Name: 培養細胞を加熱して細胞の熱作用を調べるための連続波型ツリウムレーザー (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-06-30T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 49 s
Description: 学ぶ 1.94 µm連続波型ツリウムレーザーを用いた培養細胞の加熱法。網膜色素上皮細胞の熱応答を正確な温度・時間制御で再現性高く調べ、網膜レーザー治療や過熱療法の研究に応用可能です。

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この研究は、ドイツ連邦教育研究省（BMBF）（助成金＃13GW0043C）と欧州航空宇宙研究開発局（EOARD、助成金＃FA9550-15-1-0443）

1.RPE細胞培養<ol><li> ブタの眼からのRPE細胞の単離 <ol><li>地元の屠殺場から新しく除核されたブタの目を入手する。冷暗所に保管してください（4℃）。 </li><li>はさみで細胞外組織を除去し、5分間消毒液に目を浸します。 </li><li>使用するまでカルシウムとマグネシウムを含まない滅菌リン酸緩衝生理食塩水（PBS（ - ））に眼を入れます。 </li><li>メスを使用して、角膜輪部の約5mm後に強膜に浸透する。はさみで角膜輪部に平行に切開して、眼の前部全体を切除する。 </li><li>眼の前部（ すなわち、角膜およびレンズ）および硝子体を除去する。 1mLのPBS（ - ）を加え、穏やかに神経網膜を除去する。 注：強膜、脈絡膜およびRPEからなるこの「眼球カップ」は、今すぐ準備ができています。 </li><li> Pで予熱した（37℃）0.25％トリプシンを添加する。BS（ - ）をアイカップに送る。アイカップの約80％がこのトリプシン溶液で満たされるように容量を調整する。 </li><li> 5％CO 2インキュベーター内で37℃で10分間、トリプシン溶液とアイカップをインキュベートする。 </li><li>インキュベーターからアイカップを取り出し、0.05％トリプシン+ 0.2％エチレンジアミン四酢酸四ナトリウム塩（EDTA・4N）を含むPBS（ - ）溶液で0.25％トリプシン溶液を交換する。アイカップをインキュベーター内で45分間インキュベートする。 注：45分後、RPE細胞はブルッフ膜にちょうど緩く付着しているか、またはすでに剥離してトリプシン-EDTA溶液に浮遊しているかのいずれかである。 </li><li>穏やかなピペッティングでRPE細胞を集める。 10％ブタ血清、抗生物質/抗真菌剤、およびピルビン酸ナトリウム（1mM）を含む10mLの培養培地（L-グルタミンを含むDMEM高グルコース）で満たされたコニカルチューブに細胞および溶液を集める。 注：血清はトリプシンの作用を中和することがあります。 </li><li>遠心分離機室温で5分間、400×gでの細胞懸濁液。 </li><li>上清を除去し、新鮮な培地10 mLを加える。同じ条件で再度5分間遠心分離する。 </li><li>上清を除去し、細胞濃度が5×10 5細胞/ mL（血球計数器を用いて細胞を計数することによって決定される）になるように、新しい培地を加える。穏やかなピペッティングでよく混合する。 </li><li>細胞懸濁液を細胞培養皿に分配する。直径60 mmの培養皿あたり3 mLを使用する。 注：この培養は継代ゼロ（P0）と呼ばれます。 </li><li> 37℃で5％CO 2インキュベーター内で細胞を維持する。条件培地の半分を2日ごとに新鮮な培地に交換する。 </li><li>コンフルエントになる場合は継代培養（ステップ1.2）。 </li></ol></li><li> RPE細胞培養の継代培養 <ol><li>培地を除去し、細胞をPBS（ - ）で2回リンスします。 </li><li> 0.05％トリプシン+ 0.2％EDTAを含むPBS（ - ）溶液と細胞をインキュベートするi5％CO 2インキュベーター中、37℃で5分間インキュベートした。 </li><li>穏やかなピペッティングによりRPE細胞を分離し、10％ブタ血清を含む10mLの培養培地で満たした円錐管内で細胞懸濁液を収集する。 </li><li>室温で5分間400xgで細胞懸濁液を遠心分離する。 </li><li>上清を除去し、細胞濃度を5×10 5細胞/ mL（血球計数器で細胞数を数えることによって決定）とする新しい培地を加える。ステップ1.1.13に記載されているように、直径60mmの新しい培養皿に細胞を分配する。 注：細胞培養は現在、継代1（P1）です。 </li><li>コンフルエントに達した後、ステップ1.2.1〜1.2.5に記載したのと同じ手順を用いて、P1培養物をP2に継代培養する。 P2培養物から、直径60mmの培養皿の代わりに、より小さい培養皿（内径30mm）上に細胞を播種する。 </li><li>実験のために、P2またはP3培養物を使用する。 </li></ol></li></ol> 2. Thuliumレーザー照射<ol><li> 照射ステーションの構造 <ol><li>ツリウムレーザー装置（1.94μm、出力範囲：0-20 W）を0.22 NA、365μmのコア径のファイバーに接続します。 </li><li>照射ステーションの垂直金属ポストに水平に固定された金属アームにファイバ先端を機械的に固定する。照射中にレーザーファイバーの先端が細胞培養皿が置かれるホットプレートの上に位置するように垂直ポストを置く。 </li><li>ホットプレート上に白い紙を置き、エイミングビームをオンにします（λ= 635 nm、最大= 1 mW、紙面の直径≈30 mm）。白い紙にエイミングビームの周囲をマークし、照射中に培養皿を置く位置がわかるようにします。 注：ファイバチップのz面は変更可能です。追加の結像光学系がなければ、ファイバー先端より12cm下に置かれた細胞培養面上のレーザースポット直径、i約30mmであり、これは細胞培養皿の内径とほぼ同等である。セットアップの概略図を図1に示します 。 </li></ol></li></ol><img alt="図1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/54326/54326fig1.jpg"> 図1：ツリウムレーザー照射ステーションの模式図培養プレートを加熱プレート上に置く。ビームサイズが培養皿の内径（約30mm）とほぼ同じになるように細胞をツリウムレーザーファイバーチップの12cm下に置く。レーザー照射手順は、カスタムメイドのシステム設計プラットフォームの時間制御ルーチンによって制御されます。照射プログラムを開始する前に、出力設定を決定する必要があります。 <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54326/54326fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を見るには、ここをクリックしてください。</a> <olstart> 細胞培養のレーザー照射 <ol><li>照射の1時間前に、1.2mLの新鮮な培地で完全に培地を交換する。 