Name: 後根神経節ニューロンのアライメントや髄鞘形成を強化するためのアプローチ (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-24T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 48 s
Description: 学ぶ、ラット後根神経節ニューロンの軸索アライメントと髄鞘形成を強化する静的プレストレッチ培養システムのプロトコル。この手法は神経組織工学における神経再生研究に有用です。

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著者らは、PDMS基板の製造に彼の援助のためのエリック・バスコ、博士Shiyong王有益な提案とDRG分離の訓練のためのミシガン大学の博士マリーナ・マタの研究室で、博士マークTuszynski博士に感謝したいと思いますUCサンディエゴ校。W.マリーカンパーナ有益な提案とSC分離のためのプロトコルのために。この研究は、国立科学財団（CBET 0941055とCBET 1510895）、国立衛生研究所（R21CA176854、R01GM089866、およびR01EB014986）によって部分的にサポートされていました。

細胞の単離のためのすべての手順は、ミシガン州立大学の施設内動物管理使用委員会によって承認されました。 前延伸異方性表面の調製<ol><li>塩基及び硬化剤の1液及び組織培養皿（直径12cm）中に混合物を注ぐ：10を混合します。 4900 mgのベースと合計架橋混合物のための490 mgの硬化剤を使用してください。 </li><li>気泡を除去するために20分間真空下でゲル混合物を保管してください。 </li><li> 60℃で一晩硬化のためにオーブンでゲル混合物を置きます。 </li><li> PDMS膜が硬化した後、165ミリトルで3分間及びO 2の65 SCCMフローのプラズマ洗浄/エッチングシステムを使用して酸素プラズマを用いて表面を処理します。 </li><li>皿から長方形のメンブレン（5×3.5センチメートル）の一部をカットし、酸素処理されている側認識しながら、必ず酸素処理された面を上に、延伸フレームに固定されていることを確認。上のフレームを配置<html>ステージをストレッチし、均等に、それは10％の伸び率に達するまでステージ上のノブを回してストレッチ（またはいくつかの他の予め定められたストレッチを、伸びが直接、延伸段階から読み取ることができます）長軸9に。フレームのネジを締めて、ストレッチを修正しました。 </li><li>ステージからフレームを削除します。膜表面が乾燥し、ほこりのないことを確認し、その後、チャンバーの粘着面が膜に強固に取り付けることができるようにメンブレン上にシリコーン室を配置します。 注：シリコーン室は、PDMS膜上の細胞培地を保持するための十分を提供します。装置の設計は、 図1に示されています。 </li><li> 10分間UVで表面を滅菌します。 </li><li>追加1 mlのポリ-L-リジンプラズマ処理の6時間以内にチャンバー内PDMS表面に（PLL）（リン酸緩衝生理食塩水0.01％）、および37℃で2時間インキュベートDRGニューロンを播種する前に。これは、細胞接着を増強します。 </li></ol>DRGのル &quot;&gt; 2。アイソレーション<ol><li> DRGニューロンのための標準的な増殖培地を準備します。 </li><li>分離前に、分離装置とフィルタ試薬をオートクレーブ。 6ウェルプレートの1ウェル中に分離緩衝液5mlを追加し、氷上にプレートを置きます。 0.05％トリプシン-EDTA（1mg / ml）の9ミリリットルにコラゲナーゼA（500 U / ml）を1ミリリットルを追加することにより、解離培地10mlを用意し、氷上で0.22μmフィルターと場所とのソリューションをフィルタリングします。 </li><li>単離のために7日間の齢のSprague-Dawleyラット - 10 5〜12を使用してください。 75％イソプロパノールで子犬をスプレーし、断頭により犠牲に。 </li><li>背中から脊髄を覆う皮膚を切り取ると、背骨の周りの余分な組織を除去します。上の外科手術用のスポットライトが付いている外科手術用ルーペの下では、首から最初の切開を行い、その後、ハサミで両側の背骨に沿ってカット。仔の身体から背骨を外し、過剰な筋肉を取り除きます。その後、経度に沿って切断するはさみを使用して脊椎および使用ピンセットのG軸は完全に脊椎を開いて滅菌15mlチューブに分離緩衝液でのDRGを転送するための大きな開口部を作成するために、ピペットから脊髄cord.Removeに先端を抽出します。 </li><li>ピンセットの罰金ペアを使用して、骨のポケットから神経節を除去し、約10収集 - 両側から16 DRGを。神経根をトリムし、氷冷分離バッファに神経節を移します。 </li><li>滅菌15ミリリットルチューブに分離バッファでのDRGを転送するための大きな開口を作成するために、ピペットからヒントを削除します。化学解離した後、5分間900×gで4℃で遠心神経節を。 </li><li>組織は、チューブの底に沈殿し、そっと上に単離緩衝液を除去し、チューブに解離培地10mlを追加してみましょう。 </li><li> 10分 - チューブごと5を振とうしながら1時間、37℃の水浴中で解離培地中で解剖した組織をインキュベートします。 </li><li>後の5分間900×gで4℃での化学的解離、遠心神経節。 </li><li>上清を除去し、10ミリリットルの標準的な成長培地、ボルテックスでペレットを再懸濁。 </li><li>再び2.9節に示されているように解離した細胞を遠心します。 </li><li>上清を除去し、標準的な増殖培地と渦の12ミリリットル中にペレットを再懸濁します。 </li></ol>前延伸表面上のDRGの3文化<ol><li> 、細胞を播種チャンバーからPLLソリューションを除去し、滅菌水と空気乾燥でPDMS表面を洗浄する前に。 </li><li> 2分の残骸がチューブの底に沈殿することを可能にするために - 細胞を再懸濁した後、1用のサスペンションセットができます。各ストレッチチャンバ内に細胞懸濁液1.5 mlを加え、5％CO 2で37℃でインキュベートします。 </li><li> 10μlの（または15μl）をフルオロ-2-デオキシウリジンおよびウリジン（FDU-U）の株式solutiの混合物を追加し、in vitroで 1日（DIV）で、グリア細胞を排除するために、各ウェルに（ 材料の表を参照してください）に。 7時間後、新鮮な標準的な増殖培地でこの培地を交換し、5％CO 2、37℃のインキュベーター中でプレ延伸培養装置を配置します。 </li><li>細胞培養期間中（2から3週間）、新鮮な培地で半分使用済み培地を交換し、2日毎に培地を変更します。注：2週間の延伸、未延伸面に培養した後、精製されたSCがチャンバに追加され、別の週（ステップ4.7）培養しました。 </li></ol> 4.事前延伸表面上のDRGニューロンとシュワン細胞（SCS）の共培養<ol><li>博士カンパーナのグループ以前に15で説明したようにのSCを分離します。 <ol><li>簡単に言えば、1日齢の子犬からのSCを分離します。収集し、機械的に坐骨神経化学（トリプシンEDTAおよびコラゲナーゼA）の両方と（18ゲージの針/ 10ミリリットルの注射器）15を解離。 </li><li>ポリ-D-リジン（PDL）の共同に解離細胞をシード5％CO 2で37℃でT25フラスコと文化をated。 5日目に、抗なた1.1抗体及びウサギ補体を用いて抗体の選択を介して細胞を精製し、流路2に精製された細胞を継代培養 - ダルベッコ改変イーグル培地（DMEM）、10％ウシ胎児血清（FBS）を含む4.培養培地、1％ペニシリン/ストレプトマイシン（ペン/連鎖球菌）、21 / mlのウシ下垂体は、（BPE）を抽出し、4μMフォルスコリン。 </li></ol></li><li> SCからの培養培地を除去し、そしてフラスコに5ミリリットル0.05％トリプシン-EDTAを追加します。 3分- 2、5％CO 2にて37℃で細胞をインキュベートします。 </li><li>彼らはフラスコから持ち上げる場合には、培地の5ミリリットルを追加し、フラスコ内の細胞と混合見るために10倍の対物レンズを用いて光学顕微鏡下で細胞を確認してください。 </li><li> 200×gで15ミリリットルの遠心管と遠心分離機に細胞懸濁液を追加し、20℃で5分間。 </li><li>上清を除去し、7ミリリットル標準DRG成長MEDにペレットを再懸濁IA。 </li><li> 0.5 mlマイクロチューブに10μlの細胞懸濁液を取り、トリパンブルーを10μlと混合し、次いで10×対物レンズを用いて光学顕微鏡下で血球計数器を用いて細胞数をカウントします。 DRGの増殖培地を添加することによって1ml当たり5,000細胞の細胞懸濁液を希釈します。 </li><li>延伸室でDRG培養物から培地の0.5ミリリットルを削除し、DRG培養物にSC懸濁液0.5ミリリットルを追加します。 </li><li>文化DRGのための新たな標準的な増殖培地で半分使用済み培地を交換することにより、37℃で1週間の細胞および5％CO 2を変更し、メディアごとに2日。 1週間共培養した後、免疫組織化学10で細胞を処理します。 </li></ol>

