Name: 蓋ワイパーエリアの印象細胞診 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-09T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 1 s
Description: 学ぶ蓋ワイパーエリアの印象細胞診法。眼瞼縁の上皮細胞を採取・染色し、摩擦が眼表に与える影響を評価します。ドライアイやコンタクトレンズ関連の不快感メカニズム解明に有用な、低侵襲で簡便な手法です。

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私たちは、この研究を大いに助けてくれた、蓋ワイパーのトピックに関する洞察と専門知識を提供してくださった同僚のJalaiah Varikooty博士に感謝したいと思います。

倫理の声明：ヒト被験者、インフォームドコンセントと倫理の承認から細胞を採取する前に取得する必要があります。 1.ステインを準備注：実験日の汚れを準備します。 <ol><li> 15mlの遠心チューブに2.5ミリリットルのリン酸緩衝生理食塩水（PBS）に5μlのエチジウム（または4μM）および5μlのカルセインAM（または4μM）を追加します。ミックス。使用するまで室温で光とストアから遮蔽するためにアルミホイルで包みます。 </li></ol> 2.細胞を回収<ol><li>そのパッケージから細胞培養インサートを取り外し、各まぶたをサンプリングするためにラベルを付けます。永久的なマーカーを用いた膜プラスチックホルダー側の細胞収集のマークの向き。 ICを受ける地域の適切な健康状態を確認するために、適度な倍率（約20倍）で、スリットランプ検査を実施します。 </li><li> EAの下結膜嚢に局所麻酔薬（0.5％プロパラカイン塩酸塩）の1滴を分配chの目と目を保つために、参加者に指示するには、1分間閉じました。 </li><li>エバート上部眼瞼とまつ毛により所定の位置に保持します。蓋ワイパー領域との接触を避けます。 オプション：第二研究者の援助は、この手順を実行する必要があります。 </li><li>最小限の圧力で蓋ワイパー領域の中央部に垂直に膜を適用します。 </li><li> 5秒 - 3のための場所で膜を保持します。接触領域に半透明になった膜を観察します。この時点で、優しく膜を除去し、元の位置に戻し、「フリップ」に参加者のふたを可能にします。 </li><li>速やかに乾燥するのを防止するために、サンプルをPBSの一滴を適用します。膜は半透明に変わり、これが乾燥を示すように、いつでも不透明回すべきではありません。二次調査員は、サンプルの処理（セクション3）ですぐに進んでいます。 </li><li>結膜の整合性を確保するために、最終的な眼の検査を実施します。眼潤滑剤を分配し、参加者に指示麻酔効果が切れるまで、彼らの目をこすり避けるために（約15分）。 </li></ol> 3.サンプル処理<ol><li>マイクロはさみを使用して、垂直な細胞採取の中央から、半分（下流の分析のそれぞれに1つの半分）で膜をカット。プラスチック製のホルダーからそれを分離するための一つの膜半分の外縁に沿って切断。膜は、それ自体の上に折り畳まないことを保証を含む膜上に収集された細胞との相互作用を避けます。 </li><li>完全ホルダーから取り外す前に、ピンセットを用いて膜を固定します。 95％（v / v）エタノールを500μlを含む標識2 ml遠心チューブに膜を置き、（セクション4.2）を処理する前に、2時間の最大20分の最低固定するために残します。 </li><li>すぐに（セクション3.2で説明したように）膜の第二の半分を分離し、速やかにセクション4.1に進んでください。 </li></ol> 4.サンプル染色<ol><li> ImmunocytochemiCAL染色<ol><li>慎重に収集側を下に向けて35ミリメートルのガラスボトム培養皿に膜を置きます。膜が平坦であることを確認します。 </li><li>膜へのセクション1で組み立てられた免疫細胞化学的染色組成物のピペットを20μl。サンプルカールアップは、慎重にその縁部を押し下げることにより膜を平坦化する使い捨てのピペットチップを使用している場合。細胞収集領域との接触を避けます。 </li><li>ゆっくりとガラスカバースリップでメンブレンをカバーしています。サンプルの無駄な動きを避けてください。蓋付き皿を覆い、エッジの周りラボ・フィルムで密封します。ディッシュ（上部と下部）と試料の可視性の透明性を妨げないでください。ラボのマーカーでラベルを付けます。 </li><li>すぐにイメージング（セクション5.1）に進み、その後、膜の他の半分の細胞学的染色を継続するためにセクション4.2に戻ります。 </li></ol></li><li> 細胞学的染色 <ol><li>徐々にゆっくりとチューブのuに蒸留水500μLを加えることによって膜を水和セクション3.4に固定するためのsed。中身を取り出した後、混合するピペットチップに吸引する内容を数回。 </li><li>蒸留水500μLを加えます。削除した後、数秒間放置します。アルシアンブルー染色の500μLを加え、3分間のまま。汚れを削除し、3回連続500μlの蒸留水リンスや液体が透明にリンスするまで行います。 </li><li>ヘマトキシリン​​＃1染色の500μLを加え、3分間のまま。汚れを削除して、液体が透明リンスまで水リンスを蒸留または3回連続500μLを行います。透明な液体を吸引することにより、（セクション4.2.1の逆）を脱水。 </li><li>パパニコロウOG-6染色の500μLを加え、3分間のまま。汚れを削除し、1500μlの95％（v / v）エタノールリンスを行います。 </li><li>パパニコロウEA-65染色の500μLを加え、3分間のまま。汚れを削除し、（v / v）エタノールリンスの連続した​​3500μlの95％を実行します。 </li><li>完全に3回連続500μlの100％エタノールリンスを使用して脱水します。 TWEを使用しましたezers、溶液から試料を取り出します。感動細胞収集領域を避けます。 </li><li>スライドガラス上に膜を置きます。そのセルのコレクションラインを確保することは、並列またはイメージング中に容易に位置合わせのためのマージンをスライドする垂直のいずれかです。 </li><li> 100％エタノールのドロップを適用し、ガラススリップでカバーしています。すぐにイメージング（5.2節）に進みます。 </li></ol></li></ol> 5.サンプル画像<ol><li> イメージング蛍光免疫組織化学染色 <ol><li>画像取得ソフトウェアを実行しているコンピュータに接続されたデジタルカラーカメラを装備した11または蛍光顕微鏡12、共焦点レーザー走査顕微鏡（CLSM）を使用します。培養皿内に含まれるサンプルに、倒立顕微鏡を必要とすることができます。 </li><li>エチジウムホモダイマー-1（DNAの存在下で、617分の528 nmのEX /エム最大値）の吸収スペクトルおよび発光スペクトルとカルセインAM（517分の494 nmのEに係る顕微鏡11,12を設定しますX /エム最大値）。 </li><li> （ 例えば、2.5倍対物レンズ）顕微鏡で最も低い倍率を選択し、デジタルイメージングシステムを活性化させます。コンピュータのモニタ上に表示された試料を観察します。 </li><li>目的の細胞機能のサンプルを検査します。 </li><li>希望顕微鏡の倍率を選択し、イメージングソフトウェアを使用して画像を取得します。 </li><li>ネイティブ顕微鏡ファイル形式または非圧縮ファイル形式（ 例えば 、*の.raw、* .TIFF）のいずれかでファイルを保存します。 </li></ol></li><li> イメージング細胞学的染色 <ol><li>画像取得ソフトウェアを実行しているコンピュータに接続されたデジタルカラーカメラを装備していないフィルタを備えた標準的な実験明視野顕微鏡を、使用してください。 </li><li>顕微鏡ステージ上に配置し（ステップ4.2.8から）ロックスライドガラス。必要に応じて、全体のイメージング手順を通して、100％エタノールで試料を再水和します。 </li><li> （ 例えば 、2.5倍対物レンズ）顕微鏡で最も低い倍率を選択して、目を活性化させますEデジタルイメージングシステム。コンピュータのモニタ上に表示された試料を観察します。 </li><li>確保細胞収集は、顕​​微鏡ステージ制御のXまたはY軸のいずれかと整列されます。カバースリップを除去し、ピペットチップやピンセットを用いて試料を回転させることにより、必要に応じて調整してください。 </li><li>イメージングソフトウェアを使用して、最低の顕微鏡倍率で試料全体の画像（複数可）を取り込みます。 </li><li>適度な顕微鏡倍率（ 例えば、10 - 20X対物レンズ）に切り替えて、顕微鏡の光源とソフトウェア撮影パラメータ（露出、コントラスト、ホワイトバランスなど ）を調整し、その自動化されたソフトウェアメータリングを無効にします。将来の使用のためにこれらの設定を保存します。 </li><li>スキャンの開始点と終了点（細胞採取の例えば 、左上と右下の角）を決定します。 </li><li>イメージングソフトウェアを使用して、始点と終点内全体細胞収集領域の画像（複数可）を取り込みます。 betw 20％の側サイドと上から下への重複を確認してくださいすべての隣接する画像EEN。 </li><li>ネイティブ顕微鏡ファイル形式または非圧縮ファイル形式（ 例えば 、*の.raw、* .TIFF）を使用してファイルを保存します。 </li><li> （ 例えば、アドビPhotoshop Elementsの）選択肢の自動ステッチソフトウェアを使用して、最終的なパノラマ画像を生成します。最終的な画像に自動化されたステッチの精度を確認するために、ステップ5.2.5で撮影された参照画像）を使用します。 </li></ol></li></ol>

