、UGTの除去の前に取り外すことができます。腹部（ 図1D）から削除されると尿生殖路が一緒に残ります。この時点で、UGTは、前立腺葉（ 図1E）へのアクセスを得るために除去する必要が脂肪組織に覆われたままです。すべての6ローブ（腹側、前方、および背外側対）は、膀胱の基部に、尿道を取り囲む分かります。純粋な前立腺組織は、その後、（ 図1F）上記プロトコルに従って除去することができます。これらのローブかもしれませんさらなる分析のために適切な培地に置かれます。 <p class="jove_con...

この原稿は、実験用マウスにおける前立腺顕微解剖や去勢手術のためのプロトコルについて説明します。また、これらのプロトコルによって生成される代表的な結果を示しています。最後に、我々は長所と、これらのプロトコルの利用を議論します。

Mouse models are used extensively to study prostate cancer and other diseases. The mouse is an excellent model with which to study the prostate and has ...

これらの手順の全体的な目的は、マウスにおける前立腺および多様なホルモン状態の研究を可能にすることです。この手法は、ホルモン除去が前立腺の発癌にどのような影響を与えるかなど、前立腺癌分野における重要な疑問を解決するのに役立ちます。この技術の主な利点は、個々の前立腺において、さまざまな病理学的プロセスやホルモン変化の影響を研究できることです。まず、マウスの各足の足底から解剖台に仰臥位で固定し、腹部に70% ethanolを噴霧します。次に、ピンセットで下腹部の皮膚を保持し、陰茎の開口部から前方約1 cmの位置で、皮膚と腹膜をハサミで切開します。下腹部から腹部の両側を経て肋骨まで皮膚と腹膜の切開を続け、腹腔を露出させます。膀胱および尿生殖管（UGT）の位置を確認した後、脂肪や他の臓器を優しく脇に寄せ、泌尿器組織を露出させます。次に、ピンセットを用いて、尿道付近の精管の基部を掴み、血管を切り離します。もう一方の管を除去した後、ピンセットで膀胱を注意深く保持して持ち上げながら、同時にハサミを用いて、腹側前立腺の下方および膀胱基部から約1 cm下の尿道を切断します。採取したUGTを、約5〜10 mLのPBSを含む60〜100 mmのペトリ皿に移し、皿を解剖顕微鏡の下に置きます。次に、両手に精密ピンセットを1本ずつ持ち、鉛筆のように保持します。腕を安定させるため、前腕を顕微鏡の両側のベンチトップに置きます。ピンセットを用いて、膀胱が上を向き、尿道が下を向き、精嚢が膀胱の両側に位置するようにUGTを配置します。一方の鉗子で尿道を把持し、もう一方の鉗子を用いて、前立腺組織を除去しないように注意しながら脂肪を慎重に剥離します。すべての脂肪を除去した後、前立腺の2つの腹側葉の間の結合組織を裂いて、それらを分離します。次に、一方の腹側葉の先端近くを1組の鉗子で保持し、尿道にできるだけ近い部位で葉の基部を把持します。次に、もう一方のピンセットを移動させて尿道を固定し、しっかりとした滑らかな動作で葉を血管から引き離します。尿道に前立腺組織が残っていないことを確認してください。その後、次の実験ステップに従って、葉を適切な培地に入れます。同様の手順でもう一方の腹側葉を単離した後、ピンセットを用いて前葉のいずれかを精嚢から慎重に引き離します。このとき、精嚢を穿刺しないように注意してください。葉が精嚢から独立したら、先ほど腹側葉で行った方法と同様に切除します。2つ目の前葉を単離した後、残りのUGTを反転させて背側前立腺が見えるようにし、ピンセットを用いて2つの背側外側葉の間、および葉と精嚢の後端部の間の結合組織を切り離します。次に、先ほど示した方法で、個々の背外側葉を取り除きます。去勢を行うには、まず麻酔をかけたマウスを清潔で滅菌された表面に仰向けに置き、足指を挟んで適切な鎮静レベルにあること

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マウス泌尿生殖器系からの前立腺の抽出:雄マウスの他の泌尿器系および生殖器系器官から前立腺を分離する技術

このビデオでは、前立腺がん細胞の前立腺内注射をマウスモデルに投与する手順を実演します。同所性マウスモデルは、非侵襲的で臨床的に関連性のある環境で、疾患の原因と治療療法に対する反応を研究するために使用できます。...

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ヒト前立腺癌転移の同所マウスモデル

前立腺癌は、米国で癌関連の死亡原因として2番目に多いものです。同所性がんモデルは、前立腺がんの生物学を理解し、治療レジメンの有効性を評価するための有用なアプローチを提供します。このプロトコルでは、同所性前立腺がんマウスモデルを確立するために必要な詳細な手順について説明します。...

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腎構造の組織設計は、臓器不足や透析の有害な影響のためのソリューションを提供します。ここでは、マイクロ プロトコルについて述べるマウス腎臓皮質延髄セグメントの分離を解剖。これらのセグメントは、腎オルガノイドを形成、細胞スキャフォールド...

腎組織のプライマリ セグメントと新規スキャフォールド フリー構造技術と定款の

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遺伝子改変マウスは、前立腺癌のメカニズムを調査するための有用なモデルです。識別とマウス泌尿生殖器から前立腺の丸い突出部を解剖、組織学に基づく区別と分離および下流解析の回転楕円体として体外主な前立腺細胞文化プロトコルをご紹介します。...

培養 3 D 回転楕円体モデルでのマウス前立腺の葉の解剖組織学的特性及び

前立腺腫瘍解剖に焦点を当て、マウス前立腺癌モデルの壊死および解剖の方法を示す。マウス前立腺腫瘍オルガノイドの生成のためのステップバイステッププロトコルも提示される。...

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この原稿では、生存げっ歯類の精巣摘出術と卵巣摘出術を迅速に行うための一貫した方法について説明しています。...

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学ぶマウス前立腺マイクロ解剖と外科的去勢の手法。個々の前立腺腺を分離し、ホルモン変化の影響を詳細に観察できます。前立腺がんや去勢抵抗性の研究に応用可能です。

マウス前立腺マイクロ解剖と外科的去勢

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