Name: で脂肪レベルを決定するの浮力に基づく方法ショウジョウバエ (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-11-01T11:15:00.000+00:00
Duration: 8 min
Description: 学ぶ浮力に基づく脂肪測定法でDrosophila melanogasterの第三齢幼虫の脂肪蓄積を評価する方法。遺伝子、栄養、処理による代謝変化を迅速かつ経済的にスクリーニングし、肥満素因や神経系の寄与を解明する上で有用です。

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K.E.H. は Training Grant in Molecular Biology NIH-T32-GM08730 の支援を受けました。この研究は、NIH、NIDDK Grant 5K01DK095932、AHA Award 12BGIA11930014 to T.R.

1.関心のある遺伝子型を持つハエから卵を集めます注：理想的な十字が150処女ハエと、少なくとも75人の男性で構成されています。ストックコレクションは、少なくとも200ハエで構成する必要があります。 <ol><li>ブドウのプレートを準備します。 <ol><li> 4リットルのフラスコに1.5 Lの蒸留水に37.5グラム寒天を追加します。 </li><li> 121ºC（250ºF）で50分間オートクレーブ水/寒天ミックス。 </li><li>水/寒天ミックスはオートクレーブ処理であるが、500ミリリットルグレープジュースに50グラムのスクロースを追加し、ショ糖が溶解するまで加熱撹拌プレート上の撹拌棒でかき混ぜます。 </li><li>熱をオフにして、70ºC以下にブドウジュース/ショ糖混合物を冷却するために攪拌し続けます。アルコール温度計で内部温度をテストします。 </li><li>グレープジュース/ショ糖混合物を温め、溶解するために攪拌する（ 例えば 、Tegosept）3グラムショウジョウバエの抗真菌剤を追加します。 </li><li>水/寒天混合物は、オートクレーブの外にあるとき、フラスコを時折旋回することにより、タッチに冷却することができます。 </li><li&gt;水/寒天混合物とグレープジュース/ショ糖混合物を合わせ、よく混合するまで撹拌。 </li><li>小さなペトリ皿（35×10ミリメートルスタイル）の蓋にブドウの混合物の10ミリリットル - 8を追加するために、血清学的ピペットを使用してください。混合物は、凸形状を形成するために、蓋の壁の高さよりも高い冠を許可します。 </li><li>ブドウのプレートを室温で2時間冷却した後、4ºCで密閉容器に保存することができます。 </li></ol></li><li>酵母ペーストを準備します。 <ol><li> 50ミリリットルコニカルチューブに4グラムのライブアクティブ乾燥酵母に6ミリリットルのリン酸緩衝溶液（PBS）を追加し、滑らかになるまでヘラで混ぜます。 </li><li> 4ºCで保存酵母ペースト。 </li></ol></li><li>ブドウのプレートの真ん中に酵母ペーストの小さなほんの少し加え（約1/8小さじ）を追加します。スパチュラで任意の粗いエッジを下にスムーズ。 </li><li>彼らは周囲の温度に達するまでインキュベーターでブドウプレートを置きます。 </li><li>採卵室と場所ブドウプレートワットへの関心のハエを転送上部に内側に面したi番目の酵母ペースト。採卵室にテープブドウプレートは、プレートが脱落せないようにします。ブドウのプレートの底面に重要な遺伝子型と日付情報を書き込むようにしてください。 </li><li>ハエがブドウ板に卵を産むことができるように採卵室を覆します。 </li><li>採卵室の上に箱やカバーを置き、25ºCでインキュベータに置いてください。 </li><li> 6時間 - ハエは4産卵することができます。 </li><li>採卵室からブドウのプレートを取り、食品の彼らのボトルに戻ってハエを転送することにより、コレクションを終了します。ブドウのプレートから余分な酵母ペーストを拭き取るためにへらを使用します。 24時間〜25ºCでの加湿インキュベーター中でより大きなペトリ皿に保管してブドウのプレート。 </li></ol>実験食品2.転送幼虫<ol><li>実験的な食べ物を準備します。 注：この食品のレシピはブルーミントンストックセンターのレシピ18に基づいています。重要な変更（ - 25ºCでの採卵後の時間120 112との間）のステージを徘徊のタイミングによって評価されるように、食品の栄養価を最適化するために、酵母の量の増加が含まれます。我々は我々の実験幼虫の健康と発展のためにこのレシピの理想を発見しているが、任意の食品のレシピは正と負のコントロールで許容可能な与えられたキャリブレーションである、の例は、ステップ3.10に記載されています。 <ol><li> 1600ミリリットルに蒸留水を測定します。 </li><li> 134グラムのコーンミール、10.6グラムショウジョウバエ寒天タイプII、および1リットルのビーカー内の水の一部（〜500ミリリットル）を混ぜます。電動式ハンドミキサーで2分間ブレンド。 </li><li>別の1リットルのビーカーに70グラムのライブ活性乾燥酵母、18.4グラムの大豆粉、84.8グラムの麦芽エキス、及び水の一部（〜500ミリリットル）を混ぜます。電動式ハンドミキサーで2分間ブレンド。 </li><li>各ビーカーを旋回し、4 Lフラスコに注ぎます。ビーカーを洗い流し、フラスコに追加するには、残りの水を使用してください。 </li><li>旋回により混合し、140ミリリットル光コーンシロップを測定し、フラスコに追加します。&lt;/李&gt; <li>液体設定で121ºC（250ºF）で50分間オートクレーブ。 </li><li>オートクレーブ処理した後、4リットルのビーカーの中に食べ物を注ぎ、冷却させます。電動式ハンドミキサーでブレンドすることにより、冷却プロセスを助けます。 </li><li>フラスコに触れるのに十分冷却した後、8.8ミリリットルのプロピオン酸および16.8ミリリットルショウジョウバエの抗真菌剤/エタノール溶液を追加します。よく混ぜます。 （ ショウジョウバエ 1 Lに200プルーフのエタノールを380グラムショウジョウバエの抗真菌剤を添加し、溶解するまで溶液を70ºCを超えないように確認しながら、暖かいプレート上で撹拌することにより抗真菌剤溶液ください。） </li><li>食品は、約1インチの深さになるまでバイアルに食べ物を注ぎ、2 RTで冷却することを可能にする - 3時間。 25ºCでインキュベータにバイアルおよびストアを差し込みます。一週間以内に使用します。 </li></ol></li><li>何回かそれを獲得するために、食品のバイアルの最上層にへらをプランジ。これは、穴を掘ると養うために幼虫を支援します。 </li><li> 22 - 採卵後24時間は持ちます終了し、ほぼ同じ大きさの50最初の齢（L1）の幼虫を収集するために、小さな絵筆を使用しています。実験食に幼虫を置きます。ワイプや絵筆には残りの幼虫が他の遺伝子型に進む前に存在しないことを確認し、実験室に絵筆を清掃してください。 </li><li> 25ºCでインキュベータに幼虫のバイアルを置き、開発することができます。 </li></ol> 3.幼虫の脂肪レベルを決定します<ol><li>溶液を調製します。 <ol><li> 1 Lの10×PBS在庫を準備します。 <ol><li>攪拌棒を含む2リットルのビーカーに800ミリリットルの水に80グラムのNaCl、2グラムのKCl、14.4グラムの Na 2 HPO 4、および2.4グラムのKH 2 PO 4を追加します。全ての塩が組み込まれるまで加熱なしでかき混ぜます。 pHを7.4に持参してください。水で1Lにボリュームを上げます。 </li></ol></li><li> 2 L 1×PBSを準備します。 1800ミリリットルの水に200ミリリットル10×PBS原液を追加します。 </li><li> 20％w / vスクロースにするために、1×PBSのこのストックを使用してください。 </li></ol></li><li>から幼虫のバイアルを削除（一般的に卵のコレクション後5日目に）バイアルの側面をさまよう40幼虫 - インキュベータは、かつて20あります。日付と時刻のアッセイと同様に幼虫を放浪の数を記録します。 </li><li> 50ミリリットルコニカルチューブに11.5ミリリットルのPBSおよび9 mlの20％ショ糖を加えることによって、実験的なソリューションを準備します。 </li><li>バイアルの上部から1インチ - それが0.5になるまでバイアルに20％スクロースを追加します。 </li><li>優しくまだ食品中に掘り進むされている無料の幼虫に食品の最上層をかき立てるためにへらを使用します。すべての幼虫は、スクロース溶液の表面に上昇します。 </li><li>静かにステップ3.3から初期スクロース濃度に幼虫を転送するために鉗子を使用してください。 </li><li>静かにこの溶液中の幼虫を攪拌するへらを使用してください。 </li><li>コニカルチューブに蓋をし、溶液を十分に混合するために数回を覆します。 </li><li>コニカルチューブをキャップを取ると穏やかな渦を作成するために旋回。 </li><li>いずれかの溶液またはSIの最上部に浮遊、幼虫が安定することを許可します底にnking。解決するための幼虫のために5分 - 2を待ちます。 注：いずれかの浮きや沈没間違いではありません幼虫がまだある場合は、フローターやシンカーのいずれかとして幼虫を標識するために、カットオフポイントとして使用する回線を選択します。すべての遺伝子型に、この同じ基準を適用します。私たちは、境界としてコニカルチューブの底に角度を使用します。ADPまたはSIR2 17変異体の幼虫は、19の変異体は、アッセイのキャリブレーションのための陰性対照として使用することができる陽性対照とlsd2として使用することもできます。 </li><li>浮遊幼生の数および試験された特定の濃度を記録します。 </li><li>その密度を増大させるために、実験溶液1 mlの20％スクロースを加えます。 </li><li>繰り返しは、3.10から3.7のステップ。浮遊幼生の数と、この新しい濃度を記録します。 </li><li>幼虫の少なくとも95％がフローティングされるまで、ステップ3.12と3.13を続けます。 </li><li> PBSで満たされた解剖皿にすべての幼虫を収集するために鉗子を使用してください。 </li><li> OBSどんな小さな幼虫、前蛹、蛹、または遺伝子型との間の任意の他の相違点がある場合は、顕微鏡やノートの下erveの幼虫。 注：理想的には、すべての幼虫が均質と同じ発達段階で表示されます。我々は、これらの条件下で、一貫した脂肪測定値を観察しました。 </li><li>幼虫の合計数を記録します。 </li><li>鉗子を使用して、実験室に10幼虫を移す乾燥させるために拭いてください。マイクロチューブにラベルを付け、チューブで10幼虫を配置します。 </li><li> Flashは、液体窒素中で幼虫を凍結します。 -20ºCでチューブを保管してください。 </li></ol>