注：これは重要なステップであり、厳密に従わなければなりません。 </li><li>クリーンベンチに照射ステーション（ すなわち、ホットプレートとレーザーファイバーを固定するポスト）を置きます。 </li><li>インキュベーターから細胞培養皿を取り出し、ホットプレート上のマークされた位置に置く（ステップ2.1.3）。 </li><li>保護眼鏡を着用してください。ツリウムレーザーをオンにします。レーザー装置に必要に応じてパワーを設定します（0〜20 W調整可能）。エミッションをオンにします。 </li><li>レーザー照射とタイミングプロトコル（補足ファイル）を制御するシステム設計プラットフォームを開始します。 </li><li>培養プレートをホットプレート上に置いた直後に、「予熱時間」をクリックして140秒間タイマーを開始する（「予熱時間1」）。これは培地の温度を3℃に保つ照射前7℃。 注：140秒後、ビープ音が鳴り、次のタイマー（「予熱時間2」）が自動的に8秒カウントを開始します。この8秒間に、審査官は培養皿を開けることができる。 148秒の予熱後、細胞培養上で10秒間のレーザー照射が自動的に行われる。緊急時にはレーザー装置を強制停止ボタンで操作してレーザーを直ちに停止させてください。これは重要なステップであり、厳密に従わなければなりません。注意の特別な点は、8秒の予熱時間の開始時に、照射の直前に皿のカバーを開くことに関する。カバーを開くと、メディア表面が非常に急速に冷却されることがあります。 </li><li>照射後、直ちにカバーを培養皿の上に置き、培養皿をホットプレート上にさらに7秒間放置し、37℃、5％CO 2インキュベーターに戻す。 </li></ol><li> その際の温度分布の測定細胞レベル（温度較正） <ol><li>直径30mmの培養皿（細胞なし）の4辺（90°ごと）の底に近い小さな穴（直径約300μm）を作る。ブンゼンバーナーで加熱したニードル（20G）の先端を使用してください。外部から電気絶縁テープで穴を塞ぎ、細い針で小さな穴を作って、水密状態でこの穴に微細な熱電対（直径200μm）のみを挿入できるようにします。 </li><li>培養皿の底の外側で、2つの垂直直径を描き、交差点（ すなわち、底辺の中央）を座標ゼロ（0）として設定する。線に沿って各方向にディッシュ（ すなわち、 0、3、6、9、12、および15 mm）を外側に放射状に3 mmごとに印を付ける（ 図2の青い点）。ポイント数は合計で21でなければなりません。 </li><li> 1.2 mLの新しい培地で細胞培養皿を満たします。文化dを置く37℃でホットプレート上に置いて、細い熱電対（直径200μm）を側面の穴に挿入し、感知先端を測定すべきマークされた位置に置きます。 </li><li>保護眼鏡を着用してください。ツリウムレーザーをオンにして、レーザー装置のパワー（0.1W単位で0Wと20Wの間）を手動で設定します。 注記：温度校正の場合、電力を3 W単位で測定するだけで十分です。 </li><li>システム設計プラットフォームの電源を入れ、 "Start Temp。Acquisition"ボタン（補足ファイル）をクリックして温度測定を開始します。 </li><li>手順2.2.6と同じ手順を実行します。 注記：制御プログラムは、挿入された熱電対の温度を100 msごとに測定し、GUIでの照射中の温度の変化を示します。 </li><li>これらの手順は21の測定点すべてと異なる電力設定で実施してください。すべてのポイントとすべてのパワーセッティングについて、手順全体を3回繰り返します信頼性の高いデータを得ることができます。 </li><li>温度データをcsvデータとしてエクスポートし、最終的にスプレッドシートに変換することができます。すべての点で3回測定した場合の照射終了時の最高温度の平均値。同じ円上の点からの値を平均します（中心点を除いて合計4点）。 </li><li>得られた平均最高温度をグラフ上にプロットし、ディッシュの中心からの距離（mm）をx軸、温度上昇（ΔT、℃）をy軸とする。数学的ソフトウェアプログラムのフィット関数を使用して、ガウスモデルを生データに適合させます。ガウス適合温度分布を作成します。 </li></ol></li><img alt="図2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/54326/54326fig2.jpg"> 図2：1つの細胞培養プレートにおける温度較正のポイント。温度データを中央で測定し、5℃で測定した。4つの異なる角度（青い点）上の放射状の点。 <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54326/54326fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を見るには、ここをクリックしてください。</a> 異なる熱照射後の細胞応答の生物学的評価<ol><li> 異なるパワー設定および細胞死閾値の決定後の細胞生存度（ すなわち、生存、アポトーシスおよび死亡）の評価 <ol><li>示された時点（ すなわち、照射後3時間、24時間および48時間）で、細胞をPBS（ - ）で洗浄し、市販のキットを使用して、細胞生存度（ すなわち生存、アポトーシス、プロトコル。 </li><li> 5μLのフルオレセインイソチオシアネート（FITC） - アネキシンV、5μLのエチジウムホモダイマーIII、および5μLのHoechst 33342を100μLの1×結合緩衝液に添加することによって染色溶液を調製する（全てキットコンポーネント）。細胞を覆うのに十分な染色溶液を調製する。細胞を15分間インキュベートする。 </li><li>結合緩衝液で細胞培養液を2回洗浄し、結合緩衝液をPBS（ - ）で置換し、蛍光顕微鏡の段階で培養物をセットする。 </li><li>光路を接眼レンズに切り替え、4 '、6-Diamidin-2-phenylindol（DAPI）フィルターを選択し、照明灯を点灯させ、4倍の対物レンズで焦点面を見つけます。 </li><li>カメラへの光路を変更し、顕微鏡イメージングソフトウェアでコンピュータ画面上の画像を見つけて、焦点を調整します。 </li><li>細胞培養皿全体の蛍光画像を得るために、顕微鏡特有のソフトウェアのステッチ機能（ すなわち、ディッシュ全体に複数の画像を記録し、次いで単一の大きな画像を作成する機能）を使用する。 DAPI、FITC、およびテトラメチルローダミン（TRITC）の3種類のフィルターセットを使用して、Hoechst 33342陽性細胞（すべての細胞核）、FITCアネキシンV陽性細胞ve細胞（アポトーシス）、およびエチジウムホモダイマーIII-陽性細胞（死滅）を示した。 </li><li>染色された細胞培養物中の死んだ（エチジウムホモダイマーIII陽性）領域の半径（mm）およびアポトーシス（アネキシンV陽性）バンド形態領域の外側/内側半径を測定する。これらの半径を、対応する出力設定の温度分布のフィットしたガウス関数に適用します。細胞死およびアポトーシス変化の閾値温度を明らかにするために、死んだまたはアポトーシス領域の縁の正確な温度を計算する。 </li></ol></li></ol></olstart>

