Name: 「ファゴソーム閉鎖アッセイ」全反射蛍光顕微鏡（TIRFM）を用いて、三次元的にファゴソーム形成を可視化します (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-26T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 7 s
Description: 学ぶ TIRF顕微鏡を用いたファゴソーム形成の三次元可視化法。生マクロファージにおけるファゴサイトーシス動態をリアルタイムで観察し、免疫細胞機能の理解に貢献します。

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実験的なアプローチについての最初の議論をいただいたアレクサンドル・ベンメラ博士(フランス、パリ)と原稿を読んでくださったジャミル・ジュブライル博士に感謝します。Nadège Kambou と Susanna Borreill は、当研究室でこの手法を用いた実験を行ったことで知られています。この研究は、CNRS(ATIPプログラム)、Ville de ParisおよびAgence Nationale de la Recherche(2011 BSV3 025 02)、Fondation pour la Recherche Médicale(FRM INE20041102865、FRM DEQ20130326518 FMAの博士フェローシップを含む)からFNへの助成金、およびJMの博士フェローシップを含むAgence Nationale de Recherche sur le SIDA et les hépatites virales」(ANRS)からの助成金によって支援されました。

注：Lifeact-mCherryを使用したプラスミドは、17の後に生成された博士ギョームMontagnac、キュリー研究所、パリ、一種の贈り物です。 1.細胞およびトランスフェクション注：RAW264.7マクロファージをサブコンフルエント完全培地中（RPMI（ロズウェルパーク記念研究所）1640培地に増殖させ、10mMのHEPES、1mMピルビン酸ナトリウム、50μMのβメルカプトエタノール、2mMのL-グルタミン及び10％FCS（ 100ミリメートルプレートにおけるウシ胎児血清））。これらは、エレクトロポレーションによって、蛍光標識されたタンパク質をコードするプラスミドでトランスフェクトされます。日常的に約5から6×10 6個の細胞をそれぞれトランスフェクションまたは同時トランスフェクション用プラスミド20μgのまたは10μgのトランスフェクトされます。エレクトロポレーションまたはリポフェクションに基づいて、トランスフェクションの他の手段は、代替的なアプローチとして使用できることに注意してください。 <ol><li>セルリフターで細胞をこすり落とし、数回ピペッティングにより培養液10mlに再懸濁します。 </li><li>遠心分離機細胞懸濁液を300×gで、スイング角度ローターで、室温で5分。 </li><li>完全培地の予熱10mlを37℃にてゲンタマイシン10μg/ mlのを補充しました。 </li><li>遠心分離後、上清を破棄し、エレクトロポレーションキットから「洗浄バッファーA」の3ミリリットル中にペレットを再懸濁。 </li><li>細胞懸濁液を300×gで、スイング角度ローターで室温で5分間遠心します。 </li><li>その間に、室温でDNAミックスを準備します。QSP 240μlのH 2 O 120μlの2×緩衝液B、目的のタンパク質のためのプラスミドDNAコーディングの20μgの、 </li><li>遠心分離後、全体上清を捨てます。 </li><li> DNA混合物中の細胞ペレットを再懸濁し、4ミリメートルのエレクトロポレーションキュベットに移します。 </li><li> 3分間室温でインキュベートします。 </li><li> 250 V、900μFで電気穿孔。 </li><li>すぐにゲンタマイシンを補充した予熱した（37℃）完全培地中で細胞を再懸濁し、プレート100ミリメートル皿でメートル。 </li><li> 37℃、5％CO 2で一晩トランスフェクトされた細胞を培養します。 </li><li>翌朝は、無血清顕微鏡培地10ml（フェノールレッドなしのRPMI 1640、10 mMのHEPES、1mMピルビン酸ナトリウム、50μMののβメルカプトエタノール、2mMのL-グルタミン）で完全培地を交換してください。 </li></ol>赤血球の2オプソニン注：マクロファージ粒子対象のモデルとして、ヒツジ赤血球（SRBC）を使用します。通常、35ミリメートルガラスボトムディッシュあたり約7×10 6 SRBCをが使用されます。 <ol><li> 1×PBS（リン酸緩衝生理食塩水）/0.1% BSA（ウシ血清アルブミン）及び遠心（600×gで、4分）の100μlでSRBCを洗浄します。 </li><li>遠心分離後、上清を廃棄し、1×PBS / 0.1％BSAおよび遠心分離（600×gで、4分）の100μlのSRBCを再懸濁します。 </li><li>遠心分離後、上清を破棄し、ウサギのIgG抗SRBCを用いて1×PBSで/ 0.1％BSAをSRBCを再懸濁サブ凝集濃度で。 SRBCをの抗体/ 5μLを含む溶液500μlを使用してください。 注：抗体のサブ凝集濃度は、ネットワークの形成として検出凝集を誘発しなかった最低の濃度に相当します。一般に、サブ凝集濃度は、8.2μgの/ mlです。 <ol><li>赤血球凝集試験によってSRBCををオプソニン化するために必要なのIgG抗SRBCをの濃度を決定します。マイクロプレート内の1 / 25,600 - シリアル1/50の間（13.1 mg / mlでの在庫）のIgG抗SRBCを希釈します。各ウェルに2×10 6 SRBCをを追加します。いくつかの時間室温で暗所でプレートをインキュベートします。 </li></ol></li><li>低速回転で30分間、室温でインキュベートします。 </li><li> 1×PBSで2回洗浄/上記のように0.1％BSA後、予め温めた無血清顕微鏡培地中のIgGオプソニン化SRBCを抗体（IgG-SRBC）で（2ミリリットル/皿）に再懸濁します。 </li></ol>カバーガラスの3ポリリシンコーティング<ol><li>その間室温で30分間、0.01％ポリ-L-リジンの2mlで35mmのガラスボトムディッシュを治療します。 </li><li> 1×PBSの2ミリリットルで皿を2回洗浄します。 </li></ol> 4.グラスボトムディッシュにSRBCをの非共有結合固定<ol><li> 35ミリメートルのガラスボトムディッシュあたりSRBCを懸濁液の2ミリリットルを注ぎます。 </li><li> 35ミリメートルのガラスボトムディッシュ上に2分間で500×gでスイングローターで遠心分離します。 </li><li>上清を除去し、1×PBS / 10％のBSAの2mlで1回洗浄。 </li><li>ディッシュあたり1×PBS / 10％BSAの2mlで30分間粒子をインキュベートします。 </li><li> 1×PBSの2ミリリットルで皿を3回洗浄します。 </li><li>予め温めた（37℃）で、無血清顕微鏡培地2mlの1×PBS置き換えます。 </li></ol> 5.貪食TIRFMによって可視化<ol><li> 顕微鏡 注：TIRFMは、油浸対物レンズ（N 100X、NA1.49）、CO 2と加熱室を備えた顕微鏡を用いて行い、両者が歌います1.5Xレンズと相まってル光子検出カメラEMCCD（電子増倍電荷結合素子）。 <ol><li> TIRF顕微鏡セッションの前日には、顕微鏡ステージの均一な加熱を可能にするために、37ºCで加熱室をオンにします。 </li></ol></li><li> 臨界角の決意 注：ImageJのカラープロファイラーソフトウェアがTIRF画像ストリームを処理するために使用されます。 <ol><li>顕微鏡下で無血清顕微鏡培地でオプソニン化SRBCを含む35ミリメートルのガラスボトムディッシュを置きます。 </li><li>細胞をこすり落とし、それらを追加する前に、培地中に再懸濁 - 皿に（100〜500μl）を。 </li><li>顕微鏡を制御し、491 nmおよび/または蛍光タグ化タンパク質を発現する細胞を同定するために561 nmレーザーで励起を行うために、「ライブ取得」ソフトウェアを使用してください。 </li><li>蛍光標識されたタンパク質を発現する細胞を識別します。 </li><li>フィールドの真ん中にそれを置き、500イムを取得異なる角度を持つ1つの励起波長での年齢は、0.01º（ 図2A）の増加と、5°までの0°から始まります。角度が自動的に顕微鏡システムによって変更されます。 </li><li>入射光が完全にガラス/媒体界面で反射されることを可能にする臨界角を決定し、エバネッセント波を発生させます。 ImageJのカラープロファイラーソフトウェアを使用して、「ファイル」をクリックして「開く」画像シーケンスを開き、ファイルを選択します。 </li><li>均一な蛍光（ 図2B黄色1）と細胞内で、長方形ツールを使用して、関心領域（ROI）を選択します。 </li><li>ドロップダウンメニューと「プロットZ軸プロファイル」の「スタック」、「画像」タブをクリックすることにより、x軸の角度の関数とROIで測定された平均蛍光強度」、Z軸のプロファイルを「プロット（ 図2B赤2）。 注：臨界角はミリアンペアにつながる角度であります蛍光の急激な減少の前にximum蛍光。 </li><li>例2.00（ 図2C）としてTIRF信号を得るために、顕微鏡のセッション中に臨界角よりも優れた、x軸上の角度のいずれかの値を使用してください。 </li></ol></li><li> 買収 <ol><li>ライブ取得ソフトウェアを使用して、「プロトコル・エディター」（ 図3A）モジュールと買収のパラメータを設定します。 <ol><li> TIRF地域への関心のタンパク質からの蛍光信号を取得する「マルチチャンネル」の取得を含む「ループ」でプロトコルを作成します。 （例えば、2.00用）TIRF角、露光時間（例えば50ミリ秒）とレーザー強度（例えば50％）（図3B 1）を入力します。 </li><li> 「マルチチャンネル」ツールを使用して落射蛍光における信号取得を取得するためにTIRF地域上記の目的3μmの「Z移動」を導入。トン以下の角度を入力してください彼臨界角（例えば1.00など）、博覧会の時間（50ミリ秒）及びレーザー強度（50％）（ 図3B、図2及び図3）。 </li><li>次TIRF地域（ 図 3B 4）に戻るには、3ミクロン以下の目的の「Z移動」を追加します。 （発光ダイオード）（ 図3B 5）LED明るい光の中で、細胞の「スナップショット」を追加します。 </li></ol></li><li>粒子の周囲に、原形質膜を拡張することによってSRBCの食作用を開始する蛍光タグ付きタンパク質発現の適度なレベルで目的の細胞を見つけます。 </li><li>フィールドの中央に配置します。 </li><li>千フレーム - 500の取得をストリーミングを開始。 「ル ​​ープ回数」タブで、「750フレーム」（ 図 3B 1）を入力します。 注：ImageJのカラープロファイラーソフトウェアがTIRF画像ストリームを処理するために使用されます。 </li><li>クリックして画像Jソフトウェアのシーケンスの画像を開きます。、「開く」「ファイル」とファイルを選択します。 </li><li> 「Hyperstacksは「機能」をhyperstackするスタック」ドロップダウンメニュー上に、タブの「イメージ」をクリックすることで、チャネルを分離。注文：登場ウィンドウ完了xyctzを。チャネル（C）：チャンネル数（例： &quot;2&quot;次の2つの蛍光色素を持っている場合）。スライス（z）は、Z軸方向におけるスライスの数（例：「1」z軸での動きがない場合）。フレーム（トン）：チャンネル数毎に分割された画像の数;表示モード：グレースケール。 注：2つの別個の画像シーケンスが生成され、二つの異なるチャネルに対応します。 </li></ol></li></ol>

