2016年8月12日
単球は、活性化時に解糖代謝に依存する人間の自然免疫系の不可欠な構成要素です。新鮮な全血中の全単球および単球亜集団によるグルコーストランスポーターの発現とグルコース取り込みを測定するためのフローサイトメトリープロトコルについて説明します。
この手法の全体的な目的は、異なる単球サブポピュレーションにおけるグルコースの取り込みとその輸送体を測定することです。この方法は、免疫学分野における「疾患転帰において免疫細胞の代謝はどのような重要性を持つのか」といった重要な問いに答えるために活用できます。これらの技術の主な利点は、迅速かつ簡便に実施でき、反応試薬を必要とせず、少量の血液のみで十分であることです。
クエン酸ACD-B抗凝固剤入り採血管で血液サンプルを採取してから1時間以内に、サンプルを生物安全キャビネット内に配置します。次に、各サンプルから100 µLの血液を個別のポリプロピレンチューブに加え、氷上で2 mLの1X溶血液を用いて細胞を処理し、ピペッティングで穏やかに混合します。15分後、細胞を遠心分離し、続いて洗浄バッファーでさらに2回遠心分離を行います。
2回目の洗浄後、ピペットを使用して上清をできるだけ慎重に取り除き、ペレットを氷上の100 µLの洗浄バッファーで再懸濁します。特定の単球サブポピュレーションを同定するために、細胞100 µLあたり5 µLの適切な抗体を用いて、氷上の暗所で30分間染色します。インキュベーション終了後、サンプルを洗浄液で2回洗浄し、PBSで調製した0.5%ホルムアルデヒド200 µLで細胞を固定します。
その後、4色の検出が可能なフローサイトメーターを用いて、24時間以内に細胞を解析します。単球サブポピュレーションのグルコース取り込みを評価するため、各サンプルから90 µLの血液を個別のポリプロピレンチューブに移し、目的の蛍光グルコースアナログを10 µL添加します。チューブを軽く弾いて混ぜ合わせ、サンプルをアルミホイルで覆います。
次に、細胞を37 °Cで15〜30分間インキュベートした後、直ちに氷上に移します。続いて、チューブに4 mLのFACS溶解液を加え、細胞を遠心分離します。その後、洗浄バッファーを用いて2回目の遠心分離を行います。
上清をデカントし、目的の適切な抗体を用いて、4°Cの暗所で30分間細胞を染色します。その後、4 mLの氷冷した洗浄バッファーでサンプルを洗浄し、ペレットを200~300 µLの氷冷したPBSに再懸濁させ、10分以内にチューブを解析します。フローサイトメトリー解析では、まず未染色および個別に染色したコントロールサンプルを用いてコンペンセーションを設定します。
次に、適切なシングルセル解析ソフトウェアを用いて、最初のサンプルを前方散乱光(FSC)対側方散乱光(SSC)プロットで開き、図に示したように単球をゲートします。続いて、ゲートされた単球集団をダブルクリックし、CD3陰性集団をゲートします。さらに、CD3陰性集団をダブルクリックし、x軸にCD14染色を、y軸にCD16染色を表示するように設定します。
次に、特定の単球サブポピュレーションにおけるグルコースの取り込みまたはその輸送体を測定するために、適切なヒストグラムを作成します。その後、定義された細胞集団が存在する場合、コントロールのFITC IgGサンプルを用いてゲートを設定し、各サンプルにおけるCD14陽性単球の総割合を決定します。ここでは、細胞散乱による単球の分離およびCD3陰性集団内でのゲート設定によるT細胞の除外という、初期のゲーティング戦略を示します。
次に、単球についてCD14の発現のみ、またはCD16との組み合わせでゲートを設定し、全単球または単球サブポピュレーションを同定します。CD14陽性かつGlut-1グルコース輸送体陽性の単球という明確な集団が観察されることがあり、特にHIV陽性者から得られた循環白血球において顕著に見られます。HIV非感染者の特定の単球サブセット内でもCD14陽性かつGlut-1陽性の細胞が観察されることがありますが、これらの集団はHIV陽性患者においてより顕著に現れます。
グルコース輸送体の発現データから予想される通り、グルコースアナログである2-NBDGも、HIV陽性者の細胞により多く取り込まれます。この手法に習熟すれば、適切に実施することで1時間半以内に完了させることができます。本手順を行う際は、すべての領域において光への曝露を制限することが重要です。
グルコースアナログの取り込み後、細胞表面抗体で染色することで、目的とする特定の免疫細胞集団を同定できます。本手法の開発により、HIVが免疫細胞の代謝にどのような影響を及ぼすかを判定することが可能となり、免疫学、ウイルス学、がん研究など、異なる分野の他の研究者によっても活用されることが期待されます。このビデオを視聴することで、免疫細胞におけるグルコース輸送体1(GLUT1)の検出およびグルコース取り込みの測定方法について、十分に理解できるはずです。
感染性物質を扱う際は、標準的な安全手順に従ってください。
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本記事では、自然免疫系の重要な構成要素である単球におけるグルコーストランスポーターの発現およびグルコース取り込みを測定するためのフローサイトメトリープロトコルを紹介します。本手法により、新鮮な全血中の単球サブポピュレーションの解析が可能となり、免疫細胞の代謝に関する知見を得ることができます。
本手法により、全血中における単球の代謝リプログラミングを迅速に評価することが可能となり、免疫代謝および炎症性疾患研究における標的妥当性の検証を支援します。単球サブセット全体におけるグルコース取り込み量とトランスポーター発現を定量化することで、免疫細胞の代謝と疾患転帰を関連付ける治療仮説に、メカニズム的なリスク低減(de-risking)を提供します。このワークフローは、ex vivoでの操作を行わずに初代ヒト細胞における解糖系シフトの機能的検証を可能にすることで、初期探索段階における予測の信頼性を向上させます。
本手法は、ターゲットの検証から前臨床評価に至るディスカバリー・コンティニュアム(創薬の連続的なプロセス)に適合しており、初期段階におけるヒト原色免疫細胞の代謝フェノタイピングを可能にします。