<ol><li>Inagaki, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+efficacy+of+pure+yellow+%28577-nm%29+and+810-nm+subthreshold+micropulse+laser+photocoagulation+combined+with+yellow+%28561-577-nm%29+direct+photocoagulation+for+diabetic+macular+edema%5BTitle%5D)+AND+%22Jpn+J+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Comparative efficacy of pure yellow (577-nm) and 810-nm subthreshold micropulse laser photocoagulation combined with yellow (561-577-nm) direct photocoagulation for diabetic macular edema.</a> Jpn J Ophthalmol. 59 (1), 21-28 (2015).</li>
<li>Roider, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+retina+therapy+%28SRT%29+for+clinically+significant+diabetic+macular+edema%5BTitle%5D)+AND+%22Graefes+Arch+Clin+Exp+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Selective retina therapy (SRT) for clinically significant diabetic macular edema.</a> Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 248 (9), 1263-1272 (2010).</li>
<li>Brinkmann, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Real-time+temperature+determination+during+retinal+photocoagulation+on+patients%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Opt%22%5BJournal%5D)">Real-time temperature determination during retinal photocoagulation on patients.</a> J Biomed Opt. 17 (6), 061219(2012).</li>
<li>Yoshimura, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Photocoagulated+human+retinal+pigment+epithelial+cells+produce+an+inhibitor+of+vascular+endothelial+cell+proliferation%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">Photocoagulated human retinal pigment epithelial cells produce an inhibitor of vascular endothelial cell proliferation.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 36 (8), 1686-1691 (1995).</li>
<li>Denton, M. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Damage+Thresholds+for+Exposure+to+NIR+and+Blue+Lasers+in+an+In+Vitro+RPE+Cell+System%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">Damage Thresholds for Exposure to NIR and Blue Lasers in an In Vitro RPE Cell System.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 47 (7), 3065-3073 (2006).</li>
<li>Shrestha, R., Choi, T. Y., Chang, W., Kim, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+high-precision+micropipette+sensor+for+cellular-level+real-time+thermal+characterization%5BTitle%5D)+AND+%22Sensors+%28Basel%29%22%5BJournal%5D)">A high-precision micropipette sensor for cellular-level real-time thermal characterization.</a> Sensors (Basel). 11 (9), 8826-8835 (2011).</li>
<li>Gao, F., Ye, Y., Zhang, Y., Yang, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Water+bath+hyperthermia+reduces+stemness+of+colon+cancer+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Biochem%22%5BJournal%5D)">Water bath hyperthermia reduces stemness of colon cancer cells.</a> Clin Biochem. 46 (16-17), 1747-1750 (2013).</li>
<li>Jansen, E. D., van Leeuwen, T. G., Motamedi, M., Borst, C., Welch, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Temperature+dependence+of+the+absorption+coefficient+of+water+for+midinfrared+laser+radiation%5BTitle%5D)+AND+%22Lasers+Surg+Med%22%5BJournal%5D)">Temperature dependence of the absorption coefficient of water for midinfrared laser radiation.</a> Lasers Surg Med. 14 (3), 258-268 (1994).</li>
<li>Iwami, H., Pruessner, J., Shiraki, K., Brinkmann, R., Miura, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protective+effect+of+a+laser-induced+sub-lethal+temperature+rise+on+RPE+cells+from+oxidative+stress%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Protective effect of a laser-induced sub-lethal temperature rise on RPE cells from oxidative stress.</a> Exp Eye Res. 124, 37-47 (2014).</li>
<li>Denton, M. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spatially+correlated+microthermography+maps+threshold+temperature+in+laser-induced+damage%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Optics%22%5BJournal%5D)">Spatially correlated microthermography maps threshold temperature in laser-induced damage.</a> J Biomed Optics. 16 (3), (2011).</li>
<li>Morgan, C. M., Schatz, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Atrophic+creep+of+the+retinal+pigment+epithelium+after+focal+macular+photocoagulation%5BTitle%5D)+AND+%22Ophthalmology%22%5BJournal%5D)">Atrophic creep of the retinal pigment epithelium after focal macular photocoagulation.</a> Ophthalmology. 96 (1), 96-103 (1989).</li>
</ol>

