Name: 階層化アルギン酸構築：異種細胞集団の共培養のためのプラットフォーム (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-07T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 57 s
Description: 学ぼう、アルギン酸二層ハイドロゲルディスクの作製法を用いて、異種細胞集団の3D共培養における相互作用を研究する方法。この技術は組織工学と荷重組織の生理学研究に有用です。

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この作業は、国立科学財団（CBET 0845754, AHH）によって資金提供されました。

アルギン酸ディスクの形成のために1.準備<ol><li> 37℃の水浴中で添加し、塩化カルシウムまたは塩化マグネシウムと場所なしで1×ダルベッコのリン酸緩衝生理食塩水で4％（w / v）のアルギン酸塩溶液を調製します。 （w / v）のアルギン酸塩溶液が推奨されている4％ - アルギン酸塩溶液の濃度は様々であるが、1することができます。 </li><li>所望の細胞型のために暖かい細胞培養培地塩基（ 例えば 、ダルベッコ改変イーグル培地。）との1：1の割合でアルギン酸塩溶液を混ぜます。アルギン酸塩の濃度は、現在元の濃度の半分、 すなわち 、2％（W / V）。無菌の0.2μmのナイロンシリンジフィルターを用いて、アルギン酸塩/培地溶液を滅菌します。 </li><li> （ - 300ミリリットル〜200）を金型を沈めるために十分な溶液で滅菌水に無菌の102 mMの塩化カルシウム二水和物のバスを準備します。 </li><li>アルミ板で×3の3中の滅菌「ゲル形成型」（直径6mmのx 3ミリメートル背の高い円筒形の井戸を収集し、参照してください。 <strong&gt;図1）およびエンドプレート（下：1のアルミニウム板中のx 3の3、トップ：アルミ板で×3で1 1.5）と、次のように金型を準備します。 <ol><li>上部および下部終板のサイズに厚い濾紙（吸取濾紙）および細胞マイクロ篩膜（10ミクロン孔径）を切断し、飽和、約1分まで塩化カルシウム浴中に置き。所望の場合、使用前に30分間、オートクレーブまたは紫外光を介して厚い濾紙とマイクロシーブ膜を滅菌します。 </li><li>セットアップモールド構造体の半分（下半分）を。 <ol><li>次の順序で互いに上に以下の項目を配置し、滅菌スパチュラを用いて平滑化：大規模なエンドプレート、厚手のろ紙、その後、マイクロシーブ膜（3×3でで）。 </li><li>反転および過剰な塩化カルシウム溶液の損失を保証するために、ペーパータオルのスタックに金型を押してください。 </li><li> Cの上に円筒状のウェルを備えた「ゲル形成型」を配置しますエル膜をマイクロシーブ、静かに左右にバインダークリップを使用して、両側に一緒に金型を固定します。完全後で井戸をカバーするために（中×3で1.5）トップエンドプレートのための十分な余地を残していることを確認してください。 </li></ol></li><li>セットアップモールド構造体の後半（上半分）を。 <ol><li>次の順序で互いに上に以下の項目を配置し、円滑：小端板、厚手のろ紙、マイクロシーブ膜。 </li><li>過剰の塩化カルシウム溶液の損失を保証するために、ペーパータオルのスタック上に金型のこの半分を反転し、押します。この時点でバインダークリップを使用して、金型のこの半分を固定しないでください。 </li></ol></li></ol></li><li>培養細胞は、製造業者の指示に従ってお勧めします。層状のアルギン酸ハイドロゲルに埋め込むべき所望の細胞を採取します。推奨される細胞密度は1 - 2×10 6細胞/ mlで、これは、所望の実験に応じて変化させることができます。 注：この方法を使用する場合異なる細胞型を有する層を作製するために、重ね着に並列に文化2つの細胞型に確認してください。 （MSCS）は、1×10 6細胞/ mlの細胞密度で播種した間葉系幹細胞は、以下のプロトコルのための例として使用されます。