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</ol>

著者らは開示するものは何もない。

ここで説明する実験プロトコルは、リアルタイムで生細胞で、高分解能で、ファゴソームの形成、特にその閉鎖に従う前例のない方法を提案しています。いくつかの技術的側面について議論する必要があります。まず、アッセイは温度に非常に敏感です。食作用の効率を損なう可能性のある温度変化を避けるために、加熱チャンバーが37°Cであること、およびすべての培地、デバイス、またはセルがチャンバー内に保持されていることを確認することが非常に重要です。微妙な温度変化でファゴソームの形成を防ぐのに十分であることに気づきました。第二に、ここで説明するプロトコルにより、実験全体で使用されるTIRF角度を正確に決定できます。これは、TIRF実験を行う際に大きな利点となり、原形質膜付近での事象について自信を持って結論付けることができると考えています。第三に、一過性にトランスフェクトされた細胞を扱う場合、目的のタンパク質の発現レベルが中程度の細胞を選択することが重要です。ゲノム編集技術の革命により、天然レベルでタンパク質を発現する細胞を扱うことが可能になります。したがって、定量的蛍光顕微鏡法は、生細胞の主要な機能のダイナミクスを探索することが可能になります。 
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食作用は、その後、摂取された物質の内在化および分解につながる、認識で始まり、受容体表面への材料の結合の主要な細胞機能です。このような金型細胞性粘菌とアメーバのような単細胞真核生物は、細菌に供給するための食作用を使用していますが、高等生物はプロの細胞と進化してきました。マクロファージや樹状細胞は様々な組織や臓器中の病原体に対する防御の最前線であり、抗原提示およびサイトカイン産生1-4を通じて適応免疫系を活性化することが重要です。特定の状況下では食作用は、非専門の食細胞、 例えば、内皮細胞および上皮細胞によって行うことができます。このプロセスは、開発中と正常組織のターンオーバーおよびリモデリングのための成人期に恒常性を維持することが重要です。精巣または網膜におけるこのようなセルトリ細胞として最後に、専門的な食細胞色素上皮細胞は、非常に強力な食5です。 微生物や細胞破片の劣化が食細胞の表面上の貪食受容体のクラスタリングで開始を発生ファゴソームの形成。このようなFc受容体（FcRで）又は補体受容体（CRS）などのオプソニン受容体のクラスタリングを次の下流のシグナル伝達事象は十分に特徴づけられています。しかし、Toll様受容体（TLR）を含む非オプソニン受容体、レクチン、マンノース受容体およびスカベンジャー受容体多数のもあります。これらの受容体は、マンノースまたはフコース残基、ホスファチジルセリン、およびリポ多糖1,6-9などの粒子表面上の決定基を認識する。 病原体や細胞破片認識はに結合し、その後激しいと過渡アクチンの再構築につながる食細胞受容体のいくつかのタイプのクラスタリングを伴います。細胞内compartmenのパラレル、焦点エキソサイトーシスでtsが膜張力の解放に貢献し、大きな粒子の効率的な食作用のために重要です。アクチン重合および膜変形につながるシグナル伝達事象は、単一の貪食受容体をトリガーした実験モデルで解剖しました。 FcR媒介性の食作用の間に、低分子量GTPアーゼ（RAC、Cdc42の）によって調節される強いアクチン重合があります。その下流のエフェクターの中でも、ウィスコット・アルドリッチ症候群タンパク質（WASP）は、アクチンフィラメント1,2,4,10を核とアクチン関連タンパク質複合体2/3（ARP2 / 3）の活性化をもたらします。