著者は何も開示することはない。

温度に関連する生物学的細胞応答を議論する際には、ほとんどの生化学的過程が時間依存的であるので、温度だけでなく、温度の上昇時間も重要である。特に、眼科におけるレーザー誘発高熱症の分野では、ミリ秒から秒までの短い時間範囲のため、正確な温度制御による細胞熱作用を調べることは困難である。したがって、厳密な温度および時間制御を可能にする操作システムを有する細胞培養モデルおよび適切なレーザー照射設定が望まれる。タンパク質発現または分泌などの熱暴露後の細胞応答の生物学的評価は、十分な数の罹患細胞についての反復定量評価を必要とする。これは、臨床治療の場合と同様に、直径数百マイクロメートルのレーザースポットを用いた研究の障害となっている。 1つのレーザースポットでの定量分析は非常に効率的ですrdensome。本研究では、これらの要求を可能な限り達成しようとする試みがなされている。照射制御プログラムを用いて1.94μm波長の連続波ツリウムレーザを使用することにより、時間的な温度上昇を、短い時間枠内で細胞培養全体で実施することができた。温度分布は光路を変えることによって調整できるので、この設定を使用して異なる種類の温熱関連実験を行うことができる。 <...

温度依存性の細胞生物学的応答を理解することは、温熱治療を成功させるために非常に重要である。眼科で使用される熱レーザーによる網膜レーザー光凝固は、医学において最も確立されたレーザー治療の1つである。主に緑色から黄色の波長の可視光線が、網膜レーザー治療に使用されます。光は、網膜の最も外側の細胞単層を形成する網膜色素上皮（RPE）細胞のメラニンによって高度に吸収される。様々な種類の網膜障害に対する新しい治療戦略として、非常に軽度の熱照射（目に見える光凝固）の医師および研究者の間で最近の関心があった1,2 。この傾向に続いて、私たちの関心は、温度制御型光熱治療（TC-PTT）と呼ばれる技術である正確な温度制御下でRPE細胞を致死的に加熱することにあります。 最近のオプト我々の研究所の音響技術は、網膜の照射部位における温度上昇のリアルタイム測定を可能にしている。これにより、照射中の温度上昇を制御することができます3 。しかし、網膜上の致死量以下の温熱療法は、温度を測定し制御することが不可能であることから以前は考慮されていなかったため、熱レーザー照射後のRPE細胞の温度依存性細胞応答は、今日までほとんど研究されていない。さらに、温度差は詳細に議論されていないだけでなく、致死量以下の照射後の生き残った細胞の細胞挙動の差異も有する。したがって、TC-PTTに基づく治療法に関する科学的証拠を収集するために、温度依存性RPE細胞の生物学的応答およびそれらのメカニズムをin vitro実験装置を用いて解明することを目的とする。 t彼の目的は、1）迅速な温度上昇の可能性、2）正確に制御された時間および温度、および3）生物学的実験のための検査細胞の比較的高い数の条件を満たす細胞加熱装置を確立することが必要である。加熱方法に関しては、周波数が倍増されたNd.YAGレーザー（532nm）のような臨床レーザーは、残念なことに、細胞培養加熱には不適当である。これは、培養されたRPE細胞におけるメラノソームの数が著しく減少したためである。レーザ光の吸収は不均質であり、細胞レベルでの温度上昇は、同じ放射能を照射した場合であっても、実験の間に可変である。いくつかの以前の研究では、照射4の間の皿の底の下の黒い紙の使用、または実験5,6の前に培養細胞によって貪食された追加のメラノソームの使用が報告されている。たくさんの温熱プレート、水浴、または温度設定7の CO 2インキュベーターを使用して、温熱療法によって誘発された細胞応答を評価するためのin vitro生物学的研究を行った。これらの方法は、所望の温度に到達するまでにある時間（ すなわち、数分）を要するため、長い加熱期間を必要とする。さらに、これらの方法を使用すると、細胞レベルでの詳細な熱履歴（ すなわち、時間を掛けた温度）を得ることは困難である。さらに、1つの培養ディッシュ内の異なる位置にある細胞間の温度は、可変温度拡散によって異なる場合がある。大部分の場合、生物学的細胞応答は、温度の上昇および温度の持続時間によって致命的な影響を受ける可能性があるが、温熱療法中のこの時間的および空間的温度情報は、生物学的分析のため考慮されていない。 これらの問題を克服するために、contiここでは、セルを加熱するために裸波ツリウムレーザーを使用した。ツリウムレーザー放射（λ=1.94μm）は水8に強く吸収され、培養皿の底の細胞は熱拡散のみによって熱刺激される。直径365μmのレーザーファイバーは培養皿の約12cm上に置かれ、その間に光学機器はありません。レーザービームの直径は、培地の表面で培養ディッシュ（30mm）の内径とほぼ等しくなるように発散する。一定量の培養培地を用いて、温度上昇を細胞に照射することが可能である高い再現性があります。可変出力設定では最大20Wの照射が可能で、細胞レベルでの媒体温度は10秒でΔT≈26℃まで上昇する可能性があります。 照射条件を変更することにより、レーザビームプロファイルを変更して温度分布を変化させることも可能である文化皿で。例えば、現在の研究のように、ガウス様の温度分布で、または均一な温度分布で調べることが可能である。後者は、温度依存性細胞応答の影響を、より具体的には致死量以下の温度上昇について調べるのに有利であり得るが、細胞死ストレスまたは創傷治癒応答についてはそうではない。 総合的には、ツリウムレーザー照射は、異なる熱曝露の後に、遺伝子/タンパク質発現、細胞死速度論、細胞増殖、および細胞機能発現などの異なる種類の生物学的因子の調査を可能にすることができる。