必要に応じて、細胞数とディスク番号が実験のためにスケーリングすることができます。 <ol><li>基礎成長培地10mlの（ダルベッコ改変イーグル培地、10％ウシ胎児血清、2％L-グルタミン、1で5,000細胞/ cm 2 - 1〜2週間前に3,000の細胞密度で、種間葉系幹細胞を包埋しますT-75フラスコ中の％非必須アミノ酸、1％ペニシリン/ストレプトマイシン）。 </li><li> 3日後、細胞が80になるまで、基礎増殖培地10mlで置き換える - - すべての2使用済みメディアを取り出し、90％のコンフルエント。 </li><li>収穫細胞に、細胞をすすぐために使用済み培地、および追加された塩化カルシウムや塩化マグネシウムなしの1×ダルベッコのリン酸緩衝生理食塩水のピペット3ミリリットルを削除します。ピペット、0.25％の試行の3ミリリットルをこのソリューションを削除しますT-75フラスコ中で増殖している細胞へPSIN-EDTA、および37℃で5分間インキュベートします。基礎成長培地の9ミリリットル - 細胞が付着面から持ち上げた後、6を追加します。 </li><li>遠心機MSCは、室温で5分間、600×gで、上清を吸引し、そして1に再懸濁 - 基礎成長培地5mlの。デバイス命令を使用して、血球計数器を用いて細胞を数えます。 </li><li>同じ条件を用いて、全細胞の再懸濁、遠心機から1×10 6細胞を除去し、上清を吸引除去します。 </li></ol></li></ol>セルシードアルギン酸ディスクの2形成<ol><li> 1×10 6細胞/ mlの細胞密度を達成するために、滅菌アルギネート/培地溶液1mlで細胞ペレットを再懸濁します。細胞が適切に混在している場合、細胞 - アルギン酸塩の混合物は、外観が均一に曇っなります。 </li><li>ピペット金型の下半分の6つの直径6mmのx 3ミリメートル背の高いウェルに細胞 - アルギン酸塩の混合物130μlの気泡を作成しないように、滴下して構築します。わずかな凸状メニスカスは、各ウェルの縁上記表示されるはずです。 </li><li>慎重に滅菌スパチュラを用いて、金型構造体の上半分を滑らかと細胞マイクロシーブ膜が井戸の上になるように、それを裏返します。完全セルとアルギン酸塩の混合物を含むウェルをカバーするのに確認して、井戸の上にモールド構造体を配置します。 </li><li>中央をしっかり押しながら、ロードされたモールド構造体を持ち上げて、バインダーは、モールド構造体の上部と下部の半分を固定するために、残りの二辺（上部と下部）をクリップします。細胞アルギン酸ソリューションは確実にこの時点でウェルに囲まれるべきです。 </li><li>構築物全体が水没していることを確認して、102 mMの塩化カルシウム浴中の固定金型構造体を浸し。 90分間室温で細胞培養フード中でインキュベートします。 </li><li> 90分の終わりに、102 mMの塩化カルシウムからモールド構造体を除去します細胞培養フード内ペーパータオルのスタック上の風呂と場所。すべての4つのバインダークリップを外し、金型構造体の2つの半分を分けます。ウェル内に形成されたヒドロゲルは、任意の気泡を持つべきではないと完全に井戸を埋める必要があります。 </li><li>へらを使用して、慎重に慎重に緩め、ヒドロゲルをウェッジハイドロゲルを含むウェルの縁をたどります。金型構築物からヒドロゲルを除去した後、塩化カルシウムおよび塩化マグネシウムと1×ダルベッコのリン酸緩衝生理食塩水の槽に直接ヒドロゲルをドロップします。 5分 - 1のための過剰な塩化カルシウム溶液を洗い流し、完全にゲルをカバーしています。 </li><li>完全にハイドロゲルをカバーする目的の皿の中の基礎増殖培地溶液（ 例えば 、6ウェルプレート）にヒドロゲルを転送します。積層工程に進む前に、37℃で細胞培養インキュベーター中で少なくとも1時間、5％CO 2インキュベートします。 注：細胞を含むヒドロゲルを中に保持することができます3日 - 別の細胞集団とゲルの積層までこの時無期限細胞培養インキュベーターは、メディアの変更はすべて2完了したことを条件とする、望ましいです。 </li></ol>アルギン酸ディスクの3層化<ol><li> 1時間のインキュベーションの最後の半分の時間の間に、ゲルをアニールするための無菌金型やソリューションを収集し、準備します。 <ol><li> x方向（エンドプレートに3（アルミ板に×3の3で、直径6mmのx 1.5ミリメートル背の高い井戸） &quot;ゲル形成型」の高さのウェルの半分を持っている金型を固定することにより、「切断金型を&quot;準備左右にバインダークリップを使用してアルミニウム板3）。 </li><li> X 3（終板に「ゲル形成型」よりも直径が3ミリメートル大きい金型を固定することにより、「アニーリング金型」（9ミリメートルの直径のx 3ミリメートルのアルミニウム板中のx 3の3で背の高い井戸）を準備左右にバインダークリップを使用してアルミニウム板3）。 </li><li>の溶液を準備します100mMの滅菌水にクエン​​酸ナトリウム/ 30mMのEDTA（クエン酸ナトリウム二水和物、エチレンジアミン四酢酸四ナトリウム塩二水和物）。 </li></ol></li><li>皿にメディアから（この例では、hMSCを持つ2つのディスク）所望の細胞集団のゲルを外し、「切断金型」ウェルに配置します。各ゲルは、金型の上に突出したゲルの半分でウェルにぴったりとフィットする必要があります。 </li><li>メスを用いて、（これは半分にヒドロゲルを削減する）金型の表面に沿ってゲルスライス。ゲルの上半分を反転し、開放金型のウェルに配置します。ゲルの半分もよく、金型にぴったりとフィットする必要がありますが、今、両方の半ゲルは、可視カット内面に金型の高さでなければなりません。第二のゲルで繰り返します。 注：警告：のみ内側の切断面は、層状のディスクを形成することになります。外表面を使用して分離半分になります。これは、ゲル表面防止に転写マイクロシーブ膜からそのテクスチャを疑われますアニール処理の成功。 </li><li>マイクロシーブ膜をアニールするゲルの半分の全てに接触していることを確認すると、それらを完全にカバーし、井戸の上に乾電池マイクロシーブ膜のピースを置きます。完全にゲルをカバーすることを確認して、マイクロシーブ膜の上に厚手のろ紙を置きます。 </li><li>それが飽和するまでの厚さの濾紙上に100mMのクエン酸ナトリウム/ 30mMのEDTA（クエン酸ナトリウム二水和物、エチレンジアミン四酢酸四ナトリウム塩二水和物）の溶液をピペット。約750μlの4つのウェルのために十分です。 </li><li>室温で1分間ゲルをインキュベートします。その後、細胞マイクロ篩膜と厚いろ紙を削除し、それらを捨てます。バインダークリップを外し、金型を開きます。 </li><li>各アニールゲルについて、切断面を上に​​向けて準備された「アニーリング金型」にヒドロゲルの1クエン酸ナトリウム/ EDTA処理の半分を転送します。これは、アニール定数の半分になりますruct。 </li><li>切断面が入っているように、この第2の半ゲルを反転、既に「アニーリング型」のゲル上に（異なる細胞型を含んでいてもよい）へら、リフトを使用し、第二クエン酸ナトリウム/ EDTA処理した半ゲルを配置「アニーリング型」で既にゲルの切断面に接触します。 </li><li>そっと2つのゲルの間の任意の気泡を除去するためにスパチュラを用いて2つのゲルを押し。また、必要に応じて、彼らは互いの上に直接あることを確認するために、ゲルを再配置します。 </li><li>穏やかに「アニール型」を持ち上げ、30分間、102 mMの塩化カルシウム浴中に沈めます。エンドプレートでウェルをカバーしないでください。 </li><li> 30分のインキュベーションの後、「アニーリングモールド」を削除し、ペーパータオルの上に置きます。バインダークリップを外し、エンドプレートからモールドを分離します。 </li><li>スパチュラを用いて、アニールゲルを収集し、塩化カルシウムおよびmは1×ダルベッコのリン酸緩衝生理食塩水に入れますagnesium塩化物浴は、ゲルを洗浄します。続いて、転送は、培養のための所望のディッシュ（ 例えば 、6ウェルプレート）で細胞培養培地にヒドロゲルをアニール。 </li></ol>