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</ol>

著者には開示すべき利益相反はありません。

前延伸表面に軸索アライメントを誘導するために、2つの重要なステップがあります：1）PDMS膜は、均一な厚さのフラットでなければなりません。及び2）グリア細胞をDRGから削除する必要があります。 PDMSと架橋剤を混合し、オーブンで硬化させた後、架橋PDMSゲルは平らな作業台の上に保持し、任意の傾きを避けるために慎重に取り扱われるべきです。プラズマ処理後（細胞接着に必要な）表面の親水性は経時的に減衰するため、PDMS膜の酸素プラズマ処理は、PLLコーティングによって6時間以内に従うべきです。プラズマ処理は、膜の一方の側に印加されるので、注意がプラズマ処理された表面への細胞のために上向きにされるべきである、すなわち、フレーム上に配置され、正しい側を確実にするために皿からPDMSを剥離した後に注意しなければなりませんに接続します。 DRGは脊柱と一緒に揃え骨ポケットの内側に配置されています。椎骨の色は、白ですので、若い仔は、椎骨からのDRGを区別することは困難です。この場合には、スポット光に近い背骨を配置することが重要です。骨は白と不透明のまま光の下では、DRGを透明にします。 pHは...

神経損傷では、近位および遠位の神経断端はしばしば病変部位1-2に神経繊維束の直接の再編が防止されます。通常、軸索路は、接続の複雑なネットワークを形成する軸索の高度に秩序と整列束で構成されています。しかし、神経再生は不十分編成軸索整列3-4による無秩序なプロセスです。したがって、損傷部位を埋める軸索再生の十分な数を生成するためには、よく組織軸索整列を誘導することが必要です。さらに、脱髄は、損傷部位でのミエリン形成細胞の死による神経損傷を伴います。脱髄が強く軸索の生存導電容量を損なうので、脱髄をターゲットまたは再ミエリン化を促進する治療は、神経損傷5後の機能回復のために重要です。したがって、このプロトコルの目的は、これらの2つの問題に対処する工学的手法を説明することです神経再生の。 材料の物理的又は機械的性質に、異なる軸に沿って測定したとき、差として定義される面の異方性は、セルの配置、増殖、および遊走6-7に影響を与えるために適用されています。地形に加えて、異方性を誘導する他の方法があります。以前、我々は、ポリジメチルシロキサン（PDMS）膜の機械的静的プレストレッチによって誘発される表面異方性を調べました。 「小変形超大規模に課さ」の理論は、細胞が延伸方向に感知有効剛性は、垂直方向と異なり、有効剛性の違いは、表面異方性8によるものであること。予想しました予備延伸PDMS膜上で培養した間葉系幹細胞（MSC）は、積極的に表面を引っ張ることにより、結果として異方性を感知する事前延伸方向9に整列することができます。同様に、異方性表面AR機械的な事前延伸表面からイジングすると、アライメントに影響を与えるだけでなく、後根神経節（DRG）の成長と髄鞘形成は、10を軸索。ここでは、軸索再生10を強化するために、静的な事前延伸PDMS基板上の表面異方性を誘導するためのプロトコルを提供します。 軸索アライメント、目的のパターンを持つ地形的特徴を引き出すために、整列した繊維およびチャネル6,11-12を通じて接触ガイダンスを提供することが報告、軸索アライメント11,13を容易にするために実証されました。しかしながら、そのような繊維、チャネルおよびパターニングなどの地形的特徴を介して軸索整列を誘導するための技術が報告され、長く及び軸索の厚さを増加させることができませんでした。これとは対照的に、ストレッチング緩やかな機械的ストレッチ14の大きさに伴って増加長く、太く軸索との延伸方向における軸索アライメントにつながりました。しかしながら、 インビボでの電力供給のモータ装置を搭載することはありません実現可能。対照的に、静的な事前延伸誘導異方性は、より複雑で、より容易にインビボ用途のための将来の足場の設計に組み込むことができます。 このプロトコルでは、静的な事前延伸細胞培養系は、トポロジー特徴なし表面異方性を誘導するために使用されます。膜は、フレームに固定され、所定の伸びの大きさは、延伸ステージに適用されるところの事前延伸培養系は、PDMS膜、伸縮フレーム延伸ステージで構成されています。最大21日間の事前延伸表面上で培養新たに単離したDRGニューロンは軸索のアライメントおよび厚さのために監視されています。続いて、シュワン細胞（SCS）整列軸索と共​​培養は、髄鞘形成のために監視されます。プレストレッチ誘発される表面異方性を組み込むことによって、私たちはそれぞれ、MSCおよびDRGニューロン9-10のセルアライメント分化と軸索配向成長を促進することができました。