ホスファチジルイノシトール4、5-ビスリ ​​ン酸（PI（4,5）P 2）の現地生産は、仮足の形成を駆動する初期のアクチンの重合のために重要です。 PI（3,4,5）P 3への変換は、仮足の拡張とファゴソームの閉鎖11のために必要とされます。いくつかの経路は、PI（4,5）P 2の消失に寄与する。ホスファチジルイノシトールリン酸キナの最初に脱落ファゴソームの逮捕のPI（4,5）P 2合成からSES（PIPKIs）。第二に、それがリン酸化することができると私はキナーゼ（PI3K）をPI3Kクラスによって消費され、PI（3,4,5）P 3 12で変換されました。ホスファターゼ及びホスホリパーゼの役割はまた、哺乳動物細胞および細胞性粘菌 13,14における食作用の間にPI（4,5）P 2の加水分解およびF-アクチンの除去に暗示されています。ホスホリパーゼC（PLC）δは、ジアシルグリセロールおよびイノシトール1,4,5- トリスホスフェートにPI（4,5）P 2を加水分解する。 PI（4,5）P 2およびPI（3,4,5）P 3ホスファターゼOCRL（ロウの眼脳腎症候群）もファゴソーム形成に関与しています。 F-アクチンとその解重合の正確な局所的形成は、しっかりと空間と時間に規制され、我々は細胞内区画の募集がローカルOCRLホスファターゼを提供することが重要であることが示されている、したがって、貪食カップの底部に局所のアクチン脱重合に寄与します<sup&gt; 13,15。このために、我々はここに記載された実験セットアップを使用していました。 機構とファゴソームの閉鎖および膜の切断のために必要とされる分子の選手が不十分なため、ファゴソーム閉鎖のサイトを可視化と監視の難しさの定義されたままです。最近まで、食作用は難しいファゴソーム閉鎖のサイトのタイムリーな可視化を行う、彼らの背面にまたはその両側に粒子を内部固定または生きている細胞で観察されました。また、固定方法は、膜とバイアス仮足の拡張と閉鎖に結果の後退を引き起こす可能性があります。これとは対照的に、我々が設定し、ここで説明しているアッセイは、私たちは偽足拡張子と内部全反射顕微鏡（TIRFM）16に基づいて、生細胞13内食作用の閉鎖ステップを、可視化することができます。この光学技術は、透明との間の界面に薄い領域でのフルオロフォアを励起するエバネッセント波を使用していますので、蓋（カバーガラス）と液体（細胞培養培地）。励起深さの厚さは、原形質膜に近い分子事象の可視化を可能にする、固体表面から約100 nmです。 TIRFMは、高い信号対バックグラウンド比を可能にし、細胞の照明に起因収集ピンボケ蛍光および細胞毒性を制限します。 TIRFMを利用して、我々は、カバースリップは、ポリ - リジンで活性化した後、IgGのオプソニン化赤血球抗体（IgG-SRBC）でで被覆された「ファゴソーム閉鎖アッセイ」を開発しました。関心の一過性の蛍光標識されたタンパク質を発現しているマクロファージは、その後のIgG-SRBCを巻き込むために許可されています。細胞は、非共有結合ガラス表面に結合している標的粒子を切り離しながら、偽足の先端部を観察し、TIRFモードで記録することができます。 TIRFの買収は、VISを可能にする、3ミクロン以上のステージをシフトした後に、落射蛍光モードでの買収と組み合わされます貪食カップのベースのualization。そのようなプロセスの間にアクチンまたはダイナミンを阻害するもののような薬理学的薬剤の添加は、分子レベルでのプロセスを分析することも可能です。 ここでは詳細に説明されたプロトコルは、RAW264.7マウスマクロファージ細胞株およびオプソニン化粒子についてであるが、実質的に、それは、他の食細胞およびビーズなどの他の標的と適合させることができます。この方法は、時間と様々な貪食過程で仮足の拡張とファゴソームの閉鎖に関与する分子の選手の空間に規制のより良い特徴付けを可能にします。

