2016年7月28日
このプロトコルは、細胞内のハロゲン化ペルオキシダーゼ活性を特異的に決定するために、少量の血液サンプルから白血球を迅速に濃縮する方法を説明しています。この方法は、ヒトおよび非ヒトの材料に適用でき、新しい炎症マーカーの評価に寄与する可能性があります。
この赤血球除去法の全体的な目的は、少量の血液サンプルから迅速かつ簡便に白血球を濃縮することにあります。この手法には、低コストで信頼性が高く、迅速であるという多くの利点があります。さらに、ヒトおよび非ヒトの血液サンプルに適用することが可能です。
溶出処置を開始する前に、水用ピペットを2 mLに、PBS用ピペットを5 mLに調整します。その後、水とPBSを入れた蓋のないフラスコを、室温のラミナーフローフード内に配置します。低張性溶出は時間的に重要な工程であるため、すべて事前に準備しておく必要があります。
さらに、結果の互換性を確保するため、溶出手順は常に同一の方法で行う必要があります。次に、各血液サンプルから100 µLを15 mLコニカルチューブに分注します。そして、各サンプルに2 mLの蒸留水を加え、ミキサーの中設定でボルテックスします。
細胞を60秒間静置した後、5 mLのPBSを加えます。そして、ボルテックスミキサーでサンプルを混合します。次に、遠心分離で細胞を回収し、上清を捨てます。
チューブを反転させ、開口部をペーパータオルで叩いて、できる限り液体を取り除きます。次に、先ほど実演した低張溶血手順を繰り返します。2回目にドライペレットが得られたら、各サンプルを500 µLのHBSSに再懸濁し、均一な溶液になるまで混ぜ合わせます。
そして、細胞を氷上の1.5 mLマイクロ遠心チューブに移します。アミノフェノールフルオレセイン(APF)染色の後、サンプルのペルオキシダーゼ特異性を確認するために、まず適切なサンプルにヘムペルオキシダーゼ阻害剤である4-ABAHを5 µL添加し、37 °Cで15分間インキュベートします。次に、各チューブにAPF作業溶液を5 µL添加し、中設定で細胞を緩やかにボルテックスします。
すべてのサンプルを37 °Cで30分間インキュベートします。次に、各サンプルに5 µLの過酸化水素作動液を加え、チューブを穏やかにボルテックスします。37 °Cで60分間静置した後、細胞を遠心分離し、ペレットを乱さないように注意して上清を除去します。
最後に、細胞を250 µLのHBSSで再懸濁し、光退色を防ぐため、分析までサンプルを遮光して保存します。ここでは、先ほど示した低張溶血およびAPF染色の後の白血球集団の代表例を示します。細胞サイズと顆粒性をプロットすることで、赤血球が効率的に除去されていることが分かり、赤血球およびデブリの集団は全イベントのわずか22%にとどまっています。
さらに、APF由来の蛍光の強度分布により、ペルオキシダーゼ陰性の赤血球およびリンパ球を明確に識別できるほか、中程度のAPF酸化が観察されるペルオキシダーゼ陽性の単球および好酸球、そして強いペルオキシダーゼ酸化を示す好中球を区別することが容易になります。この手法を習得すれば、適切に実施することで最大50検体の血液サンプルを並行して処理することが可能です。本手順の後、抗体染色などの他の手法を併用することで、目的の細胞サブセットを同定できます。
この手法の開発により、小動物研究分野の研究者が、慢性炎症性疾患の動物モデルにおいてMPOおよびEPOのハロゲン化活性の役割を探索するための道が開かれました。
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本プロトコルでは、ヒトおよび非ヒトの両方の検体に適用可能な、少量の血液サンプルから白血球を濃縮するための迅速かつ簡便な方法について解説します。この手法は費用対効果が高く信頼性があるため、新しい炎症マーカーの評価を容易にします。
このプロトコルでは、少量の血液サンプルから白血球を迅速かつ標準的に濃縮することが可能となり、炎症性疾患研究における早期の探索的取り組みを支援します。MPOおよびEPOのハロゲン化ペルオキシダーゼ活性を定量することで、ターゲットの検証およびパスウェイのリスク低減のためのメカニズム的な指標を提供します。本手法はフローサイトメトリーや抗体染色との互換性があるため、スクリーニングやトランスレーショナルリサーチのワークフローへの統合が容易です。
この手法は、初期のターゲット仮説検証から前臨床バリデーションに至る探索の連続体に適合しており、特に免疫学および炎症性疾患プログラムにおいて有用です。