Name: シンプルなフローサイトメトリー法は、全血における単球亜集団のためのグルコース取り込みおよびグルコーストランスポーターの発現を測定するために (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-12T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 28 s
Description: 学ぶフローサイトメトリー法による単球亜集団のグルコース取り込みとグルコーストランスポーター発現の測定。全血を用いた迅速な免疫細胞代謝解析手法で、HIVや免疫学研究に応用可能です。

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この研究は、サポートされている賞番号AI027757の下エイズ研究のためのワシントン大学のセンター（CFAR）、NIH資 ​​金提供プログラムからHIVや肝炎ウイルス学研究（ACH 2）オーストラリアセンター、2010発達グラント（CNIHR）によって賄われていました以下のNIH研究所およびセンター（NIAID、NCI、NIMH、NIDA、NICHD、NHLBI、NIA）によります。 CSPはCNIHRとACH 2助成金の受取人です。 SMCは、オーストラリア国立保健医療研究評議会（NHMRC）主な研究フェローシップの受領者です。作者は感謝しバーネット研究所によって受信されたビクトリア朝の運用インフラ支援プログラムのこの作業への貢献を認めます。私たちは訓練と技術的なアドバイス、フローサイトメトリーのためのAMREPフローサイトメトリーコアファシリティから下座PaukovicとエヴァOrlowski - オリバーの支援を認めます。私たちは、メディアのコーチングやビデオ撮影の組織のためのアンガス・モーガンに感謝します。私たちの感謝の気持ちジェシーマッソンとジハード・アブドゥルアジーズK. Alzahraniにビデオ撮影時のラボの支援のために。我々は重要な方法論的なアドバイスを提供した医学研究科で博士デビッドSimar、UNSW、オーストラリアの努力に感謝します。 CSPは感謝したいと思い<a href="http://www.nice-consultants.com/">www.nice-consultants.comを</a>グラフィック協議するため。 レビューアの貢献： CSPは、設計と実験を行い、分析し、データを解釈し、プロジェクトを考案し、原稿を書きました。 JJAは、データを解釈し、原稿を書きました。 TRBは、原稿を書きました。 JMMは、データを解釈し、重要な知的な提案を行い、原稿をレビューしました。 SMCは、データを解釈し、重要な知的提案を行い、原稿をレビューしました。