<ol><li>Barbato, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diurnal+variation+in+spontaneous+eye-blink+rate%5BTitle%5D)+AND+%22Psychiatry+Res%22%5BJournal%5D)">Diurnal variation in spontaneous eye-blink rate.</a> Psychiatry Res. 93, 145-151 (2000).</li>
<li>Korb, D. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lid-Wiper+Epitheliopathy+and+Dry-Eye+Symptoms+in+Contact+Lens+Wearers%5BTitle%5D)+AND+%22Eye+%26+Contact+Lens%22%5BJournal%5D)">Lid-Wiper Epitheliopathy and Dry-Eye Symptoms in Contact Lens Wearers.</a> Eye & Contact Lens. 28, 211-216 (2002).</li>
<li>Dumbleton, K., Woods, C. A., Jones, L. W., Fonn, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+impact+of+contemporary+contact+lenses+on+contact+lens+discontinuation%5BTitle%5D)+AND+%22Eye+%26+Contact+Lens%22%5BJournal%5D)">The impact of contemporary contact lenses on contact lens discontinuation.</a> Eye & Contact Lens. 39, 93-99 (2013).</li>
<li>Roba, M., Duncan, E., Hill, G., Spencer, N., Tosatti, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Friction+measurements+on+contact+lenses+in+their+operating+environment%5BTitle%5D)+AND+%22Tribol+Lett%22%5BJournal%5D)">Friction measurements on contact lenses in their operating environment.</a> Tribol Lett. 44, 387-397 (2011).</li>
<li>Sickenberger, W., Pult, H., Sickenberger, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((LIPCOF+and+contact+lens+wearers%3A+a+new+tool+to+forecast+subjective+dryness+and+degree+of+comfort+of+contact+lens+wearers%5BTitle%5D)+AND+%22Contactologia%22%5BJournal%5D)">LIPCOF and contact lens wearers: a new tool to forecast subjective dryness and degree of comfort of contact lens wearers.</a> Contactologia. 22, 74-79 (2000).</li>
<li>Pult, H., Purslow, C., Berry, M., Murphy, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+tests+for+successful+contact+lens+wear%3A+relationship+and+predictive+potential%5BTitle%5D)+AND+%22Optom+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">Clinical tests for successful contact lens wear: relationship and predictive potential.</a> Optom Vis Sci. 85, E924-E929 (2008).</li>
<li>Doughty, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphological+features+of+cells+along+Marx%27s+line+of+the+marginal+conjunctiva+of+the+human+eyelid%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Exp+Optom%22%5BJournal%5D)">Morphological features of cells along Marx's line of the marginal conjunctiva of the human eyelid.</a> Clin Exp Optom. 96, 76-84 (2013).</li>
<li>Jalbert, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessing+the+human+lid+margin+epithelium+using+impression+cytology%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Ophthalm%22%5BJournal%5D)">Assessing the human lid margin epithelium using impression cytology.</a> Acta Ophthalm. 90, e547-e552 (2012).</li>
<li>Nelson, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impression+cytology%5BTitle%5D)+AND+%22Cornea%22%5BJournal%5D)">Impression cytology.</a> Cornea. 7, 71-81 (1988).</li>
<li>Egbert, P. R., Lauber, S., Maurice, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+conjunctival+biopsy%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">A simple conjunctival biopsy.</a> Am J Ophthalmol. 84, 798-801 (1977).</li>
<li>Wilson, T. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aWilson%2C+T+%22Confocal+microscopy%22">Confocal microscopy</a>. , Academic Press. London. 1-64 (1990).</li>
<li>Denk, W., Strickler, J. H., Webb, W. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two-photon+laser+scanning+fluorescence+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Two-photon laser scanning fluorescence microscopy.</a> Science. 248, 73-76 (1990).</li>
<li>Tomlins, P., Roy, P., Curnow, J., Rauz, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+the+EyePRIM+Device+for+Conjunctival+Impression+for+Flow+Cytometry%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalm+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">Assessment of the EyePRIM Device for Conjunctival Impression for Flow Cytometry.</a> Invest Ophthalm Vis Sci. 54, 5430-5430 (2013).</li>
<li>Knop, E., Korb, D. R., Blackie, C. A., Knop, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+lid+margin+is+an+underestimated+structure+for+preservation+of+ocular+surface+health+and+development+of+dry+eye+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Res+Proj+Dry+Eye+Syn%22%5BJournal%5D)">The lid margin is an underestimated structure for preservation of ocular surface health and development of dry eye disease.</a> Res Proj Dry Eye Syn. 45, 108-122 (2010).</li>
<li>Knop, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+lid+wiper+and+muco-cutaneous+junction+anatomy+of+the+human+eyelid+margins%3A+an+in+vivo+confocal+and+histological+study%5BTitle%5D)+AND+%22J+Anat%22%5BJournal%5D)">The lid wiper and muco-cutaneous junction anatomy of the human eyelid margins: an in vivo confocal and histological study.</a> J Anat. 218, 449-461 (2011).</li>
<li>Christensen, J. A., Skaarland, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nuclear+and+cell+area+measurements+in+the+cytological+evaluation+of+pleural+effusions%3A+a+study+of+subjective+assessments+and+morphometric+measurements%5BTitle%5D)+AND+%22Diag+Cytopathol%22%5BJournal%5D)">Nuclear and cell area measurements in the cytological evaluation of pleural effusions: a study of subjective assessments and morphometric measurements.</a> Diag Cytopathol. 3, 50-54 (1987).</li>
</ol>

