Name: 横慢性頭蓋窓の準備を有効インビボマウスの遠位中大脳動脈閉塞後に観測 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-12-29T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 41 s
Description: 学ぶ横慢性頭蓋窓の準備とマウスの遠位中大脳動脈閉塞法。長期的な生体顕微鏡観察により、脳卒中後の急性および慢性虚血変化をリアルタイムで観測し、治療戦略の開発に貢献します。

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VPは、Charité - Universitätsmedizin BerlinとBerlin Institute of Healthが資金提供するCharité Clinical Scientist Programの参加者です。TBはSNSF PostDoc Mobilityフェローです。著者らは、EinsteinStiftung/A-2012-153からPVへの助成金を受けています。

倫理の声明：動物を対象とした実験は、該当する場合、Landesamt fuerお大事にウントSoziales、ベルリン、ドイツ（G0298 / 13）とARRIVE基準によって定められたガイドラインおよび規則に従って行いました。 12週齢の雄のC57BL / 6Jマウスに本研究では、10-に使用しました。 1.横慢性頭蓋窓の準備<ol><li>皮下ケタミンの注射（90 mgの/ kg）およびキシラジン（10mg / kg）で麻酔を行います。痛みの刺激との適切な鎮静のためのテスト。 </li><li> 70％エタノールで手術器具および手術野を滅菌します。 </li><li>げっ歯類のシェーバーを使用して、目に首から頭皮の毛を削除します。 </li><li>定位フレームにヘッドを固定してください。 </li><li>脱水症状を避けるために、両眼にデクスパンテノール眼軟膏を使用してください。 </li><li>すべての毛を除去し、74.1パーセントのエタノールと10％2-プロプラノロールの3層で、それを滅菌する手術領域を清掃してください。 </li><li>正中線を実行しますメスを用いて目に首から切開。 </li><li> 4テンティング縫合糸で皮膚フラップにまたがります。 </li><li>頭筋が始まる点にメスでそ​​れを掻き落とし左半球に慎重に骨膜を削除します。 注：この製剤はまた、カバーガラスを固定する歯科接着剤、のための良好な接着領域を作成するのに役立ちます。 </li><li>マイクロドリルを用いて骨フラップの縁に頭蓋骨を薄くすることにより、直径4mmの前頭頭頂開頭術を実行します。熱損傷を回避するために掘削しながら、生理食塩水を適用します。 </li><li>カニューレと骨弁を高め、マイクロピンセットを使ってそれを削除します。 </li><li>食塩水で慎重かつ広範囲に灌漑。 </li><li>それは適切な一貫性を持っており、流体でなくなるまで、歯科用接着剤を混ぜる（ すなわち、接着剤はもはやスレッドを生成するべきではありません）。開頭術の周りの骨の上に置きます。 </li><li>準備された接着剤の6ミリメートル径のカバーガラスを置き、目でそれを修正歯科接着剤の電子レスト。それは防水であることを確認してください。接着剤は、ピンセットでそれをテストすることによって乾燥させ、ハードされるまで待ちます。 注：追加の灌漑は、硬化プロセスを加速します。 </li><li>テンティング縫合糸を外し、皮膚縫合糸で傷口を閉じます。 </li><li>マウスの脇腹の皮膚を引き上げます。針を皮下に挿入し、ゆっくりと体液バランスのために滅菌生理食塩水を皮下の0.5ミリリットルを代入します。 </li><li>手術後、90分間加熱した回復ケージに動物を飼います。動物は無人それらを離れる前に、完全に目を覚ましているまで待ってください。動物は完全に他の動物とのケージに戻す前に回収されるまで待ちます。 </li><li>ステップ1.16で説明したように、約12時間後に皮下生理食塩水の体積置換を繰り返します。 </li><li>常に手術（ 例えば、パラセタモール（10 mg / mlで）、または他の非ステロイド性抗炎症薬）の後に口腔内に強制飼養を介して、または直接に鎮痛を適用します。 </li><li>チェック<html>常に動物の状態、手術後、毎日、とは単純な食べ作ることと、手術後の重要な重量損失を回避するために、ペトリ皿の中で床の上につぶした動物性食品を提供します。 注：生体顕微鏡は、頭蓋窓の準備の後の最初の日に行うことができます。 </li><li>イソフルラン麻酔を適用し、ヘッドホルダに動物を固定します。