注：HIV感染およびHIV非感染被験者は、メルボルンのアルフレッド病院で感染症のユニットから募集した、VIC、オーストラリア、そして地域社会から、それぞれ。インフォームドコンセントは、全ての参加者から入手した、と研究はアルフレッド病院研究倫理委員会によって承認されました。 単球及び単球亜集団1. GLUT1細胞表面検出<ol><li>クエン酸ACD-B抗凝固剤チューブに血液を収集し、収集の1時間以内に生物学的安全キャビネット内で実験を開始します。 </li><li>ポリプロピレンチューブに血液の100μLを加えます。氷の上で、ピペッティングを穏やかに混合する一方でソリューションを溶解1×2 mlを加え、チューブに（ 材料表を参照してください）。氷上で15分間インキュベートします。 5分間、220×gで遠心分離します。 </li><li>デカントし、約2〜4ミリリットルの洗浄溶液（1×PBS中0.5％BSA）のを添加し、5分間220×gで遠心分離することによって、二回洗います。 </li><li>パイプを使用してください慎重にできるだけ洗浄液の限りを削除します。場所チューブは氷の上に洗浄溶液100μlに再懸濁します。 </li><li> 5μlの抗CD3-PE、5μlの抗CD14-APC、5μlの抗CD16-PECy7、5μlのGLUT1：特定の単球の亜集団は、ステップ1.4で調製した100μlの細胞懸濁液あたりの抗体の以下の容量で細胞を染色同定するために、 -FITCまたはIgG2bの-FITC（アイソタイプコントロールチューブ）。 </li><li>暗所で30分間氷上に置きます。洗浄溶液で2回洗浄します。 1×PBSで行われた0.5％ホルムアルデヒドの200から300μlの修正。 </li><li> FITC（488、530）、PE（488、575）、PECy7（488、780）、APC（633、660）10：以下、励起および発光波長内に24時間以内に4色を検出することが可能なフローサイトメーターで分析します。 </li></ol>単球2.グルコース取り込み<ol><li>ポリプロピレンチューブにステップ1.1で採取した血液のピペットを90μl。 14.60μM2-NBDGワーキング溶液10μlに追加血液90μlの（1.46 mMの最終濃度）と混合するために穏やかにフリック。アルミホイルでチューブを被覆することにより光2- NBDGの露出を制限することが重要です。 </li><li> 15〜30分間、暗所で37℃でインキュベートし、その後直ちに氷上に置きます。氷の上ながら、チューブへの解決策を溶解1X FACSの4ミリリットルを追加します。 4で220×gで遠心分離 5分間°C。 </li><li>洗浄溶液4ml（1×PBS中0.5％BSA）を添加することにより1回洗浄。 4で220×gで遠心分離 5分間°C。デカントし、氷の上の場所。 </li><li>抗体を用いた染色細胞：5μlの抗CD3-PE、5μlの抗CD14-APCおよび5μlの抗CD16-PECy7。混合し、暗所で30分間氷上に置きます。 注：この期間中は、フローサイトメーターは、即時分析のための準備ができていることを確認してください。以下の励起および発光波長内の細胞を買収：2-NBDG（488、530）、PE（488、575）、PECy7（488、780）、APC（633、660）。 </li><li>チューブに氷冷洗浄緩衝液（1×PBS中0.5％BSA）の4ミリリットルを追加します。4で220×gで遠心分離することによって1回洗浄 5分間°C。デカントし、氷古いPBSの200から300μlを添加し、暗所で氷（アルミ箔で覆われた）に保ちます。ステップ2.4​​のように励起および発光波長設定を使用して10分以内にフローサイトメーターで分析します。 </li></ol> 3.データ収集と分析注：フローサイトメトリーデータ分析の知識が仮定されます。 <ol><li>染色されていない個別染色したサンプルを使用して補正を設定し、少なくとも4色の分析が可能なフローサイトメーターを使用して。 注：FITC標識CD4及びCD14を使用して単一の染色はGLUT1及び2-NBDGの補償のために使用することができます。 </li><li>設定し、サンプルを取得する前に、適切なウィンドウにラベルを付けます。単球集団の周りにゲートを描き、中速度でサンプル100,000 300,000イベントを取得します。補償サンプルあたり50,000イベントで十分です。 注：補正前の試料に行ってもよいです標準的な手順に従って取得又は単一細胞解析ソフトウェアで、。 </li><li>適切な場所にデータをエクスポートし、保存します。指定されたように、単一のそのようなFlowJoソフトや他の解析ソフトウェアなどの細胞解析ソフトウェア（ 補足図1）とドラッグ＆ドロップのサンプルを開きます（ 補足図2）。 </li><li>ファイルを開くにはダブルクリックして（ 補足図3）。 図1Aおよび補足図4に示すように、ゲート順に基づいて、単球および側方散乱特性をに円を描く。単球集団をダブルクリックします。 CD3の周りにボックスを確認し、描く-人口（ 補足図4）。 </li><li>ダブルCD3をクリックします-人口を。単球亜集団を観察するには、 &#39;X&#39;軸上のCD14-APCを選択し、CD16-PECy7 &#39;Y&#39;軸上、及び（ 補足図5）に応じてラベルを付けます。 </li><li>明確な存在しない場合には正と負の集団は、特定の単球亜集団におけるGLUT1の発現または2-NBDGの取り込みを測定します。アイソタイプなし2-NBDGの背景（ 補足図6）を引いGLUT1と2-NBDGの平均蛍光強度（MFI）を決定します。 </li><li>ここで定義された集団は、ゲートを設定し、パーセント陽性細胞（ 図3）を決定するためのIgG2b-FITCを使用し、存在します。 注：総CD14 +単球を分析するために、この手順を使用します。 2-NBDGの取り込みは、通常、蛍光のシフトによってマークされているので、データは最高のMFIとヒストグラムで表される強度。 </li></ol>

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著者らは開示するものは何もない。

ここで説明するプロトコルは、全血における単球及び単球亜集団によるグルコーストランスポーターの発現と蛍光グルコースアナログの取り込みを調べるための簡単​​な方法を詳しく説明します。全血中の2-NBDG取り込みを評価することにより、この技術は、 インビボでのものと同様の条件を可能にします。以前の研究では、密度遠心分離17によって、全血から分離した単球で6-NBDGの取り込みを調べました。しかし、この研究は、単球の亜集団を検査せず、全血からの単球の分離は、潜在的に、特定の細胞表面分子19の発現を変化させることができます。重要な安全措置を必要とする放射性グルコースのトレーサーは、グルコース20,21の単球の取り込みを測定するために使用されてきたが、単球は、以前に放射能のこの方法と使用のために分離する必要があります。私たちのプロトコルは、日常バイオセーフティ手順を使用するため、2-NBDGのフローサイトメトリー測定を可能にする、最小限の操作的です生体内条件で模倣単球および単球の亜集団による取り込み。 2-N...

