2017年8月4日
脂肪由来幹細胞 (Asc) は簡単に隔離され、正常ラットの脂肪から採取しました。ASC のシーツは、細胞シート工学を使用して作成することができます、ザッカー出展全層脂肪の糖尿病のラット皮膚の露出した骨の欠陥と人工皮膚の層で覆われてに移植することができます。
この手順の全体的な目標は、糖尿病ラットの大きな全層皮膚欠損の創傷治癒に対する脂肪由来幹細胞シートと人工皮膚の組み合わせの効果を検証することです。この方法は、骨が露出した糖尿病性大創傷など、慢性創傷の治癒に関する重要な質問に答えるのに役立ちます。この技術の主な利点は、細胞シート技術を使用して細胞を固体シートで傷口に移植し、その結果、生存可能で安定した移植が得られることです。
脂肪パッドドナーの場合、8〜33週齢のルイスラットを使用することを計画してください。手術部位では、いくつかの滅菌綿先端アプリケーター、ガーゼ、メス、ニードルホルダー、手術ハサミ、鉗子、5-0ナイロン縫合糸を準備します。一時的なティッシュを配置するには、100ミリリットルのペトリ皿に10ミリリットルのPBSをロードします。
PBSをロードした皿の重量を量り、後で採取した組織の質量を見つけます。ラットに麻酔をかけた後、滅菌ドレープの上に仰向けに置きます。次に、手術領域を剃り、70%エタノールのいくつかの交互のスクラブを使用して露出した皮膚をこすります。.
次に、外側の下腹部に3センチの皮膚切開を行います。次に、外側の斜筋を露出させて解剖します。次に、精巣上体を取り巻く精巣上体脂肪組織を露出させます。
次に、精巣上体脂肪組織を慎重に切除します。精巣上体、精巣、精巣上体血管の損傷を避けてください。ティッシュをPBSの皿に移します。
次に、ドナーラットを閉じ、標準的な術後ケアの実践に従います。採取した脂肪組織の2〜3グラムからASCを分離します。0.1%A型コラゲナーゼで組織を1時間消化し、間質血管画分(SVF)を取得します。
SVFを精製した後、SVFを20ミリリットルの培地に懸濁します。懸濁液を60平方センチメートルの培養皿2つに分割し、標準条件下で24時間培養します。翌日、プレートをPBSで3回洗浄して、付着していない細胞や破片を取り除きます。
最終洗浄後、新鮮な完全なメディウムを再度追加します。次に、培養3日目に細胞がほぼサブコンフルエントになるまで、細胞を継代し続けます。次に、1ミリリットルの0.25%トリプシンEDTAを短時間のインキュベーションで使用します。
プレートからセルを取り除きます。細胞を活性トリプシンに10分以上さらさないでください。細胞を観察して数えた後、1平方センチメートルあたり1, 700の密度でそれらを継代培養します。
その後、3日ごとに細胞を通過させ、3つの継代を完了してから続行します。3回目に継代培養されたラットASCを渡した後、直径35ミリメートルの温度応答性培養皿に150,000個の細胞をプレートし、2ミリリットルの培地を調製します。インキュベーターで3日間培養し、均一な細胞シートを作ります。
3日後、培地を変更し、AAのミリリットルあたり16.4マイクログラムを追加します。次に、AA培地を隔日で交換しながら細胞を培養します。AA含有培地で4〜5日後、ASCの増殖を確認します。セルと隣接するセルシートとの間に隙間がないか探します。
連続したセルシートが確立されると、そのセルをモデルに使用できます。必要に応じて、プレートを室温で15〜20分間置いて、細胞シートを回収します。プレートは温度に敏感であるため、細胞は連続したシートとして自然に剥離し、シートは鉗子で除去できます。
肥満創傷治癒モデルには、体重 500 グラムから 600 グラムの 16 週齢から 18 週齢の成体オスの ZDF ラットを使用します。ラットを手術野に配置して麻酔し、頭を剃る前に、70%エタノールを使用して洗浄します。次に、手術領域を剃り、70%エタノールを交互にスクラブして露出した皮膚をきれいにします。
この頃、脂肪幹細胞の温度感温板をベンチに移します。細胞シートがプレートから剥がれる前に、培地を取り出し、細胞シートをPBSで3回洗浄します。細胞シートを採取した後、必要になるまでPBSに浸します。
細胞の準備ができたら、ラットの頭に15 x 10 mmの全層皮膚欠損を作成します。まず、皮膚組織を骨膜まで取り除きます。次に、メスと手術用ハサミで皮膚組織を切除します。
欠陥を完成させるには、骨膜ラスパトリーで骨膜を切除します。次に、セルシートを欠陥の上に置きます。幹細胞シートは柔らかく、しなやかです。
鉗子を使用して、欠陥の隅々まで伸ばします。次に、使用直前に生理食塩水に浸した10×15mmの人工皮膚のパッチで細胞シートと欠損部を覆い、5-0ナイロン縫合糸を使用して約10針で傷口を閉じます。傷を保護するために、5-0ナイロン縫合糸を使用して、人工皮膚の上に15 x 20ミリメートルの非粘着性包帯のパッチを固定します。
ラットは常にそれを取り除き、必要に応じてすぐにドレッシングを交換するため、ドレッシングを隔日で観察することを計画してください。6匹のZucker糖尿病性脂肪ラットの2つのグループで、記載されたプロトコルを使用して頭蓋骨の欠陥を作成しました。実験ラットはラット脂肪幹細胞シートで治療され、コントロールは治療されませんでした。
14日後、治療群の創傷は対照群の創傷よりも有意に小さかった。このビデオを見た後、ラットの骨が露出した大きな傷を作り、その傷を脂肪由来の幹細胞で治療する方法をよく理解しているはずです。この手順を試みる際は、温度応答性培養皿を使用するプロセス全体で厳格な温度管理を行うようにしてください。
そうしないと、細胞が皿から自然に分離し、実験が遅れる可能性があります。
完全なトランスクリプトを表示し、数千本の科学動画にアクセス
本研究では、糖尿病ラットの創傷治癒における、人工皮膚と組み合わせた脂肪由来幹細胞(ASC)シートの使用について検討します。本手法は、特に全層皮膚欠損や骨露出を伴う症例における、慢性創傷治癒の課題に対処することを目的としています。
糖尿病における慢性創傷の治癒は、重要なトランスレーショナルな課題となっており、スケールアップが可能で生物学的に妥当な介入策への切実なニーズが高まっています。人工皮膚と組み合わせた脂肪由来幹細胞(ASC)シートの作製および移植は、疾患に関連した前臨床モデルにおいて再生戦略を評価するためのプラットフォームを提供します。このアプローチは、初期段階の治療仮説検証における予測的な信頼性を高め、組織修復不全を標的とした細胞療法の、リスク調整に基づいた開発推進の意思決定に寄与します。
本手法は、発見から前臨床に至る連続的なプロセスに組み込まれており、糖尿病性創傷治癒における初期の再生仮説の検証と、トランスレーショナルモデルによる妥当性確認を橋渡しするものです。