<table><tbody><tr><td>試薬</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ダルベッコ」のモディファイドイーグル」s ミディアム - 高グルコース</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D5796-500ML</td><td>使用前に (2)-(4) を追加してください。37°Cで暖かい。使用前のCウォーターバス。</td></tr><tr><td>抗生物質抗真菌薬溶液(100回;)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A5955-100ML</td><td>10,000 ユニットのペニシリン、10 mg ストレプトマイシン、25 μ;g アムホテリシンBを1mLに含ませました。500mLの中瓶(1)に5.5mLを加えてからご使用ください。</td></tr><tr><td>ピルビン酸ナトリウム (100 mM)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S8636-100ML</td><td>使用前に500 mL中瓶(1)に5.5 mLを添加(最終濃度:1 mM)</td></tr>ブ<tr><td>タ血清</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>12736C-500ML</td><td>使用前に500 mL中瓶(1)に50 mLを添加(最終:10%)</td></tr><tr><td>リン酸緩衝生理食塩水(PBS)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D8537-500ML</td><td></td></tr><tr><td>ブタ膵臓Sigma-Aldrich</td><td></td><td>由来トリプシンT4799-25G</td><td></td></tr><tr><td>エチレンジアミン四酢酸 (EDTA)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>ED-100G</td><td></td></tr><tr><td>ヒト VEGF Quantikine ELISA キット</td><td>R&Dシステム</td><td>DVE00</td><td></td></tr><tr><td>オキシセレクト総グルタチオンアッセイキット</td><td>Cell Biolabs、Inc</td><td>STA-312</td><td></td></tr><tr><td>アポトーシス/壊死/健康な細胞検出キット</td><td>PromoKine</td><td>PK-CA707-30018</td><td></td></tr><tr><td>名前</td><td>会社</td><td>カタログ番号</td><td>コメント</td></tr><tr><td>Equipments</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Thulium laser</td><td>Starmedtec GmbH</td><td>Prototype</td><td>0-20 W</td></tr><tr><td>365 mm core diameter fiber</td><td>LASER COMPONENTS Germany</td><td>CF01493-52</td><td></td></tr><tr><td>Thermocouple</td><td>Omega Engineering Inc</td><td>HYP-0- 33-1-T-G-60-SMPW-M</td><td></td></tr><tr><td>加熱プレート</td><td>MEDAX</td><td></td><td></td></tr><tr><td>マイクロプレート リーダー (分光蛍光光度計)</td><td>分子デバイス</td><td>Spectramax M4</td><td></td></tr><tr><td>細胞ホモジナイザー</td><td>QIAGEN</td><td>TissueLyser LT</td><td></td></tr><tr><td>蛍光顕微鏡</td><td>Nikon</td><td>ECLIPSE Ti</td><td></td></tr><tr><td>数学ソフトウェアプログラム</td><td>The Mathworks.Inc</td><td>MATLAB、Release 2015b</td><td></td></tr><tr><td>、システム設計プラットフォーム</td><td>、National Instrument</td><td>Labview</td><td>、Laboratory、Virtual Instrument、Engineering Workbench</td></tr></tbody></table>