単球は、急速に感染し、炎症1の部位に動員されている人間の自然免疫系の主要な構成要素です。単球の活性化は、病原体による急性の損傷を制限するために重要であり、また、アテローム性動脈硬化症2、癌3、およびHIV 4,5を含むいくつかの慢性疾患の病因の中心です。 休止および活性化単球の代謝は休止単球は、解糖代謝（乳酸へのグルコースの、すなわち 、発酵）を利用した酸化的代謝および活性化単球を利用することで、劇的に異なる6。単球の活性化は、解糖系代謝7増加したグルコース取り込みを可能にするグルコース輸送体の発現を誘導します。単球のグルコーストランスポーター1（GLUT1）は、活性化の間にアップレギュレートさそのような輸送体であり、その発現は、Vにおける前炎症性サイトカインの産生をもたらすことが示されていますITROと肥満マウス8の脂肪組織インチカポジ肉腫関連ヘルペスウイルスによって単球細胞株の感染はGLUT1 9の細胞のアップレギュレーションにつながる、と私たちは最近、慢性HIV感染の間にGLUT1を発現する単球の増加割合が未処理と併用抗レトロウイルス療法で処置した感染の10の間に存在していることを示しました。まとめると、これらの研究は、単球によるグルコース取り込み及び解糖代謝は、多くの炎症性疾患の重要な側面であることを示しています。従って、簡単な方法は、恒常性中単球GLUT1発現およびグルコース取り込みを測定し、炎症性疾患は、研究者の幅広い使用の可能性が高いです。 ヒト単球は、細胞表面マーカーCD14及びCD16 11,12の発現差によって調べることができる3つの別個のサブセットで構成され、不均一です。クラシック単球は、CD14の高いレベルを発現するが、CDを発現しません16（CD14 ++ CD16 - ）、中間の単球は、CD14の高レベルおよびCD16（CD14 ++ CD16 +）の中間レベルを発現し、非古典的単球は、CD14の低レベルとCD16の高レベル（CD14を発現し+ CD16 ++）。 CD16を発現する単球は、CD16に比べCD16 +単球を、と呼ばれる-単球は、高い炎症性サイトカインの発現とをより効果的に存在する抗原13,14能力を持っています。単球の約10％は、炎症15の間に観察されたより高い割合との恒常性の間にCD16を発現します。単球の亜集団は、特定の疾患状態と関連していると、病気や疾患の進行16の有用な生物学的マーカーである可能性があります。 私たちの目標は、PHYに近い条件でのヒト単球と単球亜集団によるグルコーストランスポーターの発現とグルコースの取り込みを測定することができる方法を同定することでしたできるだけsiological条件。これらの方法は、生理学的条件19に比べてタンパク質の発現が変化していることができ、単離された単球を検討しても以前の研究では、単球のグルコース輸送体の発現とグルコースの取り込み17,18を測定し、以前の研究では、ヒト単球亜集団を検討していません。フローサイトメトリーのマルチパラメトリックフローを使用して、我々は全体の未操作の血の中に（CD14およびCD16の発現に基づく）総単球及び単球亜集団によるグルコーストランスポーターの発現と蛍光グルコースアナログ2-NBDGの取り込みを調べるための方法を説明します。