皮膚の縫合糸を開き、綿棒と、滅菌生理食塩水でウィンドウをきれいにします。 24時間後、頭蓋窓は、イメージングを可能にする、その時点によって脳脊髄液で満たされるべきです。確立された顕微鏡プロトコル18を使用して撮影を行います。 </li></ol> 2.遠位にMCAo 注：のMCAO手順はCW調製後約5 Dを実行する必要があります。これは、脳卒中により誘導される免疫反応のCW製剤によって引き起こされる免疫反応からの干渉を最小限に抑えることができます。 &quot;SRC =&quot; /ファイル/ ftp_upload / 54701 / 54701fig1.jpg &quot;/&gt; 遠位にMCAoの1.概要図。 A.これは、オペアンプの前に船のいいの概要です。第1のバイポーラ接触後B.船。第2のバイポーラ接触後のC.は船。 D.完全に締め切られている船舶、についての概要。低倍率でのE.ファイナル概要。 <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54701/54701fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <ol><li> 2/3 N 2 Oと1/3 O 2を 介して 1.5％イソフルラン- 1.0と2％イソフルランおよびメンテナンス-獣医のスタッフ（ 例えば、1.5での誘導と協議の上、麻酔マスクと適切な麻酔薬体制を使用してマウスをAnaesthetize気化器）。 </li><li> （剃ると毛を除去し、適切な薬剤と皮膚や周囲の毛を消毒例えば、70％のエチルアルコール）、その後、それを乾燥させます。 </li><li> 36.5℃でのマウスの体温を維持するためには、手術中に0.5℃、±しました。マウスの直腸温度に応じて加熱されたフィードバック制御加熱パッドは、強くお勧めします。 </li><li>横位置で動物を置きます。麻酔マスクで鼻を修正し、1.0にイソフルラン濃度を調整 - 1.5％。 </li><li>両眼に濡れた軟膏（デクスパンテノール）を適用します。 </li><li> CWの準備のために作られた皮膚切開を使用してください。 </li><li>優しく肌を分離し、その下側頭筋を識別します。 </li><li>高周波発生器のエネルギー調整（5から7 W）をバイポーラモードを使用します。 </li><li>電気凝固鉗子を使用して、慎重に完全に筋肉を除去することなく、筋肉のフラップを作成し、頭蓋骨から頭筋を取り除きます。 </li><li>レトロ眼窩に背、時間領域の吻側部分に透明頭蓋骨の下にMCAを特定リットル洞。 MCA分岐部が識別できない場合、容器最も吻側を特定しようとします。 </li><li>継続的に熱損傷を避けるために灌漑しながら、マイクロドリルでMCA枝上記薄い頭蓋骨。 </li><li>カニューレと骨を持ち上げて、マイクロピンセットでそれを削除します。 </li><li> 5 W. - 3に高周波発電機のエネルギーを減少させます</li><li>上から動脈に近づき、そっと容器を持ち上げることなく、両側のバイポーラ鉗子でそれに触れます。 </li><li>血管分岐部に近位および遠位動脈を凝固。 </li><li> 30秒間待ってから、血流が恒久的に中断されることを保証するために、静かに動脈をタッチします。再疎通が観察されている場合は電気凝固を繰り返します。 </li><li>可能な場合、骨欠損をカバーするために、筋肉の挿入で1または2のステッチと頭筋を修正しました。 </li><li>傷口を縫合し、加熱された回収ボックスに動物を配置します。すぐに揮発性ANEST後に一般的には、動物の回復hesia。 </li><li>ステップ1.16で説明したように、ボリュームの置換については、滅菌生理食塩水の皮下に0.5mlのを適用します。 </li><li>手術後、動物は90分間加熱回復ケージに滞在することができます。動物は無人それらを離れる前に意識しているまで待ってください。それらが完全に回復している場合にのみ、他の動物とのケージに戻します。 </li><li> 12時間後に、ステップ1.16で説明したように、ボリュームの置換を繰り返します。 </li><li>飲料水（ 例えば、パラセタモール（10 mg / mlで）、または他の非ステロイド性抗炎症薬） を介して、術後鎮痛を適用します。 </li><li>手術後、毎日の動物の病状を確認してください。食を簡素化し、術後の体重減少を最小限に抑えるために床の上にペトリ皿にマッシュポテト動物性食品を提供します。 </li></ol> 3.シャム治療<ol><li>上記の-含むCW準備-除く露出した中大脳ARを凝固しない説明したステップ1及び2に同一のすべての手順を実行しますテリ。 </li></ol>