培養細胞を加熱して細胞の熱作用を調べるための連続波型ツリウムレーザー

Continuous-wave Thulium Laser for Heating Cultured Cells to Investigate Cellular Thermal Effects

生物学的評価のために1.94μmの連続波ツリウムレーザーを用いて培養細胞を加熱する独自の方法をここに導入する。ツリウムレーザー放射は水に強く吸収され、培養皿の底の細胞は熱拡散によって加熱される。直径365μmのレーザーファイバーは培養ディッシュの約12cm上に置かれ、レーザービーム直径は培養ディッシュの内径（30mm）とほぼ等しくなるように光学的には設定されていない。各実験において培地の量を一定に保つことにより、再現性の高い温度上昇を細胞に照射することが可能である。 1つの細胞培養皿中の各パワー設定についての温度上昇およびその分布を較正するために、異なる位置および細胞レベルで10秒の照射中に温度を測定した。温度分布は、数学的グラフィックスソフトウェアプログラムであり、文化皿全体のパターンはガウス型であった。レーザー照射後、異なる生物学的実験を行って、温度依存性細胞応答を評価することができた。この原稿では、異なる時点後の細胞アポトーシスおよび死亡の閾値温度を決定するのを助けるために、生存率染色（ すなわち 、生存細胞、アポトーシス細胞および死細胞の区別）を導入する。 この方法の利点は、温度および加熱時間の正確さ、ならびに細胞培養皿全体における加熱細胞におけるその高い効率である。さらに、コンピュータ化されたオペレーティングシステムによって十分に制御され得る、多種多様な温度および時間間隔での学習が可能になる。

異なる電源設定後の温度分布温度較正では、各単一照射のすべての温度の変化を監視した。このデータから、測定された点における最大温度が得られ、T max （℃）として定義された。 図3Aに示すように、培養皿を加熱プレート上に置いた時点でプログラムを実行した。安定した培地温度を37℃で保存するために必要とされた140秒の「予熱時間1」の後、培養皿のカバーを8秒の「予熱時間2」の間に除去した。 「予熱時間2」の終わりに、レーザ発光が自動的に開始された。この曲線は、10秒照射の代表的な温度進行である。照射中、温度が上昇し、レーザー放出直後にオフになり、温度が低下し始めた。培養皿の中央の最大温度をこの研究ではT max （℃）と定義した。 T maxはレーザー出力に比例していた（ 図3B ...

1.94μmの連続波レーザー放射を用いた培養皿内の細胞を加熱するための元の実験装置をここに導入する。この方法を用いて、異なる熱暴露後の網膜色素上皮（RPE）細胞の生物学的応答を調べることができる。

An original method to heat cultured cells using a 1.94 &#181;m continuous-wave thulium laser for biological assessment is introduced here. Thulium laser ...