著者には、開示すべき関連する資金や対立はありません。

印象の細胞学は、典型的には、混合セルロースエステル膜を用いて、眼球結膜上で実行されます。サンプルは、バルク材料のシートのサイズに切断し、滅菌、適用及び鉗子を使用して、結膜の表面から除去されます。同一の膜材料を用い、ピストン制御ICデバイスは、最近眼球結膜の表面形状に適合するように設計されており、アプリケーション13との間の一貫した圧力を維持しました。これらのアプローチは、（ 図1を参照）、狭い、顕著に湾曲した蓋ワイパー領域について非効率的です。また、混合セルロースエステル膜は、明視野顕微鏡は、蛍光イメージングの前にサンプルを整列させる必要があるセットアップのために必要な透明性を提供していません。このプロトコルで提案されている細胞培養インサートは、それらが滅菌されているので、理想的なサイズ便利でかつ迅速な収集を確実さらに設備なしに、手動で取り扱うことができます。膜は、から作られています共焦点顕微鏡分析のために十分な透明性を提供する親水性PTFE、。 全体的に、収集された細胞の形態学的特...

眼球と対向する2ミリメートル狭い結膜地域-人間の上まぶたはわずか1で、毎日1約1万点滅を実行します。まばたきの間のワイピング動作による、眼瞼縁のこの部分は、「蓋ワイパー「領域2と呼ばれています。摩擦が原因で地球上ワイピング蓋に、常習的な点滅の間にこの領域で増加することが想定されます。これは、眼の快適で重要な役割を果たしている可能性があります。特定の経験眼の不快感のコンタクトレンズ装用者、これは3を着用レンズを停止するための主要な理由の一つです。コンタクトレンズが眼に配置されると、レンズ材料と眼の表面との間の摩擦係数を4に変更することが示されています。乾燥状態の症状は、この変更された摩擦2,5,6-に関連することができることを示唆する証拠があります。 この関連付けはまた、臨床的に観察現象に反映される可能性があり、特に蓋のwi上皮症（LWE）あたり、また上蓋マージン染色（ULMS）6と呼ばれます。 LWEは、眼の刺激の初期兆候とドライアイ疾患のための潜在的な予測因子です。これは、観察された上下の眼瞼縁の領域の生体染色によって測定されます。このグレーディングシステム2とその臨床的妥当性（自覚症状を持つ、すなわち、相関が）議論の下にまだあるが、眼の不快感は、最も重要なのは、患者にとって不便似臨床医と科学者のための難問のままと。 現在まで、少しは蓋ワイパー領域7の（サブ）携帯解剖学と生理学において臨床的に関連のバリエーションについては知られており、1つのレポートだけでは細胞学的方法8を利用します。印象細胞診（IC）は、膜9,10の適用によって眼球や瞼板結膜の上皮表面から細胞を収集するために40年以上にわたって使用されています。除去の際、接着細胞は、cを受けますytological染色および顕微鏡イメージング。蓋ワイパー領域における解剖学的および細胞性の違いのために、この技術は、最適化を必要とします。