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</ol>

著者らは開示するものは何もない。

ストロークが1世界中の長期障害と死の主な原因の一つです。急性期治療を超えて、脳卒中後の回復を促進し、強化するための新しいアプローチやメカニズムを調査すると、プライム医療目標7のまま。実験ストローク研究者が頻繁に局所脳虚血の齧歯類モデルを採用しています。実際には、一時的または恒久的にMCAoを誘導するモデルは、患者4における局所脳虚血の最も一般的なタイプのいずれかを模倣します。 MCAの近位閉塞のほかに、遠位にMCAoの外科的閉塞のためのフィラメントモデルは実験的ストローク研究5,19の中で最も頻繁に使用されるモデルは、おそらくです。ここでは、永久遠位にMCAoの基本的な技術は、マウスの縦生体顕微鏡検査のための機会を提供し、横方向のCWと組み合わせて説明します。病変体積の高い再現性、ならびに非常に低い死亡率、長期的な成果を研究に関して、特に、ARこのマウスモデルの主な利点を電子。この皮質の脳卒中モデルにおいて、脳卒中の領域及び梗塞周囲領域における血管は、慢性CWを介して可視化することができます。マルチ蛍光落射蛍光videomicroscopicシステム...

脳卒中は、世界中で長期的な障害と死亡の主な原因の一つであり、冠状動脈性心臓病に次いで2番目です。さらに、脳卒中は長期障害の主な原因であり、その甚大な社会経済的影響を強調しています6-8。急性期治療を超えて、脳卒中後の回復を加速および強化するための新しいアプローチとメカニズムを調査することは、依然として主要な医学的目標です7。
>jove_content<過去数十年にわたり、実験的な脳卒中研究からのデータは、虚血によって引き起こされる複雑な病態生理学的カスケードの理解に大きく貢献してきました9,10。興奮毒性、アポトーシス、梗塞周囲脱分極、および炎症は、限局性脳虚血後の細胞死の最も関連性の高いメディエーターとして特定されています。さらに、脳虚血の動物モデルを使用して、重要な概念、診断方法、および治療アプローチが開発され、検証されています(例:「半影」や血栓溶解)11。
実験的な脳卒中モデルの利用可能性は、非侵襲的な画像診断法(例えば、磁気共鳴画像法（MRI)、コンピュータ断層撮影法、またはレーザースペックルコントラスト分析）と組み合わせれば、研究者は虚血性傷害によって誘発される超急性および慢性の病態生理学的変化を縦断的に調査することができます12.進化する病変の時空間プロファイルを研究するとともに、ニューロンの可塑性に似た変化を調査し、機能的転帰と組織学的所見に関連付けることができます。過去数年以内に、脳虚血モデルと頭蓋窓13を介したin vivo顕微鏡法の組み合わせを使用して、さらなる方法論的進歩がなされました。これらの新しい技術により、研究者は、限局性脳虚血14に続く急性期、亜急性期、および慢性期において、神経血管ユニットを細胞および分子レベルで分析することができます。さらに、微小循環ダイナミクスのin vivo顕微鏡イメージングにより、脳の微小血管系機能と血管構造の新しい側面が明らかになり、病態生理学的関連性が高い15-17。
このプロトコルでは、矢状洞の外側で慢性的なCW準備を行う方法と、窓の下で遠位脳卒中を外科的に誘発する方法を紹介します。このマウスモデルは、エピイルミネーション、共焦点レーザースキャン、および2光子生体内顕微鏡法により、限局性脳虚血後の急性、亜急性、および慢性の変化のシーケンシャルイメージングに適用することができます。

