2016年12月19日
私たちは、マトリックスゲルプラグ血管新生アッセイの変動を用いて、マウスにおけるヒト内皮 - 周皮細胞の相互作用を研究するためのプロトコルを提示します。
この in-vivo マトリックスゲルアッセイの全体的な目標は、内皮細胞と寄生虫との相互作用を調査することです。このマトリゲルアッセイは、研究者がアンドロジェネシスの主要なステップを研究するのに役立つように設計されています。また、血管形成の主要なステップに関与するシグナル伝達経路や、機能不全が血管障害やその他のアンドロジェネシスの異常につながる可能性のある遺伝子の特定も可能になります。
この技術の主な利点は、内皮細胞とその支持細胞である周皮細胞の両方が関与する生体内血管形成を研究できることです。まず、100 mmプレート上でヒト内皮細胞および寄生虫細胞培養物を、10 mLの適切な培地で増殖させます。細胞が80%の密度に達するまで、2〜3日ごとに培地を交換します。
細胞と混合するマトリックスゲル溶液を調製するために、マトリックスゲルのストックを摂氏4度で一晩解凍します。次に、マイナス摂氏20度で長期的に、または摂氏4度で最大2週間保存するために1.5ミリリットルのアリコートを作ります。各実験用プラグには、200マイクロリットルのマトリックスゲルが必要です。
したがって、在庫のある1本のチューブで6つのプラグを25%の過剰で供給できます。解凍した100x beta-FGFストックを15マイクロリットル追加して、必要な各アリコートを準備します。ピペッティングでβ-FGFを溶液に混合し、細胞を添加する前に氷上で少なくとも30分間インキュベートします。
この時点で、注射用の28ゲージ1ccインスリン注射器を冷やします。培養プレートから細胞を採取するには、培地を取り出し、細胞をPBSで一度洗浄します。PBSを取り除いた後、トリプシン溶液1ミリリットルを加え、プレートをインキュベーターに1分間戻します。
次に、プレート上に2ミリリットルの培養培地をピペットで移して細胞を剥離し、培地を15ミリリットルのチューブに集めます。次に、血球計算盤を使用してコレクションの濃度を確認します。次に、15ミリリットルのチューブに細胞のアリコートを調製します。
ここでは、100万個の内皮細胞と200, 000個の寄生虫の組み合わせが実験グループに使用されます。次に、細胞アリコートを400gで5分間遠心分離します。次に、計算された量のマトリックスゲルを細胞ペレットに加え、気泡を注入できないため、泡が生じないように穏やかなピペッティングで混合します。
次に、マウスが注入する準備ができるまで、準備を氷の上に保ちます。マウスにイソフルランを麻酔し、つま先をつまんで麻酔状態を確認した後、マウスをイソフルランを供給する非再呼吸システムに取り付け、腹側を下にして加熱パッドに置きます。次に、両側の後部から約1平方センチメートルの髪を取り除きます。
次に、露出した肌を70%アルコールできれいに拭きます。次に、調製した細胞溶液1ミリリットルを冷やした注射器にロードします(これは4つのプラグに十分です)。注射をするには、背中の皮膚を持ち上げて皮下腔を見つけます。
その後、胸郭後方の皮下腔に200マイクロリットルをゆっくりと注入し、漏れを防ぐために針をゆっくりと取り外します。注射後、その部位に隆起が形成されます。アルコールで部位を拭き、後で見つけられるように油性マーカーで隆起の輪郭を描きます。
次に、マウスの反対側で注入手順を繰り返します。3分以内にすべての細胞を注入しないと、細胞が注射器にくっつき始めます。注入ステップは、マトリックスゲルプラグが皮膚と筋肉層の間に形成され、プラグが良好な形状を維持し、拡散しないようにするために重要です。
次のマウスの注入に進む前に、注入したマウスをヒートパッドに1分間置いて、マトリックスがゲル化する時間を与えます。安楽死後、マウスを手術台にセットします。注射部位から再成長した毛を取り除いた後、プラグの位置を識別するマーカーラインを見つけます。
次に、細い手術用ハサミを使用して、プラグのマークされた境界に沿って、皮膚に垂直に、そしてその下の筋肉まで切開します。マークされた境界線の周囲を慎重に切り取ります。次に、プラグを取り外し、皮膚と筋肉の層の間に挟んだままにします。
すぐにPBSの小さなビーカーでプラグを洗い流し、血液を取り除きます。次に、プラグ全体を50ミリリットルのチューブに入れ、25ミリリットルの4%パラホルムアルデヒドを入れます。攪拌せずに室温で24時間固定します。
翌日、プラグを25ミリリットルの70%エタノールに24時間移します。その後、パラフィン包埋を進めます。内皮細胞のみを含むプラグの切片は、一部の血管が生体内で14日後に宿主の血液と灌流されないことを示しています。
対照的に、内皮細胞と寄生虫の両方を含むプラグは、生体内14日後に多くの灌流血管を示します。これらのプラグは、平滑筋アクチン染色に陽性の細胞を有しており(赤色で見られ)、CD31陽性内皮細胞のすぐ隣(緑色で示されています)です。したがって、寄生虫は初期の血管形成において重要な役割を果たす可能性があります。
このビデオを見れば、この強力なin-vivo技術を応用して、複数の細胞タイプで使用されている血管形成を研究する方法について十分に理解できるはずです。この技術は、研究者がマウスモデルにおける血管生物学のさまざまなトピックを探求する道を開くでしょう。この手順に続いて、定量的PCRやウェスタン免疫ブロッティングなどの他の方法も実行して、遺伝子発現やプロテオミクスの変化などの追加の質問に答えることができます。
この強力な技術により、研究者は血管形成中に内皮細胞と寄生虫がどのように相互作用するかを生体内で研究することができます。これは、アンドロジェネシスの重要なステップです。この強力な技術により、研究者は、肺高血圧症などの血管疾患の理解に関連する他の細胞間相互作用を研究することもできます。
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本プロトコルでは、マトリックスゲルプラグ血管新生アッセイを用いて、生体内(in vivo)でのヒト血管内皮細胞とペリサイトの相互作用を研究する方法を提示します。このアッセイは、血管形成に関与するシグナル伝達経路を解明し、血管疾患に関連する遺伝子を特定することを目的としています。
このin vivoマトリックスゲルプラグアッセイは、生理学的微小環境におけるヒト内皮細胞とペリサイトの相互作用の研究を可能にすることで、血管新生研究における重要なギャップを埋めるものです。これは、血管標的バリデーションのリスク低減や、前臨床モデルにおける予測信頼性の向上に不可欠です。本アッセイは、血管の成熟とペリサイト動員に関するメカニズム研究をサポートし、肺および全身性の血管疾患に対するトランスレーショナルな関連性を提供します。また、灌流血管の形成やペリサイト被覆などの機能的リードアウトを提供することで既存のin vitroシステムを補完し、バイオファーマの研究開発における標的バリデーションおよびリード化合物同定のワークフローに直接的に適用できます。
このアッセイは、ターゲットバリデーションからリード化合物同定、そして前臨床評価に至る創薬の連続的なプロセスに適応しており、特に血管新生または血管安定化メカニズムの機能的な検証を必要とする血管生物学の研究プログラムに有用です。