<table><tbody><tr><td>VACUETT チューブ 9 ml ACD-B 抗凝固チューブ</td><td>Greiner Bio-One GmbH</td><td>455094</td><td></td></tr><tr><td>5 ml 滅菌ポリプロピレンチューブ</td><td>BD Biosciences</td><td>352063</td><td></td></tr><tr><td>牛血清からのアルブミン (BSA)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A7906</td><td></td></tr><tr><td>16% ホルムアルデヒド溶液</td><td>電子顕微鏡 Science</td><td>15710</td><td></td></tr><tr><td>BD FACS 溶解液 (10x)</td><td>BDBiosciences</td><td>349202</td><td>BD FACS溶解液1/10を脱イオン水で希釈し、作業濃縮を行います(4°Cで最大1週間保存してください。C)</td></tr><tr><td>抗CD3-PE</td><td>BD Biosciences</td><td>555340</td><td></td></tr><tr><td>抗CD14-APC</td><td>BD Biosciences</td><td>555399</td><td></td></tr><tr><td>抗CD16-PECy7</td><td>BD Biosciences</td><td>557744</td><td></td></tr><tr><td>anti-Glut1-FITC</td><td>R &Dシステム</td><td>ズFAB1418F</td><td></td></tr><tr><td>IgG2b-FITC</td><td>R &D Systems</td><td>IC0041F</td><td></td></tr><tr><td>2-NBDG</td><td>Life technologies</td><td>N13195</td> 5 <td>mg の 2-NBDG を 1 ml の脱イオン水に懸濁して 14.60 mM のストック溶液を作ります (4 °C で最大 6 か月間保持します。2-NBDG濃度を機能させるには、ストックを1x DPBSで1/100に希釈します。ホイルで覆います。(4°Cで最大1週間保管します。C)</td></tr><tr><td>ダルベッコS Phosphate Buffered Saline (1x)</td><td>Life technologies</td><td>14190-144</td><td>洗浄液を作るには、100 ml DPBSあたり0.5 g BSAを追加します(4°Cで最大2週間保存してください。C)</td></tr></tbody></table>

シンプルなフローサイトメトリー法は、全血における単球亜集団のためのグルコース取り込みおよびグルコーストランスポーターの発現を測定するために

A Simple Flow Cytometric Method to Measure Glucose Uptake and Glucose Transporter Expression for Monocyte Subpopulations in Whole Blood

単球は、特定の慢性炎症性疾患に関連する病原体および炎症によって活性化することができる自然免疫細胞です。単球の活性化は、エフェクター機能と増加したグルコース輸送体発現によって達成される解糖代謝への酸化から付随シフトを誘導します。この増加した解糖代謝はまた、訓練を受けた単球の免疫、先天性免疫記憶の形態で観察されます。単球によるグルコーストランスポーターの発現とグルコース取り込みを調べるインビトロプロトコルが記載されているが、いずれも全血マルチパラメトリックフローサイトメトリーによって検討されていません。 （中間体（CD14 ++ CD16 +）および非古典-私たちは、総単球および古典（CD14 ++ CD16）によって全血における蛍光グルコースアナログ2-NBDGの取り込みを測定するためのマルチパラメトリックフローサイトメトリープロトコルを記述しますCD14 + CD16 ++）、単球亜集団。この方法は、恒常性および炎症性疾患の間の総単球及び単球亜集団のためのグルコーストランスポーターの発現及びグルコース取り込みを調べるために使用することができ、容易に血液中の他の白血球および白血球亜集団のためのグルコース取り込みを調べるために改変することができます。

補償は、蛍光波及を防ぐために、個々の蛍光色素のために実行する必要があります。単球は、最初の前方および側方散乱に基づいてゲートすることによって濃縮されます。以前に10を報告したように提示したプロットは、6人以上の参加者からの全血で行われ、少なくとも6つの独立した実験の代表で、図1Aは、CD3以内ゲーティングによるT細胞の細胞散乱及び排除による単球の初期ゲーティング示している- 。人口。単球は、次いで、 図1B及び図1Cに示すように、それぞれ、総単球又は単球亜集団を同定するために、単独で、またはCD16と組み合わせて、CD14発現についてゲートされます。約100倍高いCDを表現しなければならない-古典的な単球（CD14 ++ CD16）：前回12に記載されているように 、単球亜集団の分析のために、次の命名法が適用されるべきで...

単球は、活性化時に解糖代謝に依存する人間の自然免疫系の不可欠な構成要素です。新鮮な全血中の全単球および単球亜集団によるグルコーストランスポーターの発現とグルコース取り込みを測定するためのフローサイトメトリープロトコルについて説明します。

Monocytes are innate immune cells that can be activated by pathogens and inflammation associated with certain chronic inflammatory diseases. Activation of ...