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</ol>

著者らは、競合する金銭的利益はないと宣言している。

10 -脂質レベル8を測定するために開発された技術の多くがあります。しかし、これらの各方法は、上記で概説した浮力ベースのアッセイによって対処されているいくつかの大きな欠点が付属しています。まず、このアッセイは非常に迅速です。 60分 - フル濃度勾配をテストしても30以上を取りません。これは、現在使用されている技術のほとんどに大きな改善です。それらを分析するために、脂質および他のいくつかの時間を分離するために9時間 - たとえば、MSによる脂質定量は7かかります。多数の動物のスクリーニングを行うとき、これは強力な抑止力です。迅速な浮力表現型を測定することによって、素早く目的の表現型を持っている遺伝子型に焦点を当てることができます。第二に、密度のアッセイは、そのような（PBS用）塩およびスクロースなどの唯一の共通の試薬を必要とします。これは、幼虫の多数をスクリーニングするか、すぐに興味深い遺伝子型をテストすることがはるかに容易かつ安価になります。最後に、このプロトコルI非侵襲性と幼虫のは終わりにまだ生きています。これにより、実験は、特定の脂質の定量または転写物またはタンパ...

キイロショウジョウバエは遺伝学および他の基本的な生物学的な質問の研究で一世紀以上にわたって使用されてきました。過去数十年では、 ショウジョウバエは 、多くのヒト疾患の研究における強力なツールであることが明らかになりました。ヒトの疾患に関連する遺伝子の80％に同定フライオルソログ1持っている- - 70のように4を 、 ショウジョウバエは、複雑な疾患を研究する中で簡略化し、まだ翻訳可能なシステムを提供します。特に代謝は、このような研究から恩恵を受けています。だけでなく、よくハエとヒトの間で保存代謝の遺伝学がありますが、関連する器官および細胞型はまた、2,5非常によく似ています。例えばフライストアの両方トリアシルグリセリド（TAG）およびグリコーゲン、哺乳動物の肝臓および白色脂肪組織6で行われたものと類似の機能の、脂肪体。人間の肥満のモデルとしてショウジョウバエを使用すると、大幅に脂質の我々の理解を改善しました代謝と肥満7の遺伝学。開発の幼虫期は、それが供給およびpupariation時に使用するエネルギーの貯蔵に専用されているような記憶や利用に栄養素の分離を研究するために特に有用です。 現在、 ショウジョウバエにおける脂肪蓄積レベルを決定する多くの異なる定量的な方法があります。最も広く使用されている方法は、結合された比色アッセイ（CCA）8,9です。 CCAは、ヒト血清中のTAGのレベルを決定するために開発され、トリグリセリド骨格から遊離グリセロールを最終的に着色された生成物を生成する酸化還元結合反応を生じ、いくつかの反応を受けることを前提に動作しました。光の特定の波長の吸光度は、その後、グリセロール存在の初期量を決定するために測定されます。しかし、グリセリンは、タグに加えて、モノ - およびジアシルグリセリドから遊離させることができるので、複数の正確な測定値ではないかもしれませんtored体脂肪9。さらに、破砕大人のハエの目の顔料は、いくつかの吸光度の読み取りを妨げ、結果9,10を複雑にすることができます。したがって、CCAが同行し、デンシトメトリー10,11によって定量することができるほとんどの脂質ファミリーの分離を可能に薄層クロマトグラフィー（TLC）、によって検証されなければなりません。しかし、ステロールのようないくつかの脂質クラスを分析することができず、別の方法12を定量化する必要があります。質量分析（MS）は、主要な細胞脂質12,13のすべてのクラスを定量するための正確な方法です。しかし、MSによって分析するために必要な脂質抽出手順は、両方の時間がかかり（ほとんど終日ほぼ服用）と高価です。ここでは、迅速かつ安価にキイロショウジョウバエのL3幼虫に生物の脂肪レベルを決定するための別の方法を提示します。 以下に示す方法は、脂肪組織と除脂肪組織の密度差を利用します。哺乳動物のファトンの組織は、1.06グラム/ミリリットル15の密度の約0.9グラム/ミリリットル14一方、骨格筋の密度を有します。この違いは、脂肪の高い店舗を持つ動物はそれらを固定濃度の溶液中でよりよく浮くことができます脂肪の低い店舗、を有する動物よりも低い密度を有することを意味します。安価で非侵襲性の両方でありながらこのプロパティは、多数の動物の非常に迅速なスクリーニングを可能にします。浮力に基づく分析は、脂肪レベルの公知の調整を変えるの表現型を確認するだけでなく、肥満16,17の新たな遺伝的および神経学的調節因子を同定するための両方に使用されています。

<table><tbody><tr><td>バクト寒天</td><td>VWR</td><td>214030</td><td></td></tr><tr><td>ウェルチのオリジナル 100% ブドウジュース</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ショ糖</td><td>フィッシャー</td><td>S512</td><td></td></tr><tr><td>テゴセプト</td><td>ジェネシー サイエンティフィック</td><td>20-259</td><td></td></tr><tr><td>エタノール</td><td></td><td></td><td>200 プルーフ</td></tr><tr><td>ベイカーズ酵母</td><td>フライヒマンズ</td><td></td><td></td></tr><tr><td>イエローコーンミール</td><td>クエーカー</td><td></td><td>濃縮脱発</td></tr><tr><td>ショウジョウバエ寒天タイプII</td><td>Apex</td><td>66-104</td><td></td></tr><tr><td>大豆粉</td><td>ADM特殊成分</td><td>062-100</td><td></td></tr><tr><td>麦芽エキス</td><td>Breiss</td><td>5748</td><td></td></tr><tr><td>ライトコーンシロップ</td><td>カロ</td><td></td><td></td></tr><tr><td>プロピオン酸</td><td>VWR</td><td>U330-09</td><td></td></tr><tr><td>塩化ナトリウム</td><td>フィッシャー</td><td>50147491</td><td></td></tr>リン酸<tr><td>カリウム一塩基性</td><td>シグマ</td><td>P5655-100G</td><td></td></tr><tr><td>無水リン酸ナトリウム</td><td>フィ</td><td>ッシャーS3933</td><td></td></tr>塩化<tr><td>カリウム</td>フィ<td>ッシャーP330-500</td><td></td><td></td></tr><tr><td>35 x 10ミリメートルペトリプレート</td><td>フィッシャー08-757-100A</td><td></td><td></td></tr><tr><td>50ミリリットル円錐</td><td>フィ</td><td>ッシャー50-869-569</td><td></td></tr></tbody></table>