<table><tbody><tr><td>アルシアンブルー、1%中3%酢酸</td><td>シグマ</td><td>B8438-250ML</td><td></td></tr><tr><td>ヘマトキシリン、ギル1</td><td>シグ</td>マ<td>GHS116-500ML</td><td></td></tr><tr><td>パパニコロウ染色、OG-6</td><td>シグ</td><td>マHT40116-500ml</td><td></td></tr><tr><td>パパニコロウ染色、修正EA</td><td>シグマ</td><td>HT40232-1L</td><td></td></tr><tr><td>生存/死生存率/細胞毒性キットライフ</td><td>テクノロジーL-3224</td><td></td><td>エチジウムホモダイマー-1とカルセインAM染料アル</td></tr><tr><td>カイン(0.5%プロパラカイン塩酸塩)</td><td>が含まれていますアルコン</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ミリセル細胞培養インサート、12&nbsp;mm、親水性PTFE、0.4&nbsp;&マイクロ;m</td><td>EMDミリポア</td><td>PICM01250&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>35mmガラス底皿</td><td>マットテック株式会社</td><td>P35G-0-20-C</td><td></td></tr></tbody></table>

蓋ワイパーエリアの印象細胞診

Impression Cytology of the Lid Wiper Area

内側まぶたのワイパー(LW)領域の細胞解剖学的構造に関する報告はほとんど存在せず、細胞学的方法を利用した報告は1つだけです。この研究では、印象細胞診(IC)を使用してLW領域から細胞を収集、染色、およびイメージングする方法の最適化について説明します。ヒト被験者の上眼瞼の内面から親水性ポリテトラフルオロエチレン(PTFE)膜を用いて細胞を採取し、細胞学的色素で染色して、杯細胞、ムチン、細胞核、およびさまざまな程度のプレケラチン化とパラケラチン化の存在を明らかにします。免疫細胞化学色素は、共焦点走査型レーザー顕微鏡の使用により、細胞エステラーゼ活性と細胞膜の損傷を示します。各サンプルで最大100枚の顕微鏡デジタル画像がキャプチャされ、ICスパン全体の高解像度で大規模な画像に縫い合わされます。私たちは、以前に報告されたよりもICの感度が高いことを示しており、LW領域の細胞形態と代謝活性を特定するのに適しています。私たちの知る限り、この蛍光色素の選択がLW ICメンブレンのイメージングに使用されたのはこれが初めてです。このプロトコルは、コンタクトレンズ装用者やドライアイまたはまぶたワイパー上皮症の患者の細胞の特殊性を評価するなど、LW 領域の文書化されていない詳細を明らかにするための将来の研究で効果的です。

