2016年12月5日
N 6 -methyladenosine(メートル6 A)RNAに修飾を測定するための修正されたノーザンブロット法が記載されています。現在の方法は、様々な実験デザインの下で多様なRNAおよびコントロールで変更を検出することができます。
修正ノーザンブロッティング技術の全体的な目標は、RNAのN6-メチルアデノシン、n6A修飾を測定し、多様なRNAの修飾を検出することです。この方法は、N6-メチルアデノシン修飾などのRNAエピジェネティクスの役割における重要な質問に答えるのに役立ちます。この技術の主な利点は、RNAの効果的な分離、実験デザインの標準化、およびRNAのn6A修飾の明確な描写を提供することです。
この方法は、RNAのn6A修飾に関する洞察を得ることができ、異なる検出抗体を持つ他のRNA修飾にも適用できます。実験を開始するには、リボヌクレアーゼ除染液をペーパータオルにスプレーし、ピペットと実験ベンチの表面を拭きます。ペーパータオルをヌクレアーゼフリーの水で濡らし、ピペットとラボベンチの表面を再度拭き取ります。
摂氏4度に維持されたRNA単離溶液を入手し、約75ミリグラムのマウス組織に1ミリリットルの溶液を加えます。オーバーヘッドスターラーを使用して、組織を均質化します。次に、サンプルホモジネート1ミリリットルあたり100マイクロリットルの1-ブロモ-3-クロロプロパンまたはBCPを追加します。
チューブを15秒間激しく振とうし、全RNA単離に進みます。分光光度計を使用して、260ナノメートルと280ナノメートルの吸光度に注目してRNA濃度を決定します。0.8%アガロースゲル電気泳動を行い、RNAサンプルの品質を確認します。
すべての電気泳動装置をジエチルピロカーボネートまたはDEPC水ですすいでください。2.5グラムのアガロース、次に215ミリリットルのDEPC水を三角フラスコに混ぜ合わせ、混合物を電子レンジで完全に溶かします。溶液が溶けたら、12.5ミリリットルの10X MOPSバッファーを追加します。
そしてフラスコに37%ホルムアルデヒドの22.5ミリリットル。次に、厚さ1.5ミリメートルの櫛で溶液を電気泳動装置に注ぎます。きれいなコームを使用して、気泡をゲルの端に押し込みます。
ゲルを室温で固化させます。次に、あらかじめ調製した1X MOPSランニングバッファーを使用してゲルのウェルをすすぎ、ゲルを事前にランします。RNAサンプルをゲルのウェルにロードし、ゲルを泳動します。
翌日、UVライトの下でゲルを調べて撮影します。転写を準備するには、ゲルをカットし、未使用の部分を取り除きます。500ミリリットルの10倍生理食塩水クエン酸ナトリウムまたはSSC緩衝液を調製します。
ゲルを10X SSCバッファーで2回洗浄します。ゲルを覆うのに十分な大きさの濾紙シートを1枚カットします。ろ紙をジェルと同じ大きさに4枚カットします。
次に、プラスに帯電したナイロンメンブレンをゲルと同じサイズに1枚カットします。ゲルとメンブレンに切り込みを入れてマーカーとして印をつけ、適切な向きを確保します。メンブレンを2X SSCバッファーに浸します。
500ミリリットルの10X SSCバッファーをトランスファートレイに注ぎます。大きな濾紙シートをガラスプレートの上に置き、濾紙を転写バッファーで濡らします。次に、ピペットを使用して気泡をロールアウトします。
カット済みの濾紙2枚を転写バッファーに浸し、濾紙の中央に置きます。気泡があれば取り除きます。次に、ゲルの上面を下にして濾紙の上に置き、ゲルとメンブレンのノッチを揃えながら、ゲルの上にメンブレンを置きます。
次に、あらかじめカットした濾紙を2枚、メンブレンの上に置きます。レイヤー間の気泡をすべて取り除きます。ジェルにラップを巻き付けて、タオルがゲルとメンブレンを通過する緩衝液のみを吸収
するようにします。次に、濾紙の上にペーパータオルを積み重ねます。タオルの上に特大のガラスプレートを置き、スタックの上に重りを置き、RNAがゲルからメンブレンに一晩移動するのを待ちます。転写後、メンブレンを2X SSCバッファーで湿らせてください。
2枚の濾紙を10X SSCバッファーに浸し、UVクロスリンカーにセットします。RNA吸収面が上を向いていることを確認し、濾紙の上にメンブレンを置きます。オートクロスリンクモードを選択し、スタートボタンを押すと照射が開始されます。
UVゲルイメージキャッチャーでメンブレンとゲルを検査し、ゲルからメンブレンへのRNA移動を確認します。TBSTバッファー中の5%脱脂乳でメンブレンを室温で1時間ブロックします。メンブレンをm6A抗体溶液で摂氏4度で一晩インキュベートします。
翌日、TBSTバッファーでメンブレンを3回15分間洗浄します。次に、メンブレンをHRP標識ロバ抗ウサギ抗体溶液に室温で1時間インキュベートします。1時間後、TBSTバッファーでメンブレンを3回15分間洗浄します。
強化された化学発光基質を塗布します。デジタルイメージャーで化学発光をキャプチャします。最後に、m6Aの定量に移り、画像を使用して相対的なm6A化学発光強度を測定します。J.Mouse肝臓RNAを4時間間隔でサンプリングし、修正ノーザンブロッティング法で研究しました。
rRNA、mRNA、およびsmall RNAのメチル化が明確に検出されました。代表的なm6Aブロットは、野生型マウスの肝臓由来の全RNAおよびrRNAを含まない全RNAに対して行いました。このテクニックは、一度習得すれば、適切に実行すれば4日で習得できます。
その開発後、この技術は、RNAエピジェネティクスの分野の研究者が概日リズムと肥満に関連するヒトの生理機能への影響を調査する道を開きました。
この記事では、RNAのN6-メチルアデノシン(m6A)修飾を測定するための改良された北部ブロッティング法について説明しています。この技術により、多様なRNAサンプルにおける修飾の検出が可能であり、様々な実験設計に適用できます。
Accurate measurement of RNA N6-methyladenosine (m6A) modifications supports target validation in RNA epigenetics by enabling quantitative assessment of epitranscriptomic regulation. This method enhances predictive confidence in mechanistic studies linking m6A to physiological processes such as circadian rhythms and metabolism. It provides a standardized, reproducible platform for de-risking therapeutic hypotheses in discovery biology.
The method fits within the discovery biology to lead identification continuum by providing epigenetic layer validation that complements transcriptional and proteomic profiling.