で脂肪レベルを決定するの浮力に基づく方法<em&gt;ショウジョウバエ</em

A Buoyancy-based Method of Determining Fat Levels in Drosophila

Drosophila melanogasterは、脂肪調節の研究における重要な実験システムです。現在、ショウジョウバエに蓄積された脂肪のレベルを測定するための多くの技術が存在しますが、ほとんどは高価で手間がかかり、明確な制限があります。ここでは、L3ショウジョウバエの幼虫の生物の脂肪レベルを迅速かつ安価に測定する方法を紹介します。この技術は、脂肪組織と除脂肪組織との間の密度の違いに依存しており、脂肪と痩せた表現型を迅速に検出することができます。この方法の精度は、中性脂質抽出法と質量分析法(GCMS)を組み合わせたガスクロマトグラフィーによって決定された体脂肪率と比較することにより検証しました。さらに、幼虫の収集と同期のための詳細なプロトコルと、関連する実験レシピについても概説します。以下に示す技術は、最も広く使用されている脂質定量法の主な欠点を克服し、幼虫の完全性を維持しながら、L3幼虫の脂肪調節表現型を迅速かつ高感度にスクリーニングする強力な方法を提供します。このアッセイは、ショウジョウバエを用いた代謝および脂肪調節の研究に広く応用されています。

図1は、浮力に基づくアッセイは、遺伝子操作幼虫に上位と下位の両方の脂肪の店舗を検出することができる方法の例を表している。 図1Aは、幼虫の脳内の神経細胞の特定のサブセットの励起またはサイレンシング（E347）が低く、高脂肪を誘導することを示しますそれぞれ格納されています。同一の遺伝的背景の制御を両方の場合に使用した。 図1Bは、濃度分析によって得られたこの表現型は、GCMSによって中性脂質の抽出および定量化することによって確証される方法の例を提供します。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/54744/54744fig1.jpg" /> 幼虫の脳の特定の領域における 図1. 神経機能は、体脂肪の規制のために必要かつ十分...

ここでは、三齢（L3） キイロショウジョウバエの幼虫期における生物の脂肪レベルを測定するための方法を提示します。この方法は、変更された脂肪店との幼虫を区別するために、脂肪組織の比較的低密度を利用します。浮力ベースの分析、迅速な再現性、および経済的なスクリーニングのための貴重なツールです。

Drosophila melanogaster is a key experimental system in the study of fat regulation. Numerous techniques currently exist to measure levels of stored fat ...