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</ol>

著者らは開示するものは何もない。

ここでは、軟骨、例えば 、生理学的に層状の組織のものなど、複数の細胞集団の共培養を、研究するための層状のアルギン酸ハイドロゲルディスクを形成するためのプロトコルについて説明します。そのような記載培養プラットフォームとしての層状構造は、同一の培養環境や負荷の下で施す二つの異なる細胞集団との間の相互作用を調べるために使用することができます。 アルギン酸塩は生体適合性であることが見出されており、正常軟骨生物学および組織工学研究12,14のために使用されている陰イオン性直鎖ポリサッカライドです。アルギン酸塩ヒドロゲルは、架橋のために二価の陽イオンを用いて形成されている、例えば 、カルシウムイオン。これらの架橋は、例えば、クエン酸ナトリウムまたはEDTAのようなキレート剤を用いて陽イオンを除去することによって元に戻すことができ、このプロセスはゲル3,4,12で培養された軟骨細胞を単離するために以前に使用されてきました。同様に、同じ原理また、成功したアルギン酸塩二重層内のシートまたは一緒にアルギン酸ビーズの偶数クラ...

このような関節軟骨や椎間板などの圧縮荷重支持組織は、組織の両方の生体力学的機能と適切なメカノトランスダクションのために重要である異種の組織領域で構成されています。だけでなく、細胞組織化され、さまざまな地域での異なる機能が、細胞外マトリックス（ECM）は、組成や組織に変化しています。例えば、関節軟骨は、細胞の形態、機械的機能、およびECMを変えて3プライマリゾーンで構成されています。耐荷重の責任を差動に自分のECMリードの違い。真ん中の深いゾーンは圧縮1への応答のために主に責任がありながら、表層は、主に、ロードするために引張応答に関与しています。同様に、椎間板に、ゲル状の髄核は、ラメラ線維輪に囲まれており、これらの二つの異なる領域内の細胞は、生物物理学的刺激の異なる種類を体験されています組織が ​​受けると、機械的な力に応答するように2組織層内の組織、細胞と細胞外マトリックスのこれらのタイプでは、互いに相互作用します。 このような不均質な組織構造の要約は、組織工学および再生医療における課題のままであり、その生物学的意義の理解は限られています。層状組織ならびに1つの構築物内の細胞の異なる集団の共培養物を分析するためのプラットフォームを培養する必要があります。関節軟骨組織工学では、足場レス層状構築物は、この組織3,4の異なる層を模倣するために様々なECMを堆積する帯状の軟骨細胞の能力を活用することによって構築されてきました。しかしながら、層状ヒドロゲル構築物は、独立して、強固な組織を形成する能力を欠いている細胞集団の多様な種類の相互作用を調査するための機会を提供します。例えば、異なるポップ間葉系幹細胞のulations層状のコンストラクト内で共培養することができます。このような層状足場は、軟骨細胞および改善された組織工学5のための間葉系幹細胞を分化の両方で使用されてきました。異なる細胞集団は、類似のハイドロゲル層に共培養することができるが、単一の細胞型は、細胞6,7から異なる応答を誘発するために剛性または生化学的なコンテンツを変化しているために操作された層内に培養することができる。のみならず多くの異なる生体材料のヒドロゲルは、ポリエチレングリコール又はポリビニルアルコールベース7-9を使用するもののような軟骨組織工学のための細胞集団の層に使用されてきました。しかし、アルギン酸ハイドロゲルは、共培養に不均一な細胞集団を研究するための層状の足場を作成するための最も簡単な生体材料の一つです。アガロースハイドロゲルも容易に形成されているが、アルギン酸ハイドロゲルは容易であることが可能という利点を持っています個々の細胞の分析のために3-D構築物からの細胞のオレーション以前10に記載されているように。以前の研究では、二層アルギン酸ハイドロゲルは、薄いシートに形成されており、これらのシートから、セクションでは、スライスした（ 例えば 、生検パンチを使用して）、そのような生化学的コンテンツや界面剪断特性11,12の分析のためのような特定のアプリケーションのために。薄いアルギネートシートを形成するための別の方法は、複数の層に層別化の可能性と説明したが、依然として機械的試験13に使用するためのヒドロゲルの変更を必要とするであろう。 ここでは、再現性の細胞の異なる集団を共培養に使用するための二層アルギン酸ヒドロゲルのディスクを作成するための方法を提示します。このアルギン酸ディスク・プラットフォームは、いくつかの利点を有しています。主に、再現可能な形状とサイズが小さい生検PUを必要とせずに埋め込まれた細胞の機械的刺激のために助長していますNCH​​や多くのアプリケーションのためのヒドロゲルに他の物理的変化。さらに、細胞生存率は、積層プロセス中に高いままであり、ゲル形成後のゲル内の2つの細胞集団の明確な分離はありません最初のオーバーラップ領域で表示されます。