<table><tbody><tr><td>双眼手術顕微鏡</td><td>Zeiss</td><td>Stemi 2000 C</td><td></td></tr><tr><td>顕微鏡用光源</td><td>Zeiss</td><td>CL 6000 LED</td><td></td></tr><tr><td>直腸プローブ付き加熱パッド</td><td>FST</td><td>21061-10</td><td></td></tr><tr><td>定位フレーム</td><td>Kopf</td><td>Model 930</td><td></td></tr><tr><td>イソフルラン用麻酔システム</td><td>ドレーガー</td><td></td><td></td></tr><tr><td>イソフルラン</td><td>アボット</td><td></td><td></td></tr><tr><td>デュモン鉗子#5</td><td>FST</td><td>11251-10</td><td></td></tr>デュ<tr><td>モン鉗子#7</td><td>FST</td><td>11271-30</td><td></td></tr><tr><td>バイポーラ鉗子</td><td>Erbe</td><td>20195-501</td><td></td></tr><tr><td>バイポーラ鉗子&nbsp;</td><td>エルベ&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;20195-022</td><td></td><td></td></tr><tr><td>マイクロドリル</td><td>FST&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;18000-17&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ニードル</td><td>ホルダーFST</td><td>12010-14</td><td></td></tr><tr><td>5-0シルク縫合糸</td>フォ<td>イヤースタイン、スープラマ</td><td></td><td></td></tr><tr><td>7-0シルク縫合糸</td>フォ<td>イヤースタイン、スープラ</td><td></td><td></td></tr>マ<tr><td>8-0シルク縫合糸</td><td>フォイヤースタイン、スープラ</td><td></td><td></td></tr>マ<tr><td>獣医回復室</td><td>ペコサービス</td><td>V1200</td><td></td></tr></tbody></table>

横慢性頭蓋窓の準備を有効インビボマウスの遠位中大脳動脈閉塞後に観測

Lateral Chronic Cranial Window Preparation Enables In Vivo Observation Following Distal Middle Cerebral Artery Occlusion in Mice

局所脳虚血（ すなわち、虚血性脳卒中）は、神経機能の深刻な損失に、その結果、運動および認知障害のホストにつながる、主要な脳損傷を引き起こす可能性があります。ストロークが1世界中の長期障害と死の主な原因の一つであるとして、その高い有病率は、深刻な健康負担をもたらします。神経機能の回復は、ほとんどの場合、唯一の部分です。これまでに、治療オプションが原因で血栓溶解2,3ための狭い時間ウィンドウに、特に、非常に制限されます。脳卒中からの回復を加速するための方法を決定することは、プライム医療目標です。しかしながら、これは、回復プロセス中に不十分な機構的洞察により妨げられてきました。実験ストローク研究者が頻繁に局所脳虚血の齧歯類モデルを採用しています。急性期を越えて、脳卒中の研究は、脳虚血次亜急性および慢性期にますます集中しています。ほとんどのストロークの研究者は、永続的またはトラン適用しますマウスまたはラットにおけるMCAのトランジェント閉塞。患者では、MCAの閉塞は、虚血性脳卒中4の最も頻繁な原因の一つです。フィラメントモデルを用いて、MCAの近位閉塞のほか、遠位MCAの外科的閉塞は実験的ストローク研究5の中で最も頻繁に使用されるモデルは、おそらくです。 MCAブランチ（lenticulo-線条動脈の分岐まで）遠位の閉塞は、通常、線条体を惜しみ、主に新皮質に影響を与えます。血管閉塞は、永久的または一時的であることができます。長期転帰に対する病変体積と非常に低い死亡率の高い再現性は、このモデルの主な利点です。ここでは、矢状静脈洞に慢性頭蓋窓（CW）準備横を実行するために、その後どのように開頭術アプローチを使用して、ウィンドウの下に遠位脳卒中を引き起こす外科的方法を示しています。このアプローチは、ビアの虚血後の急性および慢性の変化の連続画像形成のために適用することができます落射照明、共焦点レーザー走査、及び二光子生体顕微鏡。

タイムライン及び代表的な結果を図2および図3に示されています。上矢状静脈洞（ 図2 B、C、D）経験豊富な外科医によって行われる非常に低い死亡率および罹患率率の結果に小さな頭蓋窓の横で頭蓋窓の準備、。 10匹の動物の全てが生存し、そしてすべての慢性CWも28日目、手術後、高品質の画像化に使用することができます。創傷感染症や他の合併症には問題はありませんでした。 揮発性麻酔とわずかな脳損傷、約10の短い露出に - 15遠位にMCAo分後、加熱回復ケージに移し、全ての動物が自由に回復ケージに移動し、同腹子との相互作用、目を覚ましました。一般的に、遠位MCAOモデルの死亡率は5％未満であると、主血管Iの結果として生じますMCAO手術中njuryとその後の出血。遠位にMCAo、次の28日間の観察期間中の死亡率はごくまれにしか発生しません。形態学的に、病変は、...