このアッセイの全般的な目的は、遺伝学的要因、食事、または治療による変化によって引き起こされる脂肪蓄積レベルの変動を決定することです。これらの手法は、肥満への素因に対する遺伝的または神経的な寄与など、代謝分野における重要な問いに答えるのに役立ちます。この手法の主な利点は、現在用いられている他の方法と比較して、迅速かつ経済的であり、再現性が非常に高いことです。この手法に不慣れな方や、遊泳期（wandering stage）の幼虫の取り扱いに不慣れな方は、ジェノタイプによって発生スケジュールに大きなばらつきがあるため、このプロトコルの遂行に苦労する可能性があります。本手順を開始するには、グレートプレートの中央に酵母ペーストを少量置きます。スパチュラを用いて、粗い縁を滑らかに整えてください。次に、目的のハエを産卵収集チャンバーに移し、酵母ペーストを塗布した格子プレートを上面から内側に向けて配置します。その後、格子プレートが脱落しないように、チャンバーにテープで固定します。格子プレートの底面に、重要な遺伝子型と日付の情報を必ず記入してください。続いて、卵採取チャンバーを逆さまにし、ショウジョウバエが格子プレート上に産卵できるようにします。その後、卵採取チャンバーを蓋のないボックスで覆い、25 degrees celsiusのインキュベーター内に4～6時間放置して、ハエに産卵させます。完了後、卵採取チャンバーから格子プレートを取り出し、ハエを元の餌入りボトルに戻します。スパチュラを使用して、グレーティングプレートから余分な酵母ペーストを拭き取ります。その後、グレーティングプレートを大きめのペトリ皿に入れ、25 degrees celsiusの加湿インキュベーター内で24時間保管します。この手順において、スパチュラで餌の最上層を数回突き刺して傷をつけることで、幼虫が潜り込んで摂食できるようにします。採卵から22〜24時間後、小さな絵筆を用いて、ほぼ同じ大きさの1齢幼虫50匹を回収し、実験用飼育瓶に移します。幼虫の発育段階を厳密に揃えるため、ほぼ同サイズの個体を選択して実験用飼育物に移すことが非常に重要です。次に、ラボワイプで絵筆を清掃し、別の遺伝子型に移る前に絵筆に幼虫が残っていないことを確認します。その後、幼虫の入ったバイアルを25 °Cのインキュベーターに入れ、成長させます。20から40匹の幼虫がバイアルの壁面を這い上がり始めたら、バイアルをインキュベーターから取り出します。アッセイの日時と、徘徊幼虫の数を記録します。次に、50 mLコニカルチューブに11.5 mLのPBSと9 mLの20% sucroseを加えて、実験溶液を調製します。バイアルの上端から1インチのところまで20% sucroseを加えます。スパチュラを用いて餌の最上層を軽くかき混ぜ、中に潜っている幼虫を分離させます。すべての幼虫がショ糖溶液の表面に浮上します。その後、幼虫を最初のショ糖溶液に慎重に移し、軽くかき混ぜます。幼虫を実験溶液に移す際は、幼虫を圧迫したり傷つけたりしないよう注意してください。これにより、アッセイの結果が変わる可能性があります。コニカルチューブに蓋をし、数回反転させて溶液を十分に混ぜ合わせます。次に、コニカルチューブのキャップを取り外し、軽く回して緩やかな渦を作ります。幼虫が溶液の上部に浮くか、あるいは底に沈むまで、2〜5分間静置します。浮遊している幼虫の数と、テストしたショ糖濃度を記録してください。次に、密度を高めるために、20% sucroseを1 mL実験溶液に加えます。続いて、スパチュラを用いて幼虫を穏やかに撹拌します。その後、コニカルチューブの蓋を閉め、数回反転させて溶液を十分に混合します。