<table><tbody><tr><td>抗羊赤血球IgG</td><td>MP生物医学</td><td>55806</td><td></td></tr><tr><td>ウシ血清アルブミン熱ショック画分、pH 7、&ge;98%&nbsp;</td><td>シグマ</td><td>A7906</td><td></td></tr><tr><td>セルリフター</td><td>コーニング</td><td>3008</td><td></td></tr><tr><td>キュベット 4 mm</td><td>セルプロジェクト</td><td>EP104</td><td></td></tr><tr><td>DPBS、カルシウムなし、マグネシウムなし</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィッシュ</td><td>14190-094</td><td>室温</td></tr><tr><td>エレクトロバッファーキット</td><td>セルプロジェクト</td><td>EB110</td><td></td></tr><tr><td>100 mm TC処理 細胞培養ディッシュ</td><td>コーニング</td><td>353003</td><td></td></tr><tr><td>遺伝子X細胞パルサー</td><td>Biorad</td><td>165-2661</td><td></td></tr><tr><td>ゲンタマイシン溶液</td><td>Sigma</td><td>G1397</td><td></td></tr><tr><td>ガラス底皿 35 mm コーティングされていない 1.5</td><td>MatTek Corporation</td><td>P35G-1.5-14-C Case</td><td></td></tr><tr><td>iMIC</td><td>TLL Photonics</td><td></td><td>油浸対物レンズ (N 100X, NA1.49)、CO2 付き加熱チャンバー、カメラ単一光子検出 EMCCD (ElectronMultiplying Charge Coupled Device)と1.5倍レンズ</td></tr><tr><td>Poly-L-Lysine Solution 0.1%</td><td>Sigma</td><td>P8920-100ml</td><td>Dilution at 0.01% in water&nbsp;</td></tr><tr><td>RPMI 1640 ミディアム グルタマックス&nbsp;サプリメント</td><td>ライフテクノロジー</td><td>61870-010</td><td></td></tr><tr><td>RPMI 1640 ミディアム、フェノールレッドなし (10 x 500 ml)</td><td>ライフテクノロジー</td><td>11835-105</td><td>37°Cで温かく;使用前のCウォーターバス</td></tr><tr><td>羊の赤血球(SRBC)</td><td>Eurobio</td><td>DSGMTN00-0Q</td><td>Alsever緩衝液に4°Cで保存されています。C使用前</td></tr></tbody></table>

「ファゴソーム閉鎖アッセイ」全反射蛍光顕微鏡（tirfm）を用いて、三次元的にファゴソーム形成を可視化します

"Phagosome Closure Assay" to Visualize Phagosome Formation in Three Dimensions Using Total Internal Reflection Fluorescent Microscopy (TIRFM)