遠位中大脳動脈の分岐（MCAO）の外科的閉塞は実験的ストローク研究で頻繁に使用されるモデルです。この原稿は、マウスの縦生体顕微鏡検査のための機会を提供しています横頭蓋窓の挿入と組み合わせて永久にMCAoの基本的な手法について説明します。

Focal cerebral ischemia (i.e., ischemic stroke) may cause major brain injury, leading to a severe loss of neuronal function and consequently to a host of ...

この手順の全体的な目標は、永久的な中大脳動脈閉塞と組み合わせた外側頭蓋窓の準備です。マウスの縦断的生体内顕微鏡検査を容易にするため。この方法は、小脳虚血研究の分野における重要な質問を調査し、答えるのに役立ちます。この技術の主な利点は、脳卒中後の急性および慢性の変化のin vivoイメージングを提供することです。承認された動物のプロトコルに従って麻酔を投与することから始めます。つま先をつまむような痛みの刺激を投与し、反応がないことに注意することにより、麻酔の手術面に到達したことを確認します。次に、げっ歯類のシェーバーを使用して、首から目にかけて毛皮を取り除きます。マウスの頭を固定固定装置フレームに固定します。次に、脱水症状を防ぐために眼科用軟膏で目を覆います。剃った部分をきれいにしてすべての毛を取り除き、74.1%エタノールと10%チューブプロプラノロールの3つのアプリケーションで頭皮を滅菌します。滅菌メスを使用して、首から目に向かって正中線を切開します。次に、4つのテント縫合糸で皮膚フラップを広げます。次に、頭蓋骨の左側にある骨膜を慎重にこすります。そして、側頭筋が始まるところまでそれを取り除きます。次に、マイクロドリルを使用して、骨フラップの縁にある頭蓋骨を薄くします。直径4mmの前頭蓋開頭術を作製する。熱による損傷を避けるために、穴あけ中に生理食塩水を適用します。穴を開けたら、カニューレで骨フラップを持ち上げ、マイクロ鉗子を使用して骨フラップを取り除きます。生理食塩水でその地域を慎重かつ広範囲に灌漑します。歯科用接着剤を適切な粘稠度になるまで混ぜます。次に、開頭術の周りの骨にそれを適用します。準備した接着剤の上に直径6mmのカバーガラスを置きます。そして、残りの歯科用接着剤でそれを固定します。灌漑は硬化プロセスを加速し、シールが防水であることを保証します。鉗子で歯科用接着剤をプローブして、乾燥して固くなっていることを確認します。接着剤が硬化したら、テント縫合糸を取り外し、皮膚縫合糸で傷を閉じます。0.5ミリリットルの滅菌生理食塩水を皮下に投与して、体液バランスを整えます。.手術後、麻酔から回復するまで、加熱された回復ケージで動物を監視します。動物を他の動物と一緒にケージに戻す前に、動物が完全に回復したことを確認してください。手術後は必ず鎮痛剤を投与してください。ここでは、1ミリリットルあたり10ミリグラムのアセトアミノフェンを飲料水に加えます。常に床に置かれたペトリ皿にマッシュポテトの動物性食品を提供して、食事を簡単にし、手術後の重大な体重減少を避けてください。生体内顕微鏡検査は、頭蓋窓の準備後の最初の日に行うことができます。承認されたプロトコルに従ってイソフルラン麻酔を適用します。動物をヘッドホルダーに固定し、ノーズコーンが適切に取り付けられていることを確認します。皮膚縫合糸を開き、綿棒と滅菌生理食塩水で窓を清掃します。24時間後、頭蓋窓は脳脊髄液で満たされ、画像化が可能になります。中大脳動脈閉塞術は、頭蓋窓の準備から5日後、処置に対する免疫反応が後退したときに実施します。ここでは、MCAO導入のための開頭術後の概要を示します。術中の写真は、1 回目と 2 回目のバイポーラ接触後の血管を示しています。遠位MCAは完全に閉塞しているように見えます。この写真は、低倍率を使用した最終的な概要を示しています。以前と同様にイソフルランによる外科的麻酔を導入後、目と耳の間の部分の毛皮を剃り、両眼に眼科用軟膏を塗布し、以前と同様にアルコール溶液で皮膚と周囲の毛皮を消毒します。マウスをフィードバック制御の加熱パッドに置き、体温を維持します。動物を横向きの位置に置き、鼻を麻酔マスクに固定します。頭蓋窓の準備のために作られた切開部の皮膚をそっと分離し、その下の側頭筋を特定します。次に、高周波発生器のエネルギーを調整し、バイポーラモードを使用します。電気凝固鉗子を使用して、頭蓋骨から側頭筋を慎重に持ち上げ、筋肉を完全に取り除くことなく筋肉フラップを作成します。次に、側頭領域の吻側部分にある透明な頭蓋骨の下の中大脳動脈を特定します。後眼窩洞への背側。マイクロドリルでMCAブランチの上の頭蓋骨を薄くし、熱による損傷を避けるために継続的に灌漑します。次に、骨を持ち上げてマイクロ鉗子で取り除きます。高周波発電機のエネルギーを3〜5ワットに減らします。次に、動脈を上からアプローチし、血管を持ち上げずに両側のバイポーラ鉗子でそっと触れます。30秒待ってから、バイポーラ鉗子の先端で動脈にそっと触れて、血流が永久に中断されるようにします。MCA閉塞後、骨欠損をカバーするために、筋肉の挿入部で1針または2針で側頭筋を固定します。次に、傷口を縫合し、回復するまで動物を加熱されたケージに入れます。このMRIは偽手術の24時間後に行われ、損傷した皮質組織は示されていません。一方、虚血の 24 時間後に実施されたこの MRI は、慢性頭蓋窓の下にあるアスタリスクで示される虚血性病変を明確に示しています。この画像は、微小循環の変化を監視するための皮質血管系の生体内落射蛍光イメージングと 2 光子イメージングを示しています。虚血の24時間後と96時間後にMRIで評価された梗塞容積は、24時間で13.16ミリメートル、96時間で12.2ミリメートルの3乗の平均病変体積を示しています。マスターすれば、頭蓋窓の準備は約30分で完了します。そして約15分でMCAOに到着。この手順に続いて、MRIや二重光子顕微鏡などの他の方法を実行して、追加の質問に答えることができます。これらの新しい技術により、研究者は神経血管ユニットを分子および細胞レベルで調査できます。そして特に、生きている脳に。