続いて、コニカルチューブのキャップを開け、軽く回して緩やかなボルテックスを作ります。浮遊している幼虫の数と新しい濃度を記録してください。幼虫の少なくとも95%が浮遊するまで、この操作を繰り返します。コニカルチューブに20% sucroseを、上端から1インチ（約2.5 cm）の高さまで加えます。次に、PBSを満たした解剖皿にすべての幼虫を回収します。顕微鏡下で幼虫を観察し、小型の幼虫、前蛹、蛹がいないか、またはジェノタイプ間で差異がないかを確認し、手順が適切に実施されたことを確かめます。次に、幼虫の総数を記録します。その後、10匹の幼虫をラボワイプに移して乾燥させます。マイクロ遠心チューブにラベルを貼り、幼虫をチューブに入れます。その後、幼虫を液体窒素で急速凍結し、チューブを−20°Cで保存します。ここでは、浮力ベースのアッセイによって、遺伝子操作された幼虫における蓄積脂肪の増加および減少の両方を検出できる例を示しています。この図は、幼虫の脳内の特定のニューロンサブセットを興奮または抑制させることで、それぞれ蓄積脂肪の減少および増加が誘導されることを示しています。どちらの場合においても、同一の遺伝的背景を持つコントロールが使用されました。ここでは、密度アッセイによって得られたこの表現型が、中性脂質の抽出およびGCMSによる定量によって裏付けられる例を示します。この手法に習熟し、適切に実施すれば30分以内に完了させることができ、他のジェノタイプと並行して実施することが可能です。この手順を実施する際は、実験に用いる幼虫の発育段階を可能な限り同期させることが重要です。本手順の後、幼虫を液体窒素で急速冷凍することで、ガスクロマトグラフィー質量分析などの他の手法に供することができ、幼虫内の脂質種類の具体的なクラスなどの追加情報を得ることが可能になります。この手法の開発により、代謝研究者はDrosophilaにおける肥満への遺伝的または神経的な寄与を探索する道が開かれました。このビデオを視聴することで、蓄積脂肪量の変化について遺伝子型を迅速にスクリーニングする方法を十分に理解することができます。

a-buoyancy-based-method-of-determining-fat-levels-in-drosophila

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生物学

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高脂肪食給餌とキイロショウジョウバエの高スループット Triacylglyceride 試金

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ショウジョウバエ幼虫における大鼻細胞の解剖と脂質液滴染色

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本プロトコルは、ショ ウジョウバエメラノガスター 幼虫の脂肪体における栄養素の枯渇 による...

ショウジョウバエメラノガスター幼虫脂肪体における飢餓誘発オートファジーの解析

学ぶ浮力に基づく脂肪測定法でDrosophila melanogasterの第三齢幼虫の脂肪蓄積を評価する方法。遺伝子、栄養、処理による代謝変化を迅速かつ経済的にスクリーニングし、肥満素因や神経系の寄与を解明する上で有用です。

で脂肪レベルを決定するの浮力に基づく方法

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