<table><tbody><tr><td>アルギン酸ナトリウム塩</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A1112</td><td>溶液 DPBS (-/-)</td></tr><tr><td>1x ダルベッコリン酸緩衝生理食塩水 (-/-)</td> を使用して wt% で製造 <td>Gibco Life Technologies&nbsp;</td><td>14190</td><td></td></tr><tr><td>1x ダルベッコのリン酸緩衝生理食塩水 (+/+)</td><td>Gibco Life Technologies&nbsp;</td><td>14190</td><td></td></tr><tr><td>ダルベッコの改造イーグル ミディアム</td><td>Gibco Life Technologies&nbsp;</td><td>11965</td><td>の例。希望する中型</td></tr><tr><td>シリンジフィルター(0.02 &#956;m Nylon)</td><td>FisherBrand</td><td>0979C</td><td></td></tr><tr><td>塩化カルシウム二水和物</td><td>フィッシャーバイオ試薬</td><td>BP510</td><td>滅菌水で溶液を調製</td></tr><tr><td>Criterion Blotter フィルターペーパー</td><td>Biorad</td><td>1704085</td><td>金型形成のためのエンドプレートのサイズにカット</td></tr><tr><td>セルマイクロシーブメンブレン (10 &#956;m細孔サイズ)</td><td>ニューヨークのバイオデザイン社</td><td>N10R</td><td>カビ形成のためのエンドプレートのサイズにカット</td></tr>ク<tr><td>エン酸ナトリウム二水和物</td><td>フィッシャーサイエンス</td><td>S93364</td><td></td></tr>エ<tr><td>チレンジアミン四酢酸四ナトリウム塩二水和物(EDTA)</td><td>フィッシャーバイオ試薬</td><td>BP121</td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎児血清&nbsp;</td><td>Gibco Life Technologies&nbsp;</td><td>26140</td><td>例で使用 間葉系幹細胞基礎増殖培地</td></tr><tr><td>ペニシリン/ストレプトマイシン (10,000 U/ml)</td><td>Gibco Life Technologies&nbsp;</td><td>15140</td><td>例で使用 間葉系幹細胞基礎増殖培地</td></tr><tr><td>L-グルタミン (200 mM)</td><td>Gibco Life Technologies&nbsp;</td><td>25030081</td><td>例に使用 間葉系幹細胞 基礎増殖培地</td></tr><tr><td>非必須アミノ酸 (100x)</td><td>Gibco Life Technologies&nbsp;</td><td>11140050</td><td>例で使われる間葉系幹細胞基礎増殖培地</td></tr></tbody></table>

階層化アルギン酸構築：異種細胞集団の共培養のためのプラットフォーム

Layered Alginate Constructs: A Platform for Co-culture of Heterogeneous Cell Populations

多くの耐荷重組織は、構造的および機能的に異なる領域を持ち、典型的には異なる機械感知特性を持つ異なる細胞表現型を伴います。これらの組織タイプのエンジニアリングと分析は依然として課題です。層状ハイドロゲルコンストラクトは、単一のコンストラクト内の複数の細胞集団間の相互作用を調査する機会を提供します。アルギン酸ヒドロゲルは生体適合性があり、実験後の細胞の分離を容易にします。ここでは、小型の2層アルギン酸ハイドロゲルディスクの開発方法について説明します。このプロセスは、形成過程においてヒト間葉系幹細胞の高い細胞生存率を維持し、これらの層状ディスクは、軟骨形成中のhMSCの刺激に一般的に使用される、閉じ込められない周期的圧縮に耐えることができます。これらの層状構造は、追加のレベルを含むようにスケールアップできる可能性があり、また、層状化後に最初に細胞集団を分離するためにも使用できます。この二層アルギン酸ヒドロゲル培養プラットフォームは、耐荷重組織の細胞のエンジニアリングと分析、他の細胞タイプの共培養など、さまざまなアプリケーションに使用できます。