この手法の全体的な目的は、異なる単球サブポピュレーションにおけるグルコースの取り込みとその輸送体を測定することです。この方法は、免疫学分野における「疾患転帰において免疫細胞の代謝はどのような重要性を持つのか」といった重要な問いに答えるために活用できます。これらの技術の主な利点は、迅速かつ簡便に実施でき、反応試薬を必要とせず、少量の血液のみで十分であることです。クエン酸ACD-B抗凝固剤入り採血管で血液サンプルを採取してから1時間以内に、サンプルを生物安全キャビネット内に配置します。次に、各サンプルから100 µLの血液を個別のポリプロピレンチューブに加え、氷上で2 mLの1X溶血液を用いて細胞を処理し、ピペッティングで穏やかに混合します。15分後、細胞を遠心分離し、続いて洗浄バッファーでさらに2回遠心分離を行います。2回目の洗浄後、ピペットを使用して上清をできるだけ慎重に取り除き、ペレットを氷上の100 µLの洗浄バッファーで再懸濁します。特定の単球サブポピュレーションを同定するために、細胞100 µLあたり5 µLの適切な抗体を用いて、氷上の暗所で30分間染色します。インキュベーション終了後、サンプルを洗浄液で2回洗浄し、PBSで調製した0.5%ホルムアルデヒド200 µLで細胞を固定します。その後、4色の検出が可能なフローサイトメーターを用いて、24時間以内に細胞を解析します。単球サブポピュレーションのグルコース取り込みを評価するため、各サンプルから90 µLの血液を個別のポリプロピレンチューブに移し、目的の蛍光グルコースアナログを10 µL添加します。チューブを軽く弾いて混ぜ合わせ、サンプルをアルミホイルで覆います。次に、細胞を37 °Cで15〜30分間インキュベートした後、直ちに氷上に移します。続いて、チューブに4 mLのFACS溶解液を加え、細胞を遠心分離します。その後、洗浄バッファーを用いて2回目の遠心分離を行います。上清をデカントし、目的の適切な抗体を用いて、4°Cの暗所で30分間細胞を染色します。その後、4 mLの氷冷した洗浄バッファーでサンプルを洗浄し、ペレットを200～300 µLの氷冷したPBSに再懸濁させ、10分以内にチューブを解析します。フローサイトメトリー解析では、まず未染色および個別に染色したコントロールサンプルを用いてコンペンセーションを設定します。次に、適切なシングルセル解析ソフトウェアを用いて、最初のサンプルを前方散乱光（FSC）対側方散乱光（SSC）プロットで開き、図に示したように単球をゲートします。続いて、ゲートされた単球集団をダブルクリックし、CD3陰性集団をゲートします。さらに、CD3陰性集団をダブルクリックし、x軸にCD14染色を、y軸にCD16染色を表示するように設定します。次に、特定の単球サブポピュレーションにおけるグルコースの取り込みまたはその輸送体を測定するために、適切なヒストグラムを作成します。その後、定義された細胞集団が存在する場合、コントロールのFITC IgGサンプルを用いてゲートを設定し、各サンプルにおけるCD14陽性単球の総割合を決定します。ここでは、細胞散乱による単球の分離およびCD3陰性集団内でのゲート設定によるT細胞の除外という、初期のゲーティング戦略を示します。次に、単球についてCD14の発現のみ、またはCD16との組み合わせでゲートを設定し、全単球または単球サブポピュレーションを同定します。CD14陽性かつGlut-1グルコース輸送体陽性の単球という明確な集団が観察されることがあり、特にHIV陽性者から得られた循環白血球において顕著に見られます。HIV非感染者の特定の単球サブセット内でもCD14陽性かつGlut-1陽性の細胞が観察されることがありますが、これらの集団はHIV陽性患者においてより顕著に現れます。グルコース輸送体の発現データから予想される通り、グルコースアナログである2-NBDGも、HIV陽性者の細胞により多く取り込まれます。この手法に習熟すれば、適切に実施することで1時間半以内に完了させることができます。本手順を行う際は、すべての領域において光への曝露を制限することが重要です。グルコースアナログの取り込み後、細胞表面抗体で染色することで、目的とする特定の免疫細胞集団を同定できます。本手法の開発により、HIVが免疫細胞の代謝にどのような影響を及ぼすかを判定することが可能となり、免疫学、ウイルス学、がん研究など、異なる分野の他の研究者によっても活用されることが期待されます。このビデオを視聴することで、免疫細胞におけるグルコース輸送体1（GLUT1）の検出およびグルコース取り込みの測定方法について、十分に理解できるはずです。感染性物質を扱う際は、標準的な安全手順に従ってください。

a-simple-flow-cytometric-method-to-measure-glucose-uptake-glucose

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学と感染症

このプロトコルは、フローサイトメトリーにより細胞質から細胞の形質膜へのGLUT4のトランスロケーションを定量化するために迅速なテクニックを説明します。...