<table><tbody><tr><td>Neurobasal Medium 1x</td><td>GibcoBRL</td><td>21103-049</td><td></td></tr><tr><td>B27 Supplement 50x</td><td>GibcoBRL</td><td>17504-044</td><td></td></tr><tr><td>Glutamax-I 100x</td><td>GibcoBRL</td><td>35050-061</td><td></td></tr><tr><td>Albumax-I</td><td>GibcoBRL</td><td>11020-021</td><td></td></tr><tr><td>Nerve Growth Factor-7S</td><td>Invitrogen</td><td>13290-010</td><td></td></tr><tr><td>ペニシリン-ストレプトマイシン</td><td>GibcoBRL</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>0.05% トリプシン-EDTA/1 mM EDTA</td><td>GibcoBRL</td><td>25300-054</td><td></td></tr><tr><td>ポリ-L-リジン</td><td>トレビゲン</td><td><a href="http://www.trevigen.com/item/2/7/64/220/Cultrex_PolyLLysine/">3438-100-01</a></td><td></td></tr><tr><td>Poly-D-リジン</td><td>Σ</td><td>p-6407</td><td></td></tr><tr><td>Fluoro-2 デオキシウリジン</td><td>Σ</td><td>F0503</td><td></td></tr><tr><td>ウリジン</td><td>シグマ</td><td>U3003</td><td></td></tr><tr><td>ハンク'S Balanced Salt Solution (HBSS)</td><td>Invitrogen</td><td>14170-112</td><td>Isolation Buffer</td></tr><tr><td>Type I Collagenase</td><td>Worthington</td><td>LS004196</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Gibco</td><td>11885</td><td></td></tr><tr><td>Heat inactivated Fetal Bovine Serum</td><td>Hyclone</td><td>SH30080.03</td><td></td></tr><tr><td>BPE</td><td>Clonetics</td><td>CC-4009</td><td></td></tr><tr><td>Forskolin</td><td>Calbiochem</td><td>344270</td><td></td></tr><tr><td>シリコーンチャンバー</td><td>Greiner bio-one</td><td>FlexiPERM ConA</td><td></td></tr><tr><td>プラズマ洗浄/エッチングシステム</td><td>マーチインスツルメンツ</td><td>PX-250</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Thy 1.1 抗体</td><td>Sigma- Aldrich</td><td>M7898</td><td></td></tr><tr><td>Rabbit Complement</td><td>Sigma- Aldrich</td><td>S-7764</td><td></td></tr><tr><td>標準増殖培地</td><td></td><td></td><td>500 mlのNeurobasal Medium 1xの場合、10 mlのB-27 50x、5 mlのGlutamax-I 100x、2.5 mlのペニシリン/ストレプトマイシン(ペン/連鎖球菌)、1 mlのAlbumax-I、および1 μを追加します。NGFのl - 7S(50 &mu;g/ml)。</td></tr><tr><td>FDUウリジンストック溶液</td><td></td><td></td><td>FDU 100 mgを10 mlのddH2O(10 mg / ml)に入れ、フード内でフィルターし、500 &muに分割します。166.7 mlのddH2O(33 mg / ml)に-20 &�c.ウリジン5gで保存し、フードでフィルターし、200 &muに分割します。lアリコートと-20°Cで保存します。
61.5 &mu;FDU(10 mg / ml)および20.5 &mu;ウリジン(33 mg / ml)のl、および4,918 &mu;ddH2Oのlを最終ストック濃度まで高めた後、1mlアリコートに分割して-20°Cで保存します。</td></tr></tbody></table>