図1は、アルギン酸塩ヒドロゲルの形成と階層化を示しています。 図2に示すように、完成した二層状ゲルは、細胞集団の完全な初期の分離を示す。ヒト間葉系幹細胞の細胞生存率）をこれらのヒドロゲル内に埋め込 ​​まれ、層状、図3に示すように、バルクのヒドロゲル高と同等のままである。生存率を評価しました。アニール後、センターにアクセスするには、垂直方向にゲルをスライスした後、製造元の指示を使用して、エチジウムホモダイマー1で生細胞トラッカー、CMFDA（緑）および死細胞（赤）とアニールゲル中の生きた細胞を染色します。共焦点Z - スタックは、約100μmのゲルに蛍光顕微鏡を使用して切断面を撮影しました。これらの画像は、1つの2D画像に投影しました。生細胞と死細胞を、次いで、ImageJソフトウェアにおける粒子分析機能を用いて定量しました。 <p<html> FOクラス= &quot;jove_content&quot;：キープtogether.withinページ= &qu...

不均一な細胞集団を持つ耐荷重組織のエンジニアリングと分析は、まだ課題です。ここでは、1つのコンストラクト内で多様な細胞集団を共培養するためのプラットフォームとして、二層アルギン酸ヒドロゲルディスクを作製する方法について説明します。

Many load bearing tissues possess structurally and functionally distinct regions, typically accompanied by different cell phenotypes with differential ...