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Research

JoVE Journal

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神経科学

このビデオと補足資料では、我々は慢性のプロトコルを示す...

間伐-頭蓋骨の準備を使用してマウス視覚野の慢性的イメージング

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脳卒中の病態生理学を理解するためには、信頼性のあるモデルを使用することが重要です。この論文は、マウスにおいて最も頻繁に使用される脳卒中モデルのいずれかを説明する、中大脳動脈閉塞（MCAO）モデルと呼ばれる再潅流と（また腔内フィラメントまたは縫合モデルと呼ばれます）。...

マウスの中大脳動脈閉塞再灌流誘発性の脳卒中のための外科的アプローチ

ここに提示されるのは、覚醒した頭部拘束マウスにおける脳細胞の縦方向イメージングのための慢性頭蓋窓の移植のためのプロトコルである。...

覚醒マウスにおける 反復生体内 イメージングのための頭蓋窓の移植

このプロトコルは、中型の梗塞と優れた生存率を持つユニークなマウスストロークモデルを示しています。このモデルにより、脳卒中前臨床研究者は虚血期間を延長し、高齢マウスを使用し、長期的な機能的転帰を評価することができます。...

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ここでは、C57BL/6Jマウスの経頭蓋電気凝固術による遠位中大脳動脈閉塞(dMCAO)モデルを確立し、その後の神経学的行動と組織病理学的特徴を評価するためのプロトコルを提示します。...

遠位中動脈閉塞法を用いたマウスにおける急性虚血性脳卒中の誘発

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マウスデフォルトモードネットワークの縦方向多モーダル電気生理学記録を可能にする大型再封閉可能な頭蓋窓の手術プロトコル

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ラットにおける中脳動脈の選択的かつ永久的な閉塞:運動記憶および空間記憶障害の研究における実験的アプローチ

学ぶ横慢性頭蓋窓の準備とマウスの遠位中大脳動脈閉塞法。長期的な生体顕微鏡観察により、脳卒中後の急性および慢性虚血変化をリアルタイムで観測し、治療戦略の開発に貢献します。

横慢性頭蓋窓の準備を有効インビボマウスの遠位中大脳動脈閉塞後に観測

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