プラスチックホルダーの上に張られた細胞培養膜は、蓋ワイパー結膜からの上皮細胞のハンドヘルド収集のための便利なツールです。この方法は、典型的には、IC膜を作製し、処理するために使用される追加の滅菌器具の必要性を排除する。 図1は、細胞培養インサートを使用して、蓋ワイパー領域のICを示します。我々は、新規な方法で蓋ワイパー領域から上皮細胞を特徴付けるために互いに補完つの異なる染色プロトコルを最適化しました。 図2に示すように、蛍光免疫細胞化学染料は、エステラーゼ活性、細胞生存率の指標、および核酸を明らかにするの染色は細胞膜の妥協を反映した。細胞学的染色プロトコルは、角質化度との間の微細な区別を可能にする。 図3は、遷移を示します眼瞼結膜における低角化と高度なケラチンの間蓋ワイパー結膜および表皮中化。関心の選択された領域とは対照的に、細胞診染色細胞のコレクションのパノラマ撮影は、コレクション全体領域の分析が可能になります。画像解像度は、核のレベルにズームするには十分です。細胞形...

私たちは、ヒト被験者の内まぶた縁の結膜から細胞を収集し、染色し、画像化しました。この方法は、細胞の形態と代謝活性を特徴付けることにより、ドライアイの理解と、眼の不快感を知覚する上で眼の表面間の摩擦が果たす役割について理解を深める可能性があります。

Few reports on the cellular anatomy of the lid wiper (LW) area of the inner eyelid exist and only one report makes use of cytological methods. The ...

この手順の全体的な目的は、眼表面における摩擦の影響を評価するために、眼瞼縁から上皮細胞を採取、処理、および可視化することです。本手法は、特にドライアイやコンタクトレンズに関連する不快感を抱える患者における、眼の不快感に関する重要な疑問を解決するのに役立つ可能性があります。この手法の主な利点は、比較的簡便で迅速であり、低侵襲であること、そして眼上皮細胞に対する摩擦の影響を評価できることです。まず、パッケージからメンブレンインサートを取り出します。油性マーカーを使用して、採取予定の各眼瞼に対応するインサートにラベルを貼り、プラスチック製ホルダーの側面に細胞採取の方向を記入します。次に、各眼の下結膜嚢に局所麻酔薬を1滴滴下し、被験者に1分間両目を閉じるよう指示します。次に、まつ毛を持って上眼瞼を反転させます。この際、眼瞼縁に触れないように注意し、アイワイパー領域の中央部分に挿入膜を垂直に軽く適用します。3〜5秒後、慎重に膜を取り除き、参加者に上方を向いてもらうことで、眼瞼を元の位置に戻します。直ちにPBSを1滴滴下し、サンプルを水和させます。その後、眼潤滑剤を塗布し、参加者にその日の残りの時間は目をこすらないように指示します。細胞回収後すぐに、マイクロシザーを用いて、細胞回収ラインの中央を垂直に切断し、膜を半分に分けます。次に、片方の膜の半分をプラスチックホルダーから切り離すため、膜の外縁に沿って切断します。膜をホルダーから完全に切り離す前に、ピンセットでサンプルを固定し、取り出した膜を500 µLの95% ethanolが入ったラベル付きの2 mL遠心チューブに移し、20分から120分間静置します。サンプルの免疫細胞化学染色の場合は、膜の後半分をホルダーから切り離し、回収面を下にして35 mmガラスボトム培養ディッシュに注意深く配置します。次に、調製したばかりの免疫細胞化学染色液20 µLを膜に加えます。使い捨てピペットチップを使用して、必要に応じてメンブレンの端を慎重に押し下げ、サンプルの上にカバーガラスをそっと被せます。ディッシュに蓋をし、ディッシュの縁をラボフィルムで密封します。その後、ラボマーカーでディッシュにラベルを貼り、速やかにサンプルのイメージングに進みます。細胞学的染色の場合は、まずメンブレンを親水化させます。次に、標準的な染色プロトコルに従ってサンプルを染色します。染色手順の完了後、イメージングを容易にするため、細胞回収ラインをスライドの端に合わせてサンプルをガラススライド上に転写します。次に、メンブレンに100% ethanolを1滴滴下し、サンプルの上にカバーガラスを被せます。免疫細胞化学染色されたサンプルをイメージングするには、染色の可視化に適した顕微鏡で最低倍率を選択し、サンプルを顕微鏡ステージに設置します。デジタルイメージングシステム