後根神経節ニューロンのアライメントや髄鞘形成を強化するためのアプローチ

An Approach to Enhance Alignment and Myelination of Dorsal Root Ganglion Neurons

軸索の再生は、主に組織化されていない軸索の整列による混沌としたプロセスです。したがって、十分な数の再生された軸索が病変部位を橋渡しするためには、適切に組織化された軸索の整列が必要です。神経損傷後の脱髄は、生存している軸索の伝導能力を強く損なうため、再生された神経がうまく機能するためには、再髄鞘形成が重要です。以前に、間葉系幹細胞(MSC)が伸張前の表面に整列すると、細胞が垂直方向よりも伸張方向の大きな有効剛性を感知できるため、異方性を誘発することを示しました。また、機械的なプレストレッチ表面から生じる異方性表面が、軸索のアライメント、成長、髄鞘形成に同様に影響を与えることも示しました。ここでは、事前に伸ばされた異方性表面を調製するための詳細なプロトコル、事前に伸ばされた表面上の後根神経節(DRG)ニューロンの単離と培養、およびDRGニューロンとシュワン細胞(SC)との共培養の髄鞘形成挙動を示します。

予備延伸細胞培養系は、DRG軸索アラインメント10を推進します。 DRGニューロンは、12日間プレ延伸、未延伸表面上で培養しました。軸索は、それらの位置合わせを実証するために、β-IIIチューブリンを染色した。 図2は、培養の12日後に前延伸、未延伸PDMS基板上の軸索の向きを比較します。彼らは、ランダムな配向を示し、未延伸PDMS基板上の相互接続ネットワークを形成し、一方、DRG軸索は、延伸方向に平行に整列されます。 軸索整列を誘導することに加えて、プレストレッチ誘導異方性は、軸索の束形成を増強しました。接続された軸索のネットワークとは異なって、延伸表面に形成され、軸索の束に整列軸索は、未延伸の表面に観察しました。前延伸表面上のこれらの束状の束は、神経組織のTRに似ていました生体内での働きをする。 図3は、培養の21日後に前延伸、未延伸表面上の...

このプロトコルは、ラットから分離された後根神経節(DRG)ニューロンの単離と、軸索の整列を強化するための静的なプレストレッチ細胞培養システム上でのDRGニューロンの培養、そしてその後のシュワン細胞(SC)の共培養による髄鞘形成を促進することを説明しています。

Axon regeneration is a chaotic process due largely to unorganized axon alignment. Therefore, in order for a sufficient number of regenerated axons to ...

本プロトコルの全体的な目的は、静的で事前に伸展させた細胞培養システムを用いて、後根神経節ニューロンの軸索配向と髄鞘化を促進することです。この手法は、軸索の配向や太さの成長など、神経組織工学分野における主要な課題の解決に寄与します。本技法の主な利点は、この事前伸展法が軸索の配向を高めるだけでなく、髄鞘化をも促進することにあります。この手順を開始するには、ベースと硬化剤の混合物を組織培養ディッシュに注ぎます。気泡を取り除くため、ゲル混合物を20分間真空状態で保持します。その後、ゲル混合物を60 °Cのオーブンに入れ、一晩硬化させます。PDMSメンブレンの硬化後、プラズマ洗浄・エッチングシステムを用いて、表面を3分間酸素プラズマ処理します。その後、ディッシュから長方形のメンブレンを切り出します。酸素処理した面を上に向け、ストレッチングフレームに固定してください。次に、フレームを伸展ステージ上に置き、ステージのノブを回して、長軸方向に10%の伸長に達するまで均一に伸展させます。続いて、フレームのネジを締め付けて、伸展状態を固定します。その後、フレームをステージから取り出します。シリコンチャンバーをメンブレン上に配置する前に、メンブレン表面が乾燥しており、ほこりが付着していないことを確認してください。チャンバーの粘着面をメンブレンに密着させます。その後、UVを用いて表面を10分間滅菌します。その後、プラズマ処理から6時間以内に、チャンバー内のPDMS表面に1 mLのPLLを添加します。次に、細胞の接着性を高めるため、DRGニューロンを播種する前に37 °Cで2時間インキュベートします。このステップで、DRGニューロン用の標準的な増殖培地を調製します。分離を行う前に、分離器具とフィルター試薬をオートクレーブで滅菌します。6ウェルプレートの1つのウェルに分離バッファーを5 mL加え、プレートを氷上に置きます。次に、0.05% Trypsin-EDTA 9 mLにコラゲナーゼAを1 mL加えて、解離培地を10 mL調製します。溶液を0.22 µmのフィルターでろ過し、氷上に置きます。その後、5〜7日齢のSDラット10〜12匹を犠牲にし、各個体の背中から脊髄上の皮膚を切除します。脊髄周囲の余分な組織を取り除きます。手術用拡大鏡下で、まず頸部から最初の切開を行い、次にハサミを用いて脊髄の両側を沿って切開します。幼鼠の体から脊椎を切り離し、余分な筋肉を除去します。その後、脊椎の長軸に沿って切開し、ピンセットで脊椎を完全に開いて脊髄を抽出します。次に、骨のポケットから神経節を取り出します。神経根を切り取り、神経節を氷冷した分離バッファーに移します。両側から約10〜16個のDRGを回収します。残りの幼マウスについても、同様に解剖手順を繰り返します。次に、分離バッファーと共にDRGを滅

