2016年7月13日
腸の粘膜内層に沿って上皮細胞の正確な同定と位置が異なる細胞系譜を定義することが不可欠です。腸組織の適切な画像化は、最大解像度でのタンパク質発現パターンの同定のために重要です。本研究では、マウスの腸組織を処理するための最適な方法および条件を線引きすることを目指しています。
この技術の全体的な目標は、マウス腸組織の長い切片を効率的に処理し、その長さに沿って組織学的染色を均一にすることです。腸切片を得るためには、腸の全長に沿った染色にばらつきがあり得る。私は標準的なスイスのローリング技術を利用してみましたが、腸組織が非常に硬く、開きにくいことがわかりました。
いくつかの実験で、私は毒性の少ない化学物質を使用し、腸組織のスイスのローリングをはるかに改善できる迅速な固定方法を思いつきました。修飾された固定剤は、他の厚い組織を迅速に固定するために使用できます。準備として、テキストプロトコルに従って試験動物を安楽死させ、手術環境を準備します。
まず、解剖鉗子とハサミを使用して、マウスのサイズに応じて胸郭の約1〜2センチ下の腹部の中央に横方向の切開を行います。次に、皮膚をそっと引き離して切り取り、腹部の筋肉を露出させます。次に、腸をつかんだり引っ張ったりせずに、筋肉をつかんで引き上げます。
次に、腹筋を慎重に切開し、慎重に切り込みを入れて腸を露出させます。次に、結腸を特定し、直腸と結合する遠位端まで追跡します。次に、はさみを使用して、結腸をできるだけ肛門の開口部の近くで横断します。
次に、胃が小腸と結合する場所を見つけ、はさみを使用して胃から腸を約1センチ切り取ります。次に、遊離小腸と結腸の全長をPBSを含むきれいなシャーレに移します。次に、結腸の遠位端を固定し、結腸の全長をゆっくりと解き、付着した腸間膜組織を取り除きます。
次に、盲腸を特定し、盲腸が結腸に結合する腸を横断して、結腸を分離します。同様に、付着した腸間膜結合組織と脂肪組織から小腸の残りの部分を解きほぐします。次に、盲腸と結合するところで小腸を横断します。
その後、盲腸を取り除き、廃棄することができます。次に、10ミリリットルの注射器に改変されたブアンの固定剤を充填し、強制針を取り付けます。針を腸の前方開口部に約半センチメートル挿入します。
強制針をセグメント内にしっかりと固定しながら、固定剤で組織内容物をゆっくりと洗い流します。圧力がかかりすぎるとセグメントが破裂するので注意してください。小腸が長すぎて扱えないように見える場合は、最初に小腸を3つの等しいセグメントに切り、各セグメントを別々にフラッシュすることをお勧めします。
固定すると、腸の部分の色が不透明になります。次に、はさみを使用して、セグメントを腸間膜線に沿って縦方向に切断し、次に鉗子で開いたままPBSの皿でセグメントを短時間すすぎます。次に、小腸を近位、中部、遠位の3つの等しいセグメントに切り取り、これらは十二指腸、空腸、回腸にほぼ対応します。
巨視的には、各セクションに識別できる特徴はありません。各セグメントの遠位端から近位を識別するためのマークを必ず作成してください。次に、ルーメンナル側を上に向けてセグメントをシャーレの蓋に置きます。
結腸セグメントで、近位端でその幅を横切る隆起によって内腔側を特定します。中央部と遠位部には、縦方向に走る斑入りがいくつかあります。小腸では、絨毛をマークする粗い表面で内腔側を特定します。
顕微鏡検査では、絨毛は各セグメントの近位領域で最も長く、結腸陰窩は近位領域で最も短く、中央部で最も高いことが示されています。コロンのスイスローリングを進めます。結腸を平らに開き、内腔側を上にして、鉗子で近位端からペトリ皿の端に向かって引っ張ります。
内腔側を上にして、近位端を鉗子で保持し、近位端の端をつまようじで包み、包んだ端をつまようじにしっかりとつまみます。次に、つまようじの周りでコロンをゆっくりと転がして、スイスロールを形成します。結腸全体の長さが巻き上げられたら、別の鉗子を使用して、ロールを組織処理カセットに慎重にスライドさせます。
次に、カセットを10%緩衝ホルマリンに移し、室温で一晩インキュベートします。小腸の一部をスイスロールするには、内腔側を上にして開き、鉗子で近位端から皿の端に向かって引っ張ります。次に、コロンで示されているのと同じ手法を使用して、スイスロールを作成し、ホルマリンで固定します。
上記の方法を用いて、C57 black 6マウスの大腸のHND染色により、包括的な組織学的評価のための結腸の全部分が明らかになりました。次に、この調製物を、周辺腸管でのみ活性を持つLGR5プロモーターによって駆動されるEGFPを発現するマウスに用いました。このEGFP導入遺伝子の浸透度は約5〜10%しかありませんが、関心領域は簡単に見つけることができます。
EGFP LGR5発現を有する同じマウスを用いて、KLF5およびKI67を染色した。まず、LGR5の発現が正常な対照マウスを研究しました。EGFP陽性細胞は青色矢印で、EGFP陰性細胞は白色矢印でマークされています。
次に、同じ導入遺伝子をKLF5ノックアウトマウスで発現させました。KLF5とKI67の共染色は、EGFP陽性幹細胞には見られませんが、EGFP陰性陰茎細胞には残っています。明らかに、マルチフルオロフォース染色の調製物の品質は非常に良好です。
一度習得すると、この技術は、小腸と結腸の両方を収集している場合、マウスあたり約15分で行うことができます。ブアンの固定剤の使用は、目に非常に危険を及ぼす可能性があることを忘れないでください。この手順を実行するときは、常に適切な目の保護などの予防措置を講じる必要があります。
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本研究では、均一な組織学的染色を実現するためのマウス腸管組織の効率的な処理に焦点を当てています。ここでは、イメージングおよび解析に向けた組織サンプルの品質を向上させるための、適切な固定法の重要性について解説します。
腸管組織を効率的に処理することで、臓器全体の長さにわたって一貫した組織学的評価が可能となり、炎症や腫瘍形成の定量的な分析をサポートします。改良されたスイロール法(Swiss-rolling technique)は、組織形態の保存性を高め、信頼性の高い免疫組織化学的および免疫蛍光的な検出を容易にします。この手法は、サンプル調製におけるばらつきを抑えることで、前臨床モデルにおける予測の信頼性を向上させます。
この手法は、組織学的解析に向けた組織処理を改善することで創薬生物学のワークフローに組み込まれ、前臨床モデルにおける信頼性の高い化合物評価を通じてリード化合物の同定を支援します。