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医学

ここで説明するプロトコルは、全量網膜製剤の構造評価のためのものです。これには、組織解剖、親水性ポリテトラフルオロエチレン(PTFE)メンブレンインサートへのマウント、蛍光マーカーによるボーラスローディング、細胞およびシナプス成分の免疫組織化学的分析のためのカルボジイミドおよびパラホルムアルデヒドによる固定の比較の説明が含まれます。...

イメージングと免疫組織化学のための網膜ホールマウントの準備のために最適化されたプロトコル

高解像度の微分干渉コントラスト（DIC）顕微鏡を用いて、マウス脳室の中に位置運動上衣繊毛の鼓動のex vivo観察ライブイメージングによって実証されます。技術はユニークな繊毛運動の周波数の記録や暴行角度ならびにそれらの細胞内カルシウム振動ペーシング特性を可能にします。...

マウスの脳の側脳室における上衣繊毛のライブイメージング

この研究では、詳細な光顕微鏡技術が、CPEC in...

脈絡叢上皮細胞の繊毛運動の観測<em&gt;エクスビボ</em

露出した正常眼球表面は、角膜および結膜からなる。上皮細胞、杯細胞および免疫細胞が結膜内に存在する。ここでは、非侵襲的な印象細胞学の技術が印象細胞学装置とフローサイトメトリーを用いて結膜内の免疫細胞を分析することが記載されている。...

結膜から細胞を単離して表現する非侵襲的方法

PCD診断のための高品質毛様体機能解析を成功させるには、呼吸上皮のサンプリングと処理のための正確で慎重な方法が不可欠です。COVID-19パンデミックの間もPCD診断サービスを提供し続けるために、毛様体ビデオ顕微鏡プロトコルが更新され、適切な感染管理対策が追加されました。...

デジタル高速毛様体ビデオ顕微鏡を使用した鼻ブラッシングサンプリングと処理–COVID-19パンデミックへの適応

眼表面の炎症は眼の表面組織に害を及ぼし、眼の重要な機能を損ないます。本プロトコルは、マイボーム腺機能不全(MGD)のマウスモデルにおいて眼の炎症を誘発し、損なわれた組織を収集する方法を記載する。...

眼表面炎症の誘導と関与組織の収集

この論文は、げっ歯類の眼の微小解離のためのプロトコルを提示します。このプロセスには、刺激膜(すなわち、第3のまぶた)とともに眼球の除核が含まれます。その後、後眼カップと前眼カップが分離します。...

げっ歯類の目の微小解剖

このプロトコルは複雑なセルにセルinterdigitationsおよび膜の構造を調査するためにimmunofluorescenceのために末梢、成熟した、および核目のレンズ繊維のセルを準備する方法を記述する。...

眼球レンズの皮質および核からの束および単線維細胞の調製および免疫蛍光染色

現在のプロトコルはイメージの定量化のための方法の眼球レンズの末梢構造の視覚化のための新しい全台紙のイメージ投射を記述する。これらのプロトコルは、レンズのマイクロスケール構造とレンズの発達/機能との関係をよりよく理解するための研究に使用できます。...

末梢レンズの構造、細胞形態、組織を可視化・定量化するためのホールマウントイメージング

ここでは、結膜類天疱瘡を特定するための結膜生検の採取と処理のプロトコルを紹介します。...

粘膜類天疱瘡の診断のための結膜生検および直接免疫蛍光法の技術

この記事では、ドライアイの診断と治療における in vivo 共焦点顕微鏡の操作と効果を実証し、将来の研究の基礎を提供するために in vivo...

インビボ ドライアイの診断と管理における共焦点顕微鏡: 画像プロトコルと解釈に焦点を当てる

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