この手順の全体的な目標は、正確な温度と時間制御で培養細胞を加熱することにより、in vitroで熱用量依存的な細胞生物学的応答を研究することです。この方法は、網膜レーザー治療の研究など、温熱療法に対する細胞または組織の応答を調査する分野で重要な質問に答えるのに役立ちます。この技術の主な利点は、細胞の迅速な加熱と加熱時間の正確な制御により、実験中に再現性の高い熱曝露が可能になることです。この方法は、熱レーザー照射に対する培養網膜色素上皮細胞の応答に関する洞察を提供しますが、がん細胞などの他のモデルにも適用できます。この方法を思いついたのは、メラニンを含む細胞を可視レーザー光で加熱したときでした。しかし、その結果、色素沈着のばらつきにより温度プロファイルが変動しました。手順を開始するには、ホットプレートを清潔なベンチの上の調整可能な金属製ラボスタンドに置きます。ホットプレートを摂氏39度に設定します。スタンドの水平アームにコア径365μmの0.22NAファイバーを固定します。金属製のアームをホットプレートの上に置き、ファイバーの先端がホットプレートから12センチメートル上にくるようにスタンドを調整します。1.94マイクロメートルの20ワットのThuliumレーザーと365ナノメートルの1ミリワットの照準ビームをファイバーチップに接続します。直径30mmの培養皿をホットプレートに置きます。ホットプレートの表面で皿の周囲を注意深くなぞり、皿を取り出します。照準ビームをオンにし、ホットプレートのビームスポットの中心がトレースされた円と一致するまでスタンドを調整します。次に、照準ビームをオフにします。温度校正手順を開始するには、20ゲージの針の先端をブンゼンバーナーで加熱します。加熱した針先で、直径30mmの培養皿の底近くに90度間隔で4点ずつ穴を開け、直径約300μmの穴を開けます。穴に電気テープを貼ります。細い針で、各穴を覆うテープに直径約200μmの穴を開けます。培養皿の下側で、穴の各ペアの間に180度間隔で線を引きます。線の交点から開始し、各線に沿って半径方向に3ミリメートルごとにマークして、21の測定ポイントを指定します。次に、摂氏37度に予熱した新鮮な培地を正確に1.2ミリリットルを皿に入れます。皿に蓋をして、ホットプレートのなぞった円の中に皿をセットします。直径200マイクロメートルの熱電対をレーザー制御コンピューターに接続し、温度校正プロトコルを開きます。熱電対を皿の穴の1つに挿入して、先端がマークの位置の1つで皿の底にくるようにします。温度は深さによって異なる可能性があるため、熱電対の先端が測定された精度で皿の底に触れているかどうかを確認することは非常に重要です。培地が摂氏37度で安定するのを待ちます。次に、Thuliumレーザーをオンにし、レーザー出力を希望の開始レベルに設定します。予熱時間が140秒と8秒に設定されていることを確認してから、予熱照射シーケンスを開始します。ビープ音が鳴った140秒後、すぐに培養皿のカバーを外します。予熱が終了し、10秒間の照射が行われるまで待ちます。その後、すぐに皿を覆います。この方法で21マークの位置の温度を測定します。この手順を、レーザー出力範囲にまたがる 3 ワットの出力間隔でそれぞれ 3 回実行します。終了したら、ツリウムレーザーをオフにします。温度データをエクスポートして分析します。実験に先立ち、色素上皮細胞を直径30径の培養皿で培養します。細胞培養物を5%二酸化炭素雰囲気下で摂氏37度に維持し、ライブセルイメージングシステムを使用して確認します。照射の1時間前に、各皿の培地をちょうど1.2ミリリットルの新鮮な培地と交換します。培養物をインキュベーターに戻します。照射ステーションの準備ができており、ホットプレートが摂氏39度に設定されていることを確認します。照射を開始する準備ができたら、希望の出力でツリウムレーザーを開始します。実験プロトコルを開き、予熱時間が140秒と8秒に設定されていることを確認します。RPE細胞培養物をホットプレート上のマークされた位置の閉じた皿に入れ、すぐに140秒と8秒の予熱照射シーケンスを開始します。140秒間予熱した後、ディッシュカバーを取り外します。予熱が終了し、10秒間の照射が行われるまで待ちます。すぐに皿を覆い、7秒待ってから、皿をインキュベーターに戻します。レーザー出力レベルを上げて追加のサンプルを照射します。終了したら、ツリウムレーザーをオフにします。細胞生存率の評価を開始するには、照射した細胞をPBSで洗浄します。生きたアポトーシス細胞と壊死細胞を分化できるキットを入手してください。次に、暗い場所で、500マイクロリットルの結合緩衝液と25マイクロリットルのエチジウムホモダイマー-3、FITCアネキシン、およびHoechst 33342を組み合わせます。この染色溶液で細胞を室温で15分間インキュベートします。次に、細胞を1X結合バッファーで2回洗浄します。結合バッファーをPBSに交換し、DAPI、FITC、およびTRITCフィルターを備えた蛍光顕微鏡のステージに細胞を置きます。顕微鏡の光路を接眼レンズに設定し、DAPIフィルターを選択します。イルミネーションライトをオンにし、4倍の対物レンズで焦点面を見つけます。顕微鏡カメラへの光路を設定します。顕微鏡イメージングソフトウェアを使用して、画像の中央にピントを合わせます。DAPIフィルターを使用して画像取得のパラメーターを定義します。フォーカスプロセスと画像取得のセットアップをFITCフィルターとTRITCフィルターで繰り返します。次に、イメージングソフトウェアを使用して、ディッシュ全体に3つのフィルターセットで複数の画像を取得し、それらを培養ディッシュ全体の1つの画像に結合します。分析ソフトウェアを使用して、アポトーシスと細胞死の温度閾値を決定します。細胞培養皿の中心での最大温度上昇とレーザー出力との間の比例関係は、記載された熱較正手順によって決定されました。次に、細胞培養皿全体の最大温度分布をガウス関数に適合させました。照射後に3つの染色パターンが観察された。摂氏43度以下の温度にさらされた培養物では、生存率の変化は観察されませんでした。アポトーシスは、47°Cの照射から3時間後に初めて観察されました。細胞死は、摂氏51度以上から3時間以上後に観察されました。次に、アポトーシスと細胞死の平均閾値温度は、死者領域とアポトーシス領域の測定半径の平均を温度分布を記述するガウス関数に適用することによって決定されました。この手順に従うと、さまざまなレーザープロファイル、スポットサイズ、照射時間など、さまざまな条件下で照射を行うことができます。これは、細胞レベルでの個々の時限温度の原因に関連する問題を理解し、調査するのに役立ちます。このビデオを見れば、温度と時間を適切に制御しながら細胞培養を加熱する方法を十分に理解できるはずです。これは、さまざまな熱照射条件に対する生物学的応答を研究する可能性に乗る可能性があります。レーザーでの作業は、目や肌に非常に危険を及ぼす可能性があることを忘れないでください。レーザー照射の安全教育について最新情報を入手してください。この手順を実行するときは、常に適切な安全メガネ、白衣、手袋を着用してください。