食作用は、微生物や細胞の破片を内在化して排除するために特殊な細胞が使用するメカニズムです。これは、粒子の周りの原形質膜の伸長の原動力であるアクチン細胞骨格の深い再配列に依存しています。さらに、大きな物質の効率的な飲み込みは、細胞内コンパートメントの局所的なエキソサイトーシスに依存しています。このプロセスは非常に動的であり、食作用カップの形成中に多数の分子プレーヤーが役割を果たすことが説明されています。しかし、これらすべての分子の時間と空間の正確な制御は、まだとらえどころのないままです。さらに、ファゴソームの閉鎖の最終ステップは、RNA干渉またはドミナントネガティブ変異体による阻害がしばしばファゴサイトークカップ形成の停止をもたらすため、観察が非常に困難でした。
私たちは、全反射蛍光顕微鏡法(TIRFM)と落射蛍光を組み合わせた専用の実験アプローチを設定し、カバースリップに緩く結合した粒子の周囲に成長するファゴソーム内の偽足の伸長とその先端を段階的に監視しています。この方法により、2つの異なる蛍光標識タンパク質について、生細胞内のファゴソームの閉鎖中の偽足の先端とそれらの融合を高解像度で観察することができます。

本稿に記載された実験システムを図1に概略的に示されている。蛍光タグに融合した目的のタンパク質を発現するトランスフェクトRAW264.7マクロファージは、非共有結合的に固定したIgGオプソニン化ヒツジ赤血球（SRBC）と接触するように配置されていますカバースリップ上。マクロファージはそれを巻き込むためにカバースリップからSRBCを切り離すことができます。使用TIRF顕微鏡はTIRF領域からの信号の同時取得が3μm以上のZシフト後落射蛍光モードで偽足との信号の先端に対応することができます。 図2で説明したように、原形質膜100nm以下の領域からクリーンなTIRF信号を確実に全反射蛍光の臨界角を決定することが必須である。 図3は acquisitiの発展を表します「プロトコル・エディタ」と呼ばれるモジュールを介してパラメータにライブ集録ソフトウェアに含まれ...

全反射蛍光顕微鏡を用いて、生きたマクロファージにおける前例のない高分解能のファゴソーム形成とクロージャを3次元で可視化するための実験設定について説明します。これにより、食細胞カップの基部、伸びる偽足、および食細胞の正確な部位を監視できます。

「ファゴソーム閉鎖アッセイ」全反射蛍光顕微鏡（TIRFM）を用いて、三次元的にファゴソーム形成を可視化します

Phagocytosis is a mechanism used by specialized cells to internalize and eliminate microorganisms or cellular debris. It relies on profound rearrangements ...