フローサイトメトリーによる細胞膜へのGLUT4転の定量的測定

このビデオは、マウスの眼に硝子体内送達後の蛍光バイオ粒子のミクログリア取り込みを測定するためのフローサイトメトリーを示しています。フローサイトメトリーは、CD11bを発現する生細胞を検出し、緑色蛍光を示す食作用性ミクログリア細胞を、Ly6C発現単球やLy6G発現好中球などの他の骨髄系細胞と区別します。...

フローサイトメトリーを用いた硝子体内送達蛍光粒子のミクログリア取り込みの測定

このビデオでは、2つの蛍光色素を使用して、ヒト末梢血単核細胞(PBMC)のCD4+およびCD8+...

末梢血単核細胞中の免疫細胞サブセットを同定するためのフローサイトメトリーアッセイ

この研究では、in vitro樹状細胞(DC)を得るためのヒト単球単離の2つの異なる方法を比較しています。単球は接着によって選択されるか、磁気分離によって負に濃縮されます。単球の収量と生存率、および MDDC 生存率、増殖、および CD11c/CD14...

イメージングフローサイトメトリーによるヒト単球由来樹状細胞の特徴付け：二つの単球の分離プロトコルの比較

組織の恒常性と不十分な食細胞機能の維持が病態に関与しているためにミクログリアの貪食作用が重要です。しかしながら、 インビボでのミクログリアの機能を評価することは技術的に困難です。私たちは、正確に監視し、生理的な環境の中でミクログリアの貪食の可能性を定量化するためのシンプルでありながら堅牢な技術を開発しました。...

網膜ミクログリアの貪食機能を評価します<em&gt;インビボ</em&gt;フローサイトメトリーベースのアッセイを使用しました

このプロトコールは、成体マウス中枢神経系におけるマクロファージ亜集団のフローサイトメトリーによる分析を提供し、これらの細胞によって発現される複数のマーカーの研究に有用である。...

フローサイトメトリーによる中枢神経系からのミクログリアおよび単球由来マクロファージの解析

フローサイトメトリーを用いた細胞結合の試金を記述、CXC ケモカイン受容体 4 (CXCR4) に蛍光に分類された CXC ケモカイン リガンド 12 (cxcl 12)...

蛍光標識した CXC ケモカイン Ligand 12 CXC ケモカイン受容体 4 を混乱させる化合物を識別するためにフロー フローサイトメトリーを用いた測定

ここで全血フローサイトメトリーによる単球サブセットを特徴付けるためのプロトコルを提案する.これには、サブセットのゲートおよび表面マーカーの発現を評価する方法を概説し、(炎症性) M1 と M2 マーカー (抗炎症)...

全血によって人間の Monocyte のサブセットの解析フローのフローサイトメトリー解析

ここでは、単球 subpopulation の特定の表面マーカーと共焦点蛍光顕微鏡を用いて in vitro...

体外流れ球サブポピュレーションの募集の同時研究

ここでは、フローサイトメトリーを使用してvGLUT1陽性シナプスとpHRodo...

フローサイトメトリーを用いたシナプス材料のミクログリア包絡の定量化

ここでは、骨髄、脾臓、梗塞性心筋からマクロファージを抽出し、その後、生細胞の代謝フラックスを評価する方法を詳しく紹介します。...

脾臓および心臓マクロファージおよび骨髄単球における ex vivo 代謝フラックスの解析

学ぶフローサイトメトリー法による単球亜集団のグルコース取り込みとグルコーストランスポーター発現の測定。全血を用いた迅速な免疫細胞代謝解析手法で、HIVや免疫学研究に応用可能です。

シンプルなフローサイトメトリー法は、全血における単球亜集団のためのグルコース取り込みおよびグルコーストランスポーターの発現を測定するために

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