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Research

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Biology

生物学

そこで我々は、強力な光熱療法剤機能、構造依存的な蛍光の自己消光及び光熱ユニークな特性を有するporphysomesと呼ばれる新規真性多官能ナノベシクルを開発した。我々は、高圧押し出しを使用してporphysomesを策定し、異種移植腫瘍モデルにおけるそれらの光熱治療の有効性を検討した。...

1分Porphysomesを使用してサブワンワット光熱腫瘍焼灼、真性多機能ナノベシクル

MRI互換カスタム設計レーザーベースの加熱装置は、具体的には、腫瘍領域で感熱性リポソームからの薬剤の放出を活性化するために、皮下腫瘍の局所加熱を提供するために開発されてきました。...

磁気共鳴画像誘導による感熱リポソームからのシスプラチンのトリガリリースのためのカスタム設計されたレーザーベースの加熱装置

ユーロピウムthenoyltrifluoroacetonate（EuTFC）は、活性化効率の温度と強く減少612 nmの光で発光線を有しています。この材料の薄膜で被覆されたサンプルは、マイクロ結像される場合、612 nmの発光応答の強度は、試料の表面温度の直接マップに変換することができます。...

ユーロピウムキレート発光塗料を用いた高解像度サーマルマイクロイメージング

この方法は、垂直方向の地下欠陥を見つけることを目的としている。ここでは、レーザーを空間光変調器と結合し、高解像度の熱画像を取得しながら、2つの逆位相変調線で決定的にサンプル表面を加熱するためにビデオ入力をトリガーします。欠陥位置は、熱波干渉極小値の評価から検索される。...

レーザー光熱サーモグラフィーを用いた構造化加熱による地中欠陥局在

ここでは、自己集合体を介した酸化鉄ナノ粒子殻状マイクロバブル(NSM)の製造プロトコルであり、磁気高熱および光熱併用がん治療のための1つのナノ治療プラットフォームにおける磁気、音響、および光応答性を相乗化する。...

磁気温熱療法とポト温熱併用がん治療のための磁気、音響、光三重応答性マイクロバブル

この記事では、Fura-2/AM色素を用いたシングルセルCa2+イメージングを使用して、細胞内のカルシウムイオン(Ca2+)濃度をリアルタイムで定量的にモニタリングする方法を紹介します。この技術により、効率的な色素ローディングと、蛍光強度比によるCa2+レベルの正確な計算が可能になり、研究アプリケーションのためのシンプルで迅速なアプローチが可能になります。...

カルシウムイオンチャネルの活性化を研究するためのシングルセルカルシウムイメージング

この研究では、Er、Cr:YSGG、およびダイオードレーザーを、合計96個の特別に設計されたチタンシリンダーの平面に別々に適用しました。もう一方の表面に熱電対を置き、温度を測定しました。表面粗さは、プロファイラー(表面形状測定機)、SEM、AFMで分析されます。...

インビトロ チタンシリンダーに用いるEr,Cr:YSGGおよびダイオードレーザーの効果評価

このプロトコルは、固形腫瘍モデルにおける標的温熱療法に必要な技術と方法論を提示します。このアプローチは、腫瘍内に注入された金ナノロッドによる近赤外光の光熱変換を利用して、腫瘍微小環境内で局所的な加熱を誘導します。...

腫瘍内金ナノロッドによる近赤外光の光熱変換によるマウス腫瘍モデルにおける標的軽度温熱療法の誘導

本記事では、局所的な非破壊熱特性評価およびイメージングのための周波数領域熱反射(FDTR)技術を紹介します。...

熱特性測定のための周波数領域熱反射法

細胞機能上の基層の剛性の影響をモデル化することができます...

アクリルアミド系ハイドロゲルを用いた細胞機能のマトリックスの剛性の影響を研究

学ぶ 1.94 µm連続波型ツリウムレーザーを用いた培養細胞の加熱法。網膜色素上皮細胞の熱応答を正確な温度・時間制御で再現性高く調べ、網膜レーザー治療や過熱療法の研究に応用可能です。

培養細胞を加熱して細胞の熱作用を調べるための連続波型ツリウムレーザー

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