本手順の全体的な目的は、3D共培養における異なる細胞集団間の関係を調査するために、再現性のある2層構造のアルギン酸ハイドロゲルディスクを作製することです。この手法は、空間的に不均一な3D培養における複数の細胞集団間の相互作用の研究を促進し、組織工学や荷重支持組織の生理学における重要な課題の解決に寄与します。本技術の主な利点は、機械的刺激に適した構造を持つ、細胞播種済みの多層アルギン酸ハイドロゲルを構築するための、簡便で経済的かつ再現性のある方法を提供することです。この手順のデモンストレーションを行うのは、私の研究室の大学院生であるPoonam Sharmaです。アルギン酸ディスクを作成するには、まず3x3インチのエンドプレートの上に厚手のフィルターペーパーを重ね、その上にセルマイクロシーブメンブレンを配置します。滅菌済みのスパチュラを使用して、メンブレンとフィルターペーパーを平らにしてください。次に、スタックをペーパータオルの山の上に反転させ、材料を圧縮して過剰な塩化カルシウム溶液を除去します。続いて、円筒状のウェルを持つゲル形成型をマイクロシーブメンブレンの上に置き、バインダークリップを使用して、型の左右をエンドプレートに軽く固定します。ここで、厚いフィルターペーパーを小さなエンドプレートの上に重ね、その上にマイクロシーブメンブレンを重ねて、先ほど示したようにスタックを反転させて過剰な塩化カルシウムを除去します。モールドの両半分が準備できたら、目的の細胞を1 mLあたり10⁶個の濃度で、滅菌済みのアルギン酸培地に再懸濁します。細胞が適切に分散すると、混合液は均一に混濁します。次に、細胞懸濁液130 µLを、モールド構造の下半分にある直径6 mm、高さ3 mmの各ウェルに滴下して移します。各ウェルの縁の上に、わずかに凸状のメニスカスが見えるはずです。すべての細胞を播種した後、滅菌スパチュラを使用して、モールド構造の上半分を注意深くならします。次に、マイクロシーブ膜がウェルの上にくるようにモールドを反転させ、細胞とアルギン酸の混合物を含むウェルを完全に覆うように注意しながら、モールドをウェルの上に配置します。型がセットされたら、充填した型構造体を持ち上げ、中央を強く押し付けながら、型構造体の残りの2辺にバインダークリップを取り付けて型の上下半分を固定します。細胞入りアルギン酸溶液がウェルにしっかりと収まっていることを確認してください。次に、型構造体全体を、室温の細胞培養フード内で102 millimolar 塩化カルシウム浴に90分間浸漬させます。インキュベーション終了後、構造体をペーパータオルの上に移し、モールドに上部エンドプレートを固定している2つのバインダークリップを取り外します。構造体の2つの半分を分離します。ウェル内に形成されたハイドロゲルに気泡がなく、ウェルが完全に満たされていることを確認してください。残りの2つのバインダークリップを取り外し、ハイドロゲルを含むモールドをもう一方のエンドプレートから分離します。スパチュラを用いて、ハイドロゲルが入ったウェルの縁を慎重になぞり、ゲルをゆっくりと剥がします。その後、ハイドロゲルを塩化カルシウムおよび塩化マグネシウムを含むDPBSのバスに直接移します。1〜5分後、ハイドロゲルを6ウェルプレートの各ウェルに移します。各ウェルには、ゲルが完全に浸る十分な量のバジル成長培地溶液を入れておき、37 °C、5% CO2の条件下で少なくとも1時間インキュベートします。インキュベーションの最後の30分間に、ゲル形成用モールドの高さの半分となるウェルを持つモールドを、バインダークリップで左右の3×3インチまたは3×1.5インチのアルミニウムエンドプレートに固定し、カッティングモールドを作成します。次に、ゲル形成用モールドよりも直径が3 mm大きいウェルを持つモールドを、左右の3×3インチアルミニウムエンドプレートにクリップで固定し、アニーリングモードを作成します。次に、ハイドロゲルをカッティングモールドのウェルに移します。各ゲルがウェルにぴったりと収まり、ゲルの半分がモールドの上に突き出している状態にします。そして、メスを用いてモールドの表面に沿って切り、ハイドロゲルを半分に切断します。ゲルの上半分をひっくり返し、開いたモールドのウェルに入れます。ゲルの断片がウェルにぴったりと収まり、両方の半分がモールドと同じ高さになり、切断した内面が見えている状態にします。次に、乾燥したセルマイクロシーブ膜をウェルの上に置き、アニーリングするすべてのゲルの半分に膜が接触していることを確認し、膜を厚手のフィルターペーパーで覆います。ゲルが完全に覆われたら、EDTAを添加したクエン酸ナトリウム溶液でろ紙を飽和させ、室温でゲルをインキュベートします。1分後、細胞マイクロシーブ膜と厚手のろ紙を廃棄し、バインダークリップを取り外します。次に、型を開き、ゲルの半分を、切断面を上にして準備したアニーリング型に転送します。スパチュラを使用して、2枚目の処理済み半面ゲルを1枚目のゲルの上に、切断面同士が接触するように重ねます。すべてのゲルを配置した後、スパチュラでゲルを軽く押し付けて気泡を除去し、アニーリングモールドを塩化カルシウム浴に慎重に浸します。30分後、アニーリングモールドをペーパータオルの山の上に移動させ、バインディングクリップを取り外します。次に、金型をエンドプレートから分離し、ゲルを短時間 DPBS バスに転移させた後、適切な細胞培養液に浸します。完成した二層ゲルでは、緑色または赤色のセルトラッカー染料で標識された 293 FT 細胞のこの画像に見られるように、細胞集団が完全に分離しています。アニーリング後に埋め込まれたヒト間葉系幹細胞の生存率は、バルクハイドロゲルで観察される細胞生存率と同様に、層状ハイドロゲル内でも高くなっています。4時間の非拘束サイクリック圧縮における各サイクルのピーク応力を分離して解析した結果、細胞を含まない層状ハイドロゲルは、バルクの非層状細胞不含ハイドロゲルと比較して、サイクリック圧縮に対する応力応答の大きさが有意に小さいことが示されました。なお、どちらのタイプのハイドロゲルも、7日間の培養後も損なわれずに維持されていました。習得すれば、すべての材料調製を含むこの手法は、適切に行えば4時間半以内に完了させることができます。この手順を行う際は、誤りを防ぎ、異なるサンプルをより容易に管理できるよう、慎重にゆっくりと作業することが重要です。本手順の後、機械的刺激や免疫染色などの他の手法を用いることで、形成される細胞外マトリックスにおける異なる細胞集団間の相互作用に関するさらなる疑問を明らかにすることができます。この手法により、メカノバイオロジーや組織工学分野の研究者は、間葉系幹細胞、軟骨細胞、および髄核細胞などの異なる細胞集団間の関係をより容易に調査することが可能になります。鋭利な器具、生物学的材料、特にヒト細胞の取り扱いは極めて危険であるため、本手順の実施中は、適切な個人用保護具の着用などの予防策を常に講じることを忘れないでください。

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