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神経科学

ここでは、後根神経節の培養感覚ニューロンについてはコンパートメント室を準備し、維持するテクニックについて説明します。...

コンパートメント文化の後根神経節ニューロンの準備とメンテナンス

培養大人の背根神経節ニューロンの軸索再生の遺伝学的研究

ビデオは、後根神経節(DRG)ニューロンとシュワン細胞との共培養を示しています。DRGニューロンは、まず、整列した軸索の成長のために、あらかじめ引き伸ばされた膜上で成長します。次に、軸索に付着するシュワン細胞が導入され、軸索を絶縁し、神経細胞の生存と機能を促進します。...

プレストレッチメンブレン上でのシュワン細胞とDRGニューロンの共培養

このビデオは、免疫パニングによって後根神経節からニューロン培養を濃縮し、それによって神経学的研究のためのそれらの純度と有用性を向上させるためのプロトコルを示しています。...

イムノパニングによる背根神経節のニューロン濃縮

このビデオは、後根神経節外植片とシュワン細胞の共培養モデルを示しています。共培養条件では、アスコルビン酸はシュワン細胞の髄鞘形成型への分化を促進します。ミエリン化シュワン細胞は、軸索を複数回包み込み、神経機能に不可欠なミエリン鞘を形成します。...

ニューロン髄鞘形成のための背根神経節外植片とシュワン細胞の共培養

出典: Li, Q. et al.ほ乳類の軸索再生の研究 成体マウス後根神経節のin vivoエレクトロポレーションJ. Vis.

感覚軸索再生を促進するマウス後根核のエレクトロポレーション媒介トランスフェクション

後根神経節（DRG）、末梢神経系の感覚ニューロンを含む構造である。解離した場合、それらは損傷部位でのインビボ環境を模倣し、in vitroでの神経再生及び髄鞘形成を研究するための貴重なモデルを提供し、SC-ような脂肪由来幹細胞（ASC）と共培養することができる。...

根神経節ニューロンと差別化された脂肪由来幹細胞を背：<em&gt;インビトロ</em末梢神経再生を研究するために&gt;共培養モデル

このプロトコルは、感覚軸索再生を研究するためのモデルとして、ウイルスベクターによる後根神経節(DRG)注射の使用と成体ラットの同時後根挫傷を示しています。このモデルは、感覚軸索再生を促進するための遺伝子治療の使用を調査するのに適しています。...

後根神経節インジェクションおよび後根感覚軸索再生のためのモデルとして傷害をつぶします

シングルファイバー記録は、中枢および末梢神経系に適用可能な効果的な電気生理学的手法である。付着した坐骨神経を持つ無傷のDRGの調製と共に、伝導障害のメカニズムが調べられる。両方のプロトコルは、末梢神経系と痛みとの関係の理解を向上させます.

インビボシングルファイバー記録と無傷の後部根神経を用いて伝導障害のメカニズムを調べる

後根神経節とシュワン細胞の共培養系では、末梢神経系の髄鞘形成を研究することができます。このモデルは、末梢髄鞘形成を観察および定量化し、ミエリン鞘に対する目的の化合物の影響を研究するための実験的機会を提供します。...

ラット背根神経節外植片とシュワン細胞の共培養における末梢軸索のin vitro髄鞘形成

このプロトコルでは、マウス背根神経節 (DRG)...

背根神経節培養の In Vitro モデルの確立:がん-神経クロストーク研究のための補完的アプローチ

学ぶ、ラット後根神経節ニューロンの軸索アライメントと髄鞘形成を強化する静的プレストレッチ培養システムのプロトコル。この手法は神経組織工学における神経再生研究に有用です。

後根神経節ニューロンのアライメントや髄鞘形成を強化するためのアプローチ

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