December 21st, 2016
ゼブラフィッシュにおける間腎腺は、哺乳動物の副腎の硬骨魚類の対応です。酵素活性アッセイ、開発ゼブラフィッシュでは、分化ステロイド産生細胞を検出し、このプロトコルは、3-βヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼ(3β-HSDΔ5-4イソメラーゼ)を実行する方法を紹介します。
この手順の全体的な目標は、単純なホールマウント酵素活性アッセイを通じて、発育中のゼブラフィッシュの分化した腎間ステロイド産生細胞を検出することです。この染色手順は、腎間腺の形成と奇形の分子的および細胞的メカニズムに関する重要な質問に答えるのに役立ちます。この染色アッセイの主な利点は、迅速、シンプル、かつ信頼性が高いため、ゼブラフィッシュの遺伝的または化学的スクリーニングに強力なツールとなることです。
この手順は、トランスジェニック蛍光レポーターラインで実行でき、腎臓と血管にマーキングして、同じ胚の複数の組織を分析できます。ビブラトーム切片作製、免疫組織化学、共焦点顕微鏡法と組み合わせることで、腎間組織の血管微小環境も可視化できます。テキストプロトコールに従って3つのβ-Hsd活性染色用のストック溶液を調製した後、発育中のゼブラフィッシュ胚を卵水中の0.03%PTUに置き、色素形成を抑制します。
脱毛胚または幼虫をPBS中の2%または4%PFAに0.1%Tween 20またはPFATで固定します。PBSTでは、胚をそれぞれ10分間ずつ4回洗浄し、洗浄と洗浄の間にサンプルが乾燥しないようにします。染色反応の前に、パートAとBを別々のチューブに新たに調製し、溶液をボルテックスして遠心分離します。
パーツAとBは別々のチューブに用意しておくことが大切です。すべてのコンポーネントを1つのチューブに直接追加すると、すぐに深刻な降水量が発生します。パートAのチューブ全体をパートBのチューブ全体に加え、よく混ぜ、すぐに固定胚と洗浄した胚が入った各マイクロチューブに1ミリリットルを分配します。
アルミホイルを使用してチューブを包み、室温でローテーターまたはロッキングプラットフォームに軽く振って置きます。顕微鏡を使用して発色シグナルをモニターすることにより、反応時間を経験的に決定します。時間の経過とともにわずかな降水量が発生し、反応プロセスを妨げません。
PBSTを使用して胚を4回、それぞれ10分間洗浄して反応を停止し、染色した胚を室温で4%PFATで60分間後固定します。ホールマウント顕微鏡では、PBS中の50%グリセロールを使用して胚を透明化します。その後、背側を上にして向きを変えた後、明視野照明下で直立顕微鏡を用いて試料を観察します。
胚を卵黄から取り除き、それを使用してフラットマウントを準備します。次に、腎間組織の形態の高解像度画像を撮影します。ステロイド新生組織の血管微小環境を解析するには、染色した胚を2%PFAで後固定します。
1%Triton X-100を摂氏4度で1時間補充し、PBST-Xを使用して胚を室温で4回、各10分間洗浄します。胚を埋め込むには、アガロースをPBSに95°Cで溶解することにより、4%低融点アガロースを調製します。その後、微量遠心チューブに分注し、摂氏4〜8度で保存します。
4%低融点アガロースのアリコートを摂氏70度で10分間溶かし、次にアリコートを摂氏47度に保ちます。1.5ミリリットルの微量遠心チューブから取り外したキャップを型として、溶融したアガロースに胚を埋め込み、固まるまで冷まします。ビブラトームセクショニングを行うには、ビブラトームのドライプラットフォームに紙テープを接着します。
次に、かみそりの刃を使用して、硬化したアガロースブロックを型から取り出します。プラットフォーム上の紙テープに瞬間接着剤を塗布し、サンプルの前面を上にしてアガロースブロックを紙テープに固定します。次に、アガロースブロックを台形プリズム形状にトリミングし、上部ファセットと下部ファセットの両側にそれぞれ約4〜8ミリメートルを配置します。
0.5%Trident X-100を含む冷たいPBSで満たされたスポイトを使用して、アガロースブロックをすすぎます。次に、製造元の指示に従ってビブラトームを使用して、100マイクロメートルのセクションを準備します。26ゲージの針で、ビブラトームから切断された部分を取り除き、ウェルあたり500マイクロリットルの冷たく0.5%PBST-Xを含むスポットプレートに移します。
解剖顕微鏡で確認して3つのβ-Hsd活性陽性組織切片を採取し、ピペットチップを使用して切片を冷たい0.5%PBST-Xを含む96ウェルプレートに移します。さらに、テキストプロトコルに従って切片を染色し、画像化します。ステロイド産生性腎間組織がどのようにして前腎性腎糸球体およびその新生血管系と共発達するかを決定するために、3つのβ-Hsd酵素活性アッセイをダブルトランスジェニックゼブラフィッシュ胚に対して行い、腎臓特異的および内皮特異的な蛍光を発現しました。
ここに示すように、3つのβ-Hsd陽性ステロイド産生組織は正中線の右側に位置し、すぐに前腎腎糸球体に寄り添います。一部のステロイド産生細胞も正中線を横切って移動を開始します。3つのβ-Hsdアッセイにかけられた内皮GFPを発現するトランスジェニック胚からのこれらのビブラトーム切片を免疫組織化学によって分析し、フィブロネクチンとその下流のエフェクターであるリン酸化焦点接着キナーゼを検出しました。
フィブロネクチンの背側大動脈沈着は、腎間血管の成長をサポートするために不可欠です。魚の胚や幼虫の場合、適切に行えば、ホールマウント組織化学染色は1日以内に行うことができます。この染色方法はシンプルで迅速ですが、ステロイド産生経路の1つの酵素のみを検出していることを覚えておくことが重要です。
腎間組織の発生解析を目指す場合、このアッセイに加えて、ステロイド産生に関与する他の重要な遺伝子の発現を検出するために、in situ居住を行う必要があります。
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このプロトコルは、全身酵素活性アッセイを使用して、発生中のゼブラフィッシュの分化した中腎ステロイド生成細胞を検出する方法を説明しています。この技術は、中腎腺の形成と異常形成を研究する上で価値があります。
This enzymatic activity assay enables rapid visualization of steroidogenic tissue in zebrafish embryos, supporting early-stage target validation in endocrine pathway research. By detecting 3β-Hsd activity without reliance on antibodies, the method provides a reliable readout for mechanistic de-risking of compounds affecting steroidogenesis. Its compatibility with transgenic reporter lines and vascular microenvironment analysis enhances predictive confidence in preclinical safety assessment.
The assay fits within early discovery workflows where functional readouts of endocrine tissue maturation are required prior to lead optimization.