このプロトコルの全体的な目標は、全反射蛍光法(TIRF Microscopy)を使用して、生きているマクロファージのファゴソーム形成とファゴソーム分裂の正確な部位を3Dで視覚化することです。この方法は、TIRF顕微鏡法と落射蛍光法を組み合わせて、偽足伸展およびチップ融合中の2つの異なる蛍光タンパク質の段階的な局在をモニターします。この手法は、臨界角を決定し、原形質膜の近くについて結論を出すために重要なTIRF信号を取得するための体系的な方法を提供します。TIRF顕微鏡セッションの前日に、加熱チャンバーを摂氏37度にオンにして、顕微鏡ステージを均一に加熱できるようにします。翌朝、100マイクロリットルのPBSを使用し、0.1%BSAを補充して、35ミリメートルのガラス底皿あたり6番目の羊の赤血球またはSRBCに7x10を2回洗浄しました。2回目の遠心分離後、細胞を500マイクロリットルのウサギIGG抗SRBCsに再懸濁し、細胞5マイクロリットルあたり0.1%BSAを添加したPBSで、低凝集濃度で、細胞をゆっくりと回転させて30分間インキュベートします。インキュベーションの終了時に、SRBCをPBSとBSAで2回洗浄し、皿ごとに2ミリリットルの摂氏37度の無血清顕微鏡培地に細胞を再懸濁します。次に、35mmのガラス底皿を2mlの0.1%poly-Lリジンで室温で30分間処理し、続いて2mmLのPBSで2回洗浄します。SRBCの非共有結合固定には、2ミリリットルのIGGオプソニン化細胞をポリリジンコーティングされた各皿に注ぎ、スイングローター遠心分離機でサンプルを遠心分離します。上清を捨て、粒子を2ミリリットルのPBSと10%BSAで1回洗います。次に、粒子を2ミリリットルの新鮮なPBSと10%BSAで室温で30分間インキュベートし、続いて2ミリリットルのPBSで3回洗浄します。最後の洗浄後、PBSを2ミリリットルの摂氏37度の無血清顕微鏡培地と交換します。SRBCコーティングされたディッシュを顕微鏡ステージに置きます。次に、トランスフェクションした目的の細胞を培養皿の底から掻き取り、細胞を数回ピペットで動かして単一細胞懸濁液にします。トランスフェクションした細胞をSRBCコーティングシャーレに加えます。ライブ取得ソフトウェアを起動します。蛍光タグ付きタンパク質を発現する細胞を見つけ、目的の細胞がフィールドの中央に来るようにディッシュの位置を調整します。1つの励起波長で、0から5%までの異なる角度で0.01度刻みで500枚の画像を取得します。入射光がガラス-媒質界面で完全に反射され、エバネッセント波を生成する臨界角を決定するには、適切なイメージングソフトウェアで画像シーケンスを開きます。均一な蛍光を持つ細胞内の関心領域を選択します。次に、[イメージ] タブで [スタック] を選択し、[Z 軸プロファイルをプロット] を選択します。z軸プロファイルをプロットするには、x軸上の角度の関数を使用して、対象領域で測定された蛍光強度の平均。臨界角よりも優れたx軸上の任意の角度値を、顕微鏡セッション中に使用してTIRF信号を取得できます。次に、ライブ取得ソフトウェアで、プロトコルエディタを使用して取得のパラメータを設定します。これには、ループ取得シーケンスの数、蛍光チャンネルとそのレーザー強度、TIRF角度、露光時間が含まれます。対物レンズのZ移動を落射蛍光モード面に到達するように設定します。次に、落射蛍光モードでTIRF角度を1に設定し、対物レンズのZ移動をTIRF平面に戻します。次に、明るい光のLEDモードでセルの画像を取得します。次に、蛍光タグが付けられたタンパク質発現が中程度のレベルで、SRBCと食作用する目的の細胞を見つけ、その細胞をフィールドの中央に移動します。このような細胞は、粒子の周りの伸長した原形質膜によって識別できることに注意してください。[ループ カウント] タブにフレーム数を入力して、500 から 1, 000 フレームのストリーミング集録を開始します。必要に応じて、レーザーの強度と露光時間を変更して、細胞内のさまざまなレベルの蛍光に適応します。2つのチャンネルに対応する2つの別々の画像シーケンスを生成するには、Imagineソフトウェアでシーケンスを開き、[Image]タブをクリックします。「Hyperstacks」メニューで、「Stack to Hyperstack」を選択します。次に、ポップアップウィンドウで、[順序]にxyctz、[チャネル]に使用する蛍光色素の数、[z軸]のスライスの数、[フレーム]の下の画像の数をチャネル数で割った値、[表示モード]に[グレースケール]を入力します。次に、チャネルを分割します。ここでは、IGGオプソニン化SRBCを巻き込んだ生の264.7マクロファージにおけるファゴソーム閉鎖アッセイの代表的な生細胞TIRF顕微鏡動画を示します。ガラスカバーと対向する疑似足の先端がSRBCの周りを覆うと、TIRF領域にF-アクチンリングが検出され、それが閉じるまで徐々に狭くなります。並行して、エピフルオレッセンスによって検出されたぼやけたF-アクチン信号は、TIRF領域の3ミクロン上にステージをシフトした後、食細胞カップの基部での解重合に対応します。3分後、透過光イメージングによって確認されたように、SRBCは完全に内部化されます。この方法を用いると、食作用カップの基部におけるアクチンの細胞内コンパートメントの限局性エキソサイトーシスが起こり、実証できる。その取得後、細胞をさらに処理して相関電子顕微鏡にするか、全細胞集団を固定して凍結処理して古典的な免疫蛍光顕微鏡に加工することができます。食作用は温度に非常に敏感であるため、加熱チャンバーと培養皿培地内の温度は、手順全体を通して摂氏37度に一定に維持する必要があることに留意することが重要です。このビデオを見れば、粒子のオプソナイズ方法、粒子でカバースリップをコーティングする方法、TIRF顕微鏡法の臨界角度を決定する方法、生細胞食作用中の対象タンパク質の局在化の画像化方法について十分に理解できるはずです。

phagosome-closure-assay-to-visualize-phagosome-formation-three

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学と感染症

このビデオでは、アクチンと微小管の重合ダイナミクスを視覚化するための全反射顕微鏡ベースの手法であるTIRFについて説明しています。この手法により、細胞のクロストークを理解するために不可欠な、アクチンと微小管の結合ダイナミクスをリアルタイムで高解像度でイメージングできます。...

アクチンと微小管の結合ダイナミクスを可視化するTIRF顕微鏡法

このビデオは、ガラス底皿の表面に付着したIgGオプソン化赤血球(RBC)のマクロファージ媒介性食作用におけるファゴソームの形成と閉鎖をリアルタイムで可視化するための高解像度の全反射蛍光(TIRF)顕微鏡法を示しています。マクロファージはRBCの周囲に偽足を伸ばし、ファゴソーム内に飲み込み、ガラス表面から分離します。...

TIRF顕微鏡法によるファゴソームの形成と閉鎖の可視化

出典:Daniele, F., et.al SH-SY5Y 神経芽腫細胞における神経伝達物質小胞ダイナミクスを評価するための TIRFM および pH 感受性 GFP プローブ: 細胞イメージングとデータ解析.J. Vis.

全反射蛍光顕微鏡を用いた細胞イメージング

出典: Winkle, C. C., et al.軸索分岐と神経細胞形態形成中の原形質膜送達の役割を定義するための複合方法論の利用。J. Vis. 経験。...

エキソサイトーシスイベントの可視化のための全反射蛍光顕微鏡

偏光ベース全内部反射蛍光顕微鏡（pTIRFM）は、細胞膜動態のリアルタイム検出を可能にする。この記事では、調節性エキソサイトーシスの間に膜のリモデリングの研究のためpTIRFMの実装について説明します。技術は、直接的または間接的に、膜形状の変化を伴う細胞生物学における他のプロセスに一般化である。...

pTIRFMによる画像形成細胞膜変形は

クラスリン媒介性エンドサイトーシスは、シグナル伝達受容体を含む多くのタンパク質を内部化する急速で非常に動的なプロセスです。ここで説明するプロトコルは、個々のエンドサイトーシスイベントの動態を直接視覚化します。これは、エンドサイトーシス機構のコアメンバーがどのように互いに協調し、タンパク質カーゴがこのプロセスにどのように影響するかを理解するために不可欠です。...

TIRF顕微鏡を経由してシングルイベント解像度のGタンパク質共役型受容体のクラスリン依存性エンドサイトーシスの可視化

この論文は、シナプトブレビン2-pHluorinコンストラクトと全反射蛍光顕微鏡を使用して、神経芽細胞腫細胞における神経伝達物質小胞動態を調査する方法を提供します。また、画像処理とデータ分析のために開発された戦略についても報告されています。...

細胞イメージングおよびデータ分析：SH-SY5Y神経芽腫細胞における神経伝達物質小胞のダイナミクスを評価するためにTIRFMとpH感受性GFP-プローブ

ここでイメージの単一食イベントに回転ディスク共焦点顕微鏡を用いたマウス腹腔マクロファージの方法について述べる。他の貪食細胞に、プロトコルを拡張できます。...

マウスのマクロファージによる貪食のコマ撮りの 3 D イメージング

高速・高分解能を可能にする高度な顕微鏡分離膜と周囲の細胞内のボリュームの両方の画像が表示されます。1 つのセットアップでディスクと全反射蛍光顕微鏡を回転の統合により、3.5 まで高い獲得率でライブ...

回転ディスク全内部反射蛍光顕微鏡による細胞の接着の形成の可視化詳細

我々は、動的微小管および蛍光標識微小管関連タンパク質の同時イメージングのための干渉反射顕微鏡および全内部反射蛍光顕微鏡を実施するためのプロトコルを提示する。...

動的微小管および関連タンパク質をイメージングするための同時干渉反射および全内部反射蛍光顕微鏡

学ぶ TIRF顕微鏡を用いたファゴソーム形成の三次元可視化法。生マクロファージにおけるファゴサイトーシス動態をリアルタイムで観察し、免疫細胞機能の理解に貢献します。

「ファゴソーム閉鎖アッセイ」全反射蛍光顕微鏡（TIRFM）を用いて、三次元的